Name: 嗅神経細胞のレンチウイルスを介した遺伝子操作と可視化 in vivoで /em (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-22T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 34 s
Description: 学ぶレンチウイルスを用いた嗅神経細胞の遺伝子操作とin vivo可視化法。GFP導入により単一ニューロンの軸索軌道と終末樹状突起を詳細に観察し、神経回路の発生機構解明に貢献する。

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本研究では、BSにQGとT32 - DC008072にNIH DC052256とDC006015、およびNSF 0324769によってサポートされています。

1。準備 この手順では、バイオセーフティーレベル2であり、従って、以下のすべての準備がマイクロインジェクションの手順が実行されるバイオハザードフードで作られています。 <ol><li>準備と予備加熱。37℃のウォーターベッド：水とビニール袋を記入 - 空に加熱ブロックインキュベーターのシールとのセットを。これは、マウスは、次の注入を回復することができます。 </li><li>この手順からのすべての廃棄物の浸漬に適した量に10％漂白剤でバイオハザード廃棄物容器を埋める。 </li><li> 70％エタノールおよび生物学的安全キャビネットの滅菌ddH2Oと場所で2番目の皿の小さなオープン皿を準備します。 </li><li>プランジ​​ャーは、すべての方法を引き出して70％エタノールで体や針の下に噴霧することにより、33ゲージ針で5μL容量ハミルトンシリンジを滅菌する。繰り返し皿からエタノールを吸引除去し、少なくとも5回、それすべての方法を取り出します。 </li><li>少なくとも5回吸引して排出する滅菌水で注射器のカートリッジを洗浄します。安全な場所文化のフードで注射器を置き、それが乾燥することができます。 </li><li>解凍できるように、氷上で-80℃の冷凍庫に保管し、場所からウイルスストックを取り外します。マイクロインジェクションは、10 9感染単位/ mLの力価でマウスあたりのウイルスストックの2μlを必要とします。レンチウイルスは、確立されたプロトコル（ロイスら 、2002）によると商業的供給源から入手または実験室で製造することができる。 </li><li>フードの表面から浮き出た面積を提供するインジェクション段階を準備 - キムワイプのシートで覆われた10cmの培養皿を使用することができます。 </li><li>注入駅近くのアルコール綿を手配。 </li></ol> 2。嗅上皮へのレンチウイルス粒子のマイクロインジェクション このメソッドで実行されるすべての動物の手順はIACUC承認されたガイドラインに基づいて行われます。ハツカネズミ系統C57BL/6Jは、ここに示したすべての実験で用いた動物モデルである。 <ol><li>ケージから子犬マウス（P0 - P3）を取り出し、氷上で5分間のカット、オープン手袋に子犬を置くことによって、低体温による仔マウスをAnaesthetize。 </li><li>子犬が滅菌ハミルトンシリンジにウイルスストックの完全に麻酔、吸引2μlをされるのを待つ間。 </li><li>注射のステージの上に子犬マウスを置きます。ゆっくりと首の上部に向かって耳に頭の上から離れて肌を引き出します。これは、鼻腔を介して教えて皮膚表面を提供する必要がありますし、注入を容易に行うことができる。 </li><li>嗅上皮に到達するための皮膚表面下に3ミリメートル程度鼻腔の上部から針を挿入します。左と右の両方の側面ごとに2つのサイトを、（マウス1匹あたり合計4回の注射に必要なウイルスの=2μlの）選択、ショットごとのウイルス溶液の0.5μLを顕微注入する。注射部位は、互いに間隔ずらして配置する必要があります。適切な注射部位を標的とするために、嗅球の概要については、背側頭蓋骨表面を検索する。この行は、半透明の皮膚や頭蓋骨を介して出生時にほとんど見えないです。側面ごとに2回の注射を行うには、中心軸一つの電球の輪郭にちょうど吻側回の注射を目指しています。電球の輪郭に横秒の挿入を行い、まだ内側にするので、電球の下に腹側に存在する嗅上皮に到達する可能性があることを注入を角度にしてください。嗅球を貫通しないでください！ </li><li>注射部位またはキムワイプを使用して鼻孔の開口部から脱出する可能性のある残存ウイルス液や血液を乾燥汚点。直ちに希釈液の漂白剤バイオハザード容器にキムワイプ処分する。 </li><li>ウォーターベッドのインキュベーターに注入マウスを置きます。 </li><li>繰り返しますがマウス当たりウイルスストックの2μlの約が必要になります覚えて、注入されるすべてのマウスの1-4を繰り返します。 </li><li>元のネストケージに戻す前に、マウスが30分間ウォーターベッドのインキュベーターにリカバリできます。 </li><li>マイクロインジェクションのステージ、消毒ワイプと液体漂白剤バイオハザード廃棄に余分なクリーニングの紙製品を廃棄してください。 </li><li>として準備のステップで行う繰り返し吸引とエタノールの放出し、水でハミルトンシリンジを清掃してください。シリンジが乾燥することができます。 </li><li>最大の導入効率のために4時間で再び、この手順を繰り返します。感染OSNsは3日間、わずかに細胞の長さにわたって可視化されることがあります。 </li></ol> 3。フローティング嗅球切片の免疫組織化学<ol><li>希望する時点で注入マウスを犠牲にし、血流は、4％パラホルムアルデヒドで細胞を固定する。 OBをばらばらにする。一晩一晩して、パラホルムアルデヒドでPBSに30％ショ糖をインキュベートする。ドライアイス上のOCT包埋媒体に埋め込む。 </li><li>冠状OBのセクションは、クライオスタットを用いて厚さ60μmで得られる。 5mLの1 × PBS（pH7.4）で10cmの培養皿に電球のセクションをスイープ。セクションは、DにOCTを許可するようにPBSに浮かんで維持する必要がありますissolve。 50mLのコニカルバイアルにフローティングセクションとPBSを転送する。 </li><li>セクションはバイアルの底に沈降することができます。任意のセクションを吸うことなく、PBS掃除機で吸い取る。 20mlのPBSで組織切片を洗浄します。落ち着くと掃除機をかける手順を繰り返します。 10mLのPBSと免疫染色用15mlのコニカルバイアルへの転送フローティングセクションで再懸濁します組織。一度組織切片では、組織を乱すことなく、PBS清オフ真空を解決している。 0.3パーセントトリトンX - 100界面活性剤は細胞膜を穿孔することができます1X PBS、pH7.4の（PBS - TX）にある再懸濁しますセクション。室温で10分間インキュベートする。 PBS - TXと上清と繰り返しインキュベーションオフ真空倍。 </li><li>室温で2時間ブロッキング溶液の10mLを（PBS - TXの5％ウマ血清）で組織切片をインキュベートします。 </li><li>室温で15分間ごとに、PBS - TXで少なくとも二回ブロッキング溶液を洗い流す。 </li><li> PBS - TXでの一次抗体溶液の2mLのを準備します。この実験で使用した抗体のための試薬および器具のセクションを参照してください。 </li><li>一次抗体溶液で2番目のPBS - Txのブロッキング洗浄を交換してください。 ℃で24〜48時間60μmフローティングセクションに徹底浸透を確実にするために4℃でゆっくり振盪プラットフォーム（〜30rpm）でインキュベートする。 </li><li>インキュベーション後、一次抗体溶液を注意深くピペットを使って取り出すことができますし、4℃で保存強度を染色のいずれかをあまり失うことなく、二週間以内にさらに2回まで再利用のためのC。 </li><li>穏やかに回転（〜30rpm）で、室温で切片を20分ごとに、PBS - TXで3回洗浄する。 </li><li> PBS - TXの二次抗体の希釈の2mLのを準備します。最後の洗浄を掃除機で吸い取ると組織切片への二次抗体溶液を加える。フルオロフォアの光退色を引き起こす可能性がある光を、遮断するアルミ箔で染色バイアルの外側を包みます。場所は、4℃で一晩ゆっくりと揺動プラットフォームとインキュベートでバイアルを包んだ。 </li><li>離れて掃除機で二次抗体溶液を捨てる。室温で20分間ごとに、PBS - TXで一回のセクションを洗ってください。室温で20分間ずつPBSでさらに2回（pH7.4）をすすいでください。 Fluoromount G.を使用してガラススライド上に染色した組織切片をマウントします。 </li><li>蛍光顕微鏡で積極的に感染OSNの軸索と軸索の末端のための染色切片を介してスクリーン。 </li><li>ラベル付けOSN軸索と終末の三次元ビューを構築するために、共焦点顕微鏡を使用してターゲットOBの組織切片（z軸に沿った）の60μmの深さを介して光セクションのシリーズを作る。 </li><li> Z -セクションの画像のこのスタックは、その後、その全体のターミナルアーバの詳細を含む単一のラベルが付いたOSN軸索の360 °回転する視点を、再構築するために一緒に投影することができます。いずれかの単一の回転角度がキャプチャされ、2次元形式のプレゼンテーション用のイメージファイル（例：JPG、TIFF）としてエクスポートすることができます。 </li></ol> 4。代表的な結果方法はここで説明すると、我々はin vivoでのレンチウイルスによって嗅覚ニューロンを伝達することができます。我々はこれまで免疫細胞を介したmycタグ融合タンパク質と同様に、GFPとmCherry蛍光レポーターと感染OSNsを可視化した。この手法は、感染したOSNsの豊富さを提供します。それでも、伝達では、単一の細胞形態の解析を可能にする、個別にラベル付けOSNsを提供するために散発的に十分に発生します。軸索と軸索末端は、共焦点顕微鏡（図1）により、ネイティブな環境に囲まれたOB組織切片内に撮像されています。全体OSN軸索終末は通常40 -50μmの光学部内で魅了することができます。感染OSNの軸索末端の高倍率は、糸球体層における軸索のアーバーの形態の詳細な分析を行うことができます。 <img src="/files/ftp_upload/2951/2951fig1.jpg" /> 図1。単一の嗅覚ニューロンの軸索とその端末のアーバーの軌跡。）嗅神経層（ONL）を示すP7のマウスの嗅球の冠状セクションでは、OMP（赤）を免疫染色し、糸球体層（GL）は、OMPの両方を用いて免疫染色とVglut2（グレー）。 GFP（緑）を発現する単一の嗅覚ニューロンの軸索は、ONL内に移動し、糸球体の構造に浸透する。 B）糸球体内の軸索終末の形態は、明らかにGFPの発現によって強調。灰色のVglut2共同染色は、GFP陽性の軸索は、端末のABORをきれいに仕上ている内に、総glomular面積を照らす。 C）OEにおけるGFP（緑）を発現するレンチウイルス感染OSNsが。嗅上皮のcytostructureは、DAPI染色（青色）で表示されます。 GFPの発現は、OEのOSNの細胞体およびそれらの細胞プロセスを可視化できる。 D）Rap1GAP2発現とOSNの軸索とその端末の形態がノックダウンしたshRNAによる。下のマウスU6プロモーターとGFPの下Rap1GAP2 shRNAを使用してデュアル発現カセットを運ぶレンチウイルスCMVプロモーターは、OEに適用した。 GFPのみのコントロールのそれと比較した場合、感染した嗅覚軸索末端はより簡素化されたターミナルアーバーを示した。バー=20μmの。

