Name: 急性上皮単純ヘルペスウイルスI型感染の ex vivo器官角膜モデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 55 s
Description: 学ぶウサギおよびヒト提供者由来角膜を用いた単純ヘルペスウイルスI型のex vivo感染モデル構築法。従来の単層培養より生理学的妥当性が高く、ヘルペス角膜炎の病態研究に有用です。

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デラウェア州谷のライオンズ·アイバンクのサポートは、この仕事のための非常に貴重でした。 ICP8に対する一次マウスモノクローナル抗体は、デビッドKnipe（ハーバード大学医学部）から親切な贈り物だった。我々はまた、役立つ議論や専門知識のために博士スティーブンジェニングス（医学ドレクセル大学カレッジ）とピーターLaibson（ウィルズ眼研究所）に感謝。

全ての試薬および機器は滅菌購入したか、前の手順に滅菌した。この記事は、事前除核目で始まるex vivoでのモデルを設定する手順について説明します。私たちの実験では、若い（8-12週）アルビノウサギ（PEL-FREEZバイオ、ロジャーズ、アーカンソー州）からの新鮮な全体の眼球を使用しています。加えて、我々は地元のアイバンクから得られたヒト角膜を使用しています。摘出を自分で行う場合は、手順中に角膜または角膜輪部に損傷を与えないように注意してください。ウサギ摘出プロトコルは別の場所で2見つけることができます。 パート1：角膜強膜ボタンの切除<ol><li> PBSでガーゼの狭いストリップを濡らし、手順の間にそれを保持促進するために眼球のまわりでそれを包む。 </li><li>約0.5〜30cm離れ縁から、強膜に切開接線を作るために鋭いメスを使用してください。 </li><li>切開を延長する鋭いはさみを使用してCを完全に切除するorneoscleralボタン。 </li><li>角膜強膜ボタンが切り離されると、鉗子で強膜の縁を押しながら、絞りを離れていじめる。内皮の損傷や角膜に過度のストレスをかけることは避けてください。 </li></ol>パート2：器官型培養角膜への導入<ol><li>植した角膜は非必須アミノ酸（1X）、L-グルタミン（2mM）、​​ペニシリン（200単位/ ml）およびストレプトマイシン（200μg/ ml）のを補足した最小必須培地（MEM）中で培養される。必要に応じて、例えばアンホテリシンなどの抗真菌剤は、添加することもできる。 </li><li> 55℃で培養液中の1％アガロース溶液を調製し、それを準備完了状態に保つ</li><li>徹底的にペニシリン（200 U / ml）およびストレプトマイシン（200μg/ ml）を含む滅菌PBSで角膜をすすいでください。 </li><li>無菌スポットプレートのウェルに角膜上皮の側を下にして置きます。 </li><li>ちょうど十分に角膜内皮凹部にアガロース含有培地を追加完全にそれを埋める。アガロースのために〜1分が凝固することができます。 </li><li> 35mmの組織培養皿に支えるゲル足場上皮側で角膜を置き、上皮の表面を覆うように培養液を追加します。 </li><li>角膜は、媒体ごとに変更が48時間で、一週間以上もこのような方法で培養してもよい。 </li></ol>パート3：HSV-1の感染と実験薬による治療<ol><li> 35mmの組織培養皿にウイルスの所望の量を含有する培地を1 mlを加える。我々は、通常歪みKOS角膜あたりHSV-1の1×10 4 PFUで感染します。当社の株式価は、CV-1単層上でプラークアッセイを行うことにより決定されます。 </li><li>ウイルス含有培地中にアガロース足場上皮側と一緒に角膜を下に置きます。 </li><li>断続的な揺れ15分間隔で1時間感染させるために組織培養インキュベーター中に角膜を置きます。 </li><li> 1時間後、ウイル​​スcontaiを吸引媒体をNingと残留ウイルス粒子を除去するためにPBSで2-3回すすいでください。 </li><li>その前の位置に戻して角膜上皮を置き、表面を覆うように新鮮な培地を追加します。 </li><li>実験的な治療法は、実験の性質に応じて、感染前または後に起動されることがあります。 </li><li>培地は48時間毎に変更されています。 </li></ol>パート4：サンプルコレクション<ol class="lalpha"><li> プラークアッセイ分析のための媒体が。よく培地を混合し、-80℃でプラークアッセイまたはストアにすぐにそれを使う°Cの異なる時点で試料を採取した場合、後で使用するため。 </li><li> DNA、RNA、タンパク質、または角膜上皮由来の細胞 <ol><li>アガロース足場を取り除き、PBSでよく角膜をすすいでください。 </li><li>角膜上皮のみ材料が収集されることを保証するため、角膜から強膜切除する組織のリングを。 </li><li> Uメスを歌う、孤立しようとする材料の種類に応じて、適切なバッファに角膜上皮細胞を掻き。 DNAとRNAの単離のために、私たちはそれぞれDNeasyブラッド＆ティッシュキットとRNeasyミニキット（キアゲン、ヒルデン、ドイツ）を使用します。タンパク質溶解物の収集のために、私たちはLaemmli緩衝液を使用しています。角膜上皮細胞のフローサイトメトリー分析のために、私たちは細胞を緩め、メスでトリプシンにそれらを取り除くために、トリプシン少量の角膜をプレインキュベートする。組織の同量を得られない角膜上皮をこするので、サンプルを分析する場合に適切なコントロールを含めることが重要です。私達はウェスタンブロット用ローディングコントロールとしてqPCRsで参照遺伝子として定量RT-PCRを、GAPDHで基準転写物としての18S rRNAを使用し、ヌクレオリン。 </li></ol></li><li> 免疫組織化学または免疫蛍光のために組織サンプル <ol><li>アガロース足場を取り外して、トウモロコシをすすぐPBSでよくEA。 </li><li>映像に示すように、実験目的に応じて、、パラフィン組織ブロックまたは凍結組織ブロックを作るために角膜を使用しています。角膜組織のセクションを準備するときに我々は標準的な手順に従ってください。 </li></ol></li></ol>代表的な結果組織培養中の細胞を研究するための使用可能なメソッドのほとんどは、簡単に、HSV-1 のex vivoに感染して角膜での使用に適合することができます。ここに示されては、HSV-1感染症の研究に適用される最も一般的なテクニックのいくつかのための代表的な結果です-定量PCR（ 図1D）、定量RT-PCR（ 図1B）、ウエスタンブロット（ 図1F）、プラークアッセイ（ 図1C）、および組織免疫蛍光（ 図1E）。 <img src="/files/ftp_upload/3631/3631fig1.jpg" alt="図1" /> 図1。 HSV-1 EX Vに感染して角膜の解析イヴォ。急性角膜上皮HSV-1感染の ex vivo での（a）モデルの概略図。（BF）このビデオ記事で概説された方法を使用して感染した角膜の解析。植したウサギ角膜株KOS HSV-1の1×10 4 PFU /角膜に感染して存在（PAA）またはホスホノ酢酸（400μg/ ml）を、HSVの複製の既知の阻害剤の非存在下（モック）で培養した（B）総RNAを示した時点で収集され、ウイルスの転写は、HSV-1ポリメラーゼのプライマーを用いて、定量RT-PCRによって評価した。 18Sに対してプライマーはrRNAをリファレンスとして使用した。 n = 3とする。エラーバーは±SEMを示す。（C）の培養液を48 HPIで収集され、感染性粒子の産生は、CV-1単層上のプラークアッセイにより評価した。（D）の全DNAを48 HPIで採取し、ウイルスゲノムの複製が評価したHSV-1のゲノムのプライマーを用いた定量PCRアッセイ。 PRGAPDHに対するimersを基準として使用した。 n = 3とする。エラーバーは、区分された、（E）は偽処理角膜を48 HPIで急速冷凍しました。値±SEMを示すものであり、感染した上皮内のウイルス初期蛋白（ICP8）の存在を間接免疫蛍光法により分析した。核はヘーヒスト33258で対比されています（F）タンパク質溶解物を48 HPIで採取し、ウイルスタンパク質（ICP0）の発現をウェスタンブロットにより評価した。 BCAアッセイは、サンプルの等しい負荷を確実にするために使用されていました。 HPI =時間後に感染。

