2011年4月11日
RNA干渉は、遺伝子の機能を解析することは非常に効果的であることが証明されていますショウジョウバエ気管開発。ノックダウンの遺伝子発現にハエの胚にdsRNAを注入する江研究室で使用されている詳細なプロトコールが示されている。この手法はで組織や臓器の開発に必要なスクリーニングの遺伝子の可能性を秘めているショウジョウバエ。
この手順の全体的な目標は、ショウジョウバエの胚に二本鎖RNAを注入して臓器の発達に必要な遺伝子を特定することにより、内因性遺伝子発現をノックダウンすることです。これは、最初に胚を一直線に収集して並べることによって達成されます。次に、針を作製し、二本鎖RNAを胚に注入します。
最後に、胚を湿ったチャンバーに入れて成長させます。最終的には、ショウジョウバエの気管分岐融合に欠陥があることを示す結果を、後期胚の抗体染色や明視野顕微鏡での幼虫観察により得ることができます。この手法が、臓器発生に必要な遺伝子を同定するための前方遺伝学的スクリーニングなどの既存の方法よりも優れている点は、その遺伝子の変異体が利用可能になる前に、比較的単純で迅速な逆遺伝学的アプローチであることです。
この方法は、D気管系の発達に必要な重要な遺伝子の同定など、発生生物学分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。これは、脊椎動物の気道、循環器系、腎臓管、探索的上皮などの哺乳類の臓器の形態形成を研究するための優れたモデルです。一般的に、この方法に不慣れな人は、胚を並べる、針を折る、胚に鎖状RNAを注入するなどの方法を学ぶのに時間がかかるため、苦労するでしょう。
この方法の視覚的なデモンストレーションは、二本鎖の量を含むステップとして重要です。注入されるRNAは胚によって異なり、合胞体の胚盤胞胚がどのように見えるかを書面で示すのは難しい場合があります。合胞体胚に適切な量の二本鎖RNAを注入することは、内在性遺伝子の発現を効果的にノックダウンするための非常に重要なステップであるため、これらのステップを学ぶのは困難です。
摂氏25度でケージのセットアップを開始するには、2〜4日齢のW 1 1 1 8フライを使用して、日中1時間ごとにブドウジュースプレートを交換して、1〜2日の期間にわたって卵のコレクションを同期させます。コレクションの前。摂氏25度で1時間、ブドウジュース寒天の長方形の部分でsyn都市またはブラスター皮膚胚を収集し、その後、かみそりの刃で寒天の中央に線を軽く切ります。
金属プローブを使用して、グレープジュースプレートからグレープジュースに胚を移します。寒天。約50個の胚を胚と一直線に並べ、寒天の中央の線に対して45度の角度で長い軸を並べます。すべての胚が同じ方向を向き、後端が線から離れる方向を向いていることを確認してください。
長方形の両面テープをカットし、18 x 18 mm のカバー スリップに貼り付けます。カバースリップのテープを使用して胚を拾います。カバースリップをスライドガラスの上に置きます。
胚を両面テープに少し押し付け、胚を約10分間風乾させます。胚を700ハロカーボンオイルの薄層で覆います。胚が顕微鏡で透明になるまで約10分待ちます。
針は、ガラス毛細管を引っ張ることによってマイクロインジェクションのために準備されます。プログラム設定では、ワールド・プレシジョン・インスツルメンツ社のニードルプラーを使用しています。ヒート1遅延4バック。
einor Micro loaderチップ付きのEinor P 20ピペットを使用して、2マイクロリットルの二本鎖RNAを針にロードします。すべり台を用意し、その上にきれいなカバースリップを敷き詰め、テープでつなぎ合わせます。充填された針をカバースリップの端に持ってきて、鋭い先端を作ります。
二本鎖RNAが針先から漏れ出します。ピコポンプのフットペダルを踏み込んだら、真ん中にオイルを一滴垂らしたスライドを用意します。針をオイルドロップに挿入します。
ピコポンプの設定を調整して、フットペダルを踏んだときに100〜200ピコリットルの二本鎖RNAを排出します。二本座礁。RNAは小さな液滴の位置として見ることができます。
最初の胚の後部にある針先は、ピコポンプフットペダルを踏み込みます。二本鎖RNAは小さく見えます。注射部位で。
