Name: 磁気活性化細胞選別（LIMACS）を使用して、脂質小胞を介したアフィニティクロマトグラフィー：タンパク質脂質相互作用を解析する新手法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-26T16:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 33 s
Description: 学ぶLIMACSを用いた脂質小胞介在アフィニティクロマトグラフィー法で、膜環境下でのタンパク質脂質相互作用を解析する新技術。内源性および組換え非定型PKCの精製とセラミド結合ドメインの同定が可能です。

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この作品は、NIHの助成金R01NS046835とR01AG034389、そしてダイム助成6FY08 - 322の月によってサポートされていました。特別あなたがMACS技術に彼女の洞察力で大いに役立った夫人エレノアブラウン（Miltenyi Biotec社、オーバーン、カリフォルニア州）に捧げられる感謝。ミルテニーは、気前よく無料での実験のデモンストレーションのために使用される材料を提供しています。私はまた、細胞株の発現PKCζを生成博士広滬王（グルジア/グルジア健康科学大学の医科大学、オーガスタ、ジョージア州）に感謝しています。グルジア/グルジア健康科学大学（リン博士は梅の指揮下）の医科大学分子医学研究所のサポートも認められている。

1。はじめ磁気活性化セルソーティング（LIMACS）技法を用いて脂質小胞を媒介としたアフィニティークロマトグラフィーは、セラミド結合蛋白質複合体1-3を分離するために我々の研究室で開発されました。もともと、脂質の小胞は小胞とその関連蛋白質を分離するために磁性粒子標識アネキシンVを（ホスファチジルセリンに非常にアフィン）を使用してMACSに許可されるセラミド、ホスファチジルセリン、から成っていた。セラミド関連極性複合体と細胞のセラミド結合タンパク質の分離の in vitro再構成に 3を溶解液のために我々はLIMACS技術を使用している。 LIMACSは、小胞の分離（例えば、糖脂質- specifcレクチンまたは脂質抗体）のために他の相互作用パートナーを使用して変更することができます。 2。実験手順脂質小胞とaPKCBindingアッセイの準備<ol><li>脂質小胞は、ホスファチジルセリン（105μg）を、大規模なリポソーム調製1,4-7のために修飾された手順に従ってC16 -セラミド（85μg）の等モル量の乾燥混合物から得られる。 </li><li>脂質の混合物はその後、50mMトリス/ HCl（pH7.5）及び150mMのNaClで構成される小胞のバッファー100μlの中で1時間再懸濁し、超音波処理されています。 </li><li> 0.1mMのMnCl 2を補充した小胞のバッファー300μlを添加した後、試料を4時20分、12,000μg を ℃で遠心分離されています</li><li>ペレットは、（大脂質小胞）° C MACS分離した後、小胞の割合を視覚化する小胞のバッファー100μlに再懸濁し、37℃で1時間Vybrant CM - DII、1 nmolのでインキュベートする。 Vybrant CM - DIIは、特に脂質膜に組み込んだ赤色蛍光色素です。 </li><li>界面活性剤を含まない細胞溶解液を遠心分離によって膜破片の除去に続いて低張緩衝液（プロテアーゼ及びホスファターゼ阻害剤との10mMトリス/ HCl（pH7.0）で）を300μlの超音波/細胞の均質化によって調製される。 1時間、100,000 × gで遠心分離工程は、ホスファチジルセリンを含む内在性の膜と細胞溶解液の汚染を避けるために追加する必要があります。 </li><li>清澄化ライセートは、脂質のベシクル懸濁液に添加され、そして混合物を4℃で2時間インキュベートする</li><li>反応混合物を20倍のアネキシンV結合バッファーとアネキシンVに結合した磁気ビーズを含む溶液50μlを20μlと補足されては、4℃で1時間インキュベートした</li><li> MACSは、製造業者の（ミルテニーバイオテク社）プロトコルに従って行われます。脂質小胞の存在と量は、マイクロプレート蛍光リーダーを用いてフロースルーと溶出分画のVybrant CM - DIIの蛍光をモニターすることによって決定されます。 </li><li>水疱性脂質の量と小胞に結合Vybrant CM - DIIの蛍光強度との間の線形相関は、アネキシンV -ベースのMacに適用される脂質の混合物の定量的な高性能薄層クロマトグラフィー（HPTLC）によって検証されます。 </li><li>セラミド/ホスファチジルセリン小胞にaPKCまたは他のタンパク質の結合反応の特異性は、℃のインキュベーションの前に4℃で1時間細胞ライセートをインキュベートする抗PKCζウサギポリクローナル抗体1μgを用いて抗体の競合アッセイによって検証され脂質小胞。 </li><li> MACS溶出液中のセラミド/ホスファチジルセリン小胞への結合タンパク質は、SDS - PAGEとイムノブロッティングによって分析されます。 </li></ol> 体外脂質-タンパク質極性複雑で <ol><li>脂質-タンパク質の極性複合体の in vitro再構成の前のセクションで説明したようにLIMACSの手順に従って実行されます。簡単に言えば、ホスファチジルセリン（420μg）をとC16 -セラミドは、（107μg）を有機溶剤から乾燥させる。 </li><li>乾燥脂質は小胞の緩衝液500μl（; 150mMのNaCl 50mMトリス/ HCl、pH7.5）に超音波処理下で再懸濁する。 </li><li> 10 mMのMnCl2、Vybrant CM - DIIを1μl、およびPKCζの500ngの（ヒト組み換え）の5μlを加え、反応混合物を4℃で60分間undergentleの攪拌をインキュベートする℃に</li><li> Vybrant CM - DIIステンドホスファチジルセリン/セラミド小胞は4℃で60分間℃、12,000 xgで遠心分離によって回収されています</li><li>ペレットは、（ピンク）100μlのTris緩衝液に再懸濁し、γS- GTP（100μM）を補充し、GDP（1 mM）を、GST - Par6（100 ng）を、またはGST - Cdc42と（500 ngの）と、さらに3インキュベートする4にあるh ° C（ 目的の組換えタンパク質の他の組み合わせをここで使用することができます ）。 </li><li>アネキシンV -バッファー（20倍ストック溶液を5μl）とアネキシンVが結合した磁気ビーズ（50μl）を加え、反応混合物を4℃でさらに30分間℃で穏やかに撹拌しながらインキュベートする。 </li><li>アネキシンV - MACSは、前述のように供給者のプロトコルに従って行われます。 </li>溶出画分（1ml）を沈殿助剤としての純粋な卵白アルブミン10μgを補足されています。タンパク質は、ヴェッセル-フリューゲェ沈殿により濃縮し、以前に8を説明するようにSDS-PAGE/immunoblottingによって分析されます。 <li>溶出された脂質小胞の量は、ヴェッセルフリューゲェの沈殿反応の有機（クロロホルム/メタノール）相におけるVybrant CM - DII（ピンク）の検出によって定量化される。分析されたタンパク質の量は、脂質小胞の同量で正規化されます。 </li></ol> 3。結果 LIMACSのPKCζ- EGFPの精製とセラミド結合ドメインC20ζ- EGFP 界面活性剤を含まないPKCζC -末端に緑色蛍光タンパク質（FLζ- EGFP）またはPKCζ（C20ζ- EGFP）のC末端におけるセラミド結合ドメインにリンクされている全長を発現しているMDCK細胞のライセートは、ホスファチジルセリン/セラミド胞などと一緒にインキュベートした実験手順で説明しています。 MACSカラムの溶出後、タンパク質は、イムノブロットおよび溶出したタンパク質2の検出のためのPKCζとEGFPに対する抗体を用いて解析した。 <img src="/files/ftp_upload/2657/2657fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> の図1。LIMACS EGFP標識PKCζとそのC -末端断片C20ζホスファチジルセリン/セラミド小胞を用いた。 実験手順の項で説明するようにEGFP（非結合制御など）、全長PKCζ- EGFP、またはセラミド結合、C -末端断片C20ζ- EGFPを発現するMDCK細胞の界面活性剤を含まない溶解物は、ホスファチジルセリン/セラミドの小胞とインキュベートした。 。 LIMACSを使用した後、タンパク質をSDSサンプルバッファーで溶出され、SDS - PAGEおよび免疫ブロッティングにより分析した。左側のパネルでは、EGFPは、アネキシンV -リンクされた磁気ビーズを保持小胞に結合していないことを示しています。真ん中と右のパネルはその完全な長さを示すPKCζ- EGFPとC20ζ- EGFPは、セラミドへの結合のために保持された。

