Name: GFPをレトロウイルスベクターを用いた誘導多能性幹細胞（性IPSC）にヒト体細胞を再プログラミングする (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-03T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 25 s
Description: 学ぶレトロウイルスベクターを用いたGFPレポーターシステムによるヒトiPSCの作製法。GFP陰性コロニーの分離と多能性マーカー発現の検証により、再生医療研究への応用が可能となる。

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この作品は、チャールズ·フッド財団からの医学、母子保健研究賞のイェール大学によって資金を供給された。

1。初期化因子を発現するレトロウイルスによるプログラミング<ol><li>ヒト線維芽細胞は線維芽細胞の培地（10％ペン/連鎖球菌を含むDMEM中でFBS）で培養されています。 </li><li> 6ウェルプレートの1ウェルに感染する前に、一日は、プレート1×10 5、ヒト線維芽細胞。 </li><li>死んだ細胞を除去し、新鮮な線維芽細胞の培地2mlを追加するには、培地を吸引除去する。 5μg/ mlの最終濃度で硫酸プロタミンを追加します。 </li><li>慎重に感染多重度（MOI）5に対応する各GFP発現ウイルスの適切な量を追加します。 </li><li>感染後一日、ウイルス上清を除去し、2 mlの線維芽細胞の培地を追加し、2 mlのPBSで3回洗浄する。 </li><li>感染3日後、GFPの蛍光を確認し、2 mlの線維芽細胞培地でウェルを補充する。 </li><li>四日間の上に線維芽細胞培地中で照射したマウス胚性線維芽細胞（MEF）フィーダー細胞の感染は、プレート1×10 4 / cm 2とした後0.1％ゼラチンでコーティングされた10cmのペトリ皿。 37℃で一晩インキュベートします。 </li><li>五日、感染後、1ミリリットル0.05パーセントtypsin / EDTA、5分間37℃、および200 gで5分間遠心分離に感染したヒト線維芽細胞を切り離します。培地を吸引除去し、線維芽細胞の培地10mlので細胞を再懸濁します。プレコート10cmのプレートに細胞を移す。 </li><li> 24時間後、hESCの培地（20％ノックアウト血清代替物、DMEM/F12、0.1ミリリットル非必須アミノ酸、4 ng / mlのbFGFを、ペン/球菌/グルタミン酸、β-merceptoethanol）で培地を交換してください。毎日の培地を変更します。 ESCのようなコロニーは感染後20から27日で表示を開始します。 </li></ol> 2。 iPSCsの分離と拡張<ol><li>蛍光顕微鏡下で、ヒトES細胞に似た形態を示しています。植民地におけるGFP蛍光の有無を確認してください。 </li><li> 10μlのピペットを用いて、個々のIPSCのコロニーをピックアップし、ゼラチンおよびMEF-CoAの1つのウェルに配置しますテッド12ウェルプレートとhESCの培地を添加した。毎日の培地を変更します。 </li><li>継代については、DMEM/F12 1mlでプレートを洗浄し、コラゲナーゼの0.5ミリリットルを追加し、37℃で10分間インキュベート℃、 </li><li> DMEM/F12で細胞を2回洗浄します。 </li><li>新鮮なhESCの培地2mlを追加します。セルリフターを使用して、小さな部分にコロニーを破壊し、プレートから残りの細胞を切り離します。 </li><li>ゼラチンとMEF-コーティングされた6ウェルプレートの1ウェルにコロニーの再懸濁の部分を転送します。 </li></ol> 3。多能性マーカーの免疫蛍光分析<ol><li> PBSで細胞を3回洗浄し、室温で20分間、4％パラホルムアルデヒドで固定します。 </li><li>静かにPBSで細胞を3回洗浄し、30分間PBSでトリトンX-100 0.2％透過性。 </li><li> 2時間のPBSで3％BSAで細胞をインキュベートすることにより、非特異的結合をブロックします。 </li><li> 4℃で一晩一次抗体で細胞をインキュベートします。 </li> &lt;LI&gt; PBSで細胞を3回洗浄し、光から遮蔽し、室温で1時間の特定の二次抗体で細胞をインキュベートします。 </li><li>室温で5分間インキュベートし、続いて最後の洗浄時にPBSおよびアドオンDAPIで細胞を3回洗浄します。 </li><li>蛍光顕微鏡による染色を検出します。 </li></ol> 4。多能性マーカーの定量的リアルタイムPCRアッセイ<ol><li>キアゲン社のRNeasyキットを用いて、ヒト線維芽細胞由来のヒト性IPSCからトータルRNAを分離します。 </li><li> Superscript II逆転写酵素を用いた第一鎖cDNAを合成する。 </li><li>以前に報告されたプライマーを用いて、多能性の遺伝子を検出するために定量PCRを実行します。6 </li></ol> 5。代表的な結果<ol><li> プログラミング時の形態変化 我々は、OCT4、SOX2、KLF4およびMYCを運ぶレトロウイルスのカクテルで、ヒト線維芽細胞BJ1とデトロイト551感染と（ 図1）プログラミング時の形態学的変化を検出することができました。二十一日、感染後、我々は彼らのhESCのような形態で小さなIPSCコロニーを認識しています。さらに、我々はGFPの蛍光により性IPSCを認識しています。そのようなESCと性IPSCとして多能性幹細胞、プロウイルス遺伝子発現7-9を抑制する分子機構を表現しています。当社独自のレトロウイルスベクターは、レトロウイルスLTRで遺伝子を再プログラミングと一緒にGFPを表現しています。したがって、継続的にGFPを発現する細胞は、プロウイルス遺伝子サイレンシングすることなく導入遺伝子を発現するように考えられている。多能性分子ネットワークを取得忠実に再プログラムIPSCコロニーはGFP発現（ 図2）10の不在を示しています。 </li><li> 人間のiPSCsの多能性のキャラクタリゼーション 我々は、TRA-1-81、TRA-1-60、SSEA-4、SSEA-3、OCT4とNANOG抗体を用いた免疫組織化学を経由してデトロイト-551線維芽細胞由来コロニーを分析した（ <stroNG&gt;表2）。首尾よく再プログラム性IPSCは、これらのマーカー（ 図3A）のすべてを表現しています。また、定量的RT-PCR分析を介して遺伝子発現を解析した。我々は、OCT4、SOX2、KLF4、MYCとNANOGの発現が有意に親の線維芽細胞と比較しますが、H9ヒトES細胞（ 図3B）のそれに見合った増加したことを観察した。 </li></ol><img alt="図1" src="/files/ftp_upload/3804/3804fig1.jpg" /> 図1。レトロウイルスに感染したヒト線維芽細胞の形態変化（AD）初期化因子に感染したデトロイト-551線維芽細胞からのコロニーでプログレッシブ形態変化。 5日目（）、10日目（B）、14日目（C）、21日（D）。細胞は21日後hESCのような形態を示しています。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/3804/3804fig2.jpg" /> 図2。リプログラミングを受けている細胞の代表的GFP蛍光発現。 </strong&gt; BJとデトロイト551線維芽細胞は、4つの初期化因子4を発現するレトロウイルスに感染し、4週間hESCの培地中でインキュベートした。 BJ繊維芽細胞（A、B）とデトロイト551（C、D）は、形態学的類似の表示されます。 21日から、GFP陰性のコロニーは10善意性IPSCを表現する、形成するために開始します。 （E、F）適切なリプログラミングを受けていないデトロイト551細胞の形質転換を示しています。位相コントラストビューの下に（A、C、E）のコロニー。 （B、D）が正しくGFPサイレンシングを示す細胞を再プログラム。形質転換コロニーから（F）明るいGFP発現。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/3804/3804fig3.jpg" /> 図3。人間の人工多能性幹細胞のキャラクタリゼーション。（a）ヒト551-IPS-K1細胞のコロニーは、多能性細胞に共通のマーカーを発現する。 DAPI染色は、フィールドごとの合計のセルの内容を示しています。 OCT4、SOX2の発現のために（B）定量リアルタイムPCR（RT-QPCR）、KLF4、MYC親のfのibroblast、551-IPS-K1の性IPSC、およびH9ヒト胚性幹細胞（ヒトES細胞）。データは、β-アクチンのハウスキーピング遺伝子に対して正規化し、4親の線維芽細胞での発現レベルを基準にプロットした。

