Name: GIRKチャネルのモジュレーターを同定するための蛍光スクリーニングアッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-24T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 31 s
Description: 学ぶGIRKチャネルモジュレーター同定のための蛍光スクリーニングアッセイ。膜電位感受性蛍光色素を用いてAT20細胞でリアルタイムに薬物活性を測定し、神経系疾患治療薬の探索に活用できます。

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1。細胞の調製<ol><li> 5％CO 2の加湿雰囲気で10％ウマ血清、37℃で培養を維持すると補足したダルベッコ改変イーグル培地（DMEM）で下垂体AtT20細胞を成長させる。 </li><li>標準的なトリプシン処理プロシージャを使用してすべての5〜7日の細胞を継代培養により培養を維持しています。 </li><li>コー​​ト、黒、透明底のウェル、ポリ-L-リジンの50μL、96ウェルプレート。井戸はインキュベーター内で30分間乾燥させます。 </li><li>ウェル当たり30,000細胞の密度で3-4日間培養器内のセルを格納し、200μLの培地を含有する96ウェルプレートのプレートの細胞を。 </li><li>徐々に細胞単層から培地を吸引するために、一方の端に真空ともう一方の端に200μLピペットの先端に接続された栓を4リットル瓶で構成され、誤嚥のセットアップを使用しています。 </li><li>通常の緩衝液（132 mM塩化ナトリウム、5 mMのKClを、1メートルの200μLで細胞を洗浄MのCaCl 2、1mMのMgCl 2、5mMのデキストロース、5mMのHEPES、NaOHでpH 7.4）。 </li><li>各ウェルに膜電位感受性色素（MPD）DiBAC 4（3）またはHLB 021から152（5μM）を含む緩衝液200μLを追加し、37℃で40分間細胞をインキュベート℃に</li></ol> 2。試験化合物および細胞治療の準備<ol><li> Versette（サーモフィッシャー）自動液体ハンドリングシステムを使用して、化合物ライブラリーからの試験化合物の希釈（DMSO中ストック= 10 mM）を（96ウェルフォーマットで）を準備します。 </li><li>インキュベーターから、At​​T20細胞を含む、96ウェルプレートを取り外し、プレートを室温に戻すことができます。古いバッファをオフに吸引し、細胞へのMPDを含む新鮮な緩衝液を適用します。 </li><li>液体ハンドリングシステムは、様々な試験化合物の濃度（10 nMの10μMまで）（2から20μL）と制御ソリューション（0.1％DMSO）を（緩衝液containiに適用される使用NG MPD）細胞を含む96ウェルプレートへ。 </li><li>蛍光測定の前に試験化合物を5分間、細胞をインキュベートします。 </li></ol> 3。 GIRKチャネルの活性化、蛍光測定と解析<ol><li>バイオテックSynergy2蛍光プレートリーダーに96ウェルプレートを挿入し、それぞれ、520および560nmの励起および発光波長で蛍光バックグラウンド信号を得る。 </li><li> Synergy2インジェクターシステムを使用して、GIRKチャネルをアクティブにする（総量= 220μL）をウェルにGPCRリガンド（ソマトスタチン= 200 nM以上カルバコール= 10μM）またはコントロール溶液（緩衝液のみ）（20μL）を適用します。それぞれ520および560 nmの励起および発光波長で300秒のサンプリング期間を10秒間隔でデータポイントを収集します。 </li><li>時間経過とバイオテックGEN5ソフトウェアを用いた蛍光変化のピーク振幅を取得し、さらに分析するためにデータをExcelにエクスポートします。 </lI&gt; <li>アッセイの信頼性を決定するためにZ &#39;因子を計算します。 Z &#39;因子の決定のために使用されるプレートは、2行正（GPC​​Rリガンド）と負（バッファーのみ）の各コントロールが含まれていました。 Z &#39;因子は次のように定義されています。Z&#39; = 1 - （3σP +3σN）/ |μのP - μN |μP＆μNは正の制御と負の制御信号の手段である、、、σ P＆N、σは正の制御とそれぞれ負の制御信号、6の標準偏差である。 