Name: カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）を用いてヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定および単離 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 54 s
Description: 学ぶ CFSEを用いたヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定・単離法。フローサイトメトリーで細胞集団を分離し、腫瘍異質性と治療抵抗性の理解に役立つ技術を習得できます。

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この作品は脳腫瘍研究のためのフロリダセンター、脳腫瘍治療と米国立衛生研究所（NIH）のためにプレストンA.ウェルズ·ジュニア·センター（1R21CA141020-01）によってサポートされていました。

1。膠芽腫単一の細胞懸濁液を準備する<ol><li> Gliomasphere文化は前述の2,11,12のようにニューロスフィアアッセイ（NSA）を使用して確立され、維持されます。 </li><li> gliomaspheresを継代するための適切な時期に、球を含む培地を除去し、適切なサイズの滅菌組織培養チューブに入れ、室温で5分間800回転（110 g）で遠心分離した。 </li><li>上清を廃棄し、球のペレットを、0.05％トリプシン-EDTA 1mlに再懸濁し、37℃で3〜5分間水浴中でインキュベートする。 </li><li>大豆トリプシンインヒビターの等量はその後トリプシン活性を停止するために使用されています。 </li><li>細胞懸濁液を穏やかにトリプシン活性の均質性と完全な中和を確実にするために上下にピペッティングします。 </li><li>細胞懸濁液を再び5分間800rpmで遠心分離する。上清を除去し、細胞をNeuroCultの1ミリリットル中に再懸濁されるNSCの基礎培地。 </li><li>単細胞懸濁液の10μlのは、細胞数を数えるために、トリパンブルー90μlと混合される。 </li></ol> 2。携帯トレースカルボキシスクシンイミジルエステル（CFSE）緑色蛍光色素で染色<ol><li>染色されたように各1万個の細胞では、染色試薬1mlを5μMの最終染色濃度を与えるためにNeuroCult NSC基礎培地1mlに5 MM細胞トレースCFSE色素（Molecular Probes社、Invitrogen社製）1μlを添加することにより調製される。 </li><li>細胞を含む染色試薬が均一になるまで十分に混合し、10分間室温でインキュベートする。 </li><li>インキュベーションの間、氷のように冷たいNeuroCult NSCの基礎培地は、急冷溶液として調製されています。 </li><li>染色プロセスを停止するには、氷のように冷たい焼入れ液の約5-10ボリュームがロードされたのCFSE細胞に添加される。 </li><li>次いで、この溶液を5分間800rpmで遠心分離し、上清を廃棄する。 </li><li>目でポイントは、染色が正常に行われたことを示す、色の鮮やかな緑の色合いでチューブの底に細胞のペレットが表示されるはずです。 </li><li>細胞は、5分と上清を廃棄し800rpmで遠心分離、新鮮NeuroCult NSC基礎培地中1-2 mlにペレットを再懸濁することにより洗浄する。この手順を3回洗浄し、合計で繰り返されます。 </li><li>第三洗浄後、細胞をNeuroCult NSC基礎培地と細胞数行われ1mlに再懸濁する。 </li><li> CFSE染色された細胞は、その後、[50,000細胞/ ml]を適切な密度で滅菌組織培養フラスコに播種し、37℃/ 5％CO2の加湿インキュベーター内に配置されます。 </li></ol> 3。 CFSEローディング検証<ol><li> NSAの文化に播種した細胞をCFSE染色を検証するための蛍光顕微鏡下で監視することができます。この段階では、すべてのセルは明るい緑色（ 図1）を示す。から細胞懸濁液の代わりに、ドロップCFSE染色した細胞を顕微鏡スライド上に配置し、蛍光顕微鏡下で細胞を可視化するためにカバーガラスで覆われている可能性があります。 </li><li>成功したCFSE標識はさらに、フローサイトメトリーを介して確認された。各グループ1から5×10 5個の細胞のように多くはCFSE染色の検証のために十分である。 CFSEロードされた細胞と無負荷陰性対照細胞を500μlの合計ボリュームに対して、1つのx-PBSまたはNeuroCult NSC基礎培地中に再懸濁させ、それぞれ別々のFACSチューブ内に配置されます。 </li><li>フローサイトメーターは、関連パラメータのためにそのユーザーマニュアルの指示に基づいて調整される。 CFSEは492 nmと517 nmの発光極大波長の励起極大を有する。 </li><li>まず、アンロードされたコントロール細胞が実行され、取得されたイベントは、前方および側方散乱光（FSC対SSC）とヒストグラムプロットに記録され、主細胞集団（ 図2A）ゲートされます。 </li><li>同様に、CFSEロードされた細胞は、同じパラメータを使用して分析されるsコントロール細胞（ 図2B）に使用される。 </li></ol> 4。遅い分割の分離蛍光活性化細胞選別（FACS）を用いた細胞集団[擁すなわちCFSE]を<ol><li>分裂時には、CFSE強度が減少し、hGBM細胞が緑色蛍光強度（ 図3）のさまざまなレベルを示す細胞から構成されているgliomaspheresを形成しています。 gliomaspheresの直径は約150から200ミクロン（約5〜10日で細胞株の成長率に応じてポストCFSEローディング）の平均サイズに達したら、球を含む培地を除去し、適切なサイズの滅菌組織培養に配置され管し、室温で5分間800rpmで遠心分離した。 </li><li>前の手順で説明されて、細胞がアップミリリットル当たり10 7個の細胞の密度で細胞懸濁液を準備するために、細胞数を、PBS中に再懸濁されるような単一細胞懸濁液を調製する。 </li><li>アフトerはPBSの適切な音量で細胞を再懸濁し、ヨウ化プロピジウム（PI、Sigma社、500μg/ mlの）は、フローサイトメトリーによってソート/分析した場合、死細胞を除外するために細胞懸濁液の1μl/ mlの濃度で添加される。 </li><li>完全NeuroCult NSC媒体の各1ミリリットルを含む2つの15 mlの滅菌組織培養管はソートが遅い分裂細胞（CFSE保持する細胞）と高速分裂細胞（CFSE希釈細胞）を収集するために使用されます。 </li><li>まず、アンロードされた細胞群からの細胞懸濁液を、フローサイトメーターを介して実行されます。 </li><li>細胞（イベント）は、細胞の大部分が流れプロットに含まれるように調整されている前方散乱（FSC）の対側方散乱光（SSC）と両方のパラメーターの電圧パラメータに基づいてプロットされます。 </li><li>死亡または損傷した細胞を排除するために、細胞は、SSCに対し、PIの反応性に基づいてプロットされ、単一の生細胞集団は、PI（負）ゲートされています。 </li><li>その後、均一な細胞集団では、fに基づいて選択されorward散乱（FSC）の対側方散乱光（SSC）。 </li><li>均質な単一生細胞集団を対数目盛で設定されたセル周波数対CFSE強度に基づいてヒストグラムにプロットされます。 CFSEレーザー強度は、0〜100の間には負の信号を配置するために調整されます。 </li><li>同じパラメータと同様のゲーティング戦略を用いて、CFSE標識された細胞は、フローサイトメーターを介して実行されており（ 図4C）を分析。 </li><li>その後、細胞を、全体的な人口の遅い割る人口は（速く分裂している細胞）をCFSE（それぞれCFSE 高上位5％とCFSE 低ボトム85％）を保持する能力に基づいて識別されます。 </li><li>これらの異なる細胞集団は、その後、完全NSC媒体の1ミリリットルを含む個別の15ミリリットル滅菌組織培養管に分類されます。 </li><li>選別された細胞は、その後、5分間800rpmで遠心分離する。 </li><li>上清を捨て、ペレットを適切に再懸濁するpriate媒体の容量（単離されたイベントまたはペレットの大きさの数に応じて）とセル数が実行されます。 </li><li>異なるソート集団由来の細胞は、その後、適切な滅菌組織培養フラスコ内のミリリットル当たり50,000個の細胞を播種し、連続的に継代または下流の実験のために使用される前に5-10日を37℃/ 5％CO2の加湿インキュベーター内に配置されます。 </li></ol> 5。代表的な結果 CFSEをロードした後、すべての細胞が顕微鏡（ 図1）に基づく可視化などの強い緑色蛍光を示す。この緑がかった色があっても肉眼（ビデオ参照）で見ることができます。フローサイトメトリーでこれらの細胞を分析することも、コントロール細胞（ 図2）と比較して非常に強烈な緑色の蛍光を示す。ニューロスフェア培養におけるめっきCFSE細胞読み込まれると、これらの細胞は増殖し、5〜10日間で150から200μmのgliomaspheresを形成している。細胞は、トンを増殖として<html>彼蛍光染料が均等にすべての細胞分裂による蛍光強度の半減につながる、部門により娘細胞の間で分配される。膠芽腫は、機能的に異質であり、異なる時間スケールで増殖している細胞で構成されています。このプロトコールに記載された方法は、それぞれのCFSEを希釈または保持する能力（ 図3、また、ビデオを参照）のおかげで、高速と低速の分裂細胞を同定および単離するために1つを可能にします。 アンロードされた細胞と比較してのCFSEロードされた細胞から生成解離gliomaspheresのフローサイトメトリー分析は、多様なCFSE保持特性（ 図4）を示しています。ファスト分裂細胞（下85％）または低速分裂細胞（上位5％ - 高 CFSE）ニューロスフィアアッセイ条件（ 図5）で培養したときの能力を形成する展示gliomapshere。 グレ1 &quot;/&gt; 図1解離腫瘍細胞直ちにCFSE色素をロードした後。細胞が正常なラベリングを示す鮮やかな緑色を呈する。元の倍率、10×。 <img src="/files/ftp_upload/3918/3918fig2.jpg" alt="図2" /> 図2：フローサイトメトリーを用いてCFSEローディング確認。）無負荷細胞、B）CFSEは、ロードされた対無負荷の細胞でCFSE蛍光強度を比較すると）細胞とCをロードしました 。標識および非標識細胞との間の蛍光強度の大きさの違いのいくつかの注文があることに注意してください。 <img src="/files/ftp_upload/3918/3918fig3.jpg" alt="図3" /> 図3：6日間めっき後のCFSEロードされた細胞に由来する代表gliomasphere。いくつかの細胞は非常に明るく、CFSE染色を示す。元の倍率、63×。 <imグラムSRC = &quot;/ files/ftp_upload/3918/3918fig4.jpgの&quot; alt = &quot;図4&quot; /&gt; 図4代表的フローサイトメトリープロット/ 6日CFSE染色後に高速と低速に分裂している細胞を単離するためのヒストグラム。死亡または損傷を受けた細胞を除外するための全体の細胞集団を表示する）FSC対SSC、B）は 、SSC対PIの反応性、 C）のゲートにFSC対SSC均質生きた細胞集団、D）は 6日、陰性対照と比較して大きい蛍光強度によって証明されるようにCFSE標識した後、CFSE保持する細胞が存在することを示します。ヒストグラムもCFSE強度が時間とともに減衰していることを示しています。E）は CFSE保持する細胞（上位5％）およびCFSE希釈セル（ボトム85％）を識別するためのゲーティング戦略を表示するヒストグラム。 <img src="/files/ftp_upload/3918/3918fig5.jpg" alt="図5" /> 図5から発生する代表gliomaspheres <stronG&gt; A）の高速分裂細胞（CFSE 低 ）とB）の遅い分裂細胞（CFSE 高 ）。元の倍率：それぞれ10倍と20倍C）が代表細胞数が通過時に速いか遅いか分裂細胞由来の培養物から得られる。 P &lt;0.05、t検定。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3918/3918fig5large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。

