Name: 脾臓の生体顕微鏡検査：寄生虫モビリティと血流の定量的解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-14T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 36 s
Description: 学ぶ脾臓の生体顕微鏡検査法。マラリア原虫の動態と血流をGFPトランスジェニック寄生虫を用いて定量的に解析し、赤脾髄における寄生虫の移動性と血管血流を測定する手法を解説します。

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私たちはA.ボッシュ（コンフォーカルユニット、CCIT - UB、IDIBAPS）に、GFPトランスジェニック原虫の寄付のためにJ.バーンズに、マラリア原虫の生体顕微鏡で初期訓練と継続的な入力のためのS. GraeweとV. Heusslerに特に感謝しています画像解析と技術支援のための定量化とP. Astolaへの支援のための。我々は、R.のトウスとビデオ制作のためのI.のCaraltに感謝。 MFは、カタルーニャの一般性から大学院生フェローシップの受賞者です。 HAPはICREAの研究教授である。 HAPの実験室での作業は、民間財団セレックス（カタルーニャ、スペイン）により、科学とイノベーションのスペイン省が、補助金協定Nの下で欧州共同体のセブンス枠組み計画（FP7/2007-2013）° 242095によって資金を供給される（ SAF2009 - 07760）。

<ol><li>Amino, R., Menard, R., Frischknecht, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+of+malaria+parasites--recent+advances+and+future+directions%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging of malaria parasites--recent advances and future directions.</a> Curr. Opin. Microbiol. 8, 407-414 (2005).</li>
<li>Heussler, V., Doerig, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+enters+parasitology%5BTitle%5D)+AND+%22Trends.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging enters parasitology.</a> Trends. Parasitol. 22, 192-195 (2006).</li>
<li>Amino, R., Thiberge, S., Blazquez, S., Baldacci, P., Renaud, O., Shorte, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+malaria+sporozoites%5BTitle%5D)+AND+%22in+the+dermis+of+the+mammalian%22%5BJournal%5D)">Imaging malaria sporozoites.</a> in the dermis of the mammalian. 2, 1705-1712 (2007).</li>
<li>Gueirard, P., Tavares, J., Thiberge, S., Bernex, F., Ishino, T., Milon, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+the+malaria+parasite+in+the+skin+of+the+mammalian+host%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Development of the malaria parasite in the skin of the mammalian host.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 107, 18640-18645 (2010).</li>
<li>Sturm, A., Amino, R., van de Sand, C., Regen, T., Retzlaff, S., Rennenberg, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manipulation+of+host+hepatocytes+by+the+malaria+parasite+for+delivery+into+liver+sinusoids%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Manipulation of host hepatocytes by the malaria parasite for delivery into liver sinusoids.</a> Science. 313, 1287-1290 (2006).</li>
<li>Gruring, C., Heiber, A., Kruse, F., Ungefehr, J., Gilberger, T. W., Spielmann, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+host+cell+modifications+of+Plasmodium+falciparum+blood+stages+in+four+dimensions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">Development and host cell modifications of Plasmodium falciparum blood stages in four dimensions.</a> Nat. Commun. 2, 165-165 (2011).</li>
<li>Martin-Jaular, L., Ferrer, M., Calvo, M., Rosanas-Urgell, A., Kalko, S., Graewe, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain-specific+spleen+remodelling+in+Plasmodium+yoelii+infections+in+Balb%2Fc+mice+facilitates+adherence+and+spleen+macrophage-clearance+escape%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Strain-specific spleen remodelling in Plasmodium yoelii infections in Balb/c mice facilitates adherence and spleen macrophage-clearance escape.</a> Cell. Microbiol. 13, 109-122 (2011).</li>
<li>Linden, M. vander, R, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Plasmodium+berghei+reference+line+that+constitutively+expresses+GFP+at+a+high+level+throughout+the+complete+life+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biochem.+Parasitol%22%5BJournal%5D)">A Plasmodium berghei reference line that constitutively expresses GFP at a high level throughout the complete life cycle.</a> Mol. Biochem. Parasitol. 137, 23-33 (2004).</li>
<li>Cormack, B. P., Valdivia, R. H., Falkow, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FACS-optimized+mutants+of+the+green+fluorescent+protein%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">FACS-optimized mutants of the green fluorescent protein.</a> 173, 33-38 (1996).</li>
<li>Dunn, K. W., Sandoval, R. M., Kelly, K. J., Dagher, P. C., Tanner, G. A., Atkinson, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+studies+of+the+kidney+of+living+animals+using+multicolor+two-photon+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Cell.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Functional studies of the kidney of living animals using multicolor two-photon microscopy.</a> Am. J. Physiol. Cell. Physiol. 283, C905-C916 (2002).</li>
<li>Zhong, Z., Petrig, B. L., Qi, X., Burns, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+measurement+of+erythrocyte+velocity+and+retinal+blood+flow+using+adaptive+optics+scanning+laser+ophthalmoscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Opt.+Express%22%5BJournal%5D)">In vivo measurement of erythrocyte velocity and retinal blood flow using adaptive optics scanning laser ophthalmoscopy.</a> Opt. Express. 16, 12746-12756 (2008).</li>
<li>Miller, M. J., Wei, S. H., Parker, I., Cahalan, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+imaging+of+lymphocyte+motility+and+antigen+response+in+intact+lymph+node%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Two-photon imaging of lymphocyte motility and antigen response in intact lymph node.</a> Science. 296, 1869-1873 (2002).</li>
<li>Bowdler, A. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBowdler%2C+AJ+%22The+complete+spleen%22">The complete spleen</a>. , Totowa. Humana Press. (2002).</li>
<li>Grayson, M. H., Hotchkiss, R. S., Karl, I. E., Holtzman, M. J., Chaplin, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravital+microscopy+comparing+T+lymphocyte+trafficking+to+the+spleen+and+the+mesenteric+lymph+node%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart.+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Intravital microscopy comparing T lymphocyte trafficking to the spleen and the mesenteric lymph node.</a> Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 284, H2213-H2226 (2003).</li>
<li>Khandoga, A. G., Khandoga, A., Reichel, C. A., Bihari, P., Rehberg, M., Krombach, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+and+quantitative+analysis+of+leukocyte+directional+migration+and+polarization+in+inflamed+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS.+One%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging and quantitative analysis of leukocyte directional migration and polarization in inflamed tissue.</a> PLoS. One. 4, 4693-4693 (2009).</li>
<li>Weiss, L., Geduldig, U., Weidanz, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+splenic+control+of+murine+malaria%3A+reticular+cell+activation+and+the+development+of+a+blood-spleen+barrier%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Anat%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of splenic control of murine malaria: reticular cell activation and the development of a blood-spleen barrier.</a> Am. J. Anat. 176, 251-285 (1986).</li>
<li>Swirski, F. K., Nahrendorf, M., Etzrodt, M., Wildgruber, M., Cortez-Retamozo, V., Panizzi, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+splenic+reservoir+monocytes+and+their+deployment+to+inflammatory+sites%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Identification of splenic reservoir monocytes and their deployment to inflammatory sites.</a> Science. 325, 612-616 (2009).</li>
<li>Grayson, M. H., Chaplin, D. D., Karl, I. E., Hotchkiss, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Confocal+fluorescent+intravital+microscopy+of+the+murine+spleen%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Confocal fluorescent intravital microscopy of the murine spleen.</a> J. Immunol. Methods. 256, 55-63 (2001).</li>
<li>Bajenoff, M., Glaichenhaus, N., Germain, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblastic+reticular+cells+guide+T+lymphocyte+entry+into+and+migration+within+the+splenic+T+cell+zone%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Fibroblastic reticular cells guide T lymphocyte entry into and migration within the splenic T cell zone.</a> J. Immunol. 181, 3947-3954 (2008).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