<ol><li>Murry, C. E., Keller, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+embryonic+stem+cells+to+clinically+relevant+populations%3A+lessons+from+embryonic+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Differentiation of embryonic stem cells to clinically relevant populations: lessons from embryonic development.</a> Cell. 132, 661-680 (2008).</li>
<li>Takahashi, K., Tanabe, K., Ohnuki, M., Narita, M., Ichisaka, T., Tomoda, K., Yamanaka, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131, 861-872 (2007).</li>
<li>Yu, J., Vodyanik, M. A., Smuga-Otto, K., Antosiewicz-Bourget, J., Frane, J. L., Tian, S., Nie, J., Jonsdottir, G. A., Ruotti, V., Stewart, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induced+pluripotent+stem+cell+lines+derived+from+human+somatic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells.</a> Science. 318, 1917-1920 (2007).</li>
<li>Park, I. H., Zhao, R., West, J. A., Yabuuchi, A., Huo, H., Ince, T. A., Lerou, P. H., Lensch, M. W., Daley, G. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+of+human+somatic+cells+to+pluripotency+with+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Reprogramming of human somatic cells to pluripotency with defined factors.</a> Nature. 451, 141-146 (2008).</li>
<li>Park, I. H., Lerou, P. H., Zhao, R., Huo, H., Daley, G. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+human-induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Generation of human-induced pluripotent stem cells.</a> Nature Protocols. 3, 1180-1186 (2008).</li>
<li>Park, I. H., Zhao, R., West, J. A., Yabuuchi, A., Huo, H., Ince, T. A., Lerou, P. H., Lensch, M. W., Daley, G. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reprogramming+of+human+somatic+cells+to+pluripotency+with+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Reprogramming of human somatic cells to pluripotency with defined factors.</a> Nature. 451, 141-146 (2008).</li>
<li>Hotta, A., Ellis, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retroviral+vector+silencing+during+iPS+cell+induction%3A+an+epigenetic+beacon+that+signals+distinct+pluripotent+states%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cellular+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Retroviral vector silencing during iPS cell induction: an epigenetic beacon that signals distinct pluripotent states.</a> Journal of Cellular Biochemistry. 105, 940-948 (2008).</li>
<li>Matsui, T., Leung, D., Miyashita, H., Maksakova, I. A., Miyachi, H., Kimura, H., Tachibana, M., Lorincz, M. C., Shinkai, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proviral+silencing+in+embryonic+stem+cells+requires+the+histone+methyltransferase+ESET%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Proviral silencing in embryonic stem cells requires the histone methyltransferase ESET.</a> Nature. 464, 927-931 (2010).</li>
<li>Wolf, D., Goff, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+stem+cells+use+ZFP809+to+silence+retroviral+DNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Embryonic stem cells use ZFP809 to silence retroviral DNAs.</a> Nature. 458, 1201-1204 (2009).</li>
<li>Chan, E. M., Ratanasirintrawoot, S., Park, I. H., Manos, P. D., Loh, Y. H., Huo, H., Miller, J. D., Hartung, O., Rho, J., Ince, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+cell+imaging+distinguishes+bona+fide+human+iPS+cells+from+partially+reprogrammed+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Live cell imaging distinguishes bona fide human iPS cells from partially reprogrammed cells.</a> Nat. Biotechnol. 27, 1033-1037 (2009).</li>
<li>Yu, J., Hu, K., Smuga-Otto, K., Tian, S., Stewart, R., Slukvin,, Thomson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+induced+pluripotent+stem+cells+free+of+vector+and+transgene+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Human induced pluripotent stem cells free of vector and transgene sequences.</a> Science. 324, 797-801 (2009).</li>
<li>Kim, D., Kim, C. H., Moon, J. I., Chung, Y. G., Chang, M. Y., Han, B. S., Ko, S., Yang, E., Cha, K. Y., Lanza, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+human+induced+pluripotent+stem+cells+by+direct+delivery+of+reprogramming+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Generation of human induced pluripotent stem cells by direct delivery of reprogramming proteins.</a> Cell Stem Cell. 4, 472-476 (2009).</li>
<li>Warren, L., Manos, P. D., Ahfeldt, T., Loh, Y. H., Li, H., Lau, F., Ebina, W., Mandal, P. K., Smith, Z. D., Meissner, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+efficient+reprogramming+to+pluripotency+and+directed+differentiation+of+human+cells+with+synthetic+modified+mRNA%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Highly efficient reprogramming to pluripotency and directed differentiation of human cells with synthetic modified mRNA.</a> Cell Stem Cell. 7, 618-630 (2010).</li>
<li>Ban, H., Nishishita, N., Fusaki, N., Tabata, T., Saeki, K., Shikamura, M., Takada, N., Inoue, M., Hasegawa, M., Kawamata, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+generation+of+transgene-free+human+induced+pluripotent+stem+cells+%28iPSCs%29+by+temperature-sensitive+Sendai+virus+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Efficient generation of transgene-free human induced pluripotent stem cells (iPSCs) by temperature-sensitive Sendai virus vectors.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, 14234-14239 (2011).</li>
<li>Wolf, D., Goff, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TRIM28+mediates+primer+binding+site-targeted+silencing+of+murine+leukemia+virus+in+embryonic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">TRIM28 mediates primer binding site-targeted silencing of murine leukemia virus in embryonic cells.</a> Cell. 131, 46-57 (2007).</li>
<li>Park, I. H., Arora, N., Huo, H., Maherali, N., Ahfeldt, T., Shimamura, A., Lensch, M. W., Cowan, C., Hochedlinger, K., Daley, G. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disease-specific+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Disease-specific induced pluripotent stem cells.</a> Cell. 134, 877-886 (2008).</li>
<li>Kim, K. Y., Hysolli, E., Park, I. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+maturation+defect+in+induced+pluripotent+stem+cells+from+patients+with+Rett+syndrome%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Neuronal maturation defect in induced pluripotent stem cells from patients with Rett syndrome.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, 14169-14174 (2011).</li>
</ol>

