2007年10月1日
胚のアクセシビリティの容易さは、ニワトリウズラのキメラとフォーカル色素のラベリングを含めて、いくつかのアプローチを、使用して細胞の運命をマッピングするための実験を可能にした。この記事では、長い生存時間に対して最適化されている1個の卵の調製方法を示しています。
Kramer Labへようこそ。私はカリフォルニア大学アーバイン校神経生物学・行動科学科のMatt Kornです。本日は、ビーズの配置、色素の注入、またはin ovo探索など、さまざまな操作に向けた鶏卵の調製方法をご紹介します。
それでは、早速始めていきましょう。まず、卵を洗浄します。理由は、インキュベーター内に付着している可能性のある不純物が多いためです。
これをテープで密封します。卵を採取するウィンドウ部分に小さな破片が入り込み、取り出したい時までに胚が死亡する確率が高まるのを防ぐためです。インキュベーター内では、卵の太い側を上に向けた状態で置かれていることがわかると思います。
次に、卵を横に傾けます。これにより、2つのことが可能になります。1つは、観察窓がこちら側に来ること、そして2つ目は、胚が上部に浮上するため、あらゆる操作が行えるようになることです。
ここで、インキュベーターに入れていたラックから、いくつかの卵を段ボール製の卵ホルダーに移します。これは実際には卵が配送されてきたときに入っている容器です。今日は、単に卵を保持するためにこれを使用します。
配置の方法はあなた次第です。私は、いつでもすべての卵にアクセスでき、かつ卵同士が触れ合わないようにこの方法で配置することを好みます。万が一、緩んでいてひびが入っている卵を見つけ、それを落としてしまったとしても、それぞれに適度な間隔が空いているため安心です。
それでは、ガーゼを用意し、このように適度な厚みの束を取り出して2つに分けます。ここに70% alcoholを注ぎ、底まで十分に湿るまで浸します。このガーゼの束全体を使って、すべての卵を拭き取ります。
そこで、まず上部を数か所処理し、上部を重点的に行いますが、実質的に卵全体を囲むようにします。これが終わると、アルコールはかなり早く乾くため、テープを貼ることができます。テープはしっかりと密着し、通常、一連の処理を終える頃には最初の一つの乾燥が完了しているため、卵の準備の次のステップに進むことができます。
それでは、それをゴミ箱に戻します。これで次のステップに進む準備ができました。さて、すべての卵をアルコールで拭き取ったので、卵の大きい側、つまり卵の底に排水穴を開けます。これにより、アルブミンを抽出することが可能になります。アルブミンを抽出しないと、胚が適切に配置されないためです。
操作を行うことはできません。したがって、ここではブレードを使用して、このプラスチックテープを取り除くだけとなります。これはわずかに弾性があり、非常に都合が良いです。
穴が想定より少し大きくてもカバーできるだけでなく、実際に卵全体を覆う際には、これを伸ばす必要があるからです。そのため、ウィンドウとなる領域を完全に覆います。では、このように切り取り、約1mmの幅のストリップを作成します。
そして、ここから1 mm四方ほどのテープを作成します。次に、このテープを日付のすぐ左上に配置します。そこに置けば、このように見えます。
非常によく貼り付いています。次に、あらかじめ作成しておいたテープに戻り、さらに1 mmのテープを切り取ります。そして同様に、卵の最上部にあたる番号の左側に配置します。
横向きにしたので、右側にあります。そして、ここにもう一点あります。手を洗っておりますので、現在は手袋を着用していません。手袋を着用していると、このテープが手袋に張り付いてしまうためです。
現時点では、活性物質への他の物質の混入については特に懸念していません。そこで、先端の尖ったハサミを用意します。テープを貼った位置の中心にハサミを入れ、わずかに破れるまで反時計回りに回します。
そこに小さな穴が開いているのがわかります。シリンジを挿入すれば十分な大きさに広がるため、穴を大きく開ける必要はありません。最初から針で直接刺して卵を割ろうとすると、卵の側面全体が割れてしまうことが多いため、このようにしています。
これで卵はもう使えません。それでは、卵を排出します。側面に小さな穴が開いているので、10 mLのシリンジとかなり太いゲージの針を使用して、アルブミンを抽出します。
ここで、約3~4 mLの液を加えたいと思います。確実に3 mL以上、ただし4.5~5 mLを超えないようにしてください。これにより、上部に位置している胚が殻から少し離れ、操作が可能になります。
45度の角度で刺入することで、卵黄の下に入ります。次に、卵黄の下に潜り込ませるために少し右に回します。針先が卵の底に触れる感覚がわかるはずです。そのまま約3~4 µLを抽出します。これでスムーズに回収できました。
このアルブミンを廃棄バケツに入れ、他の卵の作業を続けます。それでは、先に進めましょう。ここで、排出用に開けた穴が想定より少し大きくなっていますが、問題ありません。
注意したいのは、針を刺す際にさらにひびが入らないようにすることです。それでは進めていきます。さて、卵にすでにわずかなひびが入っているのが見えます。
小さなひび割れであれば問題ありませんが、卵の別の面にまで及んでいる場合は注意が必要です。今回のケースでは、穴からわかるように、ひび割れが広がっています。
ほぼ上まで達しています。実際、ここにウィンドウが配置されることになります。そのため、残念ながらこの卵は破棄しなければなりません。
また、廃棄に特別な手順はありません。特定のプロトコルを作成する必要などはなく、そのまま廃棄バケツに入れてください。