<ol><li>Kaye, S., Choudhary, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpes+simplex+keratitis%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Retin.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Herpes simplex keratitis.</a> Prog. Retin. Eye Res. 25, 355-380 (2006).</li>
<li>Holmberg, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enucleation+of+exotic+pets%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Exotic+Pet+Medicine%22%5BJournal%5D)">Enucleation of exotic pets.</a> Journal of Exotic Pet Medicine. 16, 88-94 (2007).</li>
<li>Remeijer, L., Osterhaus, A., Verjans, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+herpes+simplex+virus+keratitis%3A+the+pathogenesis+revisited%5BTitle%5D)+AND+%22Ocul.+Immunol.+Inflamm%22%5BJournal%5D)">Human herpes simplex virus keratitis: the pathogenesis revisited.</a> Ocul. Immunol. Inflamm. 12, 255-285 (2004).</li>
<li>Foreman, D. M., Pancholi, S., Jarvis-Evans, J., McLeod, D., Boulton, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+organ+culture+model+for+assessing+the+effects+of+growth+factors+on+corneal+re-epithelialization%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">A simple organ culture model for assessing the effects of growth factors on corneal re-epithelialization.</a> Exp. Eye Res. 62, 555-564 (1996).</li>
<li>Xu, K. P., Li, X. F., Yu, F. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corneal+organ+culture+model+for+assessing+epithelial+responses+to+surfactants%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol.+Sci%22%5BJournal%5D)">Corneal organ culture model for assessing epithelial responses to surfactants.</a> Toxicol. Sci. 58, 306-314 (2000).</li>
<li>Klausner, E. A., Peer, D., Chapman, R. L., Multack, R. F., Andurkar, S. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Corneal+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Control+Release%22%5BJournal%5D)">Corneal gene therapy.</a> J. Control Release. 124, 107-133 (2007).</li>
<li>Halford, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ICP0+antagonizes+Stat+1-dependent+repression+of+herpes+simplex+virus%3A+implications+for+the+regulation+of+viral+latency%5BTitle%5D)+AND+%22Virol.+J%22%5BJournal%5D)">ICP0 antagonizes Stat 1-dependent repression of herpes simplex virus: implications for the regulation of viral latency.</a> Virol. J. 3, 44(2006).</li>
<li>Bhattacharjee, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effective+treatment+of+ocular+HSK+with+a+human+apolipoprotein+E+mimetic+peptide+in+a+mouse+eye+model%5BTitle%5D)+AND+%22Invest+Ophthalmol+Vis.+Sci%22%5BJournal%5D)">Effective treatment of ocular HSK with a human apolipoprotein E mimetic peptide in a mouse eye model.</a> Invest Ophthalmol Vis. Sci. 49, 4263-4268 (2008).</li>
<li>Novitskaya, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Difficulties+imaging+herpes+simplex+keratitis+with+fluorescein+isothiocynate-labeled+anti-HSV-1+antibodies+in+an+ex+vivo+model%5BTitle%5D)+AND+%22Cornea%22%5BJournal%5D)">Difficulties imaging herpes simplex keratitis with fluorescein isothiocynate-labeled anti-HSV-1 antibodies in an ex vivo model.</a> Cornea. 28, 421-425 (2009).</li>
<li>Sharma, A., Shimeld, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+immunofluorescence+to+diagnose+herpes+simplex+virus+keratitis+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">In vivo immunofluorescence to diagnose herpes simplex virus keratitis in mice.</a> Br. J. Ophthalmol. 81, 785-788 (1997).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

