Name: バイオメディカル応用のためのアルギン酸ミクロスフェアの生成 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 33 s
Description: 学ぶアルギン酸ミクロスフェアの作製法。細胞・タンパク質の二重封入に適した多層構造の開発手法を解説。1型糖尿病治療などのバイオメディカル応用における薬物送達システムの革新に貢献する技術です。

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この研究は国立衛生研究所からの米国退役軍人局（ワシントンDC）、助成金0852048、0731201、および0854430国立科学財団（アーリントン、バージニア州）から、および助成金RO1 DK080897（ベセスダ、MD）によってサポートされていました。氏カンナは、ビル＆メリンダ·ゲイツ財団（ワシントン州シアトル）から氏エドワード·ロス博士モニカ·モヤで寛大な寄付から支援を受けた。

ここでプロトコルは多層アルギン酸マイクロビーズ（ 図1）を生成するための3つのステップの手順について説明します。まず、アルギン酸マイクロビーズ（ 図2A）が形成されている。この手順は、以下のセクション1に記載されている。細胞やタンパク質は、配信システムとして動作するために、このステップのマイクロビーズに追加することができます。次のステップでは、マイクロビーズ上に選択透過層の形成を含み、第2章で説明されています。最後のステップは、追加のアルギン酸塩層の形成を伴い、第3節で説明されています。ビーズの表面（ 図2B）の外側にこの層の形態は、移植後のシステムへの細胞応答を誘導する治療用分子（ 図2C）をカプセル化し、提供するために使用することができます。 1。アルギン酸マイクロビーズの調製<ol><li> 1mL中にLVMアルギン酸の15グラムを溶解することによって1.5％（w / v）のLVMアルギン酸溶液を調製内層アルギン酸塩溶液（25 mM HEPES緩衝DI水にある118軒のNaCl、5.6 mMの塩化カリウム、2.5 mMのMgCl 2、pH7.4に調整）。アルギン酸塩の電源が完全に透明で粘性のある溶液を形成するために溶解するまでボルテックスで混和します。注：このプロトコルは、アルギン酸マイクロカプセル内の膵島のカプセル化のための最適な条件を記述する1アルギン酸ミクロスフェアの濃度と組成は、他のアプリケーション（例えば、薬物送達、組織工学など）に注意するためのプロパティを調整するために変更することができます。膵島のカプセル化膵島microencapsulatorにロードする前にこの段階でアルギン酸塩溶液に添加することができます。 </li><li> DI水に100 mMのCaCl 2及び10mMのHEPES緩衝液に溶解し、pH7.4に調整することにより、架橋溶液（純水で22 mM CaCl 2を ）準備します。注意：このようなBr 2のような他の二価陽イオン+、Srの2 +などがアルギン酸ゲルdの性質に応じて、Ca 2 +の代わりに使用することができますesired。 </li><li>シリンジに25ゲージの針を追加することにより、2チャンネルエアジャケットアルギン酸microencapsulatorを設定し、針がエアジャケットの中央にあることを確認するために、各側にバルブを調整します。異なるゲージの針がターゲットアルギン酸マイクロビーズのサイズに応じて、このステップに使用することができます。 このステップはまた、注射器で行うことができ、microencapsulatorが使用可能であるべきではありません。シリンジにアルギン酸塩溶液を追加し、希望するマイクロビーズのサイズに基づいて、ニードルゲージを選択します。 </li><li>直接針の下に架橋溶液10 mLを入れたフラスコを置きます。溶液中で攪拌棒を配置します。 </li><li>マイクロビーズを形成するために、アルギン酸を架橋するためには、CaCl 2溶液に直接滴を注入します。連続的に攪拌しながら、少なくとも15分間硬化させるために架橋溶液中でビーズをインキュベートします。 </li><li> 15 mLの遠心チューブにビーズを転送します。 、残液を除去すると2分ごとに生理食塩水で0.2％CaCl 2で3回洗浄を行います。 </li></ol> 2。ポリ-L-オルニチンでコーティングMicroBeadsを<ol><li>生理食塩水のポリ-L-オルニチン（PLO）の0.1％（w / v）溶液3 mLを準備します。それは完全に透明な溶液を形成し、溶解するまでボルテックスでソリューションを配置します。ポリ-L-リジン（PLL）は、選択透過性と同様のレベルで、その結果このステップのためにPLOの代わりに使用できます。 </li><li> PLO溶液にアルギン酸ビーズを転送します。ポリカチオン、ポリアニオン複合体を形成し、アルギン酸塩と相互作用するPLOに十分な時間を可能にするために30分間ボルテックス上に置きます。 