このげっ歯類のマラリアモデルにおける脾臓の生体顕微鏡検査の実装は、これまで技術的な考慮事項に&quot;ブラックボックス&quot;が原因と考えられているこの器官を通じて寄生虫の動的な経過を調査の可能性を開いた。ここでは、主要な努力は、単一および人口のレベルで異なる寄生虫の行の比較分析を可能にする定量的手法を適応する置かれた。マラリア3,5の前にイメージングされていた他の組織や細胞とは対照的に、イメージング脾臓を通じてpRBCsの通過が考慮臓器の三次元性と区分を取る必要がある、高速および低速の異なる循環の存在フラックス13と同様に急速な赤血球速度。この目的で、オンラインで利用可能なImageJのソフトウェアを使用して、特定の方法論はpopulatioで線間の単一の寄生虫のトラッキング、モビリティの分析と比較を可能にするために開発されたn個のレベル。しかし、このコンテキストで単一の寄生虫の同定と追跡を解決する自動ソフトウェアのアプリケーションはまだ必要です。注目すべきは、寄生虫のモビリティを記述するために使用されるパラメータは、以前はリンパ球動員およびin vivoで <sup...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名前 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント </td></tr><tr><td>ライカTCS - SP5共焦点顕微鏡</td><td>ライカマイクロシステムズ、ハイデルベルク、ドイツ</td><td> TCS - SP5シリアル番号。 5100000419 </td><td></td></tr><tr><td>ケタミン（Ketolar 50 mg / ml）を</td><td>ファイザー</td><td> 631028 </td><td></td></tr><tr><td>ミダゾラムの15 mg / 3ミリリットル</td><td> Normon </td><td> 838193 </td><td></td></tr><tr><td>テキサスレッドコンジュゲートさ7万MWデキストラン、 </td><td>分子プローブ</td><td> D1830 </td><td></td></tr><tr><td>フルオレセインイソチオシアネート、異性体I（FITC） </td><td>シグマ</td><td> F7250 </td><td></td></tr><tr><td>ヘキスト33342 </td><td>シグマ</td><td> H1399 </td><td></td></tr><tr><td>ギムザ染色</td><td>シグマ</td><td> GS1 </td><td>ワーキングソリューションは、蒸留水で10％です。 </td></tr><tr><td>スーパー接着剤- 3ロックタイト</td><td>ロックタイト</td><td> 9975-0880 </td><td></td></tr></tbody></table>

脾臓の生体顕微鏡検査：寄生虫モビリティと血流​​の定量的解析

Intravital Microscopy of the Spleen: Quantitative Analysis of Parasite Mobility and Blood Flow

実験的なげっ歯類のマラリアモデルにおける生体顕微鏡の出現は、寄生虫-宿主相互作用の1,2の知見に大きな進歩を可能にした。このように、前赤血球段階でマラリア原虫のin vivoイメージングで皮膚のリンパ節3、皮膚の4の寄生虫の完全な開発、および移行を確保するために、肝細胞由来のmerosomeの形成に寄生虫のアクティブな入り口を明らかにしたと血流5にメロゾイト放出。また、赤血球内の個々の寄生虫の開発は、最近の4Dイメージングを使用して文書化し、マラリア6のタンパク質輸送上の私たちの現在のビューに挑戦されています。従って、生体内イメージングは根本的にマラリア原虫の開発における重要なイベントに関する我々の見解を変更しました。残念なことに、脾臓、主要なリンパ器官を通じて、マラリア原虫のダイナミックなパッセージの研究は、絶妙に感染した赤のBをクリアするように適応lood細胞は、技術的な制約のために不足している。 Balb / cマウスにおけるマラリア原虫yoeliiのマウスモデルを用いて、我々は、脾臓の生体内イメージングを実施し、中に赤い果肉の繊維芽細胞由来の障壁の細胞にそれと寄生された赤血球の付着（pRBCs）の差動リモデリングを報告している非致死的な寄生虫ラインP.yoelii 17倍の感染は、P.yoelii 17XL致死寄生虫の7行目で感染することに反対した。これらの結論に到達するには、ImageJのフリーソフトを使用して、特定の方法論は、シングルpRBCsの高速三次元運動の特性評価を可能にするために開発されました。このプロトコルを用いて得られた結果は、脾臓の寄生虫の速度、方向性と滞留時間を決定する生体内での遵守に取り組むすべてのパラメータを許可する。さらに、我々は、血流の生体顕微鏡を用いて定量化し、差を使用するための方法論を報告する脾臓の複雑な微小構造への洞察を得るためにferent着色剤。 倫理の文 すべての動物実験は、バルセロナCEEA - UB（：5429プロトコルなしDMAH）の大学の動物実験のために倫理委員会で承認されたガイドラインとプロトコルに準拠して、バルセロナ大学の動物施設で実施した。年齢の6-8週の雌BALB / cマウスはチャールズリバー研究所から入手した。