<ol><li>Chen, H., Kohno, K., Gong, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conditional+ablation+of+mature+olfactory+sensory+neurons+mediated+by+diphtheria+toxin+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurocytol%22%5BJournal%5D)">Conditional ablation of mature olfactory sensory neurons mediated by diphtheria toxin receptor.</a> J Neurocytol. 34, 1-2 (2005).</li>
<li>Doi, K., Nibu, K., Ishida, H., Okado, H., Terashima, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus-mediated+gene+transfer+in+olfactory+epithelium+and+olfactory+bulb%3A+a+long-term+study%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Otol+Rhinol+Laryngol%22%5BJournal%5D)">Adenovirus-mediated gene transfer in olfactory epithelium and olfactory bulb: a long-term study.</a> Ann Otol Rhinol Laryngol. 114, 629-633 (2005).</li>
<li>Lois, C., Hong, E. J., Pease, S., Brown, E. J., Baltimore, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Germline+transmission+and+tissue-specific+expression+of+transgenes+delivered+by+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Germline transmission and tissue-specific expression of transgenes delivered by lentiviral vectors.</a> Science. 295, 868-872 (2002).</li>
<li>Zhao, H., Otaki, J. M., Firestein, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus-mediated+gene+transfer+in+olfactory+neurons+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Adenovirus-mediated gene transfer in olfactory neurons in vivo.</a> J Neurobiol. 30, 521-530 (1996).</li>
</ol>

