Name: クローン原性アッセイ：付着細胞 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-03-13T11:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 30 s
Description: 学ぶクローン原性アッセイの手法を用いて、付着細胞の放射線感受性や薬剤応答を評価する方法。細胞の生殖能を測定し、放射線生物学や細胞死研究に重要な知見を提供します。

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オーストラリア原子科学技術学会のサポートが認められています。 TCKはAINSE賞を受賞しました。エピ医学研究所は、国立保健オーストラリアの医学研究評議会（566559）でサポートされています。 HRは、オーストラリアの大学院とBakerIDI明るい火花の賞でサポートされています。この作品は、オーストラリア政府の共同研究センタープログラムの下で設立された、サポートされている医学開発株式会社（CRC - BID）、のためのCRCによって運営されている。 COは、オーストラリアの大学院賞とCRC - BIDの補足奨学金受取人です。

1。細胞培養と実験セットアップ<ol><li>ヒトケラチノサイトは、L -グルタミン（2mM）を、上皮成長因子（5 ngのを補充したケラチノサイト- SFM（K - SFM）培地（GIBCO、無血清培地）15mLを含む75センチメートル2組織培養フラスコの単層として維持されています/ mL）を、ウシ下垂体抽出物（40μg/ mL）を、20 mg / mLのゲンタマイシン。細胞は37℃で加湿5％CO 2環境下で栽培されています</li><li>細胞は、K - SFM培地5 mLを含む12 × 25cm 2の組織培養フラスコに播種されています。 </li></ol>単一の細胞懸濁液をトリプシン処理によって調製される。細胞をリン酸緩衝生理食塩水で洗浄し、5〜10分間0.05％トリプシン/ EDTA溶液と共にインキュベートされています。細胞は丸くし、約30％が切り離されているになるために起動すると、10％ウシ胎児血清を含むダルベッコ改変イーグル培地の3倍量のトリプシンを中和するために追加されます。細胞は（20回）ピペッティングによって切り離されている。細胞を、血球計を使用してカウントされます。 適切な細胞数は細胞株の倍加時間（人間FEP - 1811ケラチノサイトで約20時間）に応じて播種されています。目的は、実験の日に〜90％コンフルエントに（フラスコあたり〜10 6細胞）を達成することです。 12フラスコから成る実験では約4時間で完了することができる、単一のクローン原性アッセイ（6非照射コントロールと6つの照射フラスコ）に最適です。 2。治療と照射<ol><li>関連する放射線修飾化合物と適当な時間のために、細胞を扱い、電離放射線γ線またはX線のいずれかに細胞をさらす。 </li></ol>通常6フラスコは、コロニー形成率（未処理）と薬剤のみコントロールとして機能する。他の六フラスコが照射されています。 1時間、水溶性天然抗酸化製剤、（20μg/ mLのための代表的データを以下に示す;整合栄養補助食品国際、スプリングヒル、テネシー州、米国CPF）この例ではヒトケラチノサイトはCinnulin PFの様々な濃度で処理されています37℃細胞は、137 Csのソース（; Nordionインターナショナル、カナダ、ON、1.6 Gyの/分Gammacell 1000年エリート照射器）を使用して、4 Gyで照射されています。 3。メッキ<ol><li>前述のように治療後に、単一の細胞懸濁液が得られる。 </li><li>各サンプル中の細胞数を血球計算板を用いて慎重にカウントし、希釈されるように適切な細胞数は、ペトリ皿（5つは15mmの皿にそれぞれの複製）に播種されています。 プレート当たり種子するセルの数を決定する際にはコロニー形成率および/または生存率が期待されるべきである。 150コロニー - 目的は、20の間の範囲を達成することです。 </li>ペトリ皿は、加湿プラスチック製のクローニングボックスに配置し、℃でコロニー形成のために37℃、5％CO 2環境下でインキュベートする。 </ol>コロニー形成のためのインキュベーション時間は、異なる細胞株では1〜3週間で変化する、それは時間が少なくとも6つの細胞分裂と同等でなければならないことが受け入れられている。この例では、ヒトケラチノサイトの制御料理は、8日が50以上のセルで構成される十分な大きさのクローンを形成する必要があります。 4。コロニーを固定と染色ドラフト内で、次の手順を実行します。 <ol><li>ゆっくりと吸引によってプレートの各々からメディアを削除する。 </li><li> 5mLの0.9％生理食塩水で各プレートを洗浄してください。 </li><li> 15〜30分間5 mLを10％中性緩衝ホルマリン液でコロニーを修正。 </li><li> 30〜60分間のdH 2 Oで希釈した5 mLの0.01％（w / v）のクリスタルバイオレットで染色。 </li><li>のdH 2 Oで過剰クリスタルバイオレットを洗い、皿が乾燥することができます。 </li></ol> 5。コロニー計数実体顕微鏡<ol><li> 50以上の個々の細胞を含むコロニーを実体顕微鏡を使用してカウントされます。 </li></ol>イメージングソフトウェアを使用して、デジタルイメージングとカウント<ol><li>コロニーのデジタル画像は、カメラやスキャン装置を用いて得られ</li><li>コロニーは、下記のように画像解析ソフトウェアパッケージを使用してカウントされます。 </li></ol> ImageJの（フィジーバージョン1.44A）を使用して細胞計数<ol><li>フィジーでの画像ファイルを開いて、ファイルにアクセスしてください - &gt;開く。 </li><li> &gt;調整...-&gt;しきい値 - 必要な8ビットフォーマットに画像を変換する場合、画像にアクセスしてください。 </li><li>唯一のコロニーが検出されるように非特異的なバックグラウンドのレベルを低減するためのしきい値を調整します。 </li><li>次のコマンドを使用してコロニーをカウント：プロセスに行く - &gt;バイナリ - &gt;最大値を検索。 </li></ol>この画像形式の場合は、ノイズ耐性は0に設定することができます。その明るい背景のオプションがチェックされていることを確認し、すべての細胞コロニーが正しく登録されていることを確認するために検出された最大値をプレビューします。