我々は、GFPトランスジェニックマラリア原虫を用いて脾臓の生体顕微鏡検査を実施するための方法およびこの器官内の寄生虫のモビリティと血流​​の定量化を示す。

実験的なげっ歯類マラリアモデルにおける生体内イメージング（イントラバイタル顕微鏡法）の登場により、寄生虫と宿主の相互作用に関する知見が大きく進展した 1,2。

本手順では、脾臓を通過する寄生虫のダイナミクスを評価するための定量的生体内顕微鏡アプローチについて解説します。げっ歯類マラリアモデルにおいて、GFP導入トランスジェニック寄生虫に感染させたマウスを準備し、脾臓の生体内顕微鏡観察を行います。脾静脈へのカニュレーションにより、生体内染色の注入が可能になります。実験中、脾臓のさまざまな領域を移動する蛍光細胞をイメージングします。赤脾髄の三次元的な緩徐区画における寄生虫の移動性を記述する理論モデルを提供し、血管の血流を算出します。これらのパラメータを用いて、2つのPULE系統における脾臓のダイナミクスを比較しました。皆さん、こんにちは。私の名前はNando El Portilloです。私の研究室における主要な研究課題の一つは、マラリアにおける脾臓の役割を解明することです。脾腫はこの疾患の顕著な特徴の一つですが、技術的および倫理的な問題があるため、この器官の研究に取り組むことは非常に困難です。そこで私たちは、寄生虫の動的な通過を観察し、この現象を定量化することを可能にする技術を導入しました。これがLorenaとMIがこれらのプロトコルで説明する内容です。この研究は、ドイツのハンブルク大学のDr.LerのグループおよびここHospital ClinicのDr.Maria Kboのグループとの共同研究として一部実施されており、found fion Cellexおよびministerial CIAからの一般助成を受けています。感染は、致死性または非致死性のGFP寄生虫を10%の寄生率でドナーMに感染させることで開始します。寄生虫を確認するには、マウスの尾静脈から少量の血液を採取し、顕微鏡標本として展延させます。GIMsを用いた染色用スライドを作成します。溶液を用いることで、乾燥後に感染した赤血球を可視化できます。血液塗抹標本をMethanolで2分間固定し、GIMs溶液を滴下して20分間インキュベートします。スライドを水道水で洗浄して乾燥させ、100倍油浸対物レンズを備えた光学顕微鏡を用いて、全赤血球に対する感染赤血球（pbcs）の割合を算出します。ドナーマウスの尾静脈血から得た致死性または非致死性の寄生虫をPBSで希釈し、マウスに感染させます。感染後3日目に末梢血寄生率が1%に達するように、マウス1匹あたり50万個の寄生虫を腹腔内に注入して投与量を調整します。あるいは、コントロールとしてFITC標識赤血球を使用することも可能です。マウスから1 mLの動脈血を採取し、EDTA含有PBSで遠心分離してペレットを洗浄する。その後、FITC溶液で再懸濁し、穏やかに攪拌しながら暗所で2時間インキュベートする。その後、遠心分離によって上清を除去し、十分に洗浄する。これをコントロールマウスに注入して末梢血中の平均濃度を1%にし、in vivo実験に進む。こんにちは、mijaです。生体内で脾臓をイメージングするには、脾臓を露出させるために動物に小さな外科的処置を行う必要があります。この手法は、Worker Heisler研究室のStephanie GRから学びました。彼女に感謝するとともに、ここからはその手順について説明します。感染マウスのイメージングは、両系統ともにパラサイト率が1%となる感染後3日目に実施しました。処置中はマウスを麻酔状態で維持し、温度を管理してください。眼を乾燥から保護し、物質の静脈内投与を容易にするため、処置を開始する前に足底を刺激してマウスが完全に麻酔状態にあることを確認してください。実験の過程で、マウスの尾静脈にカニューレを留置し、カニューレを構築します。チューブの一端に小さな針を挿入し、もう一端にアプリケーターを装着します。