Name: 頭蓋顔面の開発時には外胚葉上皮のシグナリング特性を評価する (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-03-24T11:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 25 s
Description: 学ぶ、鶏胚の上顎へ外胚葉を移植してキメラ胚を作製し、頭蓋顔面発生における外胚葉のシグナリングとパターニング特性を評価する方法。この技術は組織相互作用と形態形成のメカニズム解明に貢献します。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

この作品は、R01 - DE018234とR01 - DE019638によって賄われていた。

1。ドナー組織の準備<ol><li>培地を準備し、ガラスのピンをシャープに、タングステンの針を強めています。 </li><li>シェルから胚を回収、氷冷PBSで洗う。 <ol class="lalpha"><li> 10mLのシリンジと18ゲージの針を使用すると、卵の殻の先端からアルブミン1.0 mLを削除します。 </li><li>はさみのポイントを使用してシェルの上に小さな穴を確認し、胚を露出させる円形の開口部をカット</li></ol></li><li> DMEM（無血清、室温）に頭と場所を削除します。 </li><li>胚（またはそのような上顎または下顎のプロセスなど、他のドナーサイト）からFrontonasalプロセスを細かく分析</li><li> 20分氷上でPBSの2.4U / mLのディスパーゼのダイジェスト</li><li>消化を停止するには、1％BSAを含むDMEMでティッシュカバー</li><li>別の外胚葉、間充織、および神経外胚葉に尖ったタングステン針を使用して、 </li><li>ホストは、移植の準備ができるまで、氷上でDMEM、1％BSAで移植組織を保存する</li></ol> 2。ホストの準備<ol><li>胚を公開<ol class="lalpha"><li> 10mLのシリンジと18ゲージの針を使用すると、卵の殻の先端からアルブミン1.0 mLを削除します。 </li><li>はさみのポイントを使用してシェルの上に小さな穴をあけます。穴の上のテープを配置して、胚を露出させる円形の開口部をカット。 </li></ol></li><li>鉗子の2組を使用して、羊膜を持ち、ゆっくりと穴を作るために引き裂く。 </li><li>右眼にピンセットを配置し、圧力をかけて頭を回転させる。頭を固定し、移植片を収容するために、ホスト外胚葉を除去するためにタングステン針を使用。 </li><li>ガラスピペットを使用してホストに移植片を移す。 </li><li>削除された外胚葉を交換する移植片を置きます。場所に移植片を固定するために移植された組織の各コーナーでガラスのピンを挿入します。ガラスのピンを作成するには、アルコールの炎の細かい点にマイクロキャピラリーチューブを引き出します。 </li><li>穴にしっかりとテープを配置し、分析のために適切な時間のためにインキュベーターに胚を戻す。 </li><li>も参照してください：9 </li></ol> 3。代表的な結果： キメラを評価するために、胚を回収し、ホストとドナー組織の分布の分析のために処理されなければなりません。ウズラ細胞の検出、QcPNの抗体を用いた免疫組織化学が（で説明されている：3）採用されている、とマウス細胞の検出のための、パラフィン切片上でin situハイブリダイゼーションで 6が使用されます。ドナー細胞は、上皮に限定すべきである、とドナー間葉系組織（図1）の証拠があってはならない。間充織での孤立したドナー細胞の存在は、顔の開発の多くの側面（例えば、10）上でこれらの細胞の影響により、任意の形態学的解釈を混乱させるだろう汚染神経堤細胞の存在を示している。一度移植技術は間充織の汚染がないことを確信し、さらに形態学的または分子のアウトカム指標は、キメラを評価するために使用することができます。我々の目的のために、我々は（図3）グラフト化された外胚葉への応答における移植組織（図2）、及び間葉組織中の分子の変化によって誘発された上顎の重複に対応する異所性軟骨や骨の存在を検出5,6。 <img src="/files/ftp_upload/2557/2557fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。キメラ現象の評価 （）アンチQcPN染色は、ウズラ、ニワトリのキメラでウズラの細胞を検出するために使用されます。間葉で染色の証拠はない。 （B）in situハイブリダイゼーションは、マウス、ニワトリのキメラでSINEのB2の転写産物の発現を検出するために使用されます。式は、移植片を構成する外胚葉に制限されます。 <img src="/files/ftp_upload/2557/2557fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。トリクローム染色では、（A）ウズラ-ニワトリキメラの上顎の骨格の複製、及び（B）マウス、ニワトリキメラを示しています。 <img src="/files/ftp_upload/2557/2557fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3外胚葉は、間充織での遺伝子発現をregultes。ニワトリ胚の間充織の（A）ノーマルBMP7発現（Adobe Photoshopの正の信号擬似色の赤とin situハイブリダイゼーション放射性）。 （B）BMP7の発現は、キメラ胚の移植片（矢印）に隣接する間充組織に誘導される。