<ol><li>Puck, T. T., Marcus, P. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Action+of+x-rays+on+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Action of x-rays on mammalian cells.</a> J Exp Med. 103, 653-666 (1956).</li>
<li>Hurlin, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progression+of+human+papillomavirus+type+18-immortalized+human+keratinocytes+to+a+malignant+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Progression of human papillomavirus type 18-immortalized human keratinocytes to a malignant phenotype.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 88, 570-574 (1991).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

この例では、人間のFEP - 1811ケラチノサイトは、最大100μg/ mLのCPFへの種々の濃度で処理した、データは37℃で1時間に20μg/ mLのCPF℃であるために示されています治療後の細胞は、137 Csのソース（; Nordionインターナショナル、カナダ、ON、1.6 Gyの/分Gammacell 1000年エリート照射器）を使用して、4 Gyで照射した。制御のために未処理と薬剤のみの治療法100個の細胞は、それぞれのペトリ皿に播種したとディッシュあたり1000個の細胞は、照射試料のためにプレートした。上記の表に示すように、コロニーを実体顕微鏡またはデジタル画像（図1）を用いてカウントしたImageJを用いて計数のために採取した。 five皿の平均コロニー数は、コロニー形成率と生存率を計算するために使用されていました。データは、天然の抗酸化製剤で放射線防護効果（保護因子〜3）を示した。 代表的な結果<table border="1"><tbody><tr><td> 治療 </td><td> ...

<table><tbody><tr><td>ケラチノサイト用無血清培地</td><td>増殖培地</td><td>Invitrogen</td><td>17005042</td><td>2mM L-グルタミンを添加し、20&amp;#x03BC;g/ml ジェンタマイシン、上皮成長因子、ウシ下垂体抽出物</td></tr><tr><td>トリプシン-EDTA</td><td></td><td>Invitrogen</td><td>15400-054</td><td>接着細胞を剥離させるための0.05%トリプシン/EDTA；Ca不含PBSで希釈した10倍ストック溶液&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt;/Mg&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt;.</td></tr><tr><td>ダルベッコ&amp;rsquo;修飾必須培地</td><td>増殖培地</td><td>Invitrogen</td><td>11885-084</td><td>10% FBSおよび20を添加した&amp;#x03BC;g/ml ジェンタマイシン；トリプシン/EDTAの中和に使用。</td></tr><tr><td>0.09%生理食塩水</td><td>溶液</td><td></td><td></td><td>コロニーの洗浄に使用する。</td></tr><tr><td>10% 中性緩衝ホルマリン溶液</td><td>溶液</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128</td><td>約4% ホルムアルデヒド：コロニーの固定に使用。</td></tr><tr><td>クリスタルバイオレット</td><td>粉末</td><td>SPI Supplies</td><td>02577-MB</td><td>0.01%クリスタルバイオレット溶液（蒸留水にて調製）&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;コロニーの染色に使用されるO。</td></tr><tr><td>Gammacell 1000 elite 放射線照射装置</td><td></td><td>Nordion International Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>シャーレ</td><td>60 x 15 mm</td><td>Falcon BD</td><td>353002</td><td></td></tr><tr><td>血球計数器</td><td></td><td>Hawksley；医療・実験機器</td><td>AC1000</td><td></td></tr><tr><td>クローニングボックス</td><td></td><td></td><td></td><td>蓋の反対側に穴が開いたプラスチック製のボックス。コロニー形成のための長期培養中にペトリ皿を保管するために使用する。</td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>タイプ102</td><td>ニコン製機器</td><td></td><td>～からなるコロニーの計数に使用される &amp;gt;50個の細胞</td></tr></tbody></table>