<ol><li>Tian, T., Olson, S., Whitacre, J. M., Harding, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+origins+of+cancer+robustness+and+evolvability%5BTitle%5D)+AND+%22Integr.+Biol.+%28Camb%29%22%5BJournal%5D)">The origins of cancer robustness and evolvability.</a> Integr. Biol. (Camb). 3, 17-30 (2011).</li>
<li>Deleyrolle, L. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evidence+for+label-retaining+tumour-initiating+cells+in+human+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">Evidence for label-retaining tumour-initiating cells in human glioblastoma.</a> Brain. 134 (Pt. 5), 1331-1343 (2011).</li>
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<li>Dembinski, J. L., Krauss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+and+functional+analysis+of+a+slow+cycling+stem+cell-like+subpopulation+in+pancreas+adenocarcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Exp.+Metastasis%22%5BJournal%5D)">Characterization and functional analysis of a slow cycling stem cell-like subpopulation in pancreas adenocarcinoma.</a> Clin. Exp. Metastasis. 26, 611-623 (2009).</li>
<li>Graham, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primitive%2C+quiescent%2C+Philadelphia-positive+stem+cells+from+patients+with+chronic+myeloid+leukemia+are+insensitive+to+STI571+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Primitive, quiescent, Philadelphia-positive stem cells from patients with chronic myeloid leukemia are insensitive to STI571 in vitro.</a> Blood. 99, 319-325 (2002).</li>
<li>Holyoake, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primitive+quiescent+leukemic+cells+from+patients+with+chronic+myeloid+leukemia+spontaneously+initiate+factor-independent+growth+in+vitro+in+association+with+up-regulation+of+expression+of+interleukin-3%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Primitive quiescent leukemic cells from patients with chronic myeloid leukemia spontaneously initiate factor-independent growth in vitro in association with up-regulation of expression of interleukin-3.</a> Blood. 97, 720-728 (2001).</li>
<li>Parish, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+dyes+for+lymphocyte+migration+and+proliferation+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Fluorescent dyes for lymphocyte migration and proliferation studies.</a> Immunol. Cell Biol. 77, 499-508 (1999).</li>
<li>Lyons, A. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysing+cell+division+in+vivo+and+in+vitro+using+flow+cytometric+measurement+of+CFSE+dye+dilution%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol.+Methods%22%5BJournal%5D)">Analysing cell division in vivo and in vitro using flow cytometric measurement of CFSE dye dilution.</a> J. Immunol. Methods. 243, 147-154 (2000).</li>
<li>Azari, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+Expansion+of+Human+Glioblastoma+Multiforme+Tumor+Cells+Using+the+Neurosphere+Assay%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation and Expansion of Human Glioblastoma Multiforme Tumor Cells Using the Neurosphere Assay.</a> J. Vis. Exp. (56), e3633-e3633 (2011).</li>
<li>Azari, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+Expansion+of+the+Adult+Mouse+Neural+Stem+Cells+Using+the+Neurosphere+Assay%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation and Expansion of the Adult Mouse Neural Stem Cells Using the Neurosphere Assay.</a> J. Vis. Exp. (45), e2393-e2393 (2010).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