0.5から1.0の範囲でZ &#39;因子は、アッセイの品質が6に優れていることを示します。 0.5以下Z&#39;-因子とプレートは分析から除外されます。 </li><li>蛍光シグナルを調節する化合物は、内向き整流K +チャネルの特異性を確認するのBa 2 +の存在またはtertiapin-Qで再検査されています。 </li></ol> 4。 Representative結果 GIRKチャネルアッセイを用いて測定した蛍光シグナルの例を図2に示されています。 AtT20細胞にGPCRリガンドのソマトスタチン（200 nm）の添加は、HLB 021から152蛍光シグナル（ 図2）が急速に、時間依存性の減少を引き起こした。対照的に、コントロール溶液の添加は、時間とともに（ 図2）ベースラインに戻ったことを蛍光の小さな瞬間的な上昇を作り出した。制御およびソマトスタチンソリューションを注入し、96ウェルプレートのピーク蛍光値の比較は0.5から0.7の範囲でZ &#39;因子を与えた。さらに、定量化のため、制御レコードはソマトスタチンレコードと（ 図2）分析結果のソマトスタチン敏感な信号から減算されました。 アッセイは迅速にGIRKチャネルを調節する薬剤を同定する方法を提供する。 GIRKチャを阻害する、例えば、薬物nnel細胞からK +流出を防止することにより、蛍光のGPCRリガンド媒介減少を減らす必要があります。などのブロックGIRKチャネル7その毒素、tertiapin-Qによる細胞の処理は、 図3に示すように、ソマトスタチンを介した蛍光変化の抑制を作り出した。プロパフェノン、心臓8のブロックGIRKチャネルを抗不整脈薬はまた、蛍光の変化（ 図4）を阻害した。アッセイはまた、GIRKチャネルの活性化を識別するための役に立つかもしれません。ソリューション（P&gt; 0.5）を制御すると比較した場合しかし、エタノールのアプリケーション（100＆200 mM）を、GIRKチャネル2,3の活性化は、蛍光シグナルの有意な変化を引き起こさなかった。 <img src="/files/ftp_upload/3850/3850fig1.jpg" alt="図1"/> 図1。GIRKチャネル蛍光アッセイの実験的デザイン。 AtT20細胞はmembranを含む緩衝液中でインキュベートされる電子電位感受性蛍光色素（D）。色素分子は、細胞に入ると細胞内のタンパク質（上のパネル）に結合すると蛍光灯になります。そのGPCRへ（SOM）ソマトスタチンの結合は、GIRKチャネル（下パネル）の活性化を引き起こすG阻害タンパク質（G i）を刺激します。 K +外細胞のその後の流出は、膜電位は細胞を終了するには、より負と色素分子になるようになります。結果として、蛍光シグナルの減少（下パネル）。 <img src="/files/ftp_upload/3850/3850fig2.jpg" alt="図2"/> ソマトスタチンまたはコントロール溶液の添加時にAtT20細胞内で経時的に測定図2。代表HLB 021から152蛍光シグナル。蛍光強度（F / F O）の比率は（F O）広告する前に測定されたベースライン信号によるソマトスタチンの有無（F）（またはコントロール溶液）で信号を割ることによって算出したソマトスタチンのdition（またはコントロール溶液）。各点は平均値±SE 5から6の井戸で得を表しています。ソマトスタチンまたはコントロール溶液は、時間ゼロ（↓）で追加されました。コントロール溶液の添加は、蛍光シグナルの小さな一時的な増加を引き起こした。これは、溶液の注入によって引き起こされる温度変化に起因する。 <img src="/files/ftp_upload/3850/3850fig3.jpg" alt="図3"/> 図3。tertiapin-Q（500 nm）でAtT20細胞の治療は、ソマトスタチン媒介に結合し、GIRKチャネルを遮断することによって蛍光シグナルの減少を抑制する。各点は平均値±4から6の井戸で得られたSEを表しています。ソマトスタチンは、時間ゼロ（↓）で追加されました。 <img src="/files/ftp_upload/3850/3850fig4.jpg" alt="図4"/> 図4プロパフェノン（20μM）とAtT20細胞の治療はまたのソマトスタチン媒介の減少を抑制する蛍光シグナル。各点は平均値±SE 5から6の井戸で得を表しています。ソマトスタチンは、時間ゼロ（↓）で追加されました。