気泡を取り除きながら生理食塩水でカニューレを満たし、溶液がカニューレ内を正しく流れることを確認してください。尾の側静脈をカニュレーションします。尾の付け根を軽く絞めて、静脈の視認性を高めます。カニューレの先端を静脈内に挿入します。血液が現れれば、針が適切に配置されたことを示します。適切でない場合は、静脈の上流でカニュレーションをやり直し、その後、接着剤とテープを用いてカニューレを尾に固定します。動物の左背側の皮膚と筋肉を小さく切開し、脾臓の下部を露出させます。呼吸による動きが少ない位置に脾臓を配置し、表面にPBSを塗布してマウスの毛を取り除き、湿潤状態を維持します。可視化させるため、カバースリップで脾臓を密封します。こんにちは、Lorenaです。本プロトコルでは、GFP導入遺伝子を持つ寄生虫を用いることで、脾臓内におけるPULI寄生虫の移動を可視化します。なお、この寄生虫はドレクセル大学のJames Burnes氏より提供されたものです。蛍光標識された寄生虫の移動をイメージングすることで、致死性株と非致死性株の間で行動に違いがあるかを確認することができます。生体顕微鏡実験は、温度制御機能付きインキュベーションシステムと63倍グリセロール浸液対物レンズを備えたLeicaマルチフォートン顕微鏡を用いて行いました。動物を顕微鏡のステージ上に置き、カバーガラスを介して脾臓を対物レンズ側に向けて配置します。まず最初に。低倍率で脾臓を可視化することで、この器官の微小循環構造の全体像を把握することができます。自己蛍光組織を用いて脾臓にピントを合わせると、GFP発現寄生虫が脾臓のさまざまな領域を通過して移動する様子が観察されます。こんにちは。バルセロナ大学の科学技術センターのMaria Alboです。ここでは、脾臓の生体内イメージングを行います。感染した赤血球の血流と可動性を研究するため、共焦点顕微鏡を使用します。この顕微鏡にはレゾナントスキャナーが搭載されており、臓器の動きによる影響を回避するために非常に有用な高速イメージングが可能です。また、これは視覚範囲を選択できるスペクトル顕微鏡です。超高速でイメージングを行うため、2種類のフルオレセイン標識と反射光を同時に取得します。RBC、反射、コントラスト、およびVidal染色の助けを借りて、脾臓の微小血管を可視化するための異なる領域を選択します。ここでは、Vidal顕微鏡とImageJソフトウェアを用いて、赤脾髄の三次元網状構造における寄生虫の動きを追跡し、血管血流内での寄生虫の可動性を測定する方法について説明します。高速スキャニングモードを使用して、5つのZ深さで画像を取得してください。単一の蛍光細胞のトラッキングを容易にするため、画像スタックをZコード化されたカラームービーに変換します。詳細な情報はテキストに記載されています。X、Y、Z、およびT座標を用いて、各ビデオの奥行きにおける異なる粒子の経時的な追跡を行います。方向性、平均速度、滞在時間などの移動パラメータを計算し、分布マップとして的に表示することで、菌株集団間の比較分析が可能になります。デキストリンなど、サポートテーブルに記載されているいくつかの蛍光分子を全身投与することで、脾臓内の血管流をイメージングできます。そして、内因性赤血球の反射コントラストを用い、血管をレーザースキャンの方向と水平に配置し、強化ライン平均処理（enhanced Line average）を適用して、中心線血流をスキャンします。これらの画像において、移動する細胞によって生じるストリークを用いて血流を算出します。変動を補正するため、異なる直径の血管および心周期全体にわたる血管の画像を撮影します。脾臓は長らくマラリア研究におけるブラックボックスと考えられてきましたが、本研究では、この臓器における寄生虫感染と血流のダイナミクスに関する知見を得るための定量的な生体内顕微鏡アプローチを開発し、感染赤血球の脾臓へのin vivoでの粘着性などの重要な生物学的課題に取り組むことを可能にしました。ありがとうございました。