30分の終わりには、アルギン酸マイクロビーズ周りにはっきりと見える白いコーティングがあるはずです。 </li><li> PLOのソリューションを削除し、2分ごとに生理食塩水0.2％CaCl 2で3回洗浄を行います。 </li></ol> 3。外アルギン酸を作成するには、レイえー<ol><li>外側の層を作成するために使用される所望の濃度のアルギン酸塩溶液を準備します。 （1.1）上記のような溶液を調製する。外層のサイズは、（ 図3）を使用アルギン酸の組成および濃度の影響を受けています。 </li><li>セルストレーナーにアルギン酸ビーズを転送します。可能な限りマイクロビーズを乾燥するために、余分な溶液を吸収するためにキムワイプを使用しています。 </li><li>パラフィルムの表面にマイクロビーズを転送します。必要に応じて、例えば、ガラスあるいはプラスチック製のペトリ皿のような他の滑らかな表面は、パラフィルムの代わりに使用できます。 </li><li>アルギン酸マイクロビーズ上（3.1）で調製したアルギン酸塩溶液を転送します。アルギン酸溶液の体積は、完全にアルギン酸ビーズをカバーする必要がありますすることができます。マイクロビーズは、45分間アルギン酸塩溶液に残ってみましょう。 </li><li>マイクロビーズに結合していない過剰なアルギン酸塩溶液を削除するには、ピペットを使用しています。 </li><li>のマイクロビーズを転送22mmのCaCl 2の溶液へ。これは、別個の外側のアルギン酸塩層を形成し、その結果、マイクロビーズの周りにアルギン酸塩溶液を架橋。 </li><li> 2分ごとに生理食塩水に22 mMのCaCl 2で3回洗浄を行います。顕微鏡下でマイクロビーズを表示すると、コアのマイクロビーズの周りに形成され見られるように別個の外側のアルギン酸塩層のために許可する必要があります。 </li></ol> 4。代表的な結果<img src="/files/ftp_upload/3388/3388fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="図1"> 図1多層アルギン酸ビーズを作成する手順の概略。 Khanna らから許可を得て複製。 J BIOMEDマーテル解像度A. 11月95（2）、632から40（2010）。 <img src="/files/ftp_upload/3388/3388fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="図2"> 図2（A）と（B）アルギン酸マイクロビーズの位相コントラストイメージです。 （）マイクロビーズを示しています。後の合成工程（1.7）、（B）ステップ（3.7）の完了後に存在する別個の外側のアルギン酸塩層を表示した。 （C）外側の層にカプセル化された蛍光標識したBSA蛋白質のFITCイメージです。 Khanna らから許可を得て複製。 J BIOMEDマーテル解像度A. 11月95（2）、632から40（2010）。 <img src="/files/ftp_upload/3388/3388fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="図3"> 図は3つ。外側のアルギン酸塩層のサイズが使用アルギン酸塩の組成及び濃度に基づいて変化させることができる。我々の結果は、増加するアルギン酸塩濃度を有する外層のサイズが増加すると、LVMおよびLVGアルギン酸の両方の、ことを示し、そのLVGアルギン酸塩は、同じ濃度でLVMアルギン酸よりも厚い外層が得られます。 Khanna らから許可を得て複製。 J BIOMEDマーテル解像度A. 11月95（2）、632から40（2010）。 <img src="/files/ftp_upload/3388/3388fig4.jpg" alt="図4" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="図4"> FGF-1の図4。リリース、外側のアルギン酸塩層からの血管新生増殖因子タンパク質は、使用するLVMとLVGアルギン酸塩の濃度に基づいて変化した。 （A）と（B）％の放出を示し、（C）と（D）別の外層製剤の時間に対するFGF-1の対応する質量放出を示す。すべての初期5時間（AとC）内の条件、30日（BおよびD）までの低線量連続リリースのために展示バースト放出があります。 Khanna らから許可を得て複製。 J BIOMEDマーテル解像度A. 11月; 95（2）、632から40（2010） <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3388/3388fig4large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。