このビデオの記事では 、ex vivo モデルにおける急性角膜上皮HSV-1感染を研究するための方法を説明します。それは細胞培養結果の生理学的に正確な検証を行うことができ、それにより、行わなければならない動物実験の量を制限しているので、このモデルでは、in vivo モデルにおいて、in vitroおよびin間の有用な足がかりです。また、ex vivoのモデルは、無傷のヒト角膜上皮ヘルペス感染症を研究するために、ユニークで貴重な機会を提供しています。このモデルを使用する際に考慮しなければならないいくつかの考慮事項は以下の通りです： <ul><li>それは、このビデオの資料に記載されたアプローチがヘルペス性角膜炎のモデルとなることを意図しないことを強調することが重要ではなく、急性角膜上皮のHSV-1感染症のモデルである。ヘルペス性角膜炎は、感染症、炎症、およびホストのIMを含むいくつかの交絡プロセスの結果であり、ウイルスへの応答をMUNE。抗原特異的CD4 +およびCD8 +...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬/消耗品 </td><td> 会社 </td><td> カタログ＃ </td></tr><tr><td>最小必須培地（MEM） </td><td>メディアテック</td><td> 10から010-CV </td></tr><tr><td>非必須アミノ酸（100倍液） </td><td>メディアテック</td><td> 25から025-CI </td></tr><tr><td> L-グルタミン</td><td>メディアテック</td><td> 25から005-CI </td></tr><tr><td>ペニシリンGナトリウム塩</td><td>シグマ</td><td> P3032 </td></tr><tr><td>ストレプトマイシン硫酸塩</td><td>シグマ</td><td> S9137 </td></tr><tr><td>アガロース</td><td>インビトロジェン</td><td> 15510-027 </td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水（PBS） </td><td>ラボで準備</td><td> N / A </td></tr><tr><td>トリプシンEDTA（1X）&lt;/ TD&gt; <td>メディアテック</td><td> 25から053-CI </td></tr><tr><td> DNeasyブラッド＆ティッシュキット</td><td> QIAGEN </td><td> 69504 </td></tr><tr><td> RNeasy Miniキット</td><td> QIAGEN </td><td> 74104 </td></tr><tr><td> Laemmli緩衝液</td><td>ラボで準備</td><td> N / A </td></tr><tr><td>最適切断温度（OCT）化合物</td><td>組織 - Tek社</td><td> 4583 </td></tr><tr><td>全体ウサギの眼（ヤング） </td><td> PEL-FREEZ </td><td> 41211から2 </td></tr><tr><td>ヒト角膜および全アイズ</td><td>地元のアイバンク</td><td> N / A </td></tr><tr><td> 12まあ磁器スポットプレート</td><td>アボガドロラボサプライ</td><td> 1877 </td></tr><tr><td> 35mmの組織培養皿</td><td>ファルコン</td><td> 353001 </td></tr><tr><td>まあ6細胞培養プレート</td><td>グライナーバイオワン</td><td> 657160 </td></tr><tr><td> Cryomold中級</td><td>組織 - Tek社</td><td> 4566 </td></tr></tbody></table>

急性上皮単純ヘルペスウイルスi型感染の ex vivo器官角膜モデル

Ex Vivo Organotypic Corneal Model of Acute Epithelial Herpes Simplex Virus Type I Infection

ヘルペス性角膜炎は、単純ヘルペスウイルス1型（HSV-1）に関連付けられている最も深刻な病態の一つである。ヘルペス性角膜炎は、現在、先進国の両方の角膜由来と感染関連失明の主要な原因である。ヘルペス性角膜炎の典型的なプレゼンテーションでは、瘢痕のような恒久的な角膜の病理につながる間伐、不透明度1、角膜上皮の感染、時には深い角膜実質と内皮細胞が含まれています。 角膜のHSV-1感染は、伝統的に実験モデルの2つのタイプに研究されている。角膜上皮細胞の単層培養をペトリ皿に感染されているin vitroモデルで 、シンプルさ、再現性の高いレベル、高速実験、比較的低コストを提供しています。一方、このようなウサギやマウスなどの動物が角膜に直接接種されているin vivoモデルで 、高度に洗練された生理を提供していますシステムが、コストが高く、長い実験では、必要に応じて動物の世話、及び変動の大きい程度を持っています。 このビデオの記事では、我々 のin vitroおよび in vivoモデルの両方の長所を組み合わせた角膜上皮のHSV-1感染症の新しいex vivoでモデルの詳細なデモンストレーションを提供する。 ex vivoのモデルはorganotypically培養で維持とHSV-1に感染した無傷の角膜を利用しています。 ex vivoでのモデルの使用は非常に生理的に基づく結論を可能にし、まだそれはむしろ安価で、in vitroモデルに匹敵する時間のコミットメントを必要とします。