<ol><li>Hibino, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inward+rectifying+potassium+channels%3A+their+structure%2C+function+and+physiological+roles%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Inward rectifying potassium channels: their structure, function and physiological roles.</a> Physiol. Rev. 90, 291-366 (2010).</li>
<li>Lusscher, C., Slesinger, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emerging+roles+for+G+protein-gated+inwardly+rectifying+potassium+%28GIRK%29+channels+in+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Emerging roles for G protein-gated inwardly rectifying potassium (GIRK) channels in health and disease.</a> Nat. Rev. Neurosci. 11, 301-315 (2010).</li>
<li>Kobayashi, T., Ikeda, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((G+protein-activated+inwardly+rectifying+potassium+channels+as+potential+therapeutic+targets%5BTitle%5D)+AND+%22Cur.+Pharm.+Des%22%5BJournal%5D)">G protein-activated inwardly rectifying potassium channels as potential therapeutic targets.</a> Cur. Pharm. Des. 12, 4513-4523 (2006).</li>
<li>Terstappen, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+analysis+of+native+and+recombinant+ion+channels+using+a+high-capacity+nonradioactive+rubidium+efflux+assay%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Functional analysis of native and recombinant ion channels using a high-capacity nonradioactive rubidium efflux assay.</a> Anal. Biochem. 272, 149-155 (1999).</li>
<li>Cheng, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-throughput+HERG+potassium+channel+function+assay%3A+an+old+assay+with+a+new+look%5BTitle%5D)+AND+%22Drug+Dev.+Ind.+Pharm%22%5BJournal%5D)">A high-throughput HERG potassium channel function assay: an old assay with a new look.</a> Drug Dev. Ind. Pharm. 28, 177-191 (2002).</li>
<li>Zhang, J. -H., Chung, T. D. Y., Oldenburg, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+statistical+parameter+for+use+in+evaluation+and+validation+of+high+throughput+screening+assays%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomol.+Screen%22%5BJournal%5D)">A simple statistical parameter for use in evaluation and validation of high throughput screening assays.</a> J. Biomol. Screen. 4, 67-73 (1999).</li>
<li>Jin, W., Lu, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+high-affinity+inhibitor+for+inward-rectifier+K%2B+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem%22%5BJournal%5D)">A novel high-affinity inhibitor for inward-rectifier K+ channels.</a> Biochem. 37, 13291-13299 (1998).</li>
<li>Inomata, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anti-arrhythmic+agents+act+differently+on+the+activation+phase+of+the+Ach-response+in+guinea+pig+atrial+myocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Anti-arrhythmic agents act differently on the activation phase of the Ach-response in guinea pig atrial myocytes.</a> Br. J. Pharmacol. 108, 111-116 (1993).</li>
<li>Tang, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+evaluation+of+high+throughput+functional+assay+methods+for+HERG+potassium+channel%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomol.+Screen%22%5BJournal%5D)">Development and evaluation of high throughput functional assay methods for HERG potassium channel.</a> J. Biomol. Screen. 6, 325-331 (2001).</li>
<li>Wolff, C., Fuks, B., Chatelain, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+study+of+membrane+potential-sensitive+fluorescent+probes+and+their+use+in+ion+channel+screening+assays%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomol.+Screen%22%5BJournal%5D)">Comparative study of membrane potential-sensitive fluorescent probes and their use in ion channel screening assays.</a> J. Biomol. Screen. 8, 533-513 (2003).</li>
<li>Niswender, C. M., Johnson, K. A., Luo, Q., Avala, J. E., Kim, C., Conn, P. J., Weaver, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+assay+of+Gi%2Fo-linked+G+protein-coupled+receptor+coupling+to+potassium+channels+provides+new+insights+into+the+pharmacology+of+group+III+metabotropic+glutamate+receptors%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Pharm%22%5BJournal%5D)">A novel assay of Gi/o-linked G protein-coupled receptor coupling to potassium channels provides new insights into the pharmacology of group III metabotropic glutamate receptors.</a> Mol. Pharm. 73, 1213-1224 (2008).</li>
<li>Bridal, T. R., Marquilis, M., Wang, X., Donio, M., Sorota, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+human+Ether-%C3%A1-go-go+related+gene+screening+assays+based+on+IonWorks+Quattro+and+thallium+flux%5BTitle%5D)+AND+%22Assay+Drug+Dev.+Technol%22%5BJournal%5D)">Comparison of human Ether-á-go-go related gene screening assays based on IonWorks Quattro and thallium flux.</a> Assay Drug Dev. Technol. 8, 755-765 (2010).</li>
</ol>

