Name: スコーピオンペグ感覚器の電気生理学 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 50 s
Description: 学ぶスコーピオンのペグ感覚器の電気生理学的手法。個々の感覚毛に化学刺激を選択的に与え、細胞外チップ記録で応答を測定する。この技術は化学感覚生物学の研究に有用である。

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我々は生命のファンド、オクラホマ大学学部研究機会プログラム、およびこの作業に資金を提供するための動物の部に感謝。我々はまた、編集のヘルプは博士マリエルのHoefnagelsに感謝。

1。プリレコーディング、ライブアニマル準備<ol><li>そのホームの瓶からサソリを削除し、あらかじめ冷却したガラス容器に入れて、次に、2分間の最低凍結環境（-5℃）にサソリを含むjarファイルを置きます。この時間は、年齢、サイズ、種類、研究の下で特定のサソリの等に応じて異なる場合があります。動物は動かずになるとしかし、一般的に、凍結環境フェーズは完了です。 </li><li> 2分後、冷たいガラス容器から固定化サソリを削除し、顕微鏡スライド上に腹側を上に置きます。スティンガー、尾、足、および成形可能な粘土（油ベース、バンアーケンPlastalina）とpedipalpsを固定します。 </li><li>サソリのpectinesを置くためのプラットフォームを作る。櫛の大きさに応じて、プラットフォームの長さと幅を調整します。一般的に、私たちのプラットフォームは、顕微鏡のカバーガラスで作られたと約10（L）X 18（W）mmであるされています。 </li><li>に合わせてテープを（必要に応じて）トリミング、ホタテガイプラットフォームに両面粘着テープを付着する。 </li><li> pectinalチャンバーを作るために、3〜4 mmの深さに予備溶融ワックス（我々は100％蜜蝋のチップを使用）に、プラットフォームの四辺のうち3つを置く。私たちは、ホットプレート上にあるガラスのペトリ皿内でチップを配置することにより、ワックスを溶かす。 pectinal室の端のワックスが室温に冷却されると、これは高さ1 mm程度のワックスの壁を作成する必要があります。 </li><li>動物では、pectinal挿入のポイントを見つけ、そしてそれにちょうど後方のプラットフォームのアンワックスエッジ（テープ側を上に）配置します。その後、ゆっくりと動物の脚を抑制するために使用される粘土に対してその左右の周縁を押して、プラットフォームを（それは後で移動することがないように）安定する。 </li><li>チャンバー内の櫛またはpectinesを慎重に配置する先の細いピンセットを使用してください。具体的には、鉗子を使用して、pectinal背骨に沿って櫛状突起を押したまま、ゆっくりとカバーガラスの下から櫛状突起を引き出すと接着プラットフォームの床に下ろします。慎重にpectinal背骨に圧力を適用することにより、ホタテガイからテープへの結合を確立する。 </li><li>現在のプラットフォームのアンワックスエッジに溶けたワックスを（我々は予備加熱された金属製のへらを使って）適用する。目的は、櫛を確保し、完全に将来の鉱物油を導入するためのチャンバーを囲むために、2つあります。それが過熱してワックスで櫛状突起を破損することが可能であるとして、動物の櫛状突起上のワックスを適用するときは注意してください。 </li><li>櫛室の建設は完了です。次に、2つのテールセグメントの間に銀線を挿入することにより、動物の血リンパと不関電極の接続を確立する。 </li></ol> 2。同時細胞外記録法と化学的刺激<ol><li>我々は細胞外、先端録音を行う前に動物の24時間を準備し、これは、他の理由（固定位置まで、すなわち動物の調整）の間で、特定の（感覚子に依存する）先端径のカスタムメイクの刺激のピペットに時間が可能になります。我々はそのような仕様を達成するためにマイクロピペットプラーを使用してください。理想的には、ピペットの直径はsensillar細孔径より≈が2μmより大きいです。私たちは、それぞれの動物のためにそれに応じて私たちのマイクロピペットの仕様を調整する。 </li><li>記録前の1時間は、我々は、石油で櫛状突起を水没、pectinal室にミネラルオイルを5μlを加える。その後、我々は、長距離の目標と落射照明を行っていると高倍率の顕微鏡、下に動物を配置します。 </li><li>化学的にペグ感覚器を刺激するために、我々は、石油の媒体を介して水味物質（すなわちクエン酸と塩）を紹介します。最初に、我々は興奮剤のピペットに興奮剤を注入するマイクロピペットフィラーを使用してください。注：すべての刺激のソリューションは、電気伝導度のための電解質が含まれている必要があります。 </li><li>次に、マイクロマニピュレータ（記録のリグで）で覚せい剤のピペットを配置した後、刺激のピペットの鈍い、開放端に記録電極を挿入する。金属電極と電解刺激のソリューションとの間の接触を確保することが重要です。 </li><li>準備が電気的に（不関電極を介して）に接地されると、単純に油媒体を介してとsensillar孔上にピペットを下げます。 pectinal感覚子あたりの化学的刺激の持続時間は同じくらい30回分から、わずか1秒に変えることができます。一般的に、我々は、ピペットごとに複数のペグ（&gt; 30）をサンプリングすることができます。覚せい剤のピペットは分破片で目詰まりした場合に、単に新しい、未使用のピペット用詰まったピペットを交換する。 </li></ol> 3。実験の数日に動物を準備<ol><li>動物が長期間にわたって使用する場合、我々はpectinalチャンバーを再利用し、各レコーディングセッションのために鉱物油の滴を置き換えることをお勧めします。ある特定の日のレコーディングセッションが完了したら、セットアップの記録から動物を削除し、鉱物油の洗浄を行います。 </li><li>仕様fically、チャンバーにミネラルオイルの別のドロップ（5μl）を追加し、すべての油を取り除く。これは、記録セッション中にピペットから漏れた可能性がある残留刺激の存在を、最小限に抑えることができます。 </li><li>次のセッションの前に、前述のように石油の一滴を追加。 </li></ol> 4。代表的な結果： 少なくとも3:1のN比：（特定のアンプを、例えば、ハードウェア、等をデジタル化する）使用する記録装置に応じて、代表的な結果は、Sと細胞外記録です。 それは極性（水ベース）化学物質の味物質8を提供するための培地を提供するので、鉱物油室の成功の建設は、個々の感覚器に化学的刺激を単離するために必要です。すべてにおいてあまりにも少量の油またはnoneがある場合は、刺激のソリューションは、化学的刺激8の長期、制御されていない試合を引き起こす可能性があるか、その近隣の感覚器に記録された感覚子から広がっていく。

