Name: 神経突起伸長アッセイのためのコラーゲンゲルのチックStatoacousticガングリオンと脊髄の外植片の解剖と文化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-12-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 8 s
Description: 学ぶ神経突起伸長アッセイ法。ニワトリの statoacoustic ガングリオンと脊髄を3Dコラーゲンゲルで培養し、成長因子の効果を評価します。神経細胞生存と軸索誘導の研究に有用です。

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この作品は、健康グラントRO1DC002756とパデュー研究財団の国民の協会によって資金を供給された。我々は、実験と数値のヘルプについてはロドニーのマクフェイルとのアドバイスをドリス呉とWieseのチャンに感謝する。

レシピチックリンガー<table border="1"><tbody><tr><td> 7.2グラム</td><td> NaClを</td></tr><tr><td> 0.23グラム</td><td>のCaCl 2 + 2H 2 O </td></tr><tr><td> 0.37グラム</td><td>塩化カリウム</td></tr><tr><td> 0.115グラム</td><td>のNa 2 HPO 4 </td></tr><tr><td> 900ミリリットル</td><td>水（組織培養グレード） </td></tr></tbody></table>注意：7.4にpHを調整する。水で1000mlに最終的なボリュームをもたらす。 10 × PBS <table border="1"><tbody><tr><td> 40グラム</td><td> NaClを</td></tr><tr><td> 1グラム</td><td>塩化カリウム</td></tr><tr><td> 7グラム</td><td>のNa 2 HPO 4 </td></tr><tr><td> 1.2グラム</td><td> KH 2 PO 4 </td></tr><tr><td> 450ミリリットル</td><td> DEPC水</td></tr></tbody></table>注意：7.4にpHを調整する。最終的にもたらす水500 mlにボリューム。ワーキング濃度（1X）は、このような18MΩ- cmの導電性と水を生成するためにミリポアのUV照射システムで得られるような組織培養グレードの水、9部で1部10X株式を希釈することによって行われます。 外植片保持培地のサグ<ul><li> L -グルタミン、10mMのHEPESをDMEM/F12 </li><li> 10％のインスリン、転送、セレン（ITS +1） </li><li> 1パーセントペン連鎖球菌</li></ul>移植片培養の培地<ul><li>外植片保持培地のサグ</li><li> 10 ng / mlのニューロトロフィン-3（NT - 3） </li><li> 10 ng / mlの毛様体神経栄養因子（CNTF） </li></ul>脊髄解剖と保持培地<ul><li> L - 15 </li><li> 10％ウシ胎児血清</li><li> 1パーセントペン連鎖球菌</li></ul> 37から38で卵をインキュベート℃を解剖のツールと​​70％エタノールでSylgard解剖皿を滅菌する。料理やツールを解剖してもUVは一晩滅菌することができる。 <ol><li>場所の1ミリリットル滅菌PBSでマイクロチューブ中のビーズ、ミックス、そしてチューブの底に沈降するビーズを待ちます。 </li><li>ビーズが定住し、PBSに再懸濁された後に上清を除去してビーズを数回洗浄する。 </li><li>室温で1時間タンパク質を精製ビーズ（PBSで希釈）またはPBSのみ（コントロール）をインキュベートする。 </li><li>コラーゲンに供されるまで1ミリリットルPBSで24ウェルプレートにPBSとストア内のビーズを洗い流す。 </li></ol> 2。 Statoacoustic神経節郭清術<ol><li> E4で卵から胚を削除し、胚膜を除去するためにヒヨコリンゲル溶液で皿に入れてください。 </li><li>冷HBSSと上向きに耳胞との側に位置胚をで満たされたSylgard ©並ぶペトリ皿の中で胚を置きます。解剖のピンを使用して皿に胚を固定。 </li><li>への2つの解剖のピンを使用して、皮膚を​​介して水平方向のカットを加えた直後腹それは蝸牛管を満たす約運河の袋、。 SAGの前部と後部垂直カットを行います。 threeカットによって接される皮膚のフラップを持ち上げて取り外す作業にピンセットや解剖ピンを使用してください。 注：SAGは、明視野、ベース照明とすぐに表示されている背袋、そしてventromedially投射と咽頭のアーチによって隠されて腹側蝸牛管とのほぼ中間、耳胞の前腹側縁に位置している。蝸牛管伸長し、その背腹寸法が徐々にハンバーガー - ハミルトンのステージ23から25 9の間にE4に増加します。 </li><li> SAGと区別するために後方に耳胞を引き出します。解剖ピンとSAGを周囲の組織を置換し、慎重に第55ピンセットを用いて胚からSAGを削除します。 SAGからの間葉組織と突出神経束の大きなチャンクを削除します。 </li><li>広口ピペットチップを使用して、ために外植片を移す24ウェル培地を保持している0.5 mlのSAGの外植片とプレート。最大4時間まで氷上または室温で植してください。 </li></ol> 3。脊髄の解剖<ol><li>卵からE6胚を取り出して、ヒヨコリンゲル液を含む皿に入れてください。頭部および胚膜を取り外します。 </li><li> Sylgardの身体©冷たい脊髄の解剖の培地を含む解剖皿を置きます。位置と実験者が直面している胚&quot;腹ダウン&quot;と尾をピン。各肢を通じて、前端を通して解剖ピンを置きます。 </li><li>ピン鉗子および/または解剖を使用して、慎重に脊髄の背側表面が見えるまで、腹側方向に移動し、皮膚や組織を取り除く。 </li><li>脊髄の全長に沿って、前方方向の後方に、解剖ピンと脊髄の背側正中線をカット。これは、別々の脊髄の左右の側面として&quot;オープンブック&quot;を作成します。 </li><li&gt;脊髄を分離し、後根神経節（DRG）を公開する、横方向に、組織を取り巻く削除。脊髄とDRGの間に解剖ピンまたは鉗子をこすることによりDRGと髄膜を取り外します。 </li><li>ピンセットで脊髄の尾最端を保持し、実験者から持ち上げ、持ち上げて本体から脊髄を削除します。残りのDRGと髄膜を取り外します。 </li><li>鉗子（または皿にそれを固定）と脊髄の一端を保持し、脊髄を二分する、腹側正中線に沿ってカットするVannasのはさみを使用してください。 </li><li>組織を固定化し、組織の長さに沿って小さな外植片（100〜500ええと長さで）をカットするVannasのはさみを使用してピンセットで植の一端を保持する。フロアプレート一つ植エッジに沿って組織の明確な肥厚として認識することができます。 </li><li> 0.5ミリリットル冷清培地で24ウェルプレートに植片を転送するために広口ピペットチップを使用してください。 fは、組織の生存能力を維持するために氷上で外植片を保持するまたは、最大4時間まで。 </li></ol> 4。神経突起の応答性をテストするために精製されたタンパク質と文化を外植片<ol><li>製造元の指示に従って、氷上で、15 mlコニカルチューブに1.5 mg / mlのコラーゲン溶液を調製します。 </li><li>コラーゲン溶液は、pH指示薬の紙を使用して、7から7.4のpHを有することを確認します。 1μlのボリュームにNaOHを加えてpHを調整します。 </li><li>広口ピペットチップと余分な液を吸引を用いて24ウェルプレートに植片を移す。複数の外植片はよくかで培養することができますが、互いに間隔を少なくとも500μmを配置する必要があります。 </li><li>外植片を含むウェルにコラーゲンの0.5 mlを追加します。ウェルの底面上に外植片を置きます。コラーゲンは、室温で重合を開始するので、次もに進む前に、完全にそれぞれの文化を設定してください。 </li><li>コラーゲンを重合するために30-45分のための暖かく、37℃のスライド上で培養プレートを置きます。コラーゲンはpolymeを持っている場合それはゲルに似ているでしょうrized。 </li><li>精製タンパク質（PBSで希釈）またはPBS（コントロール）のいずれかを添加した0.5ミリリットル暖かい移植片培養培地を追加し、37℃、5％CO 2。神経突起伸長への影響は、24時間で表示する必要があります。 注：私達は42時間に文化のSAGの外植片に同じプロトコルを使用している。 </li></ol> 5。外植体タンパク質でコーティングされたビーズと共培養方向の神経突起伸長をテストする<ol><li>外植片培養工程4.1から4.4で始まります。 </li><li>ピペットを用いて、PBSからもコラーゲン溶液と外植片を含む1〜5ビーズを移す。 </li><li>外植片の端からビーズ50から500μmの位置にピンセットを使用しています。 </li><li>コラーゲンを重合するために30-45分のための暖かく、37℃のスライド上にプレートを置きます。組織やビーズは、コラーゲンが重合として避難になることがあります。最初の5分間の組織やビーズの文化と再位置を確認してください。 </li><li> 0.5メートルを追加l各ウェルにメディアをSAGと24時間インキュベートする。 </li></ol> 6。免疫組織化学による神経突起伸長の可視化<ol><li> PBSの文化をリンスし、PBS中4％パラホルムアルデヒド中で室温で1時間固定してください。 </li><li>テフロンマイクロヘラの丸い側でゲルの端の周りにトレースすることにより、井戸の壁からゲルを離します。ウェルのゲルで免疫染色を行います。 PBSで数回すすいでください。 </li><li>一晩4 0.5ミリリットルブロッキング溶液（10％仔ウシ血清、0.1％トリトンX - 100、PBSに0.1％アジ化ナトリウム）℃でインキュベート</li><li>一晩4 0.5ミリリットル一次抗体（ブロッキング溶液で1:500に希釈した抗β-チューブリン抗体）でインキュベート℃を</li><li> PBSで数回すすいでください。一晩4（1:500に希釈のAlexa Fluor ® 488ヤギの抗マウスIgG 2bの抗体）0.5ミリリットル二 ​​次抗体でインキュベート℃にの光感受性のため、これ以降のステップから、箔に暗いまたはラップでプレートを保持する二次抗体。 </li><li> ℃のPBSで最大1週間までは4でPBSと店で数回すすいでください。 </li></ol> 7。代表的な結果<img alt="図1" src="/files/ftp_upload/3600/3600fig1.jpg" /> 図1。精製NT - 3とE4ひよこのSAGの外植片上でNT - 3でコーティングされたビーズの神経突起促進効果の代表的な結果。 ニューロンの細胞体および神経突起β-チューブリンで免疫染色し、共焦点顕微鏡で10倍目的で撮像されたのサグ。 in vitroで 24時間後、SAGの外植片は、100の存在下でより大きな神経突起伸長を表示ng / mlの精製ヒトNT - 3は、コントロール（1A）と比較して、細胞培養培地（1B）に追加。 SAGのニューロンは、NT - 3の点源が局所的に神経突起伸長を促進できることを実証するIN100 ng / mlのNT - 3を浸したビーズと共培養した。外植片は長く表示され、側面の密度が高い神経突起の伸長反対側（1D）と比較してPBS（1C）に浸したビーズと文化をコントロールと比較してビーズが直面している植。スケールバー= 200μmの。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/3600/3600fig2.jpg" /> 図2。 E6ひよこ脊髄上で精製したWnt5aやWnt5aコートビーズの神経突起促進効果の代表的な結果。 脊髄の外植片は、β-チューブリンを用いて免疫染色し、共焦点顕微鏡で画像化した。精製マウスWnt5a（400ng/ml）の存在下で成長の24時間後、ニワトリ脊髄の外植片からの神経突起伸長はWnt5a（2A）なしで培養した対照と比較して（2B）に増加した。 500 ng / mlのWnt5aに浸したビーズは、また文化（2C）を制御するために比較して神経突起伸長（2D）を推進し、脊髄の外植片の端から300から500ミクロンを置いた。類似の共培養の結果は、以前はWnt5a発現細胞8で発表された。スケールバー= 200μmの。