このプロトコルは、バイオセーフティレベル2に準拠しています。すべての適切なワークスペース、個人用保護具、およびウイルス性廃棄物の封じ込め対策がそれに応じて確立されている。すべての動物の手順は、IACUCガイドラインに従って行った。

OSNゲノムDNAに遺伝子構築物の永久的な移転のレンチウイルスの結果のマイクロインジェクション。このアプローチは、私たちは過剰発現またはshRNAを介したノックダウンを経由して候補遺伝子の短期または長期の操作を実行することができます。さらに、我々は蛍光嗅覚受容体の個体群の共局在を観察するために、既存のトランスジェニックマウスのラインで単一のOSNsにラベルを付けることができます。マイクロインジェクションは、OSNsのレンチウイルス形質導入のために必要です。我々は、任意の成功なしOSNsを形質導入する鼻腔内にフラッシュするレンチウイルス懸濁液を試みた。そこで、OSNの細胞体が位置するOEの内側の層にウィルスを配信するために、背側鼻の表面を通してmicroinjectionsを実行します。 確立されたアデノウイルスの操作上のレンチウイルスを使用することには多くの利点があります。アデノウイルスは、遺伝子操作の限られたtimecourse（土井ら 、2005）でのみ一過性トランスフェクションを提供しながらLentivral伝達は、長期的な研究をできるようにゲノムに統合さ...

マイクロインジェクション：新生児マウスは33ゲージの注射針（ハミルトン＃7762〜06）を装備した5μLハミルトンシリンジ（ハミルトン＃7647〜01）を用いてマイクロインジェクションした。 免疫細胞化学試薬：一次抗体：ウサギポリクローナル抗体のGFP（Molecular Probes社＃- 6455）、OMPに対するニワトリポリクローナル抗体（カスタム）（Chenら、2005。）、VGlut2に対するモルモットポリクローナル抗体（ミリポア＃AB2251）。二次抗体：Cy2とコンジュゲートロバ抗ウサギ（ジャクソンImmunolab＃711-225-152）、Cy3結合ロバ抗ニワトリ（ジャクソンImmunolab＃703-165-155）およびCy5結合ヤギ抗モルモット（ジャクソンImmunolab＃106-175-008）。セクションは、50ng/mL DAPIクロマチン染色液でFluoromount G（サザンバイオテック＃0010〜01）でスライドガラス上にマウントされました。 共焦点イメージング：Z -スタックのイメージはオリンパスFlouview FV1000共焦点顕微鏡とオリンパスFV10 - ASW 2.01共焦点取得と解析ソフトウェアを用いて3次元予測に収集し、処理された画像を用いて撮影した。

嗅神経細胞のレンチウイルスを介した遺伝子操作と可視化 in vivoで</em

Lentivirus-mediated Genetic Manipulation and Visualization of Olfactory Sensory Neurons in vivo