<ol><li>Hodgson, E. S., Lettvin, J. Y., Roeder, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physiology+of+a+Primary+Chemoreceptor+unit%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Physiology of a Primary Chemoreceptor unit.</a> Science. 12, 417-418 (1955).</li>
<li>Newland, P. L. Taste processing in the insect nervous system. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNewland%2C+PL+%22Methods+in+Insect+Sensory+Neuroscience%22">Methods in Insect Sensory Neuroscience</a>. Christensen, T. A. , CRC Press. Boca Raton. 289-318 (2005).</li>
<li>Foelix, R. F., Müller-Vorholt, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+fine+structure+of+scorpion+sensory+organs+II.+Pecten+sensilla%5BTitle%5D)+AND+%22Bull.+Br.+Arachnol.+Soc%22%5BJournal%5D)">The fine structure of scorpion sensory organs II. Pecten sensilla.</a> Bull. Br. Arachnol. Soc. 6, 68-74 (1983).</li>
<li>Carthy, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fine+structure+and+function+of+the+sensory+pegs+on+the+scorpion+pecten%5BTitle%5D)+AND+%22Experientia%22%5BJournal%5D)">Fine structure and function of the sensory pegs on the scorpion pecten.</a> Experientia. 22, 89-91 (1966).</li>
<li>Gaffin, D. D., Brownell, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Response+properties+of+chemosensory+peg+sensilla+on+the+pectines+of+scorpions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Physiol.+A%22%5BJournal%5D)">Response properties of chemosensory peg sensilla on the pectines of scorpions.</a> J. Comp. Physiol. A. 181, 291-300 (1997).</li>
<li>Wolf, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pectine+organs+of+the+scorpion%2C+Vaejovis+spinigerus%3A+Structure+and+%28glomerular%29+central+projections%5BTitle%5D)+AND+%22Arthropod+Struct.+Dev%22%5BJournal%5D)">The pectine organs of the scorpion, Vaejovis spinigerus: Structure and (glomerular) central projections.</a> Arthropod Struct. Dev. 37, 67-80 (2008).</li>
<li>Gaffin, D. D., Brownell, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrophysiological+evidence+of+synaptic+interactions+within+chemosensory+sensilla+of+scorpion+pectines%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Physiol.+A%22%5BJournal%5D)">Electrophysiological evidence of synaptic interactions within chemosensory sensilla of scorpion pectines.</a> J. Comp. Physiol. A. 181, 301-307 (1997).</li>
<li>Knowlton, E. D., Gaffin, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+approach+to+examining+scorpion+peg+sensilla%3A+the+mineral+oil+flood+technique%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Arachnol%22%5BJournal%5D)">A new approach to examining scorpion peg sensilla: the mineral oil flood technique.</a> J. Arachnol. 37, 379-382 (2009).</li>
<li>Knowlton, E. D., Gaffin, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+tip-recording+method+to+test+scorpion+pecten+chemoresponses+to+water-soluble+stimulants%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci+Methods%22%5BJournal%5D)">A new tip-recording method to test scorpion pecten chemoresponses to water-soluble stimulants.</a> J. Neurosci Methods. , Forthcoming Forthcoming.</li>
<li>Haupt, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antennal+sucrose+perception+in+the+honey+bee+%28Apis+mellifera+L.%29%3A+behaviour+and+electrophysiology%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Physiol.+A%22%5BJournal%5D)">Antennal sucrose perception in the honey bee (Apis mellifera L.): behaviour and electrophysiology.</a> J. Comp. Physiol. A. 190, 735-745 (2004).</li>
<li>Bland, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensilla+on+the+antennae%2C+mouthparts%2C+and+body+of+the+larva+of+the+alfalfa+weevil%2C+hypera+postica+%28gyllenhal%29+%28Coleoptera+%3A+Curculionidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Insect+Morphol.+Embryol%22%5BJournal%5D)">Sensilla on the antennae, mouthparts, and body of the larva of the alfalfa weevil, hypera postica (gyllenhal) (Coleoptera : Curculionidae).</a> Int. J. Insect Morphol. Embryol. 12, 261-272 (1983).</li>
<li>Cate, H. S., Derby, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hooded+Sensilla+Homologues%3A+Structural+Variations+of+a+Widely+Distributed+Bimodal+Chemomechanosensillum%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Hooded Sensilla Homologues: Structural Variations of a Widely Distributed Bimodal Chemomechanosensillum.</a> J. Comp. Neurol. 444, 345-357 (2002).</li>
</ol>