利害の衝突が宣言されません。

膜電位感受性蛍光色素がイオンチャネルを調節する薬物9,10を識別するために使用されているが、これはニューロンのGIRKチャネル創薬への応用の最初の報告である。ここに提示GIRKチャネルの蛍光アッセイは、リガンド依存性K +チャネルのスクリーニングのための、高速で信頼性の高いリアルタイムメソッドを提供します。アッセイは、内因性のチャネルを発現している外因性の遺伝子組換えGIRKチャネル11またはクローン細胞株を発現する不死化細胞株（HEK293、CHO等）（AtT20、PC-12）を含むセルの広い範囲で使用するために変更することができます。さらに、このアッセイは、胚性幹細胞と初代培養細胞に薬物をスクリーニングするために適合させることができる。 AtT20セルで使用されるように、アッセイはまた、GIRKチャネル上の複数のGPCRリガンド（ソマトスタチンおよびカルバコール）の研究を可能にするの余分な利点を提供します。任意の蛍光アッセイと同様に、コントロール実験がeに実施しなければならない自家蛍光を配合し、色素分子を有する化合物の直接的な相互作用に起因するエラーを識別するためにア...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名前 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td> DMEM </td><td> CellGro </td><td> 10から013 </td></tr><tr><td>ウマ血清</td><td>インビトロジェン</td><td> 16050-114 </td></tr><tr><td> 96ウェルプレート</td><td>コー​​ニング</td><td> 3603 </td></tr><tr><td>ポリエルリジン</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> P4707 </td></tr><tr><td>ソマトスタチン</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> S9129 </td></tr><tr><td>カルバコール</td><td> Sigma-Aldrich社</td><td> C4382 </td></tr><tr><td> HLB 021から152 </td><td> AnaSpec </td><td> 89300 </td></tr><tr><td> Versette自動化された液体ハンドラ</td><td>サーモフィッシャー</td><td> 650から01 </td></tr><tr><td> Synergy2蛍光プレートリーダー</td><td>バイオテック</td><td></td></tr><tr><td> GEN5分析のoftware </td><td>バイオテック</td><td></td></tr></tbody></table> 表1特定の試薬 ​​や機器の表。