<ol><li>Noden, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Role+of+the+Neural+Crest+in+Patterning+of+Avian+Cranial+Skeletal%2C+Connective%2C+and+Muscle+Tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">The Role of the Neural Crest in Patterning of Avian Cranial Skeletal, Connective, and Muscle Tissues.</a> Developmental Biology. 96, 144-144 (1983).</li>
<li>Bronner-Fraser, M., Stern, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Mesodermal+Tissues+on+Avian+Neural+Crest+Cell+Migration%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Effects of Mesodermal Tissues on Avian Neural Crest Cell Migration.</a> Developmental Biology. 143, 213-213 (1991).</li>
<li>Schneider, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neural+crest+can+form+cartilages+normally+derived+from+mesoderm+during+development+of+the+avian+head+skeleton%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Neural crest can form cartilages normally derived from mesoderm during development of the avian head skeleton.</a> Developmental Biology. 208, 441-441 (1999).</li>
<li>Couly, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+between+Hox-negative+cephalic+neural+crest+cells+and+the+foregut+endoderm+in+patterning+the+facial+skeleton+in+the+vertebrate+head%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Interactions between Hox-negative cephalic neural crest cells and the foregut endoderm in patterning the facial skeleton in the vertebrate head.</a> Development. 129, 1061-1061 (2002).</li>
<li>Evans, D. J., Noden, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+relations+between+avian+craniofacial+neural+crest+and+paraxial+mesoderm+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Spatial relations between avian craniofacial neural crest and paraxial mesoderm cells.</a> Dev Dyn. , (2006).</li>
<li>Hu, D., Marcucio, R., Helms, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+zone+of+frontonasal+ectoderm+regulates+patterning+and+growth+in+the+face%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A zone of frontonasal ectoderm regulates patterning and growth in the face.</a> Development. 130, 1749-1749 (2003).</li>
<li>Hu, D., Marcucio, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unique+organization+of+the+frontonasal+ectodermal+zone+in+birds+and+mammals%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Unique organization of the frontonasal ectodermal zone in birds and mammals.</a> Dev Biol. 325, 200-200 (2009).</li>
<li>Le Lièvre, C. S., Le Douarin, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenchymal+derivatives+of+the+neural+crest%3A+analysis+of+chimaeric+quail+and+chick+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Embryology+and+Experimental+Morphology%22%5BJournal%5D)">Mesenchymal derivatives of the neural crest: analysis of chimaeric quail and chick embryos.</a> Journal of Embryology and Experimental Morphology. 34, 125-125 (1975).</li>
<li>Bollag, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+repetitive+mouse+B2+element+to+identify+transplanted+mouse+cells+in+mouse-chick+chimeras%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Use of a repetitive mouse B2 element to identify transplanted mouse cells in mouse-chick chimeras.</a> Exp Cell Res. 248, 75-75 (1999).</li>
<li>Korn, M. J., Cramer, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Windowing+chicken+eggs+for+developmental+studies%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Windowing chicken eggs for developmental studies.</a> J Vis Exp. , (2007).</li>
<li>Eames, B. F., Schneider, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quail-duck+chimeras+reveal+spatiotemporal+plasticity+in+molecular+and+histogenic+programs+of+cranial+feather+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Quail-duck chimeras reveal spatiotemporal plasticity in molecular and histogenic programs of cranial feather development.</a> Development. 132, 1499-1499 (2005).</li>
<li>Odent, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+the+Sonic+hedgehog+%28SHH+%29+gene+during+early+human+development+and+phenotypic+expression+of+new+mutations+causing+holoprosencephaly%5BTitle%5D)+AND+%22Hum+Mol+Genet%22%5BJournal%5D)">Expression of the Sonic hedgehog (SHH ) gene during early human development and phenotypic expression of new mutations causing holoprosencephaly.</a> Hum Mol Genet. 8, 1683-1683 (1999).</li>
<li>Szabo-Rogers, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+skeletogenic+patterning+roles+for+the+olfactory+pit%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Novel skeletogenic patterning roles for the olfactory pit.</a> Development. 136, 219-219 (2009).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