正確な嗅覚回路の開発は、嗅球（OB）で、そのシナプスのターゲットへの嗅覚ニューロン（OSN）軸索の正確な投影に依存しています。 OSN軸索の成長と標的の分子メカニズムはよく理解されていない。遺伝子発現を操作すると、単一のOSNの軸索とその終末の形態の可視化、その後のことはこれまでに挑戦されている。指定された時間フレーム内の単一細胞レベルでの遺伝子機能を調べるために、我々は、in vivoで OSNsで遺伝子発現を操作するレンチウイルスベースの技術を開発。レンチウイルス粒子は、嗅上皮（OE）にマイクロインジェクションによってOSNsに配信されます。発現カセットは、その後、恒久的に形質導入​​OSNsのゲノムに組み込まれている。緑色蛍光タンパク質の発現は、感染したOSNsを識別し、軸索終末分を含めて、彼らの全体の形態の概要を説明します。マイクロインジェクションし、レポーターの検出との間の短いターンアラウンドタイムの​​ために、遺伝子機能の研究は、開発の非常に狭い期間内に集中することができます。この方法では、我々は、3日間、わずか三ヶ月限り、次の注入内でGFPの発現を検出した。私たちは、ノックダウンレンチウイルスマイクロインジェクションによって媒介過剰発現やshRNAの両方を達成している。このメソッドは、 生体内での単一細胞レベルでのOSN細胞体と軸索の詳細な形態を提供するため、嗅覚、開発中の候補遺伝子の機能の特性評価が可能になります。