girkチャネルのモジュレーターを同定するための蛍光スクリーニングアッセイ

A Fluorescent Screening Assay for Identifying Modulators of GIRK Channels

Gタンパク質依存性内向き整流K +（GIRK）チャンネルはホルモンや神経伝達物質の広い範囲の細胞のメディエーターとして機能し、脳、心臓、骨格筋、内分泌組織の1,2で表されます。 GIRKチャネルは、それらの細胞膜結合型のリガンド（神経伝達物質、ホルモン、薬物など）、Gタンパク質共役型受容体（GPCR）の結合後に有効になります。この結合は、その後に結合し、GIRKチャネルを活性化するGタンパク質（G iとG o）の刺激を引き起こす。一度GIRKチャネルは、Kの動きを可能にする+外より負になるための静止膜電位を引き起こす細胞からオープンしました。その結果、ニューロンのGIRKチャネルの活性化は、自発的活動電位の形成を減少させ、興奮性神経伝達物質の放出を阻害する。心の中で、GIRKチャネルの活性化は、それによって心拍数を遅くするペースメーカー活性を阻害する。 <pクラス= &quot;jove_content&quot;&gt; GIRKチャネルは、神経因性疼痛治療、薬物中毒、不整脈や他の疾患3の新しい治療薬の開発のための新たな目標を表すものです。しかし、これらのチャネルの薬理学は、主に未踏のままです。抗不整脈薬、抗精神病薬や抗うつ薬を含む薬物の数は、GIRKチャネルをブロックするが、この阻害は選択ではなく、相対的に高い薬物濃度を3で発生します。 ここでは、GIRKチャネルの新たなモジュレーターを同定するためのリアルタイムスクリーニングアッセイを説明します。このアッセイでは、GIRKチャネルを発現神経AtT20細胞は、例えば、ビス- （1,3 - dibutylbarbituric酸）トリメチンオキソノール[DiBAC 4（3）]またはHLB 021から152（ 図1のような膜電位感受性蛍光色素を使用してロードされ。）色素分子は、細胞（ 図1）に強い蛍光を、次の取り込みになります。治療GPCRリガンドと細胞のGIRKチャネルを開くために刺激する。細胞外の結果K +流出は、膜電位がより負と減少する蛍光シグナル（ 図1）になるようになります。したがって、GIRKチャネルを介してK +流出を調節する薬剤は蛍光プレートリーダーを用いてアッセイすることができます。他のイオンチャネルスクリーニングアッセイなど、原子吸光分析法4または放射性トレーサー解析5と異なり、GIRKチャネル蛍光アッセイは、高速リアルタイムかつ安価なスクリーニング法を提供します。

Gタンパク質依存性内向き整流Kと相互作用する薬剤を同定するためのリアルタイムスクリーニングの手順<sup&gt; +</sup&gt;（GIRK）チャンネルが記載されています。アッセイは、GIRKチャネル活性を測定する膜電位感受性蛍光色素を利用しています。この手法は、セルの行数での使用に適応可能である。