この移植の方法を使用すると、私たちは外胚葉の背腹極性と上顎のproximodistal拡張を調節するシグナル伝達情報が含まれていることを決定することができました。ウズラやマウスの外胚葉、および多くの種6,11の間でこの組織の分子シグナルの保全を使用して結果の類似性は、これは脊椎動物間で高度に保存されたシグナル伝達の中心であることを示します。さらに、他の研究者らは、表面頭部外胚葉の異なる領域の信号特性をテストするために同様の技法を使用しているし、面12の形態形成に貢献する外胚葉に位置する複数のシグナル伝達の中心の存在を明らかにしました。このメソッドは、私たちは、異なる組織だけでなく、組織内の地域的な違いは、顔の開発時に果たす役割についての理解を促進することができます。最後に、鳥 - キメラシステムの強さとマウス遺伝学の強みを組み合わせることで我々は開発中の上皮 - 間葉相互作用の分子メディエーターを解明することができる、と我々はこれらの相互作用を調節するメカニズムを特定できるようになります開発。

<table><tbody><tr><td>1x PBS</td><td>Tektronix, Inc.</td><td>TEKZR114</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>カリフォルニア大学サンフランシスコ校</td><td>CCFDA003</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A7906</td><td></td></tr><tr><td>ディスパーゼ</td><td>GIBCO (Life Technologies社製)</td><td>17105-041</td><td></td></tr><tr><td>35x10 mm シャーレ</td><td>Falcon BD</td><td>1008</td><td></td></tr><tr><td>No. 5 Dumontピンセット</td><td>Fine Science Tools</td><td>11252-20</td><td></td></tr><tr><td>ハサミ</td><td>Fine Science Tools</td><td>14058-11</td><td></td></tr><tr><td>スプリングシザー</td><td>Fine Science Tools</td><td>15010-11</td><td></td></tr><tr><td>持針器</td><td>Fine Science Tools</td><td>26016-12</td><td></td></tr><tr><td>タングステン針</td><td>Fine Science Tools</td><td>26000</td><td></td></tr><tr><td>マイクロキャピラリーチューブ </td><td>Drummond Scientific</td><td>3-000-225-G</td><td></td></tr><tr><td>パストールピペット</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-678-6B</td><td></td></tr><tr><td>スプリングシザー</td><td>Fine Science Tools</td><td>15010-11</td><td></td></tr><tr><td>ブレードホルダー</td><td>Fine Science Tools</td><td>10052-11</td><td></td></tr><tr><td>カミソリ刃</td><td>Fine Science Tools</td><td>10050-00</td><td></td></tr></tbody></table>

頭蓋顔面の開発時には外胚葉上皮のシグナリング特性を評価する

Assessing Signaling Properties of Ectodermal Epithelia During Craniofacial Development

鳥類胚のアクセシビリティは、実験的な発生学者が開発し、パターニングし、脊椎動物の形態形成（例えば、1、2、3、4）規制組織の相互作用の役割の間に細胞の運命を理解して支援してきました。ここで、我々は、顔の開発中に外胚葉組織のシグナリングとパターニング特性をテストするには、このアクセ​​シビリティを悪用する方法を示しています。これらの実験では、我々は、同じ地域やニワトリ胚の異所性の領域のいずれかの上にウズラやマウスからの上顎を覆う表面頭部外胚葉を移植することにより、ウズラ、ニワトリ5またはマウス-ひよこ6キメラを作成します。雛への移植のドナー組織としてのウズラの使用は、このように研究者がホストとドナーの組織7を区別できるように、ウズラの存在ではなく、ニワトリの細胞核マーカーを活用するために開発されました。私たちはマウスニワトリキメラ8のホストとドナーの組織を区別できるようになる、同様に、反復的な要素は、マウスのゲノムに存在し、遍在的に発現される。これは、私たちは様々な変異体胚に由来する外胚葉のシグナル伝達の特性をテストすることができますので、ドナーの組織としてのマウスの外胚葉の使用は大幅に、これらの組織の相互作用の理解を拡張します。

