Name: 開発マウス網膜の in vivoエレクトロポレーションで (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-06-24T15:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 53 s
Description: 学ぶ in vivoエレクトロポレーション法で新生マウスの網膜細胞にプラスミドDNAを導入する技術。電気パルスで細胞膜透過性を高め、遺伝子導入を可能にする神経科学研究の有用な手法です。

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この作品は、NIH R01EY020560 - 01でと医学研究賞のWMケックヤングの学者によって賄われていた。著者らは、網膜の調製と注射の撮影中に彼の援助のためにジョセフBedontに感謝します。

1。エレクトロポレーションのためのプラスミド調製エレクトロポレーションに必要なDNAの濃度は5μg/μlです。これは典型的には、所望のプラスミドは、作業量のDNAの精製と濃縮しマキシプレップ（キアゲン社）またはそれと同等のメソッドを使用して増幅する必要があります。次の手順は、作業量のDNAの調製を記載する。 <ol><li>注し100はDNAのμgの（マキシプレップまたは同等の）と操作の容易さのために100μLにボリュームを希釈する。 </li><li>フェノール追加、フェノールの量は約60％のDNA /体積比（μgのDNA：総容積）を得るために計算する必要がありますすなわち：100μgのDNA（100μLで）プラス67μLフェノール（100μgの：167μLを）。充分に混和、これはDNAの過剰なせん断が発生する可能性があるため、上下にピペッティングしていません。 </li><li>室温で14000rpmで5分間、DNAを回転させる。 </li><li>上清を収集し、同じDNAを用いてクロロホルムに追加：ステップ1.2の総体積比、ミックスなど、室温で5分間、14000rpmでステップ1.2とスピンで説明を。 </li><li> DNA溶液の3 M酢酸ナトリウムの10％上清ボリュームを追加し、上清を収集し、穏やかに混合し、2.5 X 100％エタノールの上清ボリュームを追加します。転倒混和します。 DNAは、ミキシングの際に溶液から沈殿してください。 </li><li> 14000rpmで10分間4℃DNA ° Cを回転させる。 </li><li> 70％エタノール350μlですすぎ、4℃で5分間、14000rpmでスピン℃に</li><li>空気乾燥したペレットは、5μg/μLに1 X PBS（細胞生物学のグレード）でDNAを溶かす。これはそれが非常に困難にPBSに溶解するようになるので、サンプルを乾燥し過ぎたしないでください。 </li><li> DNA溶液にファストグリーンの色素（10％株式を）追加し、染料の最終濃度は、注入トレーサーとして機能するように、0.1％です。 </li></ol> 2。 DNAの網膜下注入次の手順は、実体顕微鏡の支援を受けて実行されます。一度慣れた目のオープニング、切開、及び注入のプロセスが回復するために適切に麻酔子犬のための十分な時間ではないが1.5未満分かかります。シャープな30ゲージの針を使用して、慎重に溶融接合上皮（図1C）に沿って切断して目を開く。この基礎となる目の切断に繋がる可能性があるので、無理な力を加えないでください。これは注射を隠すことができます出血につながるとして、まぶたの接合の範囲を超えて切断は避けてください。 <ol><li>これは死亡に繋がる可能性があるので、氷の子犬を埋葬しないで、数分間氷（ 図1A）で新生児マウスを麻酔。氷の上で時間の長さは子犬から子犬の変数である、通常は5分で十分ですが、マウスは、慎重に個人は非常に迅速に対応したり、適切な麻酔を確保するために長い露出が必要かもしれないので監視する必要があります。撤退の反射を確認するために止血と足のピンチを実施する。 </li><li>網膜下腔へのDNAの注入を容易にするために目を開く必要があります。綿棒70％イソプロピルアルコールプレップ（タイコヘルスケア）を注入された二まぶたが（ 図1B）一緒に来て溶融接合上皮を識別する眼。 </li><li>シャープな30ゲージの針を使用して、慎重に溶融接合上皮（ 図1C）に沿って切断して目を開く。この基礎となる目の切断に繋がる可能性があるので、無理な力を加えないでください。これは注射を隠すことができます出血につながるとして、まぶたの接合の範囲を超えて切断は避けてください。 </li><li>平滑末端注射針は、角膜との接合部（ 図1E）の近くに強膜に小切開を作る30 guage針の先端を使用することによって眼の浸透を促進する。これはレンズのパンクに繋がる可能性があるので、あまりにも深く浸透しないでください。 </li><li>各注射（; Exmireマイクロシリンジ、伊藤corpの針外径0.52ミリメートル、内径0.13ミリメートル）のために個別に音量を測定するために注射器の勾配を使用して33ゲージ平滑末端注射針にDNA溶液0.3μlを描く。反対の強膜の壁の抵抗が感じられるまで切開に針を挿入します。針が硝子体チャンバー（ 図2B）を通過するようにレンズを貫通しないように注意してください。 </li><li>ゆっくりとシリンジのプランジャーを押し下げるために人差し指または親指を使って網膜下腔へのDNA溶液を0.3μLを注入する。実験は、DNA溶液を網膜下腔に注入される速度がDNA溶液は、網膜下腔（ 図2C）内に広がる速度を上回るしないようにプランジャーのうつ病の速度を制御するように注意する必要があります。それはこれがDNAを注入されていない、または均等に拡散しない恐れがあるので、針が反対側の強膜の壁にきつく押されていないことが重要であるので、DNA溶液が粘稠になります。成功した注入もになります網膜下腔の部分のDNA溶液の広がり。注入された動物を回転させるときと、緑のトレーサーの基礎となることなく、網膜の領域には明らかであろう。 </li></ol> 3。エレクトロポレーション<ol><li>エレクトロポレーションは、直径10mmのピンセット電極（; BTXインスツルメンツモデル＃522）を使用して実行されます。電極から動物への電気伝導度を最大化し、正極電極と負極に隣接する非注入眼に隣接して充血した目で電極間に注入された子犬の頭を置くためにPBSでピンセット電極を浸す電極（ 図3B）。 </li><li>パルスジェネレータを使用して5矩形パルスを適用する：各パルスは、パルス間の950ミリ秒間隔で80ボルトと持続時間に50ミリ秒です。 </li><li>彼らは氷の麻酔から回復するまで、エレクトロ仔は今まで温めておく必要があります。これは、温暖化のランプの下でまたはスライドウォーマーの上に子犬を置くことによって行うことができます。暖かいスライドを使用している場合は、適切なパッドが金属表面と回復子犬の間に配置されていることを確認してください。リカバリ時に母親にエレクトロポレーション子犬を返します。 </li></ol> 4。分析のための目の準備<ol><li>エレクトロポレーション網膜の収穫と解析の時間は、実験の目的の対象に実行されます。 GFPの発現は3日、エレクトロポレーション後に肉眼的に可視化することができる。 cryoembeddingと以下の手順に従ってセクショニングの。 </li><li>希望のタイムポイントでのエレクトロポレーションの動物を生け贄に捧げる。エレクトロ目をDisectと4で4％パラホルムアルデヒドで固定し° Cを50分間。 </li><li>慎重に強膜、角膜、レンズ、脈絡膜と網膜色素上皮を離れて、マイクロ切開によって眼から網膜を削除します。解剖網膜を著しくエレクトロポレーションの効率を決定するために蛍光で分析することができます。 4℃で一晩30％ショ糖溶液に網膜を転送℃に</li><li> OCT凍結埋め込む-80メディア（サクラファインテック米国）とストアを℃に凍結網膜網膜は、今cryotome上で区分し、ガラススライド上にキャプチャされた可能性があります。 </li></ol> 5。代表的な結果： プラスミドpCAG - EGFPの発現とエレクトロP0新生児網膜の例としては、エレクトロポレーション（P3）と図4のエレクトロポレーション（P14）14日後には、次の3日間で発表されています。エレクトロ網膜組織の面積は、実験から網膜下腔へのDNA溶液の拡散の注入と均一中に発生した組織の損傷の程度に応じて実験の変数です。典型的にはエレクトロポレーション網膜の百分の90から100までは正常に組み込まれ、導入したプラスミドを発現している細胞を特色にする。しかし、エレクトロポレーション網膜の際に組織の形態とエレクトロポレーションの効率を考慮にのみ40〜60パーセントは、比較分析に適したものとなる。針貫通部位のロゼ​​ット形成と網膜剥離はほぼ常に観察され、この領域は、分析には使用しないでください。成功したDNAは、ロゼットと剥離のない針の浸透のサイトへの外側効率的にエレクトロ組織内マイクロインジェクションの結果の間に広がった。グリオーシスはまた、重要な実験的な関心事であり、ほぼ常に針貫通部位に発生します。しかし、ロゼット形成と網膜剥離と同様、グリオーシスは横方向にエレクトロ組織に典型的に重要ではない。