<ol><li>Darrabie, M. D., Kendall, W. F., Opara, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characteristics+of+Poly-L-+Ornithine-coated+alginate+microcapsules%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Characteristics of Poly-L- Ornithine-coated alginate microcapsules.</a> Biomaterials. 26, 6846-6852 (2005).</li>
<li>Yamagiwa, K., Kozawa, T., Ohkawa, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+alginate+composition+and+gelling+conditions+on+diffusional+and+mechanical+properties+of+calcium-alginate+gel+beads%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Chem.+Eng.+Jpn%22%5BJournal%5D)">Effects of alginate composition and gelling conditions on diffusional and mechanical properties of calcium-alginate gel beads.</a> J. Chem. Eng. Jpn. 28, 462-467 (1995).</li>
<li>Amsden, B., Turner, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diffusion+characteristics+of+calcium+alginate+gels%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Diffusion characteristics of calcium alginate gels.</a> Biotechnol. Bioeng. 65, 605-610 (1999).</li>
<li>Uriel, S., Brey, E. M., Greisler, H. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+low+levels+of+fibroblast+growth+factor-1+promote+persistent+microvascular+network+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Surg%22%5BJournal%5D)">Sustained low levels of fibroblast growth factor-1 promote persistent microvascular network formation.</a> Am. J. Surg. 192, 604-609 (2006).</li>
<li>Moya, M. L., Lucas, S., Francis-Sedlak, M., Liu, X., Garfinkel, M. R., Huang, J. J., Cheng, M. H., Opara, E. C., Brey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sustained+delivery+of+FGF-1+increases+vascular+density+in+comparison+to+bolus+administration%5BTitle%5D)+AND+%22Microvasc.+Res%22%5BJournal%5D)">Sustained delivery of FGF-1 increases vascular density in comparison to bolus administration.</a> Microvasc. Res. 78, 142-147 (2009).</li>
<li>Moya, M. L., Cheng, M. H., Huang, J. J., Francis-Sedlak, M. E., Kao, S. W., Opara, E. C., Brey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+FGF-1+loaded+alginate+microbeads+on+neovascularization+and+adipogenesis+in+a+vascular+pedicle+model+of+adipose+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The effect of FGF-1 loaded alginate microbeads on neovascularization and adipogenesis in a vascular pedicle model of adipose tissue engineering.</a> Biomaterials. 31, 2816-2826 (2010).</li>
<li>Khanna, O., Moya, M. L., Greisler, H. P., Opara, E. C., Brey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilayered+Microcapsules+for+the+Sustained-Release+of+Angiogenic+Proteins+From+Encapsulated+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Surg%22%5BJournal%5D)">Multilayered Microcapsules for the Sustained-Release of Angiogenic Proteins From Encapsulated Cells.</a> Am. J. Surg. 200, 655-658 (2010).</li>
<li>Khanna, O., Moya, M. L., Opara, E. C., Brey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthesis+of+multilayered+alginate+microcapsules+for+the+sustained-release+of+fibroblast+growth+factor-1%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+A%22%5BJournal%5D)">Synthesis of multilayered alginate microcapsules for the sustained-release of fibroblast growth factor-1.</a> J. Biomed. Mater. Res. A. 95, 632-640 (2010).</li>
</ol>