この記事では、頭蓋顔面の開発中にシグナリングと表面頭部外胚葉のパターニング特性をテストするために設計された組織移植の手法を説明します。

鳥類胚のアクセスの良さは、実験胚発生学者が発生過程における細胞の運命や組織の役割を理解する一助となってきました。

本手順の全体的な目的は、ドナー胚の外胚葉をニワトリ胚の発達中の上顎に移植し、キメラ胚を作製することです。まず、移植用のドナー皮膚を除去し、次いでホスト部位を移植に向けて準備することでこれを達成します。手順の最終ステップは、ドナー組織をホスト部位に配置し、移植片を固定することです。最終的に、ドナー外胚葉のみが生着した結果を得ることができ、分子生物学的および形態学的解析を通じて、ドナー再コード真皮の機能を決定できます。この手法は、形態形成におけるさまざまな組織の役割を特定するなど、発生生物学における重要な疑問を解決するのに役立ちます。本手順の実演は、当研究室のシニアインベスティゲーターであるDr.Dianeが担当します。本手順を開始する前に、培地を調製し、必要なすべての溶液が準備され、適切な温度にあることを確認してください。次に、適切な眼保護具を着用した状態で、マイクロキャピラリーチューブをアルコールランプの炎で加熱し、先端を細く引き伸ばします。プロパンガスのトーチの炎でタングステン針を加熱し、ガラスピンを用いて先端を鋭くします。卵の端にテープを貼り、殻からドナー胚の抽出を開始します。次に、解剖針の先を使用して、テープの中央に小さな穴を開けます。10 mLシリンジと18ゲージの皮下注射針を穴に挿入し、卵から1 mLのアルブミンを抽出します。次に、解剖針を用いて殻の上部に小さな穴を開けます。この穴を覆うように、2枚目のテープを貼ります。2組のピンセットを用いて、卵に円形の開口部を作ります。胚を掴み、洗浄のために氷冷したPBSを入れたディッシュに移します。胚の頭部を取り除いた後、室温で血清不含のDMEMが入った組織培養ディッシュに配置します。ピンセットで頭部を保持しながら、ディッシュを解剖顕微鏡の下に置きます。スプリングシザーを使用して、上顎とラゴンを頭部の残りの部分から粗解剖します。次に、鋭利なカミソリを装着したブレードホルダーを用い、上顎から前鼻突起を切り出します。ピペットを用いて前頭鼻突起をPBS中の十分な量のdispaを含む30 mmペトリ皿に移し、氷上で20分間インキュベートします。インキュベーション時間が経過した後、組織を乱さないようにdispa溶液を吸引除去します。その後、1% BSA含有DMEMで組織全体を覆います。消化を停止させるため、組織を新しい培養皿に移します。次に、解剖顕微鏡下で操作を行います。研磨していないタングステン針で組織を固定し、研磨したタングステン針を用いて操作してください。外胚葉を他の組織から剥離して分離させます。準備が整ったら、宿主の移植準備が完了するまで、BSAを含むDMEMに入れ、氷上で移植組織を保存します。 previously demonstrated methodを用いて、鶏卵にウィンドウを作成します。2組のピンセットを使用して、胚を含む卵を実体顕微鏡の下に配置します。IGN膜と羊膜をつかみ、そっと破って穴を開け、宿主胚を露出させます。一方のピンセットで頭部を固定しながら、もう一方のピンセットを右目に当てて圧力を加え、頭部を回転させます。ピンセットと針を用いて、移植片を収容するためにホストの真皮を除去します。準備した移植片が入ったペトリ皿に、ニュートラルレッドを2 µL加えます。ガラスピペットを使用して、移植片をホストに転送します。除去した外胚葉に置き換える位置に、移植片を配置します。移植後の移植片を固定するため、移植組織の各角にガラスピンを挿入します。テープでウィンドウをしっかりと閉じます。解析に必要な発生段階に達するまで、胚をインキュベーターに戻します。この画像は、ウズラ特異的anti Q-C-P-N-A抗体で染色されたウズラの雛のURA組織を示しています。移植された組織は2つの矢印の間に位置しています。マウスと雛のキメラに見られる宿主組織では、QCPN染色の根拠は見られません。ここでも、移植された組織は2つの矢印の間に位置しています。Cでは、sign B two反復配列に特異的なプローブを用いたハイブリダイゼーションの結果を示しています。クラス1遺伝子のミラーリングにより、sign B 2の発現が、ここに画像で示す移植片からなる領域に限定されていることが明らかになりました。これはトリクローム染色を施したウズラとニワトリのキメラミラーです。トリクローム染色では、コラーゲンと骨が青色に染まります。矢印で示されているように、上顎骨の重複が見られます。この画像は、同様にトリクローム染色を施したマウスとニワトリのキメラミラーを示しています。上顎骨の重複が見られます。この画像は、マウスとニワトリのキメラ組織を用いた、ニワトリ胚の中胚葉における正常な BMP7 発現の放射性C2ハイブリダイゼーションを示しています。矢印で示されているように、移植片に隣接する中胚葉において BMP7 の発現が誘導されていることがわかります。このビデオを視聴することで、前額突起および鼻突起の発達を調節するメカニズムを評価するための、ニワトリ胚の操作方法について十分に理解できるはずです。

assessing-signaling-properties-ectodermal-epithelia-during

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

頭蓋間充織は、おそらく神経ヒダの上昇のための駆動力を提供する劇的な形態形成運動を起こす...