このようなグリア線維性酸性タンパク質（GFAP）のような免疫組織化学的マーカーは、分析領域における反応性グリオーシスのレベルが許容されるしきい値内に収まるかどうかを判断するために利用することができる。区分された網膜は、エレクトロポレーション網膜の形態がそのまま残っていると、個々のエレクトロポレーションした細胞が提示されるEGFP発現ラベルことを実証する。 P0エレクトロポレーション（ 図4A - C）とP0エレクトロ（ 図4D - F）14日後には、次の例は3日が表示されます。 P3網膜にエレクトロポレーションした細胞の大部分は、網膜の神経芽細胞層（NBL）に位置しており、網膜の分化神経またはグリア細胞（ 図4B、C）のいずれかの明確な形態的特徴を示すものではありません。 P14によるエレクトロポレーションした細胞は外顆粒層（ONL）と網膜の内顆粒層（INL）で見つけることができます。さらに様々な標識された細胞は、現在INL、光受容体、およびミュラーグリアの介在（ 図4E、F）を含む分化した神経細胞の特徴的な形態学的特徴を表示します。 <img src="/files/ftp_upload/2847/2847fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1新生児（P0）子犬マウスとDNA溶液の網膜下注入のためのアイの開口部の麻酔。 A）新生児子犬が上に配置麻酔のための砕いた氷のベッド。注入される目は、氷属性に対する防御ダウンに配置されます。 B）アイ開口のため切断されるまぶたの融合接合上皮（B、 矢印 ）の位置を。 C）目を公開するための溶融接合上皮（C、 矢印 ）に沿ってまぶたをカット。 D）溶融接合でのカットは、次の目を開いたが。 E）切開は、平滑末端マイクロインジェクションシリンジを簡単に挿入を容易にするために角膜の下にある強膜の下に目に行われます。スケールバー、B、C、D、E：4ミリメートル。 <img src="/files/ftp_upload/2847/2847fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。鈍の挿入は、網膜下腔へのDNAプラスミド溶液のマイクロインジェクションシリンジと注入を終えた。 A）網膜下腔に注射器の先端の目と和解にマイクロインジェクションシリンジの正しい挿入を示す漫画の回路図は。硝子体腔へのDNA溶液の注入、レンズへのソケット、または注射に目を通して注射器の通過は、あらゆるエレクトロポレーションした細胞であれば、いくつかで失敗した実験になります。網膜下腔に注射器の先端部の強膜の壁との和解で行われた切開に注射器のB）浸透。網膜下腔へのDNA溶液のC）注入。スケールバー、B、C：4ミリメートル。次のように略語：R -網膜、L -レンズ、V -硝子、SRS -網膜下腔、BES -鈍は、注射器を終えた。 <img src="/files/ftp_upload/2847/2847fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。エレクトロポレーションのためのマウスの上にピンセット電極のオリエンテーション。 A）漫画の回路図は、エレクトロポレーションの目には相対ピンセット電極のプラスとマイナスのパドルの向きを実証。グリーンは、網膜下腔に注入されたDNAの位置を表します。破線の矢印は正極に向かって負に帯電注入DNAの電気泳動の移動を表しています。 DNAの電気泳動では、正極に向かって配向している網膜に負極に隣接して網膜下腔から発生します。 B）ピンセットの正のパドルがDNAに隣接して配置されて目をマイクロインジェクションし、負のパドルは、非注入眼に隣接して配置されます。新生児マウスのピンセットの電極配置のC）高倍率像。破線は、正極に向かってDNAの電気泳動移動方向を表しています。スケールバー、C：5ミリメートル。 <img src="/files/ftp_upload/2847/2847fig4.jpg" alt="図4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図4"> 図4新生児マウスの網膜（P0）pCAG - EGFPとエレクトロと生後3日目（P3）と生後14日目（P14）で分析した。 AC）P0でpCAG - EGFPとエレクトロ区分P3の網膜の共焦点画像。エレクトロポレーションした細胞の大部分は、網膜神経芽細胞層（NBL）で座っている。 P0でpCAG - EGFPとエレクトロ区分P14網膜の（DF）共焦点画像。エレクトロポレーションした細胞は外顆粒層（ONL）と網膜の内顆粒層（INL）で識別できます。スケールバー、AF：50μmである。

