Name: カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）を用いてヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定および単離 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 54 s
Description: 学ぶ CFSEを用いたヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定・単離法。フローサイトメトリーで細胞集団を分離し、腫瘍異質性と治療抵抗性の理解に役立つ技術を習得できます。

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この作品は脳腫瘍研究のためのフロリダセンター、脳腫瘍治療と米国立衛生研究所（NIH）のためにプレストンA.ウェルズ·ジュニア·センター（1R21CA141020-01）によってサポートされていました。

1。膠芽腫単一の細胞懸濁液を準備する<ol><li> Gliomasphere文化は前述の2,11,12のようにニューロスフィアアッセイ（NSA）を使用して確立され、維持されます。 </li><li> gliomaspheresを継代するための適切な時期に、球を含む培地を除去し、適切なサイズの滅菌組織培養チューブに入れ、室温で5分間800回転（110 g）で遠心分離した。 </li><li>上清を廃棄し、球のペレットを、0.05％トリプシン-EDTA 1mlに再懸濁し、37℃で3〜5分間水浴中でインキュベートする。 </li><li>大豆トリプシンインヒビターの等量はその後トリプシン活性を停止するために使用されています。 </li><li>細胞懸濁液を穏やかにトリプシン活性の均質性と完全な中和を確実にするために上下にピペッティングします。 </li><li>細胞懸濁液を再び5分間800rpmで遠心分離する。上清を除去し、細胞をNeuroCultの1ミリリットル中に再懸濁されるNSCの基礎培地。 </li><li>単細胞懸濁液の10μlのは、細胞数を数えるために、トリパンブルー90μlと混合される。 </li></ol> 2。携帯トレースカルボキシスクシンイミジルエステル（CFSE）緑色蛍光色素で染色<ol><li>染色されたように各1万個の細胞では、染色試薬1mlを5μMの最終染色濃度を与えるためにNeuroCult NSC基礎培地1mlに5 MM細胞トレースCFSE色素（Molecular Probes社、Invitrogen社製）1μlを添加することにより調製される。 </li><li>細胞を含む染色試薬が均一になるまで十分に混合し、10分間室温でインキュベートする。 </li><li>インキュベーションの間、氷のように冷たいNeuroCult NSCの基礎培地は、急冷溶液として調製されています。 </li><li>染色プロセスを停止するには、氷のように冷たい焼入れ液の約5-10ボリュームがロードされたのCFSE細胞に添加される。 </li><li>次いで、この溶液を5分間800rpmで遠心分離し、上清を廃棄する。 </li><li>目でポイントは、染色が正常に行われたことを示す、色の鮮やかな緑の色合いでチューブの底に細胞のペレットが表示されるはずです。 </li><li>細胞は、5分と上清を廃棄し800rpmで遠心分離、新鮮NeuroCult NSC基礎培地中1-2 mlにペレットを再懸濁することにより洗浄する。この手順を3回洗浄し、合計で繰り返されます。 </li><li>第三洗浄後、細胞をNeuroCult NSC基礎培地と細胞数行われ1mlに再懸濁する。 </li><li> CFSE染色された細胞は、その後、[50,000細胞/ ml]を適切な密度で滅菌組織培養フラスコに播種し、37℃/ 5％CO2の加湿インキュベーター内に配置されます。 </li></ol> 3。 CFSEローディング検証<ol><li> NSAの文化に播種した細胞をCFSE染色を検証するための蛍光顕微鏡下で監視することができます。この段階では、すべてのセルは明るい緑色（ 図1）を示す。から細胞懸濁液の代わりに、ドロップCFSE染色した細胞を顕微鏡スライド上に配置し、蛍光顕微鏡下で細胞を可視化するためにカバーガラスで覆われている可能性があります。 </li><li>成功したCFSE標識はさらに、フローサイトメトリーを介して確認された。各グループ1から5×10 5個の細胞のように多くはCFSE染色の検証のために十分である。 CFSEロードされた細胞と無負荷陰性対照細胞を500μlの合計ボリュームに対して、1つのx-PBSまたはNeuroCult NSC基礎培地中に再懸濁させ、それぞれ別々のFACSチューブ内に配置されます。 </li><li>フローサイトメーターは、関連パラメータのためにそのユーザーマニュアルの指示に基づいて調整される。 CFSEは492 nmと517 nmの発光極大波長の励起極大を有する。 </li><li>まず、アンロードされたコントロール細胞が実行され、取得されたイベントは、前方および側方散乱光（FSC対SSC）とヒストグラムプロットに記録され、主細胞集団（ 図2A）ゲートされます。 </li><li>同様に、CFSEロードされた細胞は、同じパラメータを使用して分析されるsコントロール細胞（ 図2B）に使用される。 </li></ol> 4。