これらの黒いゴミ箱は動物廃棄物として区別するために使用していますが、それ以外の手順はすでに完了しています。次の卵に進みましょう。それでは、すべての卵の排水が終わりましたので、排水穴に蓋をします。
これは非常に重要です。なぜなら、インキュベーター内での処置を怠ると、残っているアルブミンが激しく蒸発してしまうからです。卵が乾燥するということは、その卵が死ぬことを意味します。そのため、同程度の大きさのテープを穴の上に貼り、再びこの穴を操作する必要がないようにします。
場合によっては、卵を開封した後にさらに多くのアルブミンを抽出したいと考えた際、この穴が密閉領域のような役割を果たすため、ここに針を刺してもアルブミンが大量に流出することはありません。それでは、卵を十分な大きさのテープで覆います。
これは、風船に小さなピンを刺す前に、一部にテープを貼るのと似ていると思います。面白いのは、そうすることで風船が破裂しないということであり、今回の場合、卵に少量のテープを貼ることに相当します。これにより、卵が多点でひび割れるのを防ぎ、その後ウィンドウを密封できます。ウィンドウを閉じた際、テープを使用しているため、良好なシールが形成され、蒸発を心配する必要がなくなります。
テープのサイズがわかりますが、おそらくこれまでで最大のものになります。それでも、少し伸ばして、軽く引っ張るようにしてテンションをかけながら、卵の上に配置します。そして、後ろ側に回り込み、ウィンドウを設ける部分にシワが寄らないよう、非常に慎重に卵の上で伸ばします。テープの位置は少し調整可能です。
それほど強く張り付くわけではないので、心配する必要はありません。一度張り付いてしまえば、そのまま固定されます。こちらのあたりが、ウィンドウを切り抜く予定の範囲になります。
さて、すべての卵にテープを貼ったので、上部に窓を開けていきます。この工程が最も難しく、多くの場合、ここで大多数の卵を失うことになります。そのため、まずはアルコールを浸したガーゼでハサミを十分に拭き、その後、乾燥させます。
アルコールはほぼ自然に乾燥しますが、アルコールが直接卵の中に入ることは避けなければなりません。そのため、テープが貼られている中心部分に刃を入れ、再び時計回り、反時計回りに動かし、わずかにひびが入る音がするまで繰り返します。それで、刃が中に入ったことがわかります。
次に、ハサミを外側に動かし、卵の表面とほぼ平行にします。そして、ハサミの刃が完全に入るまで、小さく切り込みを入れます。半円状に切り進めた後、反対方向から戻ります。卵を開けるための窓を作りたいので、完全に円を描かないようにしてください。これで卵を開けることができます。
現時点では、予想していた通りの週数に見えます。血管はあまり多くありませんが、胚が位置している周辺に少量の血液が見られます。主に心拍が始まり、血液が流れ出した心臓領域からのものです。ですので、そのままそっと閉じ、上に乗せた状態で保持し、再度戻ってきてウィンドウを閉じます。そして、同様に表面に沿って平らにし、反対方向に動かします。
さて、ここにいくつかの気泡があり、胚が端に寄っていることがわかります。ここで、2つの対処法があります。卵が十分にあり、すべてを使い切る必要がない場合は、これをそのまま廃棄して構いません。
あるいは、ウィンドウを閉じて、胚が再び目的の最上部まで浮上するように設定することもできます。操作を行うタイミングで、胚が目的の位置にある可能性があります。もしそうでなければ、その時点で廃棄します。
ここでは、単に角度をつけて置いています。アルブミンが少し流れ出しますが、それによって胚が必要な位置に戻るのを助けます。さて、このようにウィンドウをすべて作成したので、操作を行う前にそれらが確実に閉じていることを確認する必要があります。
そして、卵を再び密封します。ただし、開口部がある場合、ときどき卵黄が流れ出してしまうことがあります。部屋から部屋へ移動する際に卵が少し傾いただけで、中身がすべて流れ出てしまうことは避けたいからです。
したがって、プラスチックテープを、幅1mm、長さはおよそ2〜3mmのサイズに切り取ります。それを中央あたりに配置し、卵の前で下に引っ張ることで、しっかりと固定させます。
窓が、別のテープがあったちょうどその場所にフィットしているのがわかります。窓を切り抜いたことで、現時点ではかなり密閉された状態になっています。この後すぐにいくつか操作を行うため、完全に気密である必要はありません。以上が、卵の準備と窓作成の手順です。
それでは、実験の成功をお祈りしております。
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本記事では、神経生物学実験におけるさまざまな操作のために、鶏卵を調製する方法を紹介します。この手法は、長期生存を可能にするよう最適化されており、細胞運命マッピングの研究を容易にします。
この手法により、発生学的研究のためのニワトリ胚への確実なアクセスが可能となり、神経生物学研究におけるターゲットバリデーションを支援します。簡単なウィンドウ作成技術を通じて生存時間を最適化することで、実験的なばらつきを抑え、メカニズム研究におけるデータの整合性を向上させます。このアプローチは、疾患に関連したシステムにおける早期段階の仮説検証を容易にし、ターゲットへの結合やパスウェイ調節における予測の信頼性を高めます。
本法は、リード化合物の同定前における仮説生成およびメカニズム探索を支援する、初期探索の連続的なプロセスに適合します。これにより、スクリーニングおよびバリデーションワークフローの下流アプリケーションに向けた、再現性のある胚の調製が可能になります。