<ol><li>Neumann, E., Rosenheck, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Permeability+changes+induced+by+electric+impulses+in+vesicular+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Membr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Permeability changes induced by electric impulses in vesicular membranes.</a> J. Membr. Biol. 10, 279-290 (1972).</li>
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<li>Kinosita, K., Tsong, T. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Voltage-induced+pore+formation+and+hemolysis+of+human+erythrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Biochim.+Biophys.+Acta%22%5BJournal%5D)">Voltage-induced pore formation and hemolysis of human erythrocytes.</a> Biochim. Biophys. Acta. 471, 227-242 (1977).</li>
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<li>Onishi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+orphan+nuclear+hormone+receptor+ERRbeta+controls+rod+photoreceptor+survival%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">The orphan nuclear hormone receptor ERRbeta controls rod photoreceptor survival.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 107, 11579-11584 (2010).</li>
<li>Kim, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Core+Paired-Type+and+POU+Homeodomain-Containing+Transcription+Factor+Program+Drives+Retinal+Bipolar+Cell+Gene+Expression%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A Core Paired-Type and POU Homeodomain-Containing Transcription Factor Program Drives Retinal Bipolar Cell Gene Expression.</a> J. Neurosci. 28, 7748-7764 (2008).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

in vivoでエレクトロポレーションは、DNAの発現プラスミドと網膜細胞の形質転換のための迅速かつ効率的な方法を表します。このメソッドは、実験者が異所的に普遍的に発現プロモーターの制御下に目的の遺伝子を導入することにより、機能研究のゲインを実行したり、関心のある遺伝子を標的とするshRNAコンストラクトを使用して、関数の研究の損失を実行することができます。さらに、複数のDNAプラスミドは、実験者は、複数の遺伝子の効果を分析したり、関心の第二の遺伝子を導入しながら、一つの遺伝子をノックダウンすることができます、同時に電気穿孔することができます。 Creリコンビナーゼの発現を駆動するプラスミドのエレクトロポレーションは、また関心のfloxed遺伝子を含む動物が利用可能なモザイクの方法で遺伝子発現を排除するために利用することができます。このメソッドは、本質的な対外因性遺伝子機能の決定のために特に有用です。逆にバック従来のノックアウトマウスの網膜への遺伝子のエレクトロポレーションは、実験者はノックアウトで識別される表現型を逆転しようとする救助の研究を行うことができます。どんなバックグラウンド株のマウスは、実行される試験の要...