我々は、これまでの2誌、ノウルトンとGaffin（2009）とノウルトンとGaffin（印刷中）でこれらのメソッドを公開しています。

上記のプロトコルは、電気生理学的研究のために砂漠草原サソリ（Paruroctonus utahensisを ）準備する方法について説明します。具体的には、油の下にpectinal化学感覚ニューロンの制御された細胞外の先端 - 記録用チャンバーを構築する方法を示します。油と水が混合しないため、単一の感覚器に化学的刺激を（水ベースの刺激剤との）分離することが可能です。それは、P.ことを強調しておきたいutahensis、比較的小さな動物（≈2.5〜5センチメートル）であり、より大きな動物にこのプロトコルを適用すると、このような動物のプラットフォーム、チャンバー、および適用される油の量の大きさなど、多くのサイズの調整を必要とする可能性があります。我々は、水ベースの化学覚せい剤の制御された送達のために必要な油の最少量をテストするパイロット研究を実施することをお勧めします。 さらに、我々はpectinal感覚器8内のベースラインの神経活動のオイルの効果は認められなかった。この前chemoresponsivenessを評価するだけでなく、他のモデルシステムのために確認されるべきである。 このメソッドは、感覚分野における感覚器の間でchemoresponse相互作用の効果をテストする別の方法と組み合わせて使用​​することができます。例えば、それは近隣の感覚子9から我々のベースレコード（タングステン電極を介して）として1つの感覚子からtip -記録（油下）に可能です。このような記録の構成は、化学的にone感覚子を刺激しているかどうかを評価するために使用することがベースに記録された感覚子の神経活動に影響を与えます。これまでに、誰もサソリpectinal感覚器のためにこれをテストしていない、そしてそれは同様に他の化学的感覚のシステムの未解決の問題のまま。 要約すると、我々は、石油の進歩節足動物味覚の神経基盤に電気生理学的研究の範囲で先端の記録方法を考える。この原稿では、我々はこの方法のために動物を準備するためのプロトコルを提供し、我々はそれが末梢感覚神経系のさらなる研究のための確固たる基盤を提供する願っています。