このビデオの記事では、我々は新しいの使用を記述<em&gt; ex vivoで</em急性ヘルペスの&gt;モデルは、ウイルスI型角膜上皮感染を単純。

急性上皮単純ヘルペスウイルスI型感染の ex vivo器官角膜モデル

ヘルペス性角膜炎は、単純ヘルペスウイルス1型（HSV-1）に関連する最も重篤な病理の一つです。ヘルペス性角膜炎は現在、主要な……

ジェーン・クリフォードです。私はドレクセル大学医学部で生化学および分子生物学の教授および学部長を務めております。そして、私はオラ・イヴで、クリフォード博士の研究室のMD PhD学生です。オラと私が準備したこのビデオでは、ウサギおよびヒトドナーから採取した角膜のex vivo培養について実演します。我々は、これらの角膜をヘルペスウイルス感染の研究に利用してきましたが、これらは他の角膜疾患の研究にも確実に適用可能です。また、細胞単一培養と比較して、特に有用なex vivoモデルとなります。ヘルペス性角膜炎は、単純ヘルペスウイルス1型に関連する最も深刻な病理の一つです。現在、先進国における角膜由来および感染に伴う失明の主要な原因となっています。ヘルペス性角膜炎は、従来2種類の実験モデルを用いて研究されています。角膜上皮細胞の培養単層をペトリ皿内で感染させるin vitroモデルは、簡便であり、再現性が高く、実験期間が短く、比較的低コストであるという利点があります。一方、ウサギやマウスなどの動物の角膜に直接接種を行うヘルペス性角膜炎のin vivoモデルは、高度に精緻な生理学的システムを提供しますが、コストが高く、実験期間が長く、動物管理が必要であり、個体差による変動が大きいという側面があります。このビデオ記事では、in vitroモデルとin vivoモデルの両方の利点を組み合わせた、急性角膜上皮HSV-1感染の新しいex vivoモデルの詳細なデモンストレーションを提供します。このex vivoモデルでは、通常、培養状態で維持されHSVを感染させた完全な角膜組織を使用します。ex vivoモデルを用いることで、生理学的に高度な根拠に基づいた結論を得ることができ、かつ費用が比較的安価であり、in vitroモデルと同程度の時間的コミットメントで実施可能です。手順を開始する前に、以下のものを準備してください。シャーレ、リン酸緩衝生理食塩水（PBS）、角膜培養液およびスキャフォールド用培地、スポットプレート、ガーゼ、新鮮な眼球、メス、ピンセット、および鋭い剪刀。PBSで狭いガーゼを湿らせ、眼球に巻き付けてしっかりと固定します。処置中、鋭いメスを使用して、角膜縁から約0.5 cm離れた強膜に接線方向の切開を加えます。鋏を用いて、角膜強膜ボタンを完全に切除します。切開範囲を広げると眼球内の圧力が低下するため、組織の保持や操作が困難になります。そのため、このステップでは、切れ味の良い信頼できるハサミを使用することをお勧めします。角膜強膜ボタンを分離したら、ピンセットで強膜縁を保持しながら、虹彩を慎重に剥がします。内皮を損傷させたり、角膜に過度な負荷をかけたりしないように注意してください。1%アガロースの中液を調製し、準備しておく。55 °Cにて、ペニシリンおよびストレプトマイシンを含む滅菌PBSで角膜を十分に洗浄する。角膜の上皮側を下に向けて、滅菌したSpotlightのウェルに配置する。培地を含むアガロースを角膜の内皮陥凹に加えます。完全に満たされる程度の量を使用してください。アガロースが凝固するまで約1分間待ちます。支持用アグロススキャフォールドを装着した角膜を、上皮側を上にして組織培養皿に配置し、上皮表面が浸るようにサプリメント添加MEM培地を加えます。この方法で角膜を1週間以上培養することができ、その際は48時間ごとに培地を交換します。所定量のウイルスを含む培地1mLを組織培養皿に加えます。角膜（agro scaffold付き）の上皮側を下に向け、ウイルス含有培地に入れます。角膜を細胞培養インキュベーターに入れ、10～15分ごとに断続的に揺らしながら1時間感染させます。1時間後、ウイルス含有培地を吸引し、PBSで2～3回洗浄して、残留ウイルス粒子を除去します。PBSで洗浄する際は、角膜がアグロ・スキャフォールドから脱落しないように注意してください。上皮表面を覆うように新鮮な培地を加えます。実験的治療は、実験の性質に応じて、感染前または感染後に開始してください。培養液は48時間ごとに交換します。培地を十分に混ぜ、すぐにプラークアッセイに使用します。または、後で使用するために-80°Cで保存します。異なる時点でサンプルを回収する場合は、角膜をPBSで十分に洗浄してください。アグロ・スキャホールドを取り除き、角膜から強膜組織のリングを切り出します。これにより、角膜上皮組織のみを確実に回収できるようにします。メスを用いて、分離したい物質の種類に応じた適切なバッファーの中に角膜上皮細胞を掻き出します。強膜縁を取り除くことで、角膜基質が水を吸収して急速に膨潤します。腫脹によってスクレイピングが困難になる可能性があるため、この操作は迅速に行うことを推奨します。また、ペトリ皿をすすいで、サンプル全体が確実に回収されたことを確認してください。アグロスキャフォールドを取り除き、角膜をPBSで十分に洗浄します。実験目的に応じて、ここで実演するように角膜を用いてパラフィン組織ブロックまたは凍結組織ブロックを作成します。標本型の中に角膜をOCTコンパウンド（Optimal Cutting Temperature compound）で包埋し、エタノールとドライアイスの混合浴で角膜を急速凍結させます。このビデオでは、角膜の準備、角膜の解剖、ex vivo培養への導入、およびヘルペスウイルスによる角膜への感染について説明しました。本手法により、ヘルペスウイルス感染をex vivoで研究する上で非常に有用なモデルが構築されました。角膜細胞を用いた実験を行う他の研究者の方々にとっても、本手法が有用であることを期待しています。