<ol><li>Wang, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+binding+to+ceramide+activates+protein+kinase+Czeta+before+the+formation+of+a+pro-apoptotic+complex+with+PAR-4+in+differentiating+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Direct binding to ceramide activates protein kinase Czeta before the formation of a pro-apoptotic complex with PAR-4 in differentiating stem cells.</a> J Biol Chem. 280, 26415-26424 (2005).</li>
<li>Wang, G., Krishnamurthy, K., Umapathy, N. S., Verin, A. D., Bieberich, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+carboxyl-terminal+domain+of+atypical+protein+kinase+Czeta+binds+to+ceramide+and+regulates+junction+formation+in+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">The carboxyl-terminal domain of atypical protein kinase Czeta binds to ceramide and regulates junction formation in epithelial cells.</a> J Biol Chem. 284, 14469-14475 (2008).</li>
<li>Chalfant, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((De+novo+ceramide+regulates+the+alternative+splicing+of+caspase+9+and+Bcl-x+in+A549+lung+adenocarcinoma+cells.+Dependence+on+protein+phosphatase-1%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">De novo ceramide regulates the alternative splicing of caspase 9 and Bcl-x in A549 lung adenocarcinoma cells. Dependence on protein phosphatase-1.</a> J Biol Chem. 277, 12587-12595 (2002).</li>
<li>Simon, C. G., Holloway, P. W., Gear, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exchange+of+C%2816%29-ceramide+between+phospholipid+vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Exchange of C(16)-ceramide between phospholipid vesicles.</a> Biochemistry. 38, 14676-14682 (1999).</li>
<li>Goni, F. M., Contreras, F. X., Montes, L. R., Sot, J., Alonso, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biophysics+%28and+sociology%29+of+ceramides%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Soc+Symp%22%5BJournal%5D)">Biophysics (and sociology) of ceramides.</a> Biochem Soc Symp. , 177-188 (2005).</li>
<li>Kumagai, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CERT+mediates+intermembrane+transfer+of+various+molecular+species+of+ceramides%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">CERT mediates intermembrane transfer of various molecular species of ceramides.</a> J Biol Chem. 280, 6488-6495 (2005).</li>
<li>Wessel, D., Flugge, U. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+the+quantitative+recovery+of+protein+in+dilute+solution+in+the+presence+of+detergents+and+lipids%5BTitle%5D)+AND+%22Anal+Biochem%22%5BJournal%5D)">A method for the quantitative recovery of protein in dilute solution in the presence of detergents and lipids.</a> Anal Biochem. 138, 141-143 (1984).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

脂質とその結合タンパク質間の特異的な相互作用をテストすることは細胞膜の脂質から埋め込むことによって妨げられている。細胞膜には、いくつかの脂質とタンパク質の混合物から成り、それは、脂質ミクロドメインまたは筏で構成されています。蛋白質が直接脂質に結合するかだけミクロドメイン構造に富んでいるそのため、マイクロドメインとタンパク質の共精製は、はっきりと区別できません。このような脂質のELISA法またはプラズモン共鳴分光法などの表面にコーティングされた定義された脂質を用いて他のメソッドは、その結合タンパク質との特異的脂質の相互作用を検出することができます..しかし、生理学的に関連する膜の環境、表面（例えば、プラズモン共鳴分光法のため）で、この相互作用を決定するためには、脂質小胞またはリポソームでコーティングする必要があります。 我々は、これら従来の方法に代わるものとして新たな脂質の小胞結合アッセイを開発した。目新しさは、アネキシンV -共役磁気ビーズによる脂質小胞の単離を可能にする小胞、中にアンカーの脂質（ホスファチジルセリン）を組み込んだから来ている。したがって、我々は、磁気活性化細胞選別...

アネキシンV -共役磁気ビーズとMACSマイクロとminicolumnsはミルテニーバイオテク株式会社（オーバーン、カリフォルニア州）から提供された。すべての脂質は、最高純度のものであったとAvanti極性脂質（アラバスター、AL）から入手。

磁気活性化細胞選別（limacs）を使用して、脂質小胞を介したアフィニティクロマトグラフィー：タンパク質脂質相互作用を解析する新手法

Lipid Vesicle-mediated Affinity Chromatography using Magnetic Activated Cell Sorting (LIMACS): a Novel Method to Analyze Protein-lipid Interaction