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</ol>

利害の衝突は宣言されません。

我々は、無血清の条件下で、ひよこから、E4のSAGとE6脊髄の外植片を細かく分析し、文化に方法を提示する。このプロシージャは、現在SAGのニューロンの生存と神経突起伸長に対する様々な分泌配位子の効果を研究する私たちのラボで使用されています。このプロトコルの小説の側面は、培養の外植片とSAGの神経突起伸長への影響を研究する成長因子を染み込ませたビーズの使用のための無血清システムの使用を含む。私たちと同様のビーズ法はひよこ脊髄10に対して記載されている。伝統的に、ビーズは、古典的な軸索ガイダンス因子とモルフォゲンと研究に使用されている。ここで、我々は、ビーズアッセイはまた、神経突起伸長（図1）上に神経栄養因子（または他の増殖因子）の影響を調査するために使用できることを示している。 異なるアプリケーション用に変更または最適化する必要がある手順の重要なステップがあります。これらの手順はまたtroubのための重要な変数です。失敗したように見えるル - 撮影の実験。最初に、ニューロトロフィン-3（NT - 3）、毛様体神経栄養因子（CNTF）およびITS（インスリン、トラ...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント </td></tr><tr><td> 機器の </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td></td><td></td><td>我々は、明視野、ベース照明とライカM80実体顕微鏡を使用してください</td></tr><tr><td>ウォーマーをスライドさせ</td><td> CS＆E. </td><td></td><td>コラーゲン重合</td></tr><tr><td>鶏の卵のインキュベーター</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 37℃/ 5％CO 2の加湿インキュベーター</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 解剖の材料 </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> Sylgard＆コピー、コーティングされたペトリ皿</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 24ウェル細胞培養プレート</td><td>コー​​ニング</td><td> 3526 </td><td></td></tr><tr><td> ＃5デュモン鉗子</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 11252〜30 </td><td></td></tr><tr><td> ＃55デュモン鉗子</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 11295〜51 </td><td></td></tr><tr><td>ステンレス製解剖用ピン</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 26002〜10 </td><td>胚ピニング、細かい解剖</td></tr><tr><td>モリア穴あきスプーン</td><td>ファイン科学ツール</td><td> 10370〜17 </td><td>胚の収穫/転送</td></tr><tr><td> 200μlの広口ピペットチップ</td><td>ドットサイエンティフィック株式会社</td><td> 118 - 96R </td><td>外植片の転送</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> E4とE6の鶏の卵</td><td></td><td></td><td> ＆nbのSP; </td></tr><tr><td>チックリンゲル液</td><td></td><td></td><td>胚の収穫</td></tr><tr><td> HBSS </td><td>シグマ</td><td> H8264 </td><td>解剖のサグ</td></tr><tr><td> L15培地</td><td>シグマ</td><td> L5520 </td><td>脊髄解剖媒体</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>アトランタバイオ</td><td> S11150 </td><td>脊髄解剖媒体</td></tr><tr><td> Vannasはさみ</td><td>世界の精密機器</td><td> 501778 </td><td>脊髄の解剖</td></tr><tr><td>&nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> コラーゲン製剤 </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ラットテールコラーゲンタイプI </td><td> BDバイオサイエンス</td><td> 354249 </td><td>移植片培養</td></tr><tr><td> 10 × PBS（滅菌） </td><td></td><td></td><td>ノイへコラーゲンをtralize </td></tr><tr><td> 1NのNaOH（滅菌） </td><td></td><td></td><td>コラーゲンを中和する</td></tr><tr><td>蒸留水（滅菌） </td><td></td><td></td><td>コラーゲンを中和する</td></tr><tr><td> pH指示薬の論文（6.0〜8.1） </td><td>ワットマン紙</td><td> 2629-990 </td><td>コラーゲンのpHを確認するには</td></tr><tr><td> 15 mlコニカルチューブ</td><td>ドットサイエンティフィック株式会社</td><td> 818 - PG </td><td></td></tr><tr><td> 500μlの広口ピペットチップ</td><td>ドットサイエンティフィック株式会社</td><td> 119 - R100 </td><td>ピペットのコラーゲンへ</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 移植片培養 </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DMEM/F12培地</td><td>シグマ</td><td> D8437 </td><td>移植片培養の培地</td></tr><tr><td>その1 </td><td>シグマ</td><td> I2521 </td><td>培地サプリメント</tD&gt; </tr><tr><td>ペニシリン - ストレプトマイシン</td><td>インビトロジェン</td><td> 15140-122 </td><td>培地サプリメント</td></tr><tr><td> CNTF（ラット） </td><td>シグマ</td><td> C3835 </td><td>培地サプリメント</td></tr><tr><td> NT - 3（ヒト） </td><td>シグマ</td><td> N1905 </td><td>培地サプリメント</td></tr><tr><td>精製マウスWnt5a </td><td> R＆Dシステムズ</td><td> 645 - WN - 010 </td><td></td></tr><tr><td>アッフィ - ゲルブルーゲルビーズ</td><td> Bio - Rad社</td><td> 153-7302 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> 免疫組織化学 </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>シグマ</td><td> P6148 </td><td>固定</td></tr><tr><td> PBS </td><td></td><td></td><td>リンス</td></tr><tr><td>トリトンX - 100 </td><td>シグマ</td><td> T9284 </td><td>ブロッキング溶液</td></tr><tr><td>ナトリウムアジド</td><td>シグマ</td><td> S8032 </td><td>ブロッキング溶液</td></tr><tr><td>子牛血清</td><td>インビトロジェン</td><td> 16170-078 </td><td>ブロッキング溶液</td></tr><tr><td>マウスモノクローナルIgG2b抗βチューブリン1 + II抗体</td><td>シグマ</td><td> T8535 </td><td>ラベルの細胞体および神経突起</td></tr><tr><td>のAlexa Fluor ® 488ヤギ抗マウスIgG2のBの抗体</td><td>インビトロジェン</td><td> A21141 </td><td> βチューブリン抗体を検出</td></tr><tr><td>テフロンマイクロスパチュラ</td><td> VWR </td><td> 57949-033 </td><td>ウェルからリリースコラーゲンゲル</td></tr></tbody></table>