<table border="1"><tbody><tr><th>試薬の名前</th><th>会社</th><th>カタログ番号</th><th>コメント</th></tr><tr><td>バッファが飽和フェノール</td><td>インビトロジェン</td><td> 15513-039 </td><td> N / </td></tr><tr><td>クロロホルム</td><td> JTベイカー</td><td> 9180〜03 </td><td> N / </td></tr><tr><td>酢酸ナトリウム</td><td> JTベイカー</td><td> 3470〜05 </td><td> 3 Mの株式</td></tr><tr><td>ファストグリーンFCF </td><td>フィッシャーバイオテック</td><td> BP123 - 10 </td><td> 10％の株式</td></tr><tr><td>イソプロピルアルコール準備</td><td>タイコヘルスケア</td><td> 6918 </td><td> N / </td></tr><tr><td> 30 guage針</td><td>テルモメディカル社</td><td> SG2 - 3013 </td><td> N / </td></tr><tr><td> Exmireマイクロシリンジ</td><td>株式会社イトー</td><td> MS * E05 </td><td> N / </td></tr><tr><td> Tweezertrode（ピンセット電極） </td><td> BTXインストゥルメント、Genetronics株式会社</td><td> 522 </td><td> N / </td></tr><tr><td>電気スクエアPorator（エレクトロ） </td><td> BTXインストゥルメント、Genetronics株式会社</td><td> ECM 830 </td><td> N / </td></tr><tr><td> OCTコンパウンド</td><td>サクラファインテック米国</td><td> 4583 </td><td> N / </td></tr></tbody></table>

開発マウス網膜の in vivoエレクトロポレーションで

In vivo Electroporation of Developing Mouse Retina

哺乳類の網膜の開発の過程で発現する遺伝子の機能解析は重要な課題である。関数のノックアウトの構成的または条件付き損失を生成するためにジーンターゲッティングは、コストや手間が、同様に時間のかかる作業のまま。これらの課題に加えて、網膜はノックアウトのアプローチを使用するときに遺伝子が意図しない困惑さにつながる網膜の外側に不可欠な役割を持っていることが表明した。細胞の運命の仕様および/または分化における役割を同定しようとすると、さらに、異所的機能の実験の利得の遺伝子を発現する能力は非常に価値があります。 我々は、エレクトロポレーションにより新生児マウスの網膜へのDNAプラスミドの迅速かつ効率的な組み込みのための方法を提示する。膜1,2,3,4にわたって材料の移転を促進する細胞膜透過性の一過性増加に一定の電界強度の結果、上記の短い電気インパルスのアプリケーション。画期的な作品は、エレクトロポレーションは、脂質二重膜5を介して高度に荷電したDNAの通過を可能にする親水性の原形質膜の細孔の形成を誘導することにより、哺乳動物細胞への遺伝子導入の方法として利用され得ることを実証した。継続的な技術開発は、網膜、ここ6、7、8、9、10に記載されているメソッドを含む複数のマウス組織におけるin vivoでの遺伝子導入のための方法として、エレクトロポレーションの実行可能性をもたらした。 そのDNAが新生児（P0）のマウス及び電気パルスの網膜色素上皮と網膜の間に配置されるようにDNA溶液をピンセット電極を使用して適用される網膜下腔に注入される。マウスの眼の横方向の配置が必要な負極- DNA -網膜-正極配置にピンセット電極を容易に方向することができます。挿入遺伝子の大規模な組み込みと発現は生後2日目（P2）によって識別できます。網膜の細胞の重要な側方移動の不足のため、エレクトロポレーションおよび非エレクトロポレーション領域が生成されます。非エレクトロ地域はどこに適切な内部組織学的コントロールとして機能することができる。 網膜エレクトロポレーションは、CAGのように、ユビキタスプロモーター下に遺伝子を発現する、またはshRNAコンストラクトまたはクレアンリコンビナーゼを用いて遺伝子機能を破壊するために使用することができます。よりターゲットを絞った発現は細胞特異的遺伝子のプロモーターと構造を設計することにより達成することができます。エレクトロポレーションした細胞の可視化は、GFPを発現したり、GFPの発現構築物の共同electroporatingでバイシストロン構文を使用して実現されます。さらに、複数の構成要素は、コンビナトリアル遺伝子の効果や異なる遺伝子の機能の同​​時利得と損失の研究のためにエレクトロポレートされることがあります。網膜エレクトロポレーションは、適切な発現コンストラクトおよび欠失変異体を生成することで、ゲノムのシス調節エレメントの解析に利用することができる。このような実験は、細胞特異的遺伝子発現11の十分なまたは必要なシス調節領域を同定するために使用することができます。潜在的な実験は、構造可用性によって制限されます。