頭蓋間葉の細胞挙動を評価するための外植片アッセイ

ゲインまたは機能喪失を媒介するためにレンチウイルスを用いて、毛包の再生モデルの組織特異的分析。...

髪の再生の間に上皮間葉シグナル伝達の迅速遺伝子解析

胚顔面外胚葉と間充織を分離するためのプロトコルが記載されている。我々は、最初の全体の胚を扱う全体フェイシャルプロミネンスを解剖してから、顔の外胚葉と間充織を分離するためにディスパーゼIIを使用。...

マウス胚性外胚葉顔と間葉の分離

アフリカツメガエル胚の間の顔の組織が ​​開発された「エクストリーム前部ドメイン」移植する技術。組織は、頭蓋顔面および開発のための顔領域間の相互作用をシグナリングするための地域の要件の研究を可能にする、別に1つの遺伝子発現のバックグラウンドを移動させることができる。...

顔面移植<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;胚

このプロトコルは、 アフリカツメガエルの neurulasからpremigratory頭蓋神経堤（NC）を分析する方法について説明します。これらの外植片をin vitroで培養フィブロネクチン上に播種、または宿主胚に戻って移植することができる。この技術は、NC上皮から間葉移行、遊走、および分化の機序を研究することができる。...

の解剖<em&gt;アフリカツメガエル</em&gt;神経堤のため<em&gt; in vitroで</em&gt;外植片培養又は<em&gt; in vivoで</em&gt;移植

タイムラプス共焦点イメージングは​​、胚発生を特徴づけるための有用な強力な技術である。ここでは、方法論を記述し、野生型では頭蓋顔面形態形成を特徴づけるとともに、PDGFRA、Smad5を、そしてSMO変異胚。...

4D共焦点顕微鏡を用いたゼブラフィッシュにおける顔面形態形成を分析する

この記事では、頭蓋顔面の開発に神経堤および/または他の組織の種特異的な貢献をテストするために設計されたキメラ胚を生成する方法を説明します。...

ウズラ·アヒルキメラを使用して顔面発展に種特異的な貢献を評価する

&gt;jove_content&lt;手足の形成に必要なニワトリ胚の本体軸と脇腹の組織間の誘導イベントを阻止するために不透過性バリアを使用するプロトコルが説明されています。候補誘導性シグナルに浸したビーズは、バリア配置の影響を克服するために使用され、遺伝子発現の解析によりこれが確認されています。...

チックに誘導シグナルを研究するために、候補因子浸しビーズと組み合わせることで不浸透性の障壁の応用

ここでは、マウス頭蓋組織を例に免疫染色することにより、頭蓋顔面形態/病因の間のタンパク質レベルを検出し、定量するための詳細なプロトコルを提示する。また、免疫染色のための若いマウスからの非デカル化された硬質組織の調製および凍結切除の方法について説明する。...

マウス頭蓋組織および非除電骨の組織調製と免疫染色

この記事では、頭蓋顔面発達中の基底前脳のシグナル伝達とパターン化の特性をテストするために設計された組織移植技術について説明します。...

顔の発達を評価するための鳥類前脳キメラの作成

このプロトコルは、解剖されたマウス胚の顔面プロセスまたは培養マウス胚口蓋間葉系細胞から全細胞タンパク質溶解物を単離し、その後のウェスタンブロッティングを実行してリン酸化タンパク質レベルを評価する方法を提示する。...

リンタンパク質分析のためのマウスフェイシャルプロセスおよび培養口蓋間葉系細胞からの全細胞タンパク質溶解物の単離

学ぶ、鶏胚の上顎へ外胚葉を移植してキメラ胚を作製し、頭蓋顔面発生における外胚葉のシグナリングとパターニング特性を評価する方法。この技術は組織相互作用と形態形成のメカニズム解明に貢献します。

頭蓋顔面の開発時には外胚葉上皮のシグナリング特性を評価する

さらに動画を探す