クローン原性アッセイ：付着細胞

Clonogenic Assay: Adherent Cells

クローン原性（またはコロニー形成）アッセイは、50年以上のために設立されました。テクニックを記述したオリジナルの論文は1956年1に掲載されました。離れて方法を文書化するから、最初の画期的な研究は、培養1のX線照射した哺乳類（HeLa細胞）細胞の最初の放射線線量応答曲線を生成する。 control未処理の細胞とそのような暴露などの様々な治療を受けた細胞の間で、基本的に、クローン原性アッセイは、生殖生存率の違い（50以上の細胞のコロニーを形成する単一のセル、すなわち子孫を生成する細胞の能力）のアセスメントが可能に電離放射線、様々な化学化合物（例えば、細胞毒性薬）や他の場合における遺伝子操作へ。アッセイは、放射線生物学で最も広く受け入れられている技術となっていると広く異なる細胞株の放射線感受性を評価するために使用されています。さらに、クローン原性アッセイは、一般的に化合物を変更する放射線の有効性を監視するために、異なる細胞株のコロニー形成能力、に細胞毒性薬と他の抗がん治療薬の効果を決定するために使用されます。接着細胞株を使用する典型的なクローン原性生存実験ではコロニーを固定し、染色つの異なるコンポーネントが、1）組織培養フラスコで細胞単層の治療、2）単一の細胞懸濁液の調製とペトリ皿と3に適切な数の細胞をプレーティング）を含む関連する潜伏期間の後、これは細胞株によっては、1〜3週間から範囲にすることができます。ここでは、不死化したヒトケラチノサイト細胞株（FEP - 1811）2の使用で接着性細胞株をクローン原性アッセイを行うための一般的な手順を示しています。また、私たちの目的は、放射線に対する細胞の曝露後のコロニー形成率と生存率の分数の計算を含むクローン原性アッセイの共通の特徴を記述するために、そして天然の抗酸化製剤の使用と放射線応答の変更を例示することがあります。

生殖可能性を評価するためのクローン原性アッセイの適用は50年以上のために設立されました。ここでは、接着細胞とクローン原性アッセイを行うための一般的な手順を示しています。

クローノジェニックアッセイ（またはコロニー形成アッセイ）は50年以上前から確立されており、この手法について記述した最初の論文は1956年に発表されました1。...

こんにちは、Lumです。私は現在、エピゲノミック医学研究室の主任であるTom Carianne博士の指導のもと、BE IDI心臓・糖尿病研究所で博士課程の研究に取り組んでいます。このビデオでは、「クローノジェニック生存アッセイ（Clon Genic Survival Assay）」として知られる手法を実演します。これは50年前からある手法で、放射線照射や化学剤への曝露など、さまざまな処置が細胞の生殖能に与える影響を評価することができます。同系生存率アッセイ（Congenic survival assay）は、異なる細胞株の放射線感受性を評価し、さまざまな放射線防護剤または放射線増感剤の有効性を試験するための放射線生物学における中心的な手法です。付着性細胞株を用いる場合、この生存率アッセイは3つの段階で構成されます。まず、付着細胞の単層を処理します。第二に、単一細胞懸濁液の調製と、既知数の細胞の播種およびディッシュへの塗布を行い、第三に、一定期間のインキュベーション後に形成されたコロニーの染色とカウントを行います。このビデオでは、不死化ヒトなどの細胞を使用し、天然抗酸化剤の放射線保護特性を決定するために、コロニー形成アッセイをどのように利用できるかを示します。実験当日に1フラスコあたり100万個の細胞が存在するように、あらかじめT25フラスコに5 mLの培地とともに細胞を播種しておきます。適切にラベル付けした各フラスコ内の5 mLの培地に、必要濃度にするため、異なる濃度の薬剤を50 µLずつ添加します。今回は5つの濃度と、コントロールとしてPBS（溶媒コントロール）を使用します。薬剤添加後、使用した細胞株に適した条件下で1時間インキュベートします。インキュベート後、コントロール群を除く各群に、セシウム線源から放出されるガンマ線を用いて、本実験で設定した4 Gyの線量で照射します。照射後、培地を捨て、各フラスコを2 mLのPBSで5分間洗浄します。PBSを捨てた後、0.05%トリプシンを各フラスコに2 mL加え、付着した細胞をフラスコから剥離させます。その後、トリプシンを不活性化させるため、10%胎児牛血清を含むDMEM 5 mLを各フラスコに加えます。その後、ファスキュラの全内容物をラベル付きの10 milliliterファルコンチューブに移します。完了後、これらのチューブを5分間遠心分離し、ペレットを乱さないように注意して上清を廃棄し、各チューブに5 milliliterのcrecy培地を加えます。各サンプルの細胞濃度を算出し、各サンプルを5 milliliterの培地と共に5枚のペトリ皿に播種するために必要な細胞数となるよう、各サンプルの必要量を算出します。例えば、コントロール群では1皿あたり100個の細胞を播種するため、25 mLあたり500個の細胞にす

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