研究数の増加は、腫瘍形成、治療抵抗2月8日に貢献癌の細胞の遅い分割するサブコンパートメントの重要性を実証している。したがって、それは別の成長率と集団を比較するために、より一般的に細胞またはこの特定の亜集団の研究を可能にする実験方法を記述し、標準化することが重要です。細胞分裂の彼らの率に基づいて、細胞の亜分画を同定および単離するために、CFSEを使用すると、腫瘍に記載されて異質の我々の理解を進めるために支援し、これらの特定の細胞画分を特徴付ける促進するための出発点です。このプロトコルでは、神経膠芽腫の中で遅い分割母集団を特定し、分離の例を挙げたが、このプロトコルはまた、乳癌、膵臓癌および皮膚癌を含むがこれらに限定されていない他の腫瘍細胞にも適用することができる。これらの集団の下流の解析を行うことができるとFUNCTを含めることができます増殖能2、腫瘍形成能2、治療の区別、（エピ）遺伝的比較を比較ional研究。この方法論はまた、非癌性のシステムで使用することができますおよび体幹/前駆細胞には、例えば、適用することができます。 <p class="jove_conte...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> タイプ </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td> NeuroCult NSC基礎培地（ヒト） </td><td>培地</td><td>電池技術を食い止める</td><td> 05750 </td></tr><tr><td> NeuroCult NSCの増殖サプリメント（人間） </td><td>培地サプリメント</td><td>電池技術を食い止める</td><td> 05753 </td></tr><tr><td> 0.05％トリプシン-EDTA </td><td>試薬</td><td>ギブコ</td><td> 25300-062 </td></tr><tr><td>ダイズトリプシン阻害因子</td><td>試薬</td><td>シグマ</td><td> T6522 </td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>試薬</td><td>ギブコ</td><td> 15140-122 </td></tr><tr><td> T25フラスコ</td><td>文化ウェア</td><td> Nalgeヌンク国際</td><td> 136196 </td></tr><tr><td> T80フラスコ</td><td>文化ウェア</td><td> Nalgeヌンク国際</td><td> 178905 </td></tr><tr><td> 15 mlチューブ</td><td>文化ウェア</td><td> BDファルコン</td><td> 352096 </td></tr><tr><td> 50mlチューブ</td><td>文化ウェア</td><td> BDファルコン</td><td> 352070 </td></tr><tr><td> EGF </td><td>増殖因子</td><td>研究開発</td><td> 2028-EG </td></tr><tr><td> CellTrace CFSE細胞増殖キット</td><td>蛍光細胞分裂が追跡用色素</td><td> Molecular Probes社、Invitrogen社</td><td> C34554 </td></tr></tbody></table>

カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（cfse）を用いてヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定および単離

Identification and Isolation of Slow-Dividing Cells in Human Glioblastoma Using Carboxy Fluorescein Succinimidyl Ester (CFSE)

腫瘍の不均一性は、腫瘍の堅牢性を支える基本的な特徴を表しており、治療戦略1の発展に中心的な障害となる。腫瘍の不均一性の問題を克服するためには、特定の疾患の病態を推進し、臨床的に関連するターゲットを表す腫瘍集団の表現型、（エピ）の遺伝的および機能的同定および特徴付けを可能にするアッセイおよびツールを開発することが不可欠である。それは、腫瘍は細胞分裂の周波数の異なる細胞の異なる亜分画を示すこと、および低速サイクリングという機能的な基準を積極的に脳を含めたいくつかの癌における腫瘍形成能力に関連付けられていることを今では十分に確立されている乳房、皮膚、膵臓ならびに白血病2-8。蛍光色素カルボキシスクシンイミジルエステル（CFSE）は、in vitroおよび血液媒介トンを用いたin vivo での細胞の分裂頻度を追跡するために使用されてきたumorsや膠芽腫などの固形腫瘍2,7,8。 CFSEの細胞透過性の非蛍光プロドラッグは、安定したアミド結合9を形成する細胞内のアミン基とのスクシンイミジル部分との反応によってタンパク質と共有結合することにより細胞内に保持される蛍光化合物に細胞内エステラーゼによって変換されます。蛍光染料が均等にすべての細胞分裂による蛍光強度の半減につながる、部門により娘細胞の間で分配される。これは、部門10の8〜10ラウンドまでの細胞周期の周波数のトラッキングが可能です。 CFSE保持能力は、癌幹細胞活性2に濃縮されることが実証遅いサイクリング亜集団（上位5％の色素保持する細胞）を同定し、単離する脳腫瘍細胞で使用されました。 このプロトコルは、人間の文化の中でglio CFSEで細胞を染色する技術と、個々の集団の単離を記載芽腫（GBM）の由来のフローサイトメトリー2を使用して異なる分裂速度 ​​を有する細胞。技術はCFSE標識を保持する能力によって細胞の脳腫瘍スローサイクリング人口を同定および単離するのに役立っています。