脂質はほとんどの精製操作にアクセスできない、したがって、細胞膜に埋め込まれているため、脂質タンパク質の相互作用の解析は困難です。別の方法として、脂質は脂質ELISAとプラズモン共鳴分光法のために使われる平らな表面上に塗布することができる。しかし、表面コーティングの脂質は、脂質結合特性のために重要であるかもしれない、ミクロドメイン構造を形成しない。さらに、これらのメソッドは、それらの標的脂質に結合する蛋白質の大量の精製のために許可されていません。 脂質のタンパク質相互作用をテストするのこれらの限界を克服し、脂質結合タンパク質を精製するために、我々は磁気活性化細胞選別（LIMACS）を使用して、脂質小胞を介したアフィニティークロマトグラフィーと呼ばれる新しい方法を開発した。この方法では、脂質小胞は、アネキシンV MACSのためのアンカーの脂質のようなターゲットの脂質、ホスファチジルセリンを用いて調製されています。ホスファチジルセリンはタンパク質アネキシンに高い親和性を示すVのホスファチジルセリン含有脂質の小胞は、磁性ビーズに結合するアネキシンVに結合した磁気ビーズを用いたユビキタス細胞膜のリン脂質である。脂質の小胞がライセート、細胞とインキュベートされている場合、ターゲット脂質への結合タンパク質はまた、ビーズに結合され、MACSを用いて共同で精製することができる。この方法は、組換えタンパク質の再構成する場合、対象脂質に結合するタンパク質複合体をテストするために使用することができます。 我々は、スフィンゴ脂質セラミドとし、共同浄化前立腺アポトーシス応答4（PAR - 4）、セラミド関連aPKCの結合タンパク質への非定型PKC（aPKC）との相互作用を表示するには、このメソッドを使用している。我々はまた、細胞極性関連タンパク質Par6およびCdc42との組換えaPKCのセラミド関連複合体の再構築のためにこのメソッドを使用している。脂質小胞がsphingo -またはリン脂質のさまざまな準備ができるので、LIMACSはその細胞膜の酷似脂質環境における脂質 - タンパク質相互作用のための多目的なテストを提供しています。追加の脂質蛋白質複合体は、脂質結合タンパク質、脂質小胞との共精製のプロテオミクス解析を用いて同定することができる。

そのターゲットの脂質とタンパク質の相互作用をテストするために我々は、MACSとターゲットの脂質とアネキシンV結合ホスファチジルセリンから合成されたアネキシンV -共役磁気ビーズと脂質小胞を使用。ターゲットの脂質に結合したタンパク質は、共同で精製し、ビーズから溶出した後に分析されます。