神経突起伸長アッセイのためのコラーゲンゲルのチックstatoacousticガングリオンと脊髄の外植片の解剖と文化

Dissection and Culture of Chick Statoacoustic Ganglion and Spinal Cord Explants in Collagen Gels for Neurite Outgrowth Assays

鶏内耳の感覚器官はstatoacoustic神経節（SAG）ニューロンの末梢プロセスによって神経支配されています。感覚器官の神経支配は成長している軸索および/ ​​またはそれらの感覚器官のターゲット内での軌道に沿って位置する軸索ガイダンスの手がかり1と生存因子2の組み合わせによって異なります。例えば、古典的な軸索 ​​ガイダンスシグナル伝達経路、セマフォリン-ニューロピリン、との機能的な干渉が耳軸索の3の経路変更を生成。また、ニューロトロフィン-3（NT - 3）と脳由来神経栄養因子（BDNF）を含む、内耳の感覚目標で表現されるいくつかの増殖因子は、、再びSAGの軸索4の経路変更につながる、トランスジェニック動物で操作されている。これらの同じ分子は 、in vitro 5,6 でひよこのSAGの神経細胞の生存と神経突起伸長の両方を促進する。 ここで、我々は現在、Uなのin vitroの方法を説明し、実証既知のようなWntsなどのモルフォゲンだけでなく、SAGの神経突起伸長と神経細胞の生存を促進するための重要な成長因子を含む可溶性タンパク質、にひよこのSAGの神経突起の応答性をテストするために歌う。このモデルシステムを使用して、我々は、分泌配位子は、SAGのニューロンの生存と神経突起伸長に及ぼすことができる効果について結論を出すと思っています。 SAGの外植片は、胎生4（E4）で解剖し、24時間無血清条件下での三次元コラーゲンゲル内で培養されています。最初に、神経突起の応答性は、タンパク質含有培地で培養外植片によってテストされます。その後、分泌される配位子の点源が神経突起伸長に対する指向性の影響を持つことができるかどうか尋ねるために、外植片は、タンパク質でコーティングされたビーズと共培養し、局所的に伸長を促進または抑制するためにビーズの能力についてアッセイされています。我々はまた、E6脊髄の外植片の解剖のデモ（プロトコル7を変更）し、文化が含まれています。我々は日常的にタンパク質とタンパク質に浸したビーズの生物活性を確認するために、脊髄の外植片を使用し、SAGの外植片と同一の培養条件下で、ニワトリ組織で種の交差反応性を確認する。 in vitroアッセイこれらは、特にin vivoでの研究を実行する前に、迅速にSAGの神経細胞に栄養（生存）または熱帯（方向性）効果を発揮する分子をスクリーニングするのに便利です。また、この方法は高いニューロンの生存8で、無血清条件下での個々の分子のテストが可能。