ゲインまたは機能研究の損失のいずれかを実行する目的のためのマウス網膜細胞へのプラスミドDNAの取り込みのための方法<em&gt; in vivoで</em&gt;提示されます。このメソッドは、外部電場の印加によって誘導される細胞の細胞膜の透過性の一過性増加を利用しています。

哺乳類の網膜発達過程で発現する遺伝子の機能特性解析は、依然として大きな課題となっている。...を生成するための遺伝子ターゲティングは、

本手順の全般的な目的は、新生児マウスを用いてin vivoエレクトロポレーション実験を行い、網膜細胞に遺伝物質を安定的に導入することです。まず、新生児マウスを氷上で約5〜10分間冷却して麻酔をかけます。次に、癒合した眼瞼の接合部を特定し、この接合部に沿って切開して眼を開きます。次に、マイクロインジェクション用シリンジの挿入を容易にするため、眼に切開を加えます。その後、切開部からマイクロインジェクション用シリンジを挿入し、DNA溶液を網膜下腔に注入します。最後に、ピンセット電極をポップの頭部に配置し、一連の電気パルスを印加します。レトロウイルス導入などの既存の手法に対する本手法の主な利点は、in vivo エレクトロポレーションでは、遺伝子導入ツールとしての生物学的製剤の作製や取り扱いを必要としないことです。その結果、本手法は労力と試薬を少なく抑えることができ、動物実験が承認されているあらゆるワークステーションで実施可能です。一般的に、本手法に不慣れな人は、網膜下腔へのマイクロインジェクションシリンジの挿入感覚を習得するまでに時間と反復練習を要するため、苦労することがあります。 procedureのデモンストレーションを行うのは、私の研究室のポストドクターであるJimmy DeMiloです。エレクトロポレーションに必要なDNA濃度は比較的高いため、目的のプラスミドDNAをまずmaxi prepを用いて抽出したコンピテント細胞で増幅させ、その後、約5 µg/µLまで精製および濃縮します。また、注入トレーサーとしてFast green FCF dyeを添加します。プラスミドDNAの調製が完了したら、新生マウスを氷上で約5分間麻酔し、足底を圧迫して意識消失が確認できるまで観察します。注射を行う眼の周囲を70%イソプロピルアルコールで拭き、解剖顕微鏡を用いて、上下の眼瞼が接しているFUS接合上皮を特定します。鋭利な30ゲージの針を用い、過度な下方圧をかけず、また眼瞼の範囲を超えて切らないように注意しながら、癒合した接合上皮に沿って切開し、眼を開きます。眼瞼を開いて眼球を露出させた後、針先を用いて、角膜との接合部付近の強膜に小さな切開を加えます。この際、深く刺しすぎて水晶体を穿刺しないよう注意してください。鈍端の注入針を切開口に挿入します。反対側の強膜壁の抵抗が感じられるまで、粘性DNA溶液0.3 µLを網膜下腔にゆっくりと注入します。強膜壁を強く押しすぎないように注意しながら、動物を回転させて、網膜内にDNA溶液が均一に広がっているかを確認します。まず、電気伝導性を最大にするため、ピンセット電極をPBSに浸します。次に、注入した幼仔の頭部を電極の間に配置し、注入した眼を正極電極に、注入していない眼を負極電極に隣接させます。パルスジェネレーターを用いて、1パルスあたり80 V、持続時間50 ms、パルス間隔950 msの方形波パルスを5回印加します。最後に、氷麻酔から回復するまで、ウォーミングランプの下でマウスの幼仔を保温します。回復後、エレクトロポレーションを行った幼仔を、生後3日目の母マウスに戻します。EGFPを電極導入した細胞の大部分は網膜の神経可塑性層に位置しており、網膜の分化した神経膠細胞のいずれの明確な形態学的特性も示していません。生後14日目までに、電極導入された細胞は網膜の外核層および内核層に見られ、ラベルされた様々な細胞は、分化したニューロンに特有の形態学的特徴を示すようになります。本手順を行う際は、すべてのステップをスムーズかつ均一に実施することが重要です。マイクロインジェクション中に網膜を損傷させる可能性が高いため、組織へのダメージを避けるために必要な手先の器用さを身につけるための練習が必要です。以下の手順に従ってください。網膜において、目的遺伝子の発現が上昇または低下しているかを確認するために、免疫組織化学染色やin situハイブリダイゼーションなどの他の手法を実施することができます。