<table><tbody><tr><td>Lift-N-Pressタブ</td><td>Ted Pella, Inc.</td><td>16082</td><td>両面粘着テープ</td></tr><tr><td>MicroFil</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>MF34G</td><td>マイクロピペットフィラー</td></tr><tr><td>標準ガラスキャピラリー</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>1B100F-6</td><td>ガラスピペット</td></tr><tr><td>Micr&amp;#8211;lectrodeホルダー</td><td>World Precision Instruments, Inc.</td><td>MEH3SBW10</td><td></td></tr></tbody></table>

スコーピオンペグ感覚器の電気生理学

Electrophysiology of Scorpion Peg Sensilla

我々は、電気生理学的に短く、ペグのような感覚感覚器3,4を調査するため、既存の先端記録技術の1,2の変更を説明します。すべてのサソリの半ば腹側表面にメカノと化学的感覚ペグ感覚器5,6の密なフィールドがあるpectinesという二つの付属です。これらの感覚器のchemoresponsivenessを評価するための一つの方法は、揮発性の匂いが感覚フィールド5,7に導入される細胞外に感覚子内の神経活動を記録するためのタングステン電極を使用しています。この方法の制限は、低速なデータ収集と制御されていない刺激の導入、そしてペグのフィールドからの削除などがあります。これらの制限を克服するために、我々は、個々のpeg感覚器8,9に水ベースのtastantsを提供を通す媒体として非極性鉱物油を使用する新しい先端記録技術を開発した。我々は成功し、クエン酸、エタノール、および塩にsensillar chemoresponsesを取得するためにこのメソッドを適用している。ここではそのような研究9の実験的なプロトコルについて説明します。我々はこの新しい方法は昆虫10、11、甲殻類12のものも含めて他の節足動物化学的感覚のシステムの応答特性を研究するために有用かもしれないと思う。

この記事では、ミネラルオイル下外、先端録音を経由して個々の感覚器に化学的刺激を単離するための電気生理学的方法を説明します。

我々は、短くペグ状の感覚sensillaを電気生理学的に調査するための、既存のチップ記録法1,2の改良法について記述する。On the ...