このビデオプロトコルは、細胞分裂の頻度に基づいて、ヒト神経膠芽腫の細胞の異なるサブ集団の同定と分離するための蛍光色素カルボキシスクシンイミジルエステル（CFSE）のアプリケーションを示しています。

カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）を用いてヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定および単離

腫瘍の不均一性は、腫瘍の堅牢性を支える基本的な特性であり、治療法の開発における中心的な障害となっています。

このビデオプロトコルでは、カルボキシフルオレセインジアセテート（CFSE）を用いて、ヒト膠芽腫における低分裂細胞を同定および単離する方法を解説します。まず、ニューロスフィアアッセイを用いて膠芽腫腫瘍細胞を培養します。その後、得られたスフィアを単一細胞に解離させ、CFSEで染色します。CFSEを導入した細胞を再び播種します。ニューロスフィア培養では、得られたスフィアを単一細胞に解離させ、フローサイトメーターで解析します。細胞分裂に伴う蛍光強度の変化に基づいて、分裂速度の遅い細胞と速い細胞を識別し、分取します。頻度の不均一性は、がんにおける本質的な特徴です。この不均一性は腫瘍の堅牢性を支えており、完全に効果的な治療法の開発にとって大きな障害となっています。したがって、遺伝的、表現型的、および機能的に定義されるこの不均一性を研究し理解するためのツールやアッセイを開発することが極めて重要です。このビデオプロトコルでは、fluesおよびI-C-F-S-Cを用いたスタンディング法について説明します。この手法により、異なる機能的特性を持つヒト神経膠芽腫（グリオブラストーマ）由来細胞の培養物中から、個々のサブポピュレーションをフローサイトメトリーで同定および分離することが可能になります。我々はこの手法を用いて、腫瘍の開始に関連することが示されている機能的特性である、低分裂率を示す腫瘍細胞集団を単離し、特性解析を行いました。Gliomas sphere Cultureは、画面上のアドレスにある別のビデオで説明されているneuros sphere assayを用いて構築および維持されます。神経膠腫のスフィアの直径が150～200 µmに達したら、スフィアを含む培地を除去して適切なサイズの滅菌組織培養チューブに移し、室温で800 RPMまたは110 Gで5分間遠心分離します。その後、上清を捨て、スフィアのペレットを1 mLの予温したtrypsin EDTAに再懸濁し、37 °Cのウォーターバスで3～5分間インキュベートします。次に、等量のトリプシン阻害剤を加え、ピペッティングで穏やかに混ぜ合わせることでスフィアを解離させます。細胞懸濁液を再度遠心分離します。上清を除去し、細胞を1 mLのニューロステム細胞基礎培地で再懸濁します。単一細胞懸濁液10 µLを90 µLのトリパンブルーとよく混ぜ合わせ、染色対象の細胞100万個ごとに細胞計数を実施します。5 mMのCFSE染料1 µLを神経幹細胞基礎培地1 mLに添加し、最終染色濃度を5 µMとした染色試薬1 mLを調製します。その後、染色溶液を適切に混合します。次に、必要数の細胞を別のチューブに移して遠心分離し、上清を除去します。次に、CFSE染色液をペレットに加えて均一になるまで穏やかに混合し、室温で10分間インキュベートして染色工

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医学

CFSEは共有結合蛍光色素、カルボキシで長寿命の細胞内分子にラベルを付けます。このように、CFSE標識細胞が分裂するときに、その子孫は、それによって細胞分裂を評価するために使用できる蛍光の半分の量を、持っている。この資料では、通常CFSEでマウスのリンパ球を標識するために使用される手続きを説明します。...

リンパ球増殖を監視するためのカルボキシフルオレセインジアセテートスクシンイミジルエステル（CFSE）の使用

このビデオでは、神経膠腫細胞を遺伝子操作して赤外線蛍光タンパク質またはiRFPを発現させるためのプロトコルについて説明します。これらの蛍光タグ付き神経膠腫細胞は、脳腫瘍の発生を理解するための深部組織イメージングに有用です。...