GIRKチャネルのモジュレーターを同定するための蛍光スクリーニングアッセイ

Gタンパク質共役型内向き整流カリウム（GIRK）チャネルは、広範なホルモンや神経伝達物質の細胞内媒介因子として機能し、...に発現しています。

この手順の総合的な目的は、grkチャネルを調節する新薬を特定することです。まず、96ウェルプレートにA TT 20細胞を播種することでこれを達成します。次に、Verset液体プレートハンドリングシステムを用いて試験化合物を希釈します。次に、希釈した試験化合物をバーセットを用いて細胞に添加します。最後のステップとして、96ウェルプレートをSynergy 2蛍光プレートリーダーに挿入し、対照溶液およびソマトスタチン溶液をウェルに注入します。最終的に、蛍光プレートリーダーを用いて、ソマトスタチン誘発性の蛍光信号を変化させ、それによってGrkチャネルを調節する化合物を特定します。パッチクランプ法などの既存の手法に対する本手順の利点は、多数の化合物を迅速にスクリーニングし、Gerkチャネルを調節するかどうかを判定できることです。FI侵害受容伝達の抑制につながるGerkチャネル活性化化合物を同定できるため、本手法の意義は疼痛治療へと広がります。96ウェルプレートへのコーティングおよび細胞播種の手順を実演するのは、Maribel Vasquezです。私の研究室の学生がこの手順を開始します。まず、10% horse serumを添加したDMEMを用い、5% CO2濃度の加湿環境下、37 °Cで下垂体ATT 20細胞を培養します。標準的な手順に従い、5〜7日ごとに細胞を継代して培養を維持します。次に、黒色透明ウェルのコーティングを行います。96ウェルプレートの底面に50 µLのポリLリシンを添加します。インキュベーター内で30分間放置し、ウェルを乾燥させます。その後、過剰なポリLリシンを除去し、200 µLの培地を含む96ウェルプレートに、1ウェルあたり30,000 cellsの密度で細胞を播種します。その後、細胞をインキュベーターで3～4日間培養します。吸引装置を用いて、細胞単層から培地をゆっくりと吸引し、次に200 µLの通常バッファー溶液で細胞を洗浄します。続いて、膜電位感受性色素を含むバッファー溶液を200 µLずつそれぞれに添加します。細胞を37°Cで40分間インキュベートします。40分後、ATT20細胞をインキュベーターから取り出して室温に戻し、古い緩衝液を吸引して除去します。その後、MPDを含む新鮮な緩衝液を細胞に加えます。次に、液体ハンドリングシステムを用いて、さまざまな濃度の試験化合物およびコントロール溶液を細胞に添加します。96ウェルプレート内で細胞を試験化合物とともに5分間インキュベートし、蛍光測定を行います。この手順では、96ウェルプレートをBiotech Synergy 2蛍光プレートリーダーに挿入します。励起波長520 nanometers、蛍光波長560 nanometersにて蛍光バックグラウンド信号を取得します。その後、Synergy 2インジェクターシステムを用いて、G PCR Rリガンドまたはコントロール溶液をウェルに添加し、GIRチャネルを活性化させます。次に、302秒間のサンプリング期間にわたり、10秒間隔でデータポイントを収集します。励起波長および蛍光波長にて測定します。アッセイの信頼性を判断するためにZ因子を算出してください。Z因子が0.5から1.0の範囲にある場合、アッセイの質は非常に優れていることを示します。Z因子が0.5未満のプレートは除外されます。解析の結果、蛍光信号を調節した化合物について、内向き整流性カリウムチャネルへの特異性を確認するため、2 mMの塩化バリウムまたは500 nMのテラピンQ存在下で再試験が行われます。ここに示したのは、ソマトスタチンまたはコントロール溶液を添加したATT20細胞において、経時的に測定された代表的なHLB 0 2 1 1 15 2蛍光信号です。Y軸の蛍光強度比は、ソマトスタチンまたはコントロール溶液添加時の信号を、添加前に測定されたベースライン信号で除して算出しました。ここでは、ATT 20細胞を500 nMのTerapin Qで処理した例を示しています。Terapin Qは、Gタンパク質共役受容体チャネルに結合してブロックすることで、ソマトスタチンによる蛍光信号の減少を抑制します。また、ATT 20細胞を20 µMのプロパフェノンで処理した例を示しており、これも同様にソマトスタチンによる蛍光信号の減少を抑制します。この手法を習得し、適切に実施すれば、2時間で完了させることができます。このビデオを視聴することで、蛍光プレートリーダーを用いてgrkチャネルを調節する薬物を同定する方法について十分に理解することができます。

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Research

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Biology

生物学

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ここで説明する蛍光に基づくカルシウム動員アッセイは、オーファンGタンパク質共役受容体（GPCR）の機能的に活性化するリガンド（単数または複数）の同定のための培地スループット逆薬理スクリーニングシステムである。...

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キネティック蛍光ベースの Ca2 +動員試金 G タンパク質共役受容体アゴニスト、アンタゴニスト、アロステリック変調器を識別するために

ここでは、ギャップ ジャンクション変調化学薬品、薬剤の発見および毒性評価の高スループット スクリーニング用に設計された新しいギャップ接合細胞間コミュニケーション試金のためのプロトコルを提案する.

ヨウ化黄色蛍光タンパク質ギャップ結合細胞間コミュニケーション アッセイ

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GPCR-β-アレストリン1/2リアルタイムリビングシステムにおける相互作用をモニタリングし、創薬を加速

このプロトコルは、膜電位の変化を測定することによって電気発生膜タンパク質を研究するための方法を記載しています。このアッセイは、上皮細胞株で内因的に発現する複数のイオンチャネルの機能的読み出しのためのプラットフォームを提供します。...

2つの上皮細胞株における2つの内因性イオンチャネルのハイスループット機能研究のための膜電位の蛍光ベースのアッセイ(英語)

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