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無負荷のラジ細胞と黄色ブドウ球菌エンテロトキシンBまたはSEBロードされたラジ細胞を含むフローサイトメトリーチューブを取ります。
これらのSEBを載せたRaji細胞は、クラスII MHC分子に複合体化されたスーパー抗原SEBを含む代理抗原提示B細胞として機能します。
汎白血球とインキュベートします。
T 細胞上の T 細胞受容体である TCR は、ラジ細胞上の SEB に結合し、共刺激シグナルとともに安定した細胞間結合、免疫シナプスを確立し、T 細胞の活性化につながります。
これにより、細胞内シグナル伝達経路が引き起こされ、シナプス内のシグナル伝達分子と表面受容体がクラスター化され、アクチン細胞骨格の再構成が引き
起こされます。インキュベーション後、細胞を固定して細胞構造を保存します。細胞を透過処理して細胞内標的にアクセスします。
蛍光色素標識抗CD3抗体、ファロイジン、DAPIを添加し、TCR複合体、アクチンフィラメント、およびDNAのCD3にそれぞれ結合します。
イメージングフローサイトメーターを使用して、CD3およびアクチンからの蛍光シグナルを視覚化し、SEBの存在下でシナプスでのそれらの濃縮を決定します。
まず、1ミリリットルの抽出したばかりのヒト末梢血と30ミリリットルのACK溶解バッファーを50ミリリットルの円錐形チューブで混合します。室温で8分後、チューブにPBSを充填して遠心分離洗浄し、ペレットを2ミリリットルの培地に再懸濁して摂氏37度で60分間インキュベートします。
インキュベーションの最後に、5 x 105 黄色ブドウ球菌エンテロトキシンBまたはSEBを500マイクロリットルの培地にロードまたはアンロードしたRaji細胞を個々のFACSチューブに加え、続いて650マイクロリットルの汎白血球を加えます。共培養物をスピンダウンし、ペレットを150マイクロリットルの新鮮な培地に再懸濁し、摂氏37度で45分間インキュベートします。
次に、1.5ミリリットルの1.5%パラホルムアルデヒドを加えながら、100RPMで10秒間セルを穏やかに渦にします。室温で10分後、1%BSAを添加した1ミリリットルのPBSで固定を中止し、遠心分離によって細胞を回収します。ペレットを100マイクロリットルのPBSとBSAおよび0.1%サポニンに再懸濁し、細胞サンプルを96ウェルUボトムプレートの2つの個別ウェルに加えます。
室温で15分後、プレートを遠心分離し、ペレットを50マイクロリットルのPBSとBSAおよびサポニンに再懸濁し、蛍光色素結合抗体または目的の化合物を含み、室温で暗所で30分間インキュベートします。インキュベーションの最後に、細胞を150マイクロリットルのPBSとBSAおよびサポニンで3回洗浄し、ペレットを60マイクロリットルのPBSに再懸濁します。
フローサイトメトリーで細胞をイメージングするには、分析ソフトウェアを開き、液面を確認し、装置メニューの[起動]をクリックします。次に、[ロード] をクリックし、プロンプトが表示されたらサンプルをポートにロードします。
[照明]タブで、励起レーザー出力を適切なナノメートル長に変更します。次に、チャンネル4と11のゲートを調整し、チャンネル1のエリアを調整します。
ゲーティングとレーザー出力の調整を評価するには、[表示]メニューをそれぞれのゲートに切り替え、セルとセルカップルが見えるまでゲートとレーザー出力を調整します。次に、[ファイル取得]タブで、サンプル名、取得する画像の数、およびCD3染色の適切なゲートを定義し、[取得]をクリックして取得を開始します。
本記事では、SEBを負荷したRaji細胞を抗原提示B細胞の代用として用い、T細胞の活性化を研究する方法について解説します。このプロセスでは、フローサイトメトリーを用いて、免疫シナプスの形成とT細胞受容体の結合を可視化します。
この手法により、T細胞活性化における重要な初期イベントである免疫シナプス形成の定量的な評価が可能となり、免疫調節剤の探索におけるターゲットバリデーションを支援します。イメージングフローサイトメトリーを用いてCD3およびアクチンの集積を可視化することで、TCRシグナル伝達経路を標的とするバイオ医薬品のメカニズム的なリスク低減を実現します。このアプローチは、免疫エンゲージメントの前臨床モデルにおける予測の信頼性を向上させます。
本手法は、ターゲットエンゲージメントスクリーニングからリード最適化に至るディスカバリーコンティニュアムに適合し、特に免疫調節剤やワクチンアジュバントにおいて有用です。
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最終更新:29 8月 2026