<p class="jove_content"&gt;私たちは、開示することは何もありません。</p

性IPSCの4つの転写因子の発現は、ヒト線維芽細胞を再プログラムします。多くの試みが臨床的に安全性IPSCを生成するために、非積分または非遺伝的アプローチを用いてヒトの性IPSCを生成するために行われました。これまでのところ、これらのメソッドは非常に低い効率を示し、再現性11月14日を向上させるためにさらに最適化する必要があります。レトロまたはレンチウイルスの方法は容易に導出し、ウイルスの統合に起因する安全性の問題にあまり依存しているin vitroでの疾患モデルで人間のための性IPSCを適用するために使用されます。ここで説明する方法を再プログラミングすることは、ヒトのiPSCsの効率的な導出のために利用可能です。人間のiPSCsの選択は、主にヒトESCに似ているコロニー形態に基づいています。もっと重要なのは、私たちの方法は、多能性幹細胞7,15でレト ​​ロウイルスの長い末端反復配列（LTR）のサイレンシングの機能を利用しています。このプロトコルで使用されているレトロウイルスベクターは、リプログラミングにリンクされているGFP遺伝子を含む内部リボソーム侵入...

<table><tbody><tr><td>DMEM/F12</td><td>Invitrogen</td><td>11330057</td><td>80%</td></tr><tr><td>ノックアウト血清代替物</td><td>Invitrogen</td><td>10828-028</td><td>20%</td></tr><tr><td>L-グルタミン (200 mM)</td><td>Invitrogen</td><td>25030081</td><td>2 mM</td></tr><tr><td>非必須アミノ酸 (10 mM)</td><td>Invitrogen</td><td>11140050</td><td>0.1 mM</td></tr><tr><td>&amp;#946;-メルカプト&amp;#8211;エタノール (14.3 M) または MTG</td><td>Invitrogen</td><td>M-6250</td><td>0.1 mM</td></tr><tr><td>bFGF-2 10 &amp;mu;g/ml</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td>GF003AF</td><td>4 ng/ml</td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>EMD Millipore</td><td>15140-122</td><td>1%</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Invitrogen</td><td>11965118</td><td>90%</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Invitrogen</td><td>10407028</td><td>10%</td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>EMD Millipore</td><td>15140-122</td><td>1%</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;表1. 培地&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>OCT4</td><td>Abcam</td><td>Ab19857</td><td>1:500</td></tr><tr><td>SSEA3</td><td>EMD Millipore</td><td>MAB4303</td><td>1:100</td></tr><tr><td>SSEA4</td><td>BD Biosciences</td><td>BD560218</td><td>1:100</td></tr><tr><td>Tra-1-81</td><td>BD Biosciences</td><td>BD560173</td><td>1:100</td></tr><tr><td>Tra-1-60</td><td>BD Biosciences</td><td>BD560174</td><td>1:100</td></tr><tr><td>NANOG</td><td>Abcam</td><td>Ab21624</td><td>1:500</td></tr><tr><td>Alexa-Flur 488</td><td>Invitrogen</td><td>A11008</td><td>1:1000</td></tr><tr><td>Alexa-Flur 555</td><td>Invitrogen</td><td>A21422</td><td>1:1000</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Invitrogen</td><td>D1306</td><td>1:5000</td></tr><tr><td>pMIG-OCT4</td><td>Addgene</td><td>17225</td><td></td></tr><tr><td>pMIG-SOX2</td><td>Addgene</td><td>17226</td><td></td></tr><tr><td>pMIG-KLF4</td><td>Addgene</td><td>17227</td><td></td></tr><tr><td>pMIG-MYC</td><td>Addgene</td><td>18119</td><td></td></tr><tr><td>コラゲナーゼ type IV</td><td>Invitrogen</td><td>17104019</td><td>1mg/ml</td></tr><tr><td>ゼラチン（ブタ由来）</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G 1890</td><td>0.1%</td></tr><tr><td>Triton</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>X100-500ML</td><td>0.2%</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>47608</td><td>4%</td></tr><tr><td>BSA</td><td>American Bioanalytical</td><td>AB01800</td><td>3%</td></tr><tr><td>MEFフィーダー細胞</td><td>EMD Millipore</td><td>PMEF-N</td><td></td></tr><tr><td>セルリフター</td><td>Corning</td><td>3008</td><td></td></tr><tr><td>蛍光顕微鏡：GFPフィルター付き倒立顕微鏡</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;表2. 試薬および機器&lt;/strong&gt;</td></tr></tbody></table>

gfpをレトロウイルスベクターを用いた誘導多能性幹細胞（性ipsc）にヒト体細胞を再プログラミングする

Reprogramming Human Somatic Cells into Induced Pluripotent Stem Cells (iPSCs) Using Retroviral Vector with GFP