神経膠腫細胞の蛍光標識:深部組織イメージングのための蛍光タンパク質を発現する神経膠腫細胞を得るためのレンチウイルスベクターベースのトランスフェクション法

出典:Pericoli, G. et.al., 小児びまん性正中神経膠腫の生3D細胞免疫細胞化学アッセイ.J. Vis. Exp.

小児神経膠腫細胞遊走を可視化するための免疫細胞化学ベースのイメージング

出典: Parker, J. J., et al. 抗侵襲薬の腫瘍細胞遊走と患者特異的効果を研究するためのヒト神経膠芽腫器官型スライス培養モデル。J. Vis. 経験。(2017年)このビデオでは、共焦点顕微鏡による緑色蛍光タンパク質 (GFP)...

タイムラプス走査共焦点顕微鏡を使用した神経膠芽腫組織における腫瘍細胞遊走のイメージング

初期の脳の腫瘍微小環境を入力する免疫細胞の数および活性化状態に対する時間依存の定量的データをもたらす神経膠腫浸潤末梢血単核細胞の単離およびフローサイトメトリー分析のための簡単​​な方法は、ここに提示しました。...

神経膠腫浸潤末梢血単核細胞の単離およびフローサイトメトリー分析

神経膠芽腫幹細胞 (GSCs) のグリア分化を促進する小さい分子の同定の効率的なスクリーニングのプロトコルが表示されます。アッセイは、人間の GFAP プロモーターによって強化された GFP (eGFP)...

流れの Cytometry ベースの医薬品スクリーニング システム神経膠芽腫幹細胞の細胞分化を促進する小さい分子の同定に関する研究

腫瘍細胞の同所性頭蓋内注入は、脳腫瘍生物学、進行、進化、および治療反応を研究するがん研究に使用されています。リアルタイム生体イメージングと定量腫瘍の臨床神経膠芽腫モデルで質量を提供する蛍光分子腫瘍異種移植片のトモグラフィーをご紹介します。...

膠芽腫の異種移植片の生体内イメージング用蛍光分子トモグラフィー

ここで提示される、色素希釈を用いた抗原タンパク質またはペプチドに応答して増殖CD4+T細胞を測定するためのプロトコルである。このアッセイは、特に希少な抗原特異的T細胞に対して感受性があり、抗原特異的細胞のクローニングを容易にするために改変することができる。...

カルボキシフルオレスチンスクシニミジルエステルを用いたヒト抗原特異的CD4+T細胞の増殖の定量化

ここでは、パターン化されたニューロン上で神経膠芽腫(GBM)の移行を分析するための使いやすい共培養アッセイを提示する。我々は、ニューロン上のGBM細胞移動を容易に定量化するためのFiJiソフトウェアでマクロを開発し、ニューロンがGBM細胞侵襲能力を変更することを観察した。...

パターン化ニューロン上の神経膠芽腫幹細胞の共培養による移動と細胞相互作用の研究

脊椎動物の脳組織に侵入する膠芽腫(GBM)細胞における微小管動態のライブイメージングを可能にする技術を報告する。蛍光タグ付きGBM細胞の透明なゼブラフィッシュ脳への同所性注射と高解像度の生体内イメージングを組み合わせることで、 in situ...

ゼブラフィッシュ脳に侵入する膠芽腫細胞における微小管動態のライブイメージング

新たに診断され再発した腫瘍から生成された患者由来の磁気膠腫を用いて、3次元膠芽腫移動モデルを提示します。このプラットフォームは、患者特有の移動動態の可視化と治療効果の評価を可能にします。このアッセイは移動後に多重化され、タンパク質の局在化や発現パターンを評価することができます。...

磁気ナノ粒子媒介の球状定在を用いた低酸素条件下での再現可能な3D膠芽腫移動アッセイ

学ぶ CFSEを用いたヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定・単離法。フローサイトメトリーで細胞集団を分離し、腫瘍異質性と治療抵抗性の理解に役立つ技術を習得できます。

カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）を用いてヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定および単離

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