我々はニワトリE4 statoacoustic神経節とE6脊髄の外植片を細かく分析し、文化に方法を示しています。外植片は、24時間3Dコラーゲンゲル中での無血清条件下で培養される。神経突起の応答性は、成長因子添加培地および蛋白質でコーティングされたビーズを使用してテストされています。

神経突起伸長アッセイのためのコラーゲンゲルのチックStatoacousticガングリオンと脊髄の外植片の解剖と文化

鶏の内耳の感覚器は、前庭蝸牛神経節（SAG）ニューロンの末梢突起によって神経支配されています。感覚器の神経支配は...

本実験の全体的な目的は、培地にさまざまな成長因子を添加した際に、培養した前庭蝸牛神経節ニューロンにおける神経突起の伸展を評価することです。まず、胚から前庭蝸牛神経節および対照群の脊髄を摘出し、培養用のX外植片を作成します。次に、全体的な伸展をテストするための可溶性タンパク質、または方向性のある伸展をテストするためのタンパク質コーティングビーズとともに、X外植片をコラーゲン内に配置します。次に、X外植片を抗β-tubulinで標識し、共焦点顕微鏡で観察します。神経節から伸展する神経突起を視覚化することで、分泌リガンドがニューロンの生存および神経突起の伸展に及ぼす影響を明らかにします。本手法は、感覚器への神経支配が進む過程において、どのような分子が耳神経ニューロンの生存や軸索誘導に重要であるかという、聴覚研究分野における重要な問いへの回答に寄与します。本手順を開始するために、ビーズを1 mLの滅菌PBSと共にマイクロチューブに入れ、十分に混合します。その後、ビーズがチューブの底に沈降するまで待ちます。次に、ビーズの沈降後に上清を除去し、PBSで再懸濁することでビーズを洗浄します。その後、ビーズを精製タンパク質、またはコントロールとしてPBSのみの中で室温で1時間インキュベートし、次いでビーズをPBSで洗浄します。最後に、コラーゲンに配置するまで、1 mLのPBSを入れた24ウェルプレートに保存します。このステップで、卵から胚を取り出します。E4（胚発生4日目）に、胚を雛用リンガー液を入れたディッシュに入れ、胚膜を除去します。次に、胚をシガレットフィルターを敷いたペトリ皿に置きます。冷たいHBSSを用いて、耳胞が上を向くように胚を横向きに固定します。次に、解剖ピンを用いて胚をディッシュに固定します。その後、2本の解剖ピンを使用し、odo cystの腹側縁に沿って皮膚を水平に切開します。続いて、SAGの前方および後方を垂直に切開します。odo嚢を後方に引っ張ってSAGから分離させ、解剖ピンでSAG周囲の組織をずらし、55番ピンセットを用いて胚からSAGを慎重に摘出します。続いて、SAGから間充織組織の大きな塊や突出した神経束を取り除きます。その後、口径の広いピペットチップを用いて、X説明片を0.5 millilitersのSAGX説明片保持培地が入った24ウェルプレートに移します。x explanは氷上または室温で最大4時間まで保存してください。まず、E6胚を卵から取り出し、ひよこリンガー液を入れたディッシュに置きます。次に、頭部と胚膜を除去します。体を冷たい脊髄解剖培地を入れたシガー型解剖皿に配置し、胚を腹側を下にしてピンで固定します。次に、各肢と前端に解剖ピンを刺します。ピンセットまたは解剖ピンを用いて、脊髄の背側表面が見えるまで腹側方向へ慎重に皮膚と組織を除去

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Neuroscience

神経科学

このビデオは利用してニワトリ胚脊髄の神経細胞の遺伝的に定義されたグループの軸索経路を可視化する方法を示しています...