ヒト胚性幹細胞（ヒトES細胞） のin vitro疾患モデルと再生医療1 のための多能性と非常に貴重な細胞の源である。それは以前にヒト体細胞は、4つの転写因子の異所性発現（Oct4の、レトロウイルスベクター、KLF4及び Myc）によって多能性を再プログラムすることができることを示して誘導多能性幹細胞（性IPSC）2-4になっています。ヒトES細胞と同様に、人間性IPSCは、多能性と自己細胞の潜在的な源である。ここでは、GFPを含有するレトロウイルスバックボーン4にクローン化された4初期化因子によるヒト線維芽細胞を再プログラムするためのプロトコルについて説明します。以下のプロトコルを使用して、我々は、ヒトESCを培養条件下で3〜4週間で人間性IPSCを生成します。人間のIPSCのコロニーが密接に形態の似ているヒトES細胞とレトロウイルスのジーンサイレンシングの結果、GFP蛍光の損失を表示します。蛍光microscoの下に機械的に隔離されたIPSCのコロニーPEは、ヒトES細胞と同様の方法で動作します。これらの細胞では、我々は、複数の多能性遺伝子と表面マーカーの発現を検出することができます。

OCT4、SOX2、KLF4とMYCのレトロウイルス媒介性異所性発現を介してヒトの人工多能性幹細胞（性IPSC）を生成する方法が記載されている。 GFP発現に基づいて人間のIPSCコロニーを識別するための実用的な方法についても説明されています。