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皮膚は、ヒト病原体単純ヘルペスウイルス1型（HSV-1）の標的組織の一つです。HSV-1の組織への浸潤経路を探るために、皮膚の最外層を表すマウス表皮シートのex...

単純ヘルペスウイルス1型を持つマウス表皮の ex vivo 感染

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細菌性角膜炎に対する薬物治療を研究するためのブタEx Vivoコルネアモデルの確立

実験薬の抗ウイルス効果を試験するためのブタ角膜の使用について述べる。...

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ここでは、トレフィンと鈍いゴルフクラブスパッドとを用いてマウスの中央角膜上皮擦過傷創傷を作成するためのプロトコルが記載されている。この角膜創傷治癒モデルは非常に再現性が高く、現在、疾患の文脈における妥協した角膜創傷治癒を評価するために使用されている。...

角膜創傷治癒を研究するための上皮擦過傷モデル

ここでは、角膜上皮の機械的および化学的損傷のためにマウスとウサギに基づく動物モデルを開発し、新しい治療法とそのメカニズムをスクリーニングします。...

角膜上皮の機械的および化学的損傷のためのEx Vivoおよびin vivo動物モデル

私たちは、角膜上皮の掻爬術と角膜縫合糸の組み合わせにより、重度の角膜炎症のラットモデルを開発しました。この研究では、炎症条件下での角膜の炎症パターン、上皮の増殖、および辺縁系幹細胞の変化を評価しました。...

角膜上皮掻爬術と角膜縫合糸の併用に基づくラットにおける重篤な角膜炎症モデルの確立

学ぶウサギおよびヒト提供者由来角膜を用いた単純ヘルペスウイルスI型のex vivo感染モデル構築法。従来の単層培養より生理学的妥当性が高く、ヘルペス角膜炎の病態研究に有用です。

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