利害の衝突が宣言されません。

アルギン酸塩は藻類から抽出された、1,4 &#39;-β-D-マンヌロン酸（M）とα-L-グルロン酸（G）2,3の単位で構成されている天然の酸性多糖類である。シンプルなゲル化が発生したときに、例えばCa 2のような二価陽イオン、+、のSr 2 +、またはBa 2 +、隣接するアルギン酸塩の鎖間のイオン架橋を形成するG-モノマーと対話します。アルギン酸マイクロビーズは、線維芽細胞成長因子1（FGF-1）を含む、様々なタンパク質を提供するために利用し、神経成長因子、白血病抑制因子、血管内皮増殖因子（VEGF）、および軟骨細胞を含む細胞のカプセル化のため、肝されていますと小島。このような微粒子ポリマー系を使用することの利点は、注射を介して容易な管理を可能にする体、小粒子量の低下や反応からのタンパク質や細胞の保護、および材料の物理的特性の操作による溶質拡散の制御が含まれています。選択透過性のポリマー層で被覆されたアルギン酸ミクロスフェアは、I型糖尿病の治療のため、現在臨床試験中であ...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名前 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント（オプション） </td></tr><tr><td> Pronova純LVGアルギン酸</td><td>ノヴァ·マトリックス</td><td> 4200006 </td><td>アルギン酸製剤の様々な利用可能です。アルギン酸塩の選択は、サイズを含むマイクロビーズの終わりの特性、機械的特性、および輸送に影響を与えます。使用される組成物は、特定のアプリケーション用に最適化する必要があります。 </td></tr><tr><td> Pronova純LVMアルギン酸</td><td>ノヴァ·マトリックス</td><td> 4200206 </td><td>アルギン酸製剤の様々な利用可能です。アルギン酸塩の選択は、サイズを含むマイクロビーズの終わりの特性、機械的特性、および輸送に影響を与えます。使用される組成物は、特定のアプリケーション用に最適化する必要があります。 </td></tr><tr><td>ポリ-L-オルニチン塩酸塩</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> P2533 </td><td></td></tr></tbody></table>

バイオメディカル応用のためのアルギン酸ミクロスフェアの生成

Generation of Alginate Microspheres for Biomedical Applications

アルギン酸をベースとする材料がよいため、親水性、生体適合性、および物理アーキテクチャの生物医学アプリケーションのためにかなりの注目を集めている。アプリケーションは、細胞のカプセル化、薬物送達、幹細胞培養、組織工学の足場が含まれています。実際に、臨床試験が現在の島が、I型糖尿病の治療薬としてPLOコーティングされたアルギン酸ビーズ中にカプセル化されている実行されている。しかし、島の多数は移植後の生存率が低いことに起因する効果のために必要とされています。局所的にカプセル化されたセルの周囲に微小血管ネットワーク形成を刺激する能力は、酸素、ブドウ糖やその他の重要な栄養素の改善されたトランスポートを介して自分の可能性を高める可能性があります。線維芽細胞成長因子1（FGF-1）は、血管形成を刺激し、虚血組織中の酸素濃度を向上させることができる天然の成長因子である。それはSUSTに配信されたときにFGF-1の有効性が強化されていますainedファッションではなく、単一の大規模ボーラス投与。膵島カプセル化システムからの成長因子のローカルの長期のリリースでは、潜在的に機能的な移植の転帰を改善する、移植細胞に向かって直接血管の成長を刺激する可能性があります。この記事では、我々は、生物医学アプリケーションで使用するためのアルギン酸ミクロスフェアを調製するための手順を概説します。さらに、我々は多層アルギン酸ビーズを生成するために開発する方法を説明します。細胞は、外側のアルギン酸塩層の内側のアルギン酸コア、新生タンパク質にカプセル化することができます。この外側の層からのタンパク質の放出は、移植膵島に向かって直接ローカル微小血管ネットワークの形成を刺激するだろう。

以下のセクションでは、我々は、生物医学アプリケーションで使用するためのアルギン酸ミクロスフェアを調製するための手順を概説します。我々は、特に1型糖尿病の潜在的な治療法として細胞やタンパク質のカプセル化という二重の目的のために多層アルギン酸ミクロスフェアを作成するためのテクニックを示しています。