磁気活性化細胞選別（LIMACS）を使用して、脂質小胞を介したアフィニティクロマトグラフィー：タンパク質脂質相互作用を解析する新手法

脂質は細胞膜に組み込まれているため、ほとんどの精製手法ではアクセスできず、脂質とタンパク質の相互作用の解析は困難です。

この実験は、脂質結合タンパク質を同定し、脂質スレの定義された膜環境における脂質とタンパク質の相互作用を解析するために設計されています。細胞ホモジネート由来のタンパク質を、ホスファチジルセリンとセラミドから調製したばかりの脂質ベシクルとともにインキュベートします。その後、反応混合液にXin V結合磁気ビーズを添加し、脂質ベシクルに関連するタンパク質を磁気ビーズに固定します。次に、磁気活性化細胞分取法を用いて、タンパク質結合脂質ベシクルを精製します。脂質結合タンパク質の結果を特定するには、SDS-PAGEおよびウェスタンブロッティングを用いて、MDCK細胞で発現させた内因性およびリコンビナントのatypical PKC、ならびに特定のセラミド結合ドメインの精製を示す。ELISAや表面プラズモン共鳴分光法などの既存の手法に対する本手法の主な利点は、脂質とタンパク質の相互作用が膜に近い環境で達成され、かつ結合タンパク質を精製して分析できる点にある。これらの疾患では生理的な脂質とタンパク質の相互作用が損なわれているため、本手法の意義は、脂質が関与する疾患の治療や診断にまで及ぶ。これらの疾患の中には、標的タンパク質さえ不明であり、特定が必要なものがあります。脂質ベースの治療法を設計するため、まず、等モル量のホスファチジルセリンとC 16 セラミドの乾燥混合物を100 µLのsical緩衝液で調製し、脂質SLEを作成します。0.1 mMの塩化マンガンを添加したsical緩衝液300 µLを加え、1時間ソニケーションします。試料を4°Cで12,000 Gで20分間遠心分離し、得られた巨大脂質小胞のペレットを100 µLのsical緩衝液に再懸濁します。1 nMのvibrant cm DII蛍光色素を添加し、37°Cで1時間インキュベートして、膜分離後のSLE分画を可視化できるようにします。遠心分離により、vibrant cm daiで染色されたホスファチジルセリンおよびセラミドSLEのピンク色のペレットを回収し、100 µLのTris緩衝液に再懸濁します。次に、界面活性剤を含まない細胞溶解液を調製するため、プロテアーゼおよびホスファターゼ阻害剤を含む10 millimolar tris, hydrogen chlorideの高張緩衝液300 µL中で細胞を超音波処理し、遠心分離します。膜状の残渣を除去するため、得られた透明な細胞溶解液を脂質物理懸濁液に加え、混合物を4 °Cで2時間インキュベートします。細胞溶解液にはfos-phatidylserineを含む内因性膜が含まれている可能性があるため、追加の遠心分離ステップによって溶解液からこれらの膜を除去することを推奨します。反応混合液に20 µLのXNV結合バッファーと、XNVが結合した磁気ビーズを含む溶液50 µLを添加し、4 °Cで1時間インキュベートした後、製造元のプロトコルに従って磁気活性化細胞分取（MACS）を行う。次に、抗体競合アッセイにおけるリポソームの有無と量を決定するため、マイクロプレート蛍光リーダーを用いて、フロースルー分画および溶出分画中のvibrant CM DII蛍光をモニターする。A PKCのセラミドホスホセリン小胞に対する結合反応の特異性を検証するために、1 µgのanti P KC Zetaウサギポリクローナル抗体を細胞溶解液とともに4 °Cで1時間インキュベートし、続いて脂質小胞とともにインキュベートする。in vitroでの脂質タンパク質極性複合体の再構成において、最大溶出液中のセラミドホスファチジルセリンに結合するタンパク質のSDS-PAGEおよび免疫ブロッティング解析を続けます。まず、前述の通り、Vibrant CM-DiIで染色された鮮やかなピンク色のペレットとして調製されたホスファチジルセリンセラミド小胞を用い、これらの小胞を100 µLのTRI bufferに再懸濁します。この際、100 µMの$\gamma$S-GTP、1 mMのGDP、および目的の組換えタンパク質の混合物を添加します。その後、反応液を4 °Cで3時間インキュベートします。次に、20倍濃度のX-inv bufferストック溶液を5 µL、およびX-inv結合磁気ビーズを50 µL添加します。混合液を4°Cで緩やかに撹拌しながら、さらに30分間インキュベートします。その後、沈殿を促進させるため、メーカーのプロトコルに従ってNX NV磁気活性化細胞分取を継続して行います。溶出分画に10 µgの純化e albuminを添加します。ウェイル・フルー沈殿法によりタンパク質を濃縮します。底層は、濃縮されたvibrant cm diiを含むクロロホルム・メタノール層で構成されます。茶色の界面には、磁気ビーズと沈殿したタンパク質が含まれています。Weyl-flu反応の有機クロロホルム・メタノール相において、鮮やかなピンク色のcm diiを検出することにより、ellu脂質小胞を定量します。サンプル間のタンパク質量を標準化するために等量の脂質小胞を使用し、SDS-PAGEおよび免疫ブロット法により分析します。全長PKC Zettaが緑色蛍光タンパク質またはセラミド結合ドメインにC末端結合し、発現しているMDCK細胞の界面活性剤不含ライセート。pkc. ZettaのC末端はホスホセリンと共にインキュベートされました。maxカラムからの溶出後、セラミド小胞中のタンパク質をイムノブロッティングにより解析した。セラミド結合断片C20 Zeta、EGFP、およびフルレングスのPKC Zetaがmaxカラムの溶出液（EIT）から回収されており、これはlyx手順の特異性と有効性と一致していた。リン酸セラミド小胞に結合しないネガティブコントロールのEGFPは、溶出液（EIT）中では検出されなかった。LinxをSDS-PAGEやウェスタンブロッティング、あるいはプロテオミクス解析などの他の手法と組み合わせることで、脂質結合タンパク質複合体にどのタンパク質が含まれているかといった、さらなる疑問を明らかにすることができます。LabXの開発後、単一脂質研究分野の研究者は、神経幹細胞や上皮細胞におけるセラミド誘発アポトーシスや細胞極性の探索が可能となりました。

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