活用チック神経管の神経細胞の遺伝的に定義されたグループの軸索経路の解読卵のエレクトロポレーション

このアッセイは、交連軸索の向きを変更、シグナル伝達分子、ここに骨形成タンパク質7（BMP7）の能力を評価する。胚の背側脊髄の外植片は、COS細胞の分泌候補増殖因子の集合体に隣接して培養する。外植片の中で成長しているReoriented交連軸索は、免疫組織化学により可視化。...

胚脊髄交連軸索アンテナの向きに拡散性のシグナル伝達分子の能力を検定する

中脳ドーパミン系と線条体からの外植片は、のためにコラーゲンマトリックスアッセイで使用されている...

三次元コラーゲンマトリックスアッセイにおけるマウスのドーパミンと線条体片の解剖と文化

このビデオは、内耳から螺旋神経節外植片を分離し、それらを多電極アレイ上でコルチ器官と共培養するプロセスを示しています。螺旋神経節は慎重に抽出され、より小さな組織切片または外植片に切片化されます。これらの外植片は、多電極アレイの活性領域で培養され、ニューロンプロセスの伸長を促進します。...

多電極アレイ上でのマウススパイラル神経節ニューロン外植片の培養

このビデオでは、コラーゲンと非反応性グリースを使用して3コンパートメントの細胞培養システムを構築する方法を示します。このシステムは、神経膠腫細胞と軸索の間の相互作用をリアルタイムで観察するために使用されます。...

神経細胞培養のためのコラーゲン被覆コンパートメント培養皿の調製

このビデオは、後根神経節外植片とシュワン細胞の共培養モデルを示しています。共培養条件では、アスコルビン酸はシュワン細胞の髄鞘形成型への分化を促進します。ミエリン化シュワン細胞は、軸索を複数回包み込み、神経機能に不可欠なミエリン鞘を形成します。...

ニューロン髄鞘形成のための背根神経節外植片とシュワン細胞の共培養

ここでは、SCが伸びる軸索に沿って開発することができますているシュワン細胞（SC）の遊走アッセイを記述します。...

成長中の軸索に沿ってマウスのシュワン細胞の発達を分析する

細胞培養モデルは、環境条件を詳細に制御を提供し、したがって、神経細胞生物学の多くの側面を解明するための強力なプラットフォームを提供します。私たちは、隔離解離、およびニワトリ胚の培養感覚ニューロンために、迅速な安価で、かつ信頼性の高い方法を記載する。基質の調製および免疫細胞化学の詳細も提供される。...

ニワトリ胚から解離感覚ニューロンの単離および培養

私たちは、ニューロンの応答プロファイルを研究し、刺激パラメータを最適化するために、多電極アレイ上で一次マウススパイラル神経節ニューロン外植片を培養するためのプロトコルを提示します。このような研究は、人工内耳のニューロン電極インターフェースを改善して、患者の聴覚とデバイスのエネルギー消費に利益をもたらすことを目的としています。...

マルチ電極アレイ上のらせん神経節ニューロン外植片培養と電気生理学

ひよこ毛様体神経節(CG)は副交感神経系の一部である。ひよこCGニューロンの神経細胞培養は、神経筋相互作用の研究において有効な細胞モデルであることが示された。我々は、ひよこ胚からのCGニューロンの解剖、解離およびインビトロ培養のための詳細なプロトコルを記述する。...

チラリア性神経節ニューロンの分離と培養

後根神経節とシュワン細胞の共培養系では、末梢神経系の髄鞘形成を研究することができます。このモデルは、末梢髄鞘形成を観察および定量化し、ミエリン鞘に対する目的の化合物の影響を研究するための実験的機会を提供します。...

ラット背根神経節外植片とシュワン細胞の共培養における末梢軸索のin vitro髄鞘形成

学ぶ神経突起伸長アッセイ法。ニワトリの statoacoustic ガングリオンと脊髄を3Dコラーゲンゲルで培養し、成長因子の効果を評価します。神経細胞生存と軸索誘導の研究に有用です。

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