この手順の全体的な目的は、サソリの櫛状器にある個々の感覚毛（peg illa）の化学感覚生理学を研究することです。まず、麻酔をかけたサソリを腹側が上になるようにガラススライド上に固定します。設置にはモデリングクレイを使用し、櫛状器を特製のオイル充填チャンバーに浸し、化学刺激剤を充填した電極を作製します。化学感覚応答は触角上の個々の感丘で記録され、最終的には水性化学刺激剤に対して同様の応答プロファイルを示します。孔に揮発性刺激剤を吹き付けながら、感丘の基部から記録を行いました。先端記録法の主な利点は、隣接する感丘の活動に影響を与えることなく、単一の感丘のみに刺激を限定できることです。この手法は、化学感覚生物学の分野における重要な疑問、例えば、動物が化学物質の検出と知覚に、なぜこれほど多くの反復的な感覚毛（silla）を用いるのか、といった問いに答えるのに役立ちます。サソリは研究対象として安全な動物とは思えないかもしれませんが、すべての種が危険であるとか、扱いが困難であるとは限りません。例えば、砂漠草原に生息するサソリは全長わずか4〜5 cmであり、研究室での維持が容易で、適切に取り扱えば刺されることはほとんどありません。刺された場合、毒が感覚ニューロンを人為的に刺激し、その一部が痛みの情報を伝達します。この感覚は通常、約15分で治まります。サソリは頑健な被験体であり、数日間にわたる実験に耐えることができるため、多くの場合、実験後に飼育環境に戻されます。サソリを不動化させるための処置が完了したら、あらかじめ冷却しておいたガラス容器に入れます。次に、サソリが入った容器を冷凍環境に最低2分間置き、個体が動かなくなったことを確認して冷凍庫から取り出します。その後、不動化したサソリを腹側が上になるように顕微鏡スライドガラスの上に置きます。成形粘土を用いて、刺針のある尾脚と歩脚を固定します。サソリの櫛状器（pectins）は、生殖器の近くにある一対の櫛のような構造で、これらの動物に特有のものです。動物から取り外すことなく、単一の櫛状器を収めるためのチャンバーを作成する必要があります。まず、約5 mm × 18 mmに切ったガラスカバースリップにペクチンを載せるためのプラットフォームを作成します。通常、これで十分に機能します。次に、プラットフォームに両面テープを貼り付け、必要に応じてテープをサイズに合わせてカットします。次に、ホットプレートを用いてガラス皿の中で100%蜜蝋チップを溶かします。次に、プラットフォームの4辺のうち3辺を、溶けた蜜蝋に3～4 mmの深さまで浸します。冷却された蜜蝋が壁となり、チャンバーを形成します。次に、プラットフォームの固定されていない端を、動物のpectal Insertion（胸筋付着点）の直後に配置します。先端の細いピンセットを使用して、プラットフォームの左右の端を動物の脚を固定している粘土に軽く押し付け、プラットフォームを安定させます。pectal spine（胸筋棘）に沿ってpectinの1つを慎重に保持し、カバーガラスの下からゆっくりと引き出して、接着剤が塗布されたプラットフォームの底面に下ろします。ペクタール棘に慎重に圧力をかけて、ペクチンを固定します。予熱した金属製スパチュラを用いて、プラットフォームの未接合端に溶かしたワックスを塗布し、チャンバーを完成させます。これで、動物の電気生理学的記録を行うための準備がほぼ整いました。ここで不活性電極の接続を行います。銀線をサソリの2つの尾節の間から血リンパ中に挿入します。動物の外に出ている電極の一部を粘土に押し込んで固定し、アンプまで届く十分な長さを残しておきます。記録を開始する前に、準備した試料を安定させるため、少なくとも1時間はそのまま置いておきます。マイクロピペットプラーを用いて、センサーの孔径（個体によって異なります）よりも内径が約2ミクロン大きいピペットを作製します。記録の1時間前に、ペクチンチャンバーに5 µLのミネラルオイルを満たします。次に、長い作動距離の対物レンズと落射照明を備えた高倍率顕微鏡の下に動物を配置し、peg illaを化学的に刺激します。電解液に混合した水溶性味物質を刺激用ピペットに充填します。マイクロピペットフィラーを使用し、充填済みの刺激用ピペットをマイクロマニピュレーターに取り付けます。次に、記録電極を刺激ピペットの開口端に挿入します。金属電極と電解刺激液が確実に接触するようにすることが重要です。記録電極および不関電極のリード線を差動増幅器に接続します。アンプをオシロスコープに接続して電気活動を可視化し、スピーカーに接続して電気的変化を音で検出できるようにします。これで記録の準備が整いました。マイクロマニピュレーターを使用して、ピペットをセンサー孔まで慎重に下げてください。ピペット電解液とペグセンサー内の液体の間で電気的接触がなされると、より高い周波数への変化が聞こえます。このとき、神経活動電位による特有のポッピング音も聞こえます。1回あたりの化学刺激の持続時間は、最大30分から最短1秒まで任意に設定可能です。通常、1本のピペットで30本以上のペグをサンプリングできます。ピペットが詰まった場合は、新しいピペットに交換してください。ピペットの準備は簡単であり、目詰まりは珍しくないため、常に予備のピペットを用意しておいてください。ミネラルオイルを交換するまで、1回の記録セッションで1匹の個体から数時間記録することが可能です。また、記録リグに個体を固定したまま、数日間にわたって複数回の記録セッションを行うことができます。次回のセッションでは、胸腔チャンバーを再利用し、ミネラルオイルを交換してください。ピペットを用いて古いオイルをすべて取り除き、新しいオイルを1滴加えます。これにより、記録セッション中に刺激剤ピペットから漏出した可能性のある残留刺激剤の影響を最小限に抑えることができます。以下に、異なる刺激剤に対する代表的なチップ記録を示します。このトレースは、0.01 molar 塩化カリウムに対して比較的一定の反応を示しています。このペグは、0.1 molar クエン酸に対して非常に強く反応し始め、その後1秒未満で強度が低下し、続いて頻度が減少します。30% ethanolに対する典型的な反応では、0.1 molar クエン酸のような同一の刺激剤に対する異なるセンサー反応のチップ記録を比較すると、トレースは短期間の不活動時間を挟んで複数のスパイクを伴うバーストを示します。反応は非常に類似しています。この手順を行う際は、ピペットを水溶性の刺激剤で満たすことが重要です。これにより、オイル媒体と混ざり合わなくなり、1つのlumを個別に化学刺激することが可能になります。このビデオを視聴することで、ミネラルオイルを媒体として用い、サソリの櫛状器官（pectin）上の個々のCINを制御しながら刺激する方法について、十分に理解できたはずです。

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