アルギン酸ベースの材料は、その親水性、生体適合性、および……により、生物医学的応用において大きな注目を集めています。

私はGoldie Anaです。イリノイ工科大学のDr. Eric Brasの研究室で研究を行っている学部生です。このビデオプレゼンテーションでは、生物医学工学、特に細胞および組織工学の分野におけるアルギン酸マイクロビーズの使用技術について説明します。ここで述べるすべての研究は、ウェイクフォレスト再生医学研究所のDr. Emmanuel OPAの研究室との共同研究により行われました。薬物送達および細胞封入の両方に使用するアルギン酸マイクロビーズの作製法について説明します。最後に、細胞とタンパク質の両方を封入する目的で使用可能な、当研究室で開発した多層アルギン酸マイクロカプセルの新しい作製手順を実演します。アルギン酸は、β-D-グルクロン酸とα-L-グルロン酸の残基がさまざまな配列で構成されています。アルギン酸溶液は、最も一般的に使用されるカルシウムイオン（Ca²⁺）などの多価陽イオンの存在下で架橋し、ゲルを形成します。研究者は、細胞およびタンパク質の封入に向けたアルギン酸マイクロビーズの利用について研究してきました。アルギン酸ハイドロゲルの特性は、合成条件に基づいて変化させることができ、本質的に異なる特性を持たせることが可能です。これにより、例えば放出速度論を調整することができます。アルギン酸マイクロビーズは、タンパク質のカプセル化、ドラッグデリバリー、細胞のカプセル化、そして分子ガストロノミーなどの食品科学における成分など、幅広い用途に利用されてきました。まず、内層用のアルギン酸溶液を調製します。脱イオン水に25 millimolarのHEPES、118 millimolarの塩化ナトリウム、5.6 millimolarの塩化カリウム、および2.5 millimolarの塩化マグネシウムを加え、すべての試薬が完全に溶解するように十分に振とうします。pHを生理的条件に合わせた7.4に調整します。必要濃度になるようにすべての粉末を量り取り、調製したinter allergen溶液に加えます。粉末が完全に溶解し、透明で粘性のある溶液になるまで、溶液をボルテックスミキサーで攪拌します。10 millimolarのHEIS緩衝液と100 millimolarの塩化カルシウムを脱イオン水に加えて、架橋溶液を調製します。溶液を十分に振盪し、pHを7.4に調整します。ビーカーに架橋溶液を10 milliliters加えます。アルギネートを、希望のゲージの針を装着したシリンジに移します。針を架橋溶液に対して垂直に配置し、ゆっくりと液滴を架橋溶液内に滴下して、球状のビーズを形成させます。サイズが均一なマイクロビーズを大量に作製したい場合は、2チャンネルのマイクロカプセル化装置を利用できます。アルギン酸溶液をシリンジに充填し、まずエアジャケットバルブを、次にアルギン酸ジャケットバルブを開き、架橋溶液の入ったフラスコ内に液滴を放出させます。ビーズを溶液内で15分間インキュベートします。マイクロビーズを22 millimolarの溶液で3回洗浄します。塩化カルシウムおよび生理食塩水を用いたアルギン酸マイクロカプセルは、細胞のカプセル化について広く研究されています。例えば、1型糖尿病の治療法として提案されている手法の一つに、自己細胞の拒絶反応を防ぐためにドナーの眼瞼を患者に移植する方法があります。しかし、患者は免疫系を抑制する免疫抑制剤を服用しなければなりません。アリスをビン内にカプセル化します。アルギン酸などの材料を用いれば、免疫抑制剤が不要になる可能性があります。アルギン酸微生物の周囲に添加されるポリリジン（PLO）コーティングは、半透膜として機能します。炎症反応を抑制するために、PLOコーティングの周囲にアルギン酸の薄い単分子層が添加されます。正電荷を持つPLOIは、皮肉にもアルギン酸と相互作用し、ビーズの周囲に透過選択性膜として機能するコーティングを形成します。その後、正電荷を遮蔽し炎症反応を抑制するために、PLOコーティングの周囲にアルギン酸の単分子層が作成されます。移植後、PLOを生理食塩水に溶解させて0.1%のポリL-オルニチン溶液を作成します。アルギン酸マイクロビーズにPLO溶液を加え、ボルテックスミキサーで30分間撹拌し、アルギン酸マイクロビーズがPLO溶液と十分に反応するようにします。