我々は、単一の嗅覚ニューロンの軸索とその終末分枝の遺伝子操作と可視化のためのレンチウイルス技術を提示<em&gt; in vivoで</em&gt;。

精密な嗅覚回路の構築は、嗅覚受容ニューロン（OSN）の軸索が、...にあるシナプス標的に正確に投射されることに依存している。

神経科学における発達研究の課題の一つは、生体内で単一細胞レベルでの樹状突起および軸索の形態を捉えることです。嗅覚系において、嗅覚感覚ニューロンは鼻の嗅上皮から脳の嗅球に向かって軸索を伸展させます。複数の嗅覚感覚ニューロンが嗅球に向かって投射するため、それらは束となってまとまります。これにより、個々の軸索の走行およびその終末形態の研究が困難になります。私たちは、GFP構築物を搭載したレンチウイルスを微量注入することで、嗅覚感覚神経細胞をin vivoで可視化する方法を開発しました。レンチウイルスを用いた形質導入に成功すると、末端樹状突起を含む嗅覚感覚軸索の全長が可視化されます。この手法は、単一の嗅覚感覚ニューロンを視覚化できるだけでなく、特定の目的遺伝子の発現を操作することで、生体内（in vivo）におけるその機能を解析することを可能にします。このレンチウイルスを用いた手順はバイオセーフティーレベル2に該当し、層流クリーンベンチ内で行う必要があります。無菌状態を維持するため、フード内に導入するすべての物品に70% ethanolを噴霧してください。また、注入前に、37°Cの水槽を準備し、少なくとも20分間予熱しておきます。水を入れたプラスチック製保存袋を半分まで満たして密閉し、空のヒーティングブロックインキュベーター上に設置してください。これにより、マウスは注射後に回復することができます。すべてのウイルス曝露物を除染するため、バイオハザード廃棄物容器に10% bleachを充填します。この手順に備えて、70% ethanolを入れた小さなオープンディッシュと、滅菌蒸留水を入れた2つ目のディッシュを用意します。ラミナーフローフード内で、33ゲージの針を備えた容量5 µLのハミルトンシリンジを使用します。この特定のモデルでは、プランジャーチャンバー上部にあるテンションダイヤルを回すことで、プランジャーの抵抗を調整できます。この機能により、針とシリンジチャンバーを滅菌するためのマイクロインジェクション注入量の制御が可能になります。ディッシュ内のエタノールを、シリンジで繰り返し吸引および排出します。その後、滅菌水を数回吸引および排出して、シリンジカートリッジを洗浄します。シリンジはフローフード内の安全な場所に置いてください。注射ステーションの近くにアルコール綿を配置します。マウスの固定を容易にするため、表面が高くなっている注射台を準備します。10 cmの培養皿を逆さまにし、Kimwipeで覆ったものを使用できます。マウスの幼仔は、離乳期まで低体温による麻酔が可能です。ゴム手袋の指部分を切り取り、そこにマウス幼仔を入れます。その後、氷の上に5分間置きます。手袋を着用することで、氷による皮膚への直接接触で起こりうる凍傷を防ぎます。仔マウスの後肢と前肢をピンチして動物が反応しないことを確認し、十分に麻酔がかかっているかを確認します。これでレンチウイルスのマイクロインジェクションの準備が整いました。ここでは新生仔マウスを用いて実演します。より高齢のマウスを使用する場合は、頭蓋骨表面を貫通させるために、33ゲージの針をより太いゲージの針に変更してください。アルコール綿でマウスの鼻表面を拭き、滅菌します。冷凍保存していたレンチウイルスストックを取り出し、氷上で解凍します。確立された手法を用いて、研究室内でレンチウイルスを作製しました。本手法の開発において、良好な導入率を得るには10⁹ infectious units/mL以上の最小ウイルスタイターが必要であることが分かりました。滅菌済みのハミルトンシリンジを用いて、レンチウイルスストック溶液を2 µL吸引します。マウスの幼仔を注入ステージの上に置きます。耳のあたりの頭頂部の皮膚をつかみ、ゆっくりと後方に引きます。なお、本施設ではフローフードに解剖顕微鏡を設置しています。マイクロインジェクションを正確に行うために、前脳の頭蓋骨背面を探索し、嗅球の輪郭を確認します。マイクロインジェクションの標的部位は嗅球のすぐ周囲に設定しますが、嗅球自体には注入しないようにしてください。各幼仔の嗅上皮に4回の注入を行います。青色の点で示されたこれらの部位では、針を内側に向かう角度で刺入する必要があります。緑色の点で示されたさらに2か所の注入部位は、嗅球よりもさらに内側かつ前方にずらして配置されています。これらの注入は、互い違いに角度をつけて行うことができます。針の角度に関する提案は、嗅上皮が主に嗅球の下方に位置する腹側配置であることを考慮してなされています。そのため、垂直方向からのアプローチは制限されます。皮膚表面から約3 mm下の鼻腔上部から針を刺入してください。嗅覚上皮に到達させるため。習熟した操作者が、鼻腔の腔内空間に達した際に抵抗が減少する感覚を確認する必要があります。この領域は避けてください。