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ここではでマウス網膜神経節細胞（RGCs）で遺伝子発現を操作するための2つのテクニックを紹介...

マウス網膜神経節細胞における遺伝子発現のための子宮内および生体外でのエレクトロポレーションで

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このプロトコルは、外植片のエレクトロポレーションを使用してマウスの網膜を生体内でのシス調節エレメント（例えば、エンハンサー/プロモーター）の活性を定量化するための簡単​​で安価な方法を説明します。...

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発展途上のマウス脳への遺伝子導入法は、ユニークな手術法と電極の特殊な形状を用いて記述されます。このユニークな手法は、脳の発達の研究に多くの神経科学者を支援する時間的および空間的にプラスミドDNAのトランスフェクションすることができます。...

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条件付きで大人のゼブラフィッシュの網膜での標的タンパク質の発現をノックダウンする方法は、硝子体内アンチセンスモルフォを注入して網膜にそれらをelectroporating含まれ、説明されています。得られたタンパク質を再生成または無傷の網膜におけるタンパク質の役割をテストできるようになる、数日間ノックダウンされている。...

アダルトゼブラフィッシュ網膜にモルフォの in vivoエレクトロポレーションに

このビデオの全体的な目標は、対象と網膜の注入を実行する方法を示すことであると...

ニワトリ胚の網膜におけるOVOエレクトロポレーションに

本研究では開発について説明します。...

妊娠中期のマウス胚の低菱形リップの in vitroエレクトロポレーションで

神経芽細胞の遊走は、出生後の神経発生における基本的なイベントです。我々は、in vivoでの出生後のエレクトロポレーションおよび急性脳スライスのタイムラプスイメージングを使用して、移行のその後の視覚化によって神経芽細胞の効率的な標識のためのプロトコルを記述します。私たちは、ビデオトラッキングによる神経芽細胞の動態を定量的に分析するための説明が含まれています。...

生体産後エレクトロポレーションおよびマウスの急性脳スライスにおける神経芽細胞移動のタイムラプスイメージング中

この手順は、子宮内エレクトロポレーションによって、発生中のマウス前脳の介在ニューロンを標的にする方法を示しています。この技術は、皮質の表層に向けられた介在ニューロンサブタイプで選択的な遺伝子発現を達成するのに特に効率的でした。...

皮質介在ニューロンのサブタイプ選択的エレクトロポレーション

このプロトコルは、解剖実験的に操作し、ニワトリ胚の培養全体の網膜外植する方法について説明します。高い成功率、有効性と再現性をエレクトロポレーションおよび/ ​​または試薬物質、 すなわち、酵素阻害剤のためのプラスミドの効果をテストするために必要な場合、外植片培養は便利です。...

エレクトロポレーションおよび化学試薬の治療のための鶏胚からの全網膜の外植片

学ぶ in vivoエレクトロポレーション法で新生マウスの網膜細胞にプラスミドDNAを導入する技術。電気パルスで細胞膜透過性を高め、遺伝子導入を可能にする神経科学研究の有用な手法です。

開発マウス網膜の in vivoエレクトロポレーションで

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