2011年7月12日
マウスの膀胱壁の注入は、同所膀胱の幹細胞と癌の生物学を研究するために有用なアプローチである。この繊細な顕微法は慎重に手法と実践を習得することができます。
この手順の全体的な目的は、膀胱壁の規定領域に細胞を導入することです。まず、腹部切開を行って膀胱を露出させることでこれを達成します。次に、針の針先(ベベル)を壁内へ挿入します。
手順の最終ステップは、シリンジのプランジャーを押し、目的の細胞を膀胱壁に注入することです。細胞の移植が成功したかは、液漏れがなくサイズが安定した、局所的に明確なブレブ(水疱)が形成されることで判断します。マウスへの細胞の経尿道的接種などの既存の手法と比較した本手法の主な利点は、膀胱内のどの位置に細胞を移植させるかを直接制御できる点にあります。
筋肉内注射の手技は習得が困難であるため、視覚的な実演による解説が極めて重要です。膀胱への針の挿入位置と正しい角度を把握することが、手技を成功させるために不可欠です。ここでは、実験の目的に応じてマウスの週齢、性別、および系統を選択してください。
生後8〜12週齢のマウスを使用します。まず、石鹸と水で手術台の表面を洗浄します。次に、サイドスワイプまたは消毒用ワイプで手術台の表面を拭きます。手術器具は、手術前にオートクレーブで滅菌しておく必要があります。
使用直前に器具を70% ethanolで拭き、個々の手術の間にはホットビード滅菌器で再滅菌します。30ゲージの針を装着した100 microliterのHamiltonシリンジを、絶対アルコールを繰り返し吸引した後、滅菌済みリン酸緩衝生理食塩水で洗浄します。麻酔をかけた動物を、正常な体温を維持するための温熱パッドの上に仰臥位で配置します。
動物の鼻をイソフルランの気化剤を含むノズルに配置し、十分なレベルの麻酔を維持します。次に、クリッパーを用いて腹部の皮膚から除毛します。手術中の糞便による汚染を防ぐため、使い捨ての滅菌手術用ドレープで肛門を覆います。
2枚目の手術用ドレープを下腹部に掛け、手術窓を設けます。解剖顕微鏡で拡大しながら、ベタディンとアルコールを繰り返し塗布して手術部位を滅菌します。ハサミを用いて下腹部正中切開を行います。
腹部に穏やかな圧力をかけて、膀胱を露出させます。通常、膀胱は部分的または完全に充満しているため、腹部を加圧することで他の臓器が優先的に押しやられ、切開部位から膀胱が現れます。膀胱が充満している場合は、ドーム部分に穏やかな下向きの圧力をかけて、部分的に減圧してください。
滅菌済みのハミルトンシリンジに、サンプル溶液を50 µL充填します。針先を面取り側が上になるようにして膀胱壁に刺入し、サンプル溶液を注入します。注入が成功すると、液漏れがなく、サイズが安定した局所的なブレブ(液溜まり)が形成されます。
注射後、切開部を皮膚ステープラーで閉鎖します。マウスを保温パッドの上で回復させます。この手法は、適切に行えば10分から15分で完了します。
注入後の連続的な時点における膀胱の組織学的解析を通じて、成功を確認することができます。
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本記事では、マウスの膀胱壁に細胞を注入するためのマイクロサージャリー技術について解説します。これにより、膀胱幹細胞およびがん生物学の研究が促進されます。本手法は細胞移植の位置を正確に指定できるため、従来の技術に比べて大きな利点があります。
マウス膀胱壁への注入により、膀胱生物学の精密な正位モデル化が可能となり、幹細胞、平滑筋、およびがん研究における機序解明のための研究をサポートします。この手法は、標的細胞の送達と局所的な組織解析を可能にすることで、疾患に関連するシステムにおける予測の信頼性を高めます。その再現性と解剖学的特異性により、泌尿器疾患のパイプラインにおける初期探索および前臨床モデル開発のための重要なツールとして位置付けられています。
この微小外科的注入法は、仮説に基づいたin vivo研究を可能にし、膀胱疾患研究におけるリード化合物の同定を支援することで、創薬から前臨床に至る一連の流れに統合されます。