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JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

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クローズ頭蓋窓を使用してマウス脳の微小循環の生体顕微鏡

このビデオは、骨髄由来マクロファージ(BMM)の寄生虫の細胞内増殖を定量化するアッセイを示しています。マクロファージ細胞は、リーシュマニアの運動性侵襲期と非運動性の浸潤期にそれぞれ感染し、メタサイクリック前胸茎と無形成性に浸潤します。寄生虫はマクロファージに侵入し、寄生虫の液胞に内在化され、内部で増殖します。細胞内寄生虫の増殖は、マクロファージと寄生虫核を蛍光染色した上で顕微鏡を用いて定量化されます。...

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この記事では、画像取得と分析のための特定の方法論と組み合わせて、生体内顕微鏡イメージングを使用して、マウスの肝臓血管系の個々の血管内の血流速度の動的測定と定量化の詳細な方法について報告します。...

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この簡略化されたマウスの腸間膜静脈の生体内顕微鏡検査は、白血球-内皮および血小板-白血球の相互作用を観察するためのさまざまな炎症モデルで使用できます。...

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ヒトマラリア寄生虫に対するげっ歯類マラリア寄生虫のライフサイクルと生物学の顕著な類似性により、げっ歯類マラリアモデルはマラリア研究に欠かせないものとなっています。ここでは、野生型およびトランスジェニックげっ歯類マラリア種の表現型分析に用いられる最も重要な技術のいくつかを標準化した。...

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細胞内マクロファージの内部成長の定量化は高速とリーシュ マニア原虫の病原性を評価するための信頼性の高い方法です。

学ぶ脾臓の生体顕微鏡検査法。マラリア原虫の動態と血流をGFPトランスジェニック寄生虫を用いて定量的に解析し、赤脾髄における寄生虫の移動性と血管血流を測定する手法を解説します。

脾臓の生体顕微鏡検査：寄生虫モビリティと血流​​の定量的解析

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