GFPをレトロウイルスベクターを用いた誘導多能性幹細胞（性IPSC）にヒト体細胞を再プログラミングする

ヒト胚性幹細胞（hESCs）は多能性を有しており、in vitroでの疾患モデリングおよび再生医療において極めて貴重な細胞源となります1。これまで……

本手順の全体的な目的は、GFPレポーターシステムを用い、retrovirusを介したOCT4、SOX2、KLF4、およびc-MYCの過剰発現により、ヒトiPS細胞を作製することです。まず、適切な量の個々のGFP発現retrovirusを添加します。次に、GFP発現ウイルスに感染した細胞を、マウス胚性線維芽細胞と共に0.1%ゼラチンコートプレートに転移させます。手順の第3段階は、培地をヒト胚性幹細胞培養培地に交換することです。最後に、ヒト胚性幹細胞と同様の形態を示すGFPサイレンシングiPSコロニーを単離します。最終的に、免疫蛍光染色およびR-T-Q-P-C-Rを通じて、内因性多能性マーカーの発現が示されます。多能性表面マーカーを用いたライフスタイル染色や形態学的変化の観察といった既存の手法に対する本手法の主な利点は、望ましいiPS細胞の選別が可能であることです。GFP発現の消失を多能性細胞のマーカーとして用いることで、培養開始のための細胞コロニーを容易に単離できます。感染の1日前に、線維芽細胞用培地を用いてヒト線維芽細胞を培養します。6ウェルプレートの1ウェルに1×10⁵個のヒト線維芽細胞を播種します。翌日、培地を吸引して死細胞を除去し、5 µg/mLのプロタミン硫酸を含む新鮮な線維芽細胞用培地2 mLを添加します。次に、感染多重度（MOI）が5になるように、各GFP発現ウイルスの適切な量を慎重に添加します。感染1日後、細胞を37°Cで一晩インキュベートします。ウイルス含有上清を除去し、2 mLのPBSで3回洗浄します。次に、感染から3日後に、線維芽細胞用培地を2 mL加えます。GFP蛍光を確認し、線維芽細胞用培地を2 mL補充します。翌日、0.1% Gelatinでコーティングした10 cm Petri dishに、照射したマウス胚性線維芽細胞またはMEFフィーダー細胞を、線維芽細胞用培地を用いて1 × 10⁴ cells/cm²の密度で播種します。細胞を37°Cで一晩インキュベートします。翌日、感染させたヒト線維芽細胞を1 mLの0.05%トリプシンEDTAを用いて37°Cで5分間剥離し、200 Gで5分間遠心分離します。細胞を10 mLの線維芽細胞用培地で再懸濁し、0.1%ゼラチンでプレコートしたmfsに細胞を播種します。24時間後。培地をHESC培養培地で置換し、毎日培地交換を行います。感染後20日から27日でESC様コロニーが出現し始めます。蛍光顕微鏡下でESC様コロニーの出現を確認してください。HSCと類似した形態を示すコロニーにおいて、GFP蛍光が消失していることを確認します。10 µL ピペットを使用して、個々の iPSC コロニーをピックアップし、ゼラチンおよび meth でコーティングし、HESC 培地を添加した 12 ウェルプレートの 1 ウェルに入れます。培地を毎日交換し、プレートを 1 mL の DMM F 12 で洗浄して細胞を継代します。次に、0.5 milliliterのコラゲナーゼを加え、37 degrees Celsiusで10分間インキュベートします。細胞をDM A MF 12で2回洗浄します。続いて、2 milliliterの新鮮なHESC培地を加えます。