2007年7月29日
こちらは生後10日のマウスの幼獣で、尾部の生検を行い、その後、尾部からゲノムDNAを抽出します。まず、尾部を約3 mmほど切り取り、その断片をエッペンドルフチューブに入れ、ドライアイス上に置きます。また、マウス間のコンタミネーションを防ぐため、通常はカミソリの刃の最後に切断した箇所に印を付けています。
このように、次のマウスの尾部生検を行う際は、必ず新しいカミソリの刃を使用するようにします。同じリター内の個々のマウスを区別するためには、マウスを識別する方法が必要です。その一つの方法として、ここに示すイヤーパンチを用いて、耳に穴を開ける方法があります。
このように、マウスの項皮をそっと掴んで仰向けにし、指で尾を挟んで固定します。もう一方の手で耳穴穿刺器を持ち、マウスの耳のその部分を素早く切り取ります。痛みがほとんどなかったことがわかりますか?
さて、これらのエッペンドルフチューブに尾の断片が入っているのがわかります。ここに、消化を促進するための溶液を加えます。まず、720 µLのSTE溶液を加え、次に30 µLのプロテアーゼKを加えます。ここでは、消化前に切断した尾の断片を確認します。
次に、尾部組織を55 °Cのヒーティングブロックに置きます。多くのプロトコルでは55 °Cで連続的にロッキングすることを推奨していますが、今回は尾部組織をボルテックスするため、その必要はありません。ここで、尾部組織を2秒間ボルテックスします。
1、2。ボルテックス処理後、エッペンチューブの中を確認すると、尾部の断片が完全に溶解していることがわかります。続いて、70 °Cで5分間加熱し、プロテアーゼKを活性化させます。その後、氷上で5分間冷却して反応を停止させます。
マイクロ遠心機を用いて、テイルピースを最大速度で10分間遠心分離します。このマイクロ遠心機における最大速度は13,000 RPMです。消化済みのテイルを遠心分離している間に、いくつかのエッペンドルフチューブにラベルを貼り、750 µLのイソプロパノールを満たします。
消化した尾部組織を遠心分離すると、毛や未消化物がチューブの底にペレットとして形成されるため、上澄み液をデカンテーションで除きます。消化物質、STE、およびproteinase Kを含む溶液をイソプロパノールが入ったエッペンドルフチューブに移すと、DNAが溶液から析出し始め、幽霊や羽のような外観になります。この気泡の周囲に漂っているのが、マウスの尾から単離されたゲノムDNAです。イソプロパノールとSTE溶液を混合すると、ゲノムDNAが析出してこのように小さな塊として現れます。沈殿したゲノムDNAをマイクロ遠心機を用い、最大回転数で5分間遠心分離します。
チューブの底に、ペレット状になったゲノムDNAが確認できます。ここで、チューブ内の溶液を吸引し、ゲノムDNAのペレットだけを残します。別のチューブを吸引するたびに、チップを交換します。
このアスピレーターのチップにピペットチップを装着します。STEおよびイソプロパノールを吸引除去した後、ゲノムDNAペレットを洗浄するために70% ethanolを1 mL加えます。ゲノムDNAのペレットは通常、マイクロ遠心チューブの壁面に付着し、70% ethanolで十分に洗浄するために剥がすことが困難であるため、ここにあるマイクロ遠心チューブラックにチューブをこすりつける必要があります。
次のように行います。ここでは、ペレット化し70% ethanolで洗浄した後のゲノムDNAを示しています。これを再び最大速度で5分間遠心分離し、その後70% ethanolを吸引して、洗浄後のゲノムDNAペレットを回収します。
70% ethanolを用いて最大速度で5分間遠心分離し、70% ethanolを吸引除去した後、DNAを5分間乾燥させます。チューブの底にあるゲノムDNAペレットを確認してください。これで十分な乾燥状態になります。マウスの尾から抽出したゲノムDNAペレットを乾燥させたので、ここにpH 8の40 mM Trisを100 µL加えます。
ゲノムDNAを50 °Cで保持します。これにより、室温で保存するよりも迅速に溶解します。50 °Cで約1時間ほど置いた後、冷凍保存するか、あるいは4 °Cで保存し、トランスジーン陽性のマウスを特定するためのPCR反応を行うまで保持します。
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本記事では、ゲノムDNAを抽出するために、生後10日のマウスパピーから尾部生検を行う手順について説明します。ここでは、コンタミネーションの回避と個体識別を徹底することの重要性を強調しています。
マウスの尾部からゲノムDNAを単離することで、初期の探索ワークフローにおける信頼性の高い遺伝学的スクリーニングが可能となり、トランスジェンの検証やコロニー管理を支援します。この手法は、ジェノタイピングのためのスケーラブルで汚染を制御したアプローチを提供し、ダウンストリームアッセイにおける偽陽性を減少させます。これは、サンプルの完全性がデータの信頼性に直接影響を与えるハイスループットのターゲット検証において特に有用です。
本手法は、初期のコロニー管理からリード同定に至るディスカバリー・コンティニュアムに適合するものであり、表現型スクリーニングやメカニズム解析の前段階として不可欠なジェノタイピングのステップを提供します。