2011年9月12日
細胞の生存率には影響されていない間の電界の向きは、パルス印加中に変更されたときにエレクトロポレーションによる遺伝子導入は、約2倍に向上しています。遺伝子導入の増加は、細胞へのDNAのエントリのための有能な作られている膜面積の増加によって引き起こされる。
遺伝子電極転移(エレクトロポレーション)は、短時間で強力な電気パルスを印加することにより、細胞内に遺伝子を導入する物理的手法です。遺伝子電極転移が成功するためには、DNAと細胞膜の複合体形成、穿孔された膜を介したDNAの移行、細胞質から核へのDNAの移行、そして遺伝子発現という複数のステップが必要です。最大限の遺伝子導入効率を達成するために、さまざまな電気パルスプロトコルが用いられます。
その一つは、パルス印加中に電場方向を変更することです。本ビデオでは、すべてのパルスを同一方向に印加した場合と、電場方向を変更してパルスを印加した場合の遺伝子電極導入効率の違いを実演します。電場方向を変更した実験は、中国ハムスター卵巣細胞(CHO-K1)を用いて行われました。
以下の手順に従い、培養フラスコを用いてインキュベーター内で細胞を24時間培養します。実験当日、0.25%トリプシンEDTA溶液を用いてトリプシン処理を行い、細胞懸濁液を調製して細胞数をカウントします。細胞を4°C、1000 rpmで5分間遠心分離し、細胞ペレットをISO OSM Millerリン酸ナトリウム緩衝液で再懸濁し、細胞密度を5 million cells/mLに調整します。その後、サンプルを適切なディッシュに移します。細胞は、高電圧プロトタイプジェネレーターに接続された電極内蔵パイペットチップ内で電場にさらされます。
これらの電極により、異なる方向に比較的均一な電界を印加することが可能です。チップおよびジェネレーターは、ルアナ大学電気工学部バイオサイバネティクス研究室で開発されました。細胞懸濁液に、10 micrograms per milliliterの濃度のプラスミドE-G-F-P-N 1を添加します。
細胞とプラスミドDNAを十分に混合し、電気パルスを印加する前に、室温で2〜3分間インキュベートします。電極一体型ピペットチップに細胞懸濁液を100 µL分吸い上げます。本実験では、高電圧プロトタイプジェネレーターを用いて8回の矩形パルス列を印加し、最初のプロトコルでは異なる電場プロトコルが使用されます。
すべてのパルスは同一方向に印加されますが、2番目のプロトコルでは、電界の方向を変化させてパルスを印加します。2番目のプロトコルは、異なる方向への電気パルスの印加が可能な適切なパルスジェネレーターがある場合にのみ使用できます。パルス印加後、直ちに細胞をパイペットチップから6ウェルプレートに移し、胎児牛血清を添加してください。
サンプル容量の25%において、細胞を37 °Cで5分間インキュベートします。細胞膜の再封鎖を促すため、6ウェルプレートの各サンプルに2 mLのHAMF 12を加え、インキュベーター内の加湿5% CO2雰囲気下、37 °Cで24時間インキュベートします。遺伝子エレクトロトランスファーの効率は、パルス適用から24時間後にGFPを発現している細胞の割合として決定します。
取得ソフトウェアを用いて、蛍光顕微鏡で細胞を観察します。励起波長を488 nanometersに設定し、GFPを発現している細胞を検出するために、緑色蛍光画像に適したバンドパスフィルターを選択します。位相差像と緑色蛍光像を20倍で、少なくとも5枚ずつ取得します。
位相差像で細胞数をカウントし、緑色蛍光像でGFPを発現している細胞数をカウントします。各対応する像における全細胞数でGFP発現細胞数を除し、遺伝子エレクトロトランスフェクション効率の割合を算出します。すべてのパルスを同一方向に印加した場合と、電界方向を切り替えてパルスを印加した場合のGFP発現細胞の割合を示します。電界方向を切り替えることで、GFP発現細胞の割合が有意に増加します。
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本研究では、エレクトロポレーションによる遺伝子導入について検討し、電場方向が導入効率に及ぼす影響を明らかにしています。その結果、パルス印加中に電場方向を変更することで、細胞生存率を損なうことなく、遺伝子導入率を2倍に高められることが示されました。
エレクトロポレーション中の電場方向を最適化することで、プラスミド遺伝子の導入効率を高めることができ、初期段階のターゲット検証およびリード化合物同定のワークフローにおいて、トランスフェクション効率を向上させる非ウイルス的な戦略となります。このアプローチは、細胞生存能を損なうことなく膜透過性を拡大してDNAの進入を増やすことで、メカニズム的なリスク低減を支援し、前臨床モデルにおける予測の信頼性を向上させます。本手法により、バイオ医薬品の研究開発におけるアッセイ開発やフェノタイプスクリーニングへのアプリケーションに向けた、再現性と拡張性のある遺伝子導入が可能になります。
この手法は、ターゲットバリデーションからリード化合物の同定に至るディスカバリー・コンティニュアムに適合するものであり、細胞モデルにおいてターゲット機能を評価し、パスウェイを調節するために効率的な遺伝子導入が必要とされる場面で活用されます。