周囲の液体を除去し、生理食塩水に調製した22 mMの塩化カルシウム溶液を用いて、2分間の洗浄を3回行います。PLOコートされたマイクロビーズにアルギン酸溶液を加え、ボルテックスで5分間混合します。0.9% 生理食塩水を用いて、未結合のアルギン酸を除去するために2分間の洗浄を3回行います。洗浄後、ビーズを塩化カルシウム溶液に入れて保存することができます。細胞移植における制限の一つは、移植後に細胞に酸素、グルコース、およびその他の必須栄養素を供給する血管系が欠如しているため、多くの細胞が死滅することです。血管新生、すなわち既存の血管から新しい血管が成長することを、線維芽細胞増殖因子1（FGF1）や血管内皮増殖因子（VEGF）などの治療用血管新生タンパク質を投与することで刺激できます。当研究室では、高用量を一度に投与するよりも、FGF1を低レベルで持続的に放出させる方が、安定した血管形成を促進することを previously に示しました。そこで我々は、従来用いられていた単なる薄い単層ではなく、かなりの厚さを持つ外層のアルギン酸層を備えた、多層構造のアルギン酸マイクロビーズを作製する新しい手順を開発しました。我々の薬物送達システムは、細胞とタンパク質を同時に封入することを目的としており、例えば、内側のコアにsを封入し、外側のアルギン酸領域にFGF oneなどの血管新生タンパク質を封入することができます。治療用タンパク質が放出されることで、移植部位に向かって新しい血管が形成され、それによって島細胞の生存率が高まります。多層構造のアレルゲンマイクロビーズは、細胞とタンパク質を同時に封入するという二つの目的を果たします。従来に使用される単層の代わりに、PLOコーティングの周囲にかなり大きな外側のアルギン酸領域を作成し、これをタンパク質封入領域として利用します。この外側のアルギン酸領域から治療用タンパク質を放出させることで、移植部位への血管新生を誘導します。これにより、理論的には開通した血液供給が確保され、封入細胞に不可欠な栄養素が分配されるため、細胞の生存率が向上します。多層アルギン酸マイクロビーズの作製手順は、前述のものと同様です。まず細胞を含むアルギン酸マイクロビーズを合成し、続いてPLOコーティングを構築します。ただし、最終ステップにおいて、外層は生理食塩水ではなく塩化カルシウム溶液中でアルギン酸を架橋させることで作製します。多層ギネットマイクロビーズを作成するには、まず溶液中のPLOコーティングマイクロビーズをセルストレーナーに移し、余分な液体を吸い取ります。ビーズをパラフィルムやペトリ皿などの平らな表面に移し、その上に外層アレルゲン溶液を滴下して45分間インキュベートします。次に、ピペットを用いて余分な外層アレルゲン溶液を取り除き、マイクロビーズを塩化カルシウム溶液に移して、アルギン酸を架橋させ外層を形成させます。2分間の洗浄を3回行います。2 mMの塩化カルシウムおよび生理食塩水溶液を用いたパネル。パネルAはギネットマイクロビーズの表面を示し、パネルBの大きな外層アレルゲン層が見られる状態と対照的である。パネルCは、外層に蛍光標識タンパク質を封入した多層アルギン酸マイクロビーズの画像である。外層のアルギン酸層の厚さは、使用するアルギン酸の組成および濃度に応じて変更することができ、これにより多層アルギン酸マイクロビーズからのFGF oneの放出プロファイルを制御できます。マイクロビーズは、外層の合成に使用する条件に基づいて変更可能です。すべての条件において、最初の4時間以内にバースト放出が認められますが、その後30日間にわたってFGF oneが継続的に放出されます。FGF1の長期的な放出は、持続的な血管新生を促進する可能性があり、これにより封入された細胞の生存能を高めることができます。以上でプレゼンテーションを終わります。本内容がお役に立てば幸いです。ありがとうございました。

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本プロトコルは、単一エマルジョン製剤ベースの簡単なマイクロ流体技術を介したポリ(乳酸-co-グリコール酸)ベースの高開口多孔質ミクロスフェア(HOPM)の製造について説明しています。これらのミクロスフェアは、組織工学や薬物スクリーニングに応用できる可能性があります。...

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