1箇所あたり0.5 µLのウイルスストック溶液をマイクロインジェクションします。左右それぞれ2箇所ずつ、計4箇所に0.5 µLずつ注入します。つまり、1回の注入セッションにつき、マウス1匹あたり合計2 µLのウイルスが必要となります。ここでも、嗅球への注入時に、注入部位や鼻孔から漏れ出した残留ウイルス溶液や血液を拭き取らないよう注意してください。エタノールワイプを使用して拭き取り、使用済みのワイプは希釈次亜塩素酸ナトリウム液の容器に廃棄し、注入後のマウスを直ちにウォーターベッドインキュベーターに置いて回復させてください。準備時に行った滅菌手順を繰り返し、注射針とシリンジを除染します。注入したマウスは、ウォーターベッドインキュベーターでの回復から30分後にケージに戻すことができます。このマイクロインジェクションの一連の操作は、4時間後に再び繰り返すことができます。感染させる嗅覚神経細胞の数を増やしたい場合、感染した嗅覚神経細胞は最短3日で細胞全体にわたって可視化されます。その後、希望するタイムポイントで動物を安楽死させ、灌流固定して観察を行います。導入された単一細胞嗅覚感覚ニューロンの軌跡および軸索末端を可視化するため、標準的な手法を用いて、嗅球を冠状面に60 µmの厚さで切片化します。これにより、嗅球のすべての細胞層、すなわち嗅覚感覚ニューロンの軸索束および、嗅球表面の糸球体構造内でシナプスを形成する軸索末端を含む切片が得られ、浮遊免疫組織化学染色の準備が整います。嗅球の連続切片を作成し、5 mLのリン酸緩衝生理食塩水が入った10 cmの培養皿にまとめて回収します。浮遊している切片を50 mLのコニカルチューブに移します。切片がチューブの底に沈殿したら、リン酸緩衝生理食塩水を吸引除去します。この際、切片まで吸引しないよう注意してください。切片に10 millilitersの新鮮なバッファーを加え、残留している固定液や包埋剤を洗い流します。この再懸濁液を直ちに15 milliliterのコニカルチューブにピペットで移し、浮遊しているすべての切片を回収してください。洗浄液を吸引し、リン酸緩衝生理食塩水に0.3%Triton X 100を溶解した溶液で切片を透過処理し、ロッカープラットフォーム上で10分間静置します。室温にて、そのまま同一のコニカルチューブを用いて標準的な免疫染色プロトコルに進みます。このサイズの容器に合わせて、必要に応じて吸引とロッキングの工程を繰り返してください。なお、染色および洗浄ステップ用に10 milliliterの容量を確保してください。以下は、陽性に導入された嗅球感覚ニューロンおよび嗅球感覚ニューロン集団全体を共染色するために使用する抗体リストです。60 µmの嗅球切片に抗体を十分に浸透させるため、4 °Cで一晩インキュベートすることを推奨します。また、各洗浄ステップは20分以上行う必要があります。各切片を筆を用いてガラススライド上に静かに広げ、クロマチン染色溶液を添加したflora Mount Gを用いて封入します。封入剤からすべての気泡を取り除くようにしてください。後のスクリーニング工程を簡略化するため、切片を列状に配置して封入します。免疫染色を施した球部切片のこれらの層をスキャンし、GFP陽性の軸索線維および末端を確認します。蛍光顕微鏡を用い、感染した神経末端を共焦点顕微鏡でイメージングします。DPIおよび嗅球マーカータンパク質（OMP）チャネルを用いて、関心領域の焦点面を調整すると効率的です。これらの結果は、糸球体内の単一の嗅覚感覚ニューロン軸索線維および軸索末端を示しています。赤色は嗅覚マーカータンパク質で染色されたCOであり、灰色はvlu twoに感染した嗅覚感覚ニューロンの細胞体です。また、組織の解剖および免疫染色のステップに嗅上皮が含まれていれば、その樹状突起のノブも可視化することができます。この共焦点投影画像により、単一の嗅覚感覚ニューロンの軸索伸展経路と末端の樹状分枝の非常に詳細な形態を確認することが可能です。軸索線維が標的となる糸球体に向かって戻る様子や、糸球体ニューロピル内での分枝パターンの詳細が見て取れます。レンチウイルスマイクロインジェクション法を用いることで、嗅覚感覚ニューロンの単一細胞軸索や形態の可視化が可能となり、遺伝子発現を操作する研究が行えます。レンチウイルスの導入は、コンストラクトの安定したゲノム組み込みをもたらします。レンチウイルスはシナプスを介して隣接する細胞に感染することはありません。可視化は最短3日で達成でき、少なくとも3か月間持続することが確認されており、おそらくそれ以上の期間持続すると考えられます。嗅覚感覚ニューロンは、レンチウイルス溶液の鼻腔内注入では容易に感染しません。そのため、本手順では表面からのマイクロインジェクションが必要です。以上がレンチウイルスのマイクロインジェクションの手順となります。これらの情報が、皆様自身の単一細胞形態の取得に役立つことを願っております。それでは、研究に励んでください。

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