次に、セルリフターを使用してコロニーを小さく砕き、プレートに残っている細胞を回収します。再懸濁したコロニーの断片を、ゼラチンとMEFでコーティングした6ウェルプレートの1ウェルに移し、37 °Cで2日間インキュベートします。免疫蛍光染色により細胞を確認します。PBSで3回洗浄し、室温で4%パラアルデヒドを用いて20分間固定します。細胞をPBSで緩やかに3回洗浄し、0.2% Triton X-100含有PBSで30分間透過処理を行います。PBSに含まれる3%BSAを用いて細胞を2時間インキュベートし、非特異的結合をブロックします。次に、一次抗体とともに4°Cで一晩インキュベートします。その後、細胞をPBSで3回洗浄し、二次抗体とともに室温・暗所にて1時間インキュベートします。最後の洗浄時に、PBSで細胞を3回洗浄します。DAPIを添加し、室温で5分間インキュベートします。定量的なリアルタイム解析のため、蛍光顕微鏡を用いて細胞をイメージングします。RNA分離キットを用いて、ヒト線維芽細胞由来のヒトIPCから全RNAを抽出する。逆転写酵素を用いて第1ストランドcDNAを合成する。次に、これをテンプレートとしてQPCRを行い、多能性遺伝子を検出します。OCT4、SOX2、KLF4、およびc-Mycを搭載したレトロウイルス・カクテルを導入したヒト線維芽細胞（BJ細胞）について、ここではリプログラミング5日目から観察された形態的変化を示しています。10日、14日、21日目にかけて、細胞は21日後にhESC様の形態を示し始め、iPSCsはGFP蛍光によって認識されます。ESCやiPS細胞などの多能性幹細胞は、プロウイルス遺伝子の発現を抑制するための分子機構を発現しています。しかし、本手法で使用するレトロウイルスベクターは、レトロウイルスLTRによってリプログラミング遺伝子と共にGFPを発現します。したがって、GFPを持続的に発現している細胞は、プロウイルス遺伝子サイレンシングが起こらずに外来遺伝子を発現していると考えられます。一方で、多能性分子ネットワークを獲得し、正確にリプログラミングされたiPS細胞コロニーでは、GFPの発現が消失します。この図は、TRA 180 1、TRA one 60、SSEA four、T four、およびnanoに対する抗体を用いたDetroit 5 51線維芽細胞由来コロニーの免疫組織化学分析の結果を示しており、正常にリプログラミングされたiPCがこれらすべてのマーカーを発現していることがわかります。さらに、定量RT-PCRを用いて遺伝子発現を解析したところ、T four、SOX two、KLF four M、およびnanoの発現が、親細胞である線維芽細胞と比較して有意に増加しており、H nine HSCと同等であることが明らかになりました。このビデオを視聴することで、ウイルスの感染方法、および蛍光顕微鏡を用いて完全にlipプログラミングされたIPA細胞を同定し、ピックアップする方法について十分に理解することができます。

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学ぶレトロウイルスベクターを用いたGFPレポーターシステムによるヒトiPSCの作製法。GFP陰性コロニーの分離と多能性マーカー発現の検証により、再生医療研究への応用が可能となる。

GFPをレトロウイルスベクターを用いた誘導多能性幹細胞（性IPSC）にヒト体細胞を再プログラミングする

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