スライド上の胚への二本鎖RNAの注入を終了します。ブラスター以外の皮膚胚をすべて殺します。カバースリップを、プラスチック製のシャーレなどの蓋付きの湿ったチャンバー(摂氏18度)に置き、胚が目的の胚または幼虫の段階に発達するまで待ちます。
目的の胚段階まで発達した胚の場合は、プローブを使用して両面テープから胚を取り出し、カバースリップの端に押し込みます。胚をヘプタンで洗い流し、底にナイロンメッシュを付けたコレクションバイアルに入れます。胚をPBで50%漂白剤で5分間3回洗浄し、再度PBTで3回胚を洗浄します。
ピペットを使用して、採取バイアルからナイロンメッシュ片に胚を移し、ナイロンメッシュ片を固定液に浸します。胚を30分間固定します。固定液の下層を取り除きます。
次に、メタノール胚でそれらを化します、胚をエッペンドルフチューブに移し、目的の幼虫期に成長した胚の標準的な抗体染色プロトコルを使用して、2つのA12および拡散抗体で免疫染色します。ハロカーボンを一滴、真ん中に700オイル、オイルドロップの両側に2つの小さなカバースリップをセットしたスライドを用意します。1匹の幼虫をスライドに移し、オイルドロップの上にカバースリップを塗ります。
幼虫を明視野顕微鏡で観察します。拡散二本鎖RNAとGFP二本鎖RNAの両方の代表的な結果。ここにはRNA注入が示されています。
GFP二本鎖。RNAを注入した胚は正常な気管融合を示し、融合細胞には拡散タンパク質が存在します。矢印は体幹側方拡散陽性融合細胞を指し、アスタリスクは正常な融合の位置を示しています。
しかし、拡散二本鎖RNAを注入した胚は分岐融合に失敗し、融合細胞には拡散タンパク質は存在しません。三角形は、二本鎖RNAを注入した胚が幼虫期に発達したときに分岐融合が失敗した部位を示しています。G-F-P-R-N AI幼虫は、アスタリスクで示される正常な気管枝癒合を示します。
一方、拡散型RN AI幼虫は、三角形で示された分岐融合の失敗を示しました。これらの結果は、ショウジョウバエの胚への二本鎖RNA注入による内在性拡散遺伝子発現のノックダウン効果を示しています。この手順を試みている間、すべての封印ブラスター胚を殺すことを覚えておくことが重要です その開発後。
この技術は、発生生物学の分野の研究者がショウジョウバエの臓器発生のための新規遺伝子の機能を探索する道を開きました。このビデオを見た後、ショウジョウバエの胚に二本鎖RNAを注入することにより、内因性遺伝子をノックダウンする方法を十分に理解しているはずです。
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この記事では、二重鎖RNA(dsRNA)を使用してショウジョウバエの胚で遺伝子発現を抑制するプロトコルを提示します。この方法により、研究者は器官の発生、特に気管系の発達に不可欠な遺伝子を特定することができます。
Efficient gene knockdown in Drosophila embryos using dsRNA injection enables rapid interrogation of gene function in organogenesis, supporting early-stage target validation and mechanistic de-risking. This approach accelerates the identification of genes critical for tissue and organ development, providing predictive confidence before mutant lines are available. The method's simplicity and speed make it valuable for portfolio triage and prioritization in discovery pipelines.
This dsRNA injection method fits at the intersection of early discovery and lead identification, enabling hypothesis-driven gene function analysis prior to preclinical model development.