遅い分割の分離蛍光活性化細胞選別（FACS）を用いた細胞集団[擁すなわちCFSE]を<ol><li>分裂時には、CFSE強度が減少し、hGBM細胞が緑色蛍光強度（ 図3）のさまざまなレベルを示す細胞から構成されているgliomaspheresを形成しています。 gliomaspheresの直径は約150から200ミクロン（約5〜10日で細胞株の成長率に応じてポストCFSEローディング）の平均サイズに達したら、球を含む培地を除去し、適切なサイズの滅菌組織培養に配置され管し、室温で5分間800rpmで遠心分離した。 </li><li>前の手順で説明されて、細胞がアップミリリットル当たり10 7個の細胞の密度で細胞懸濁液を準備するために、細胞数を、PBS中に再懸濁されるような単一細胞懸濁液を調製する。 </li><li>アフトerはPBSの適切な音量で細胞を再懸濁し、ヨウ化プロピジウム（PI、Sigma社、500μg/ mlの）は、フローサイトメトリーによってソート/分析した場合、死細胞を除外するために細胞懸濁液の1μl/ mlの濃度で添加される。 </li><li>完全NeuroCult NSC媒体の各1ミリリットルを含む2つの15 mlの滅菌組織培養管はソートが遅い分裂細胞（CFSE保持する細胞）と高速分裂細胞（CFSE希釈細胞）を収集するために使用されます。 </li><li>まず、アンロードされた細胞群からの細胞懸濁液を、フローサイトメーターを介して実行されます。 </li><li>細胞（イベント）は、細胞の大部分が流れプロットに含まれるように調整されている前方散乱（FSC）の対側方散乱光（SSC）と両方のパラメーターの電圧パラメータに基づいてプロットされます。 </li><li>死亡または損傷した細胞を排除するために、細胞は、SSCに対し、PIの反応性に基づいてプロットされ、単一の生細胞集団は、PI（負）ゲートされています。 </li><li>その後、均一な細胞集団では、fに基づいて選択されorward散乱（FSC）の対側方散乱光（SSC）。 </li><li>均質な単一生細胞集団を対数目盛で設定されたセル周波数対CFSE強度に基づいてヒストグラムにプロットされます。 CFSEレーザー強度は、0〜100の間には負の信号を配置するために調整されます。 </li><li>同じパラメータと同様のゲーティング戦略を用いて、CFSE標識された細胞は、フローサイトメーターを介して実行されており（ 図4C）を分析。 </li><li>その後、細胞を、全体的な人口の遅い割る人口は（速く分裂している細胞）をCFSE（それぞれCFSE 高上位5％とCFSE 低ボトム85％）を保持する能力に基づいて識別されます。 </li><li>これらの異なる細胞集団は、その後、完全NSC媒体の1ミリリットルを含む個別の15ミリリットル滅菌組織培養管に分類されます。 </li><li>選別された細胞は、その後、5分間800rpmで遠心分離する。 </li><li>上清を捨て、ペレットを適切に再懸濁するpriate媒体の容量（単離されたイベントまたはペレットの大きさの数に応じて）とセル数が実行されます。 </li><li>異なるソート集団由来の細胞は、その後、適切な滅菌組織培養フラスコ内のミリリットル当たり50,000個の細胞を播種し、連続的に継代または下流の実験のために使用される前に5-10日を37℃/ 5％CO2の加湿インキュベーター内に配置されます。 </li></ol> 5。代表的な結果 CFSEをロードした後、すべての細胞が顕微鏡（ 図1）に基づく可視化などの強い緑色蛍光を示す。この緑がかった色があっても肉眼（ビデオ参照）で見ることができます。フローサイトメトリーでこれらの細胞を分析することも、コントロール細胞（ 図2）と比較して非常に強烈な緑色の蛍光を示す。ニューロスフェア培養におけるめっきCFSE細胞読み込まれると、これらの細胞は増殖し、5〜10日間で150から200μmのgliomaspheresを形成している。細胞は、トンを増殖として<html>彼蛍光染料が均等にすべての細胞分裂による蛍光強度の半減につながる、部門により娘細胞の間で分配される。膠芽腫は、機能的に異質であり、異なる時間スケールで増殖している細胞で構成されています。このプロトコールに記載された方法は、それぞれのCFSEを希釈または保持する能力（ 図3、また、ビデオを参照）のおかげで、高速と低速の分裂細胞を同定および単離するために1つを可能にします。 アンロードされた細胞と比較してのCFSEロードされた細胞から生成解離gliomaspheresのフローサイトメトリー分析は、多様なCFSE保持特性（ 図4）を示しています。ファスト分裂細胞（下85％）または低速分裂細胞（上位5％ - 高 CFSE）ニューロスフィアアッセイ条件（ 図5）で培養したときの能力を形成する展示gliomapshere。 グレ1 &quot;/&gt; 図1解離腫瘍細胞直ちにCFSE色素をロードした後。細胞が正常なラベリングを示す鮮やかな緑色を呈する。元の倍率、10×。 <img src="/files/ftp_upload/3918/3918fig2.jpg" alt="図2" /> 図2：フローサイトメトリーを用いてCFSEローディング確認。）無負荷細胞、B）CFSEは、ロードされた対無負荷の細胞でCFSE蛍光強度を比較すると）細胞とCをロードしました 。標識および非標識細胞との間の蛍光強度の大きさの違いのいくつかの注文があることに注意してください。 <img src="/files/ftp_upload/3918/3918fig3.jpg" alt="図3" /> 図3：6日間めっき後のCFSEロードされた細胞に由来する代表gliomasphere。いくつかの細胞は非常に明るく、CFSE染色を示す。元の倍率、63×。 <imグラムSRC = &quot;/ files/ftp_upload/3918/3918fig4.jpgの&quot; alt = &quot;図4&quot; /&gt; 図4代表的フローサイトメトリープロット/ 6日CFSE染色後に高速と低速に分裂している細胞を単離するためのヒストグラム。死亡または損傷を受けた細胞を除外するための全体の細胞集団を表示する）FSC対SSC、B）は 、SSC対PIの反応性、 C）のゲートにFSC対SSC均質生きた細胞集団、D）は 6日、陰性対照と比較して大きい蛍光強度によって証明されるようにCFSE標識した後、CFSE保持する細胞が存在することを示します。ヒストグラムもCFSE強度が時間とともに減衰していることを示しています。E）は CFSE保持する細胞（上位5％）およびCFSE希釈セル（ボトム85％）を識別するためのゲーティング戦略を表示するヒストグラム。 <img src="/files/ftp_upload/3918/3918fig5.jpg" alt="図5" /> 図5から発生する代表gliomaspheres <stronG&gt; A）の高速分裂細胞（CFSE 低 ）とB）の遅い分裂細胞（CFSE 高 ）。元の倍率：それぞれ10倍と20倍C）が代表細胞数が通過時に速いか遅いか分裂細胞由来の培養物から得られる。 P &lt;0.05、t検定。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/3918/3918fig5large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。

<ol><li>Tian, T., Olson, S., Whitacre, J. M., Harding, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+origins+of+cancer+robustness+and+evolvability%5BTitle%5D)+AND+%22Integr.+Biol.+%28Camb%29%22%5BJournal%5D)">The origins of cancer robustness and evolvability.</a> Integr. Biol. (Camb). 3, 17-30 (2011).</li>
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</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

研究数の増加は、腫瘍形成、治療抵抗2月8日に貢献癌の細胞の遅い分割するサブコンパートメントの重要性を実証している。したがって、それは別の成長率と集団を比較するために、より一般的に細胞またはこの特定の亜集団の研究を可能にする実験方法を記述し、標準化することが重要です。細胞分裂の彼らの率に基づいて、細胞の亜分画を同定および単離するために、CFSEを使用すると、腫瘍に記載されて異質の我々の理解を進めるために支援し、これらの特定の細胞画分を特徴付ける促進するための出発点です。このプロトコルでは、神経膠芽腫の中で遅い分割母集団を特定し、分離の例を挙げたが、このプロトコルはまた、乳癌、膵臓癌および皮膚癌を含むがこれらに限定されていない他の腫瘍細胞にも適用することができる。これらの集団の下流の解析を行うことができるとFUNCTを含めることができます増殖能2、腫瘍形成能2、治療の区別、（エピ）遺伝的比較を比較ional研究。この方法論はまた、非癌性のシステムで使用することができますおよび体幹/前駆細胞には、例えば、適用することができます。 <p class="jove_conte...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> タイプ </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td> NeuroCult NSC基礎培地（ヒト） </td><td>培地</td><td>電池技術を食い止める</td><td> 05750 </td></tr><tr><td> NeuroCult NSCの増殖サプリメント（人間） </td><td>培地サプリメント</td><td>電池技術を食い止める</td><td> 05753 </td></tr><tr><td> 0.05％トリプシン-EDTA </td><td>試薬</td><td>ギブコ</td><td> 25300-062 </td></tr><tr><td>ダイズトリプシン阻害因子</td><td>試薬</td><td>シグマ</td><td> T6522 </td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td>試薬</td><td>ギブコ</td><td> 15140-122 </td></tr><tr><td> T25フラスコ</td><td>文化ウェア</td><td> Nalgeヌンク国際</td><td> 136196 </td></tr><tr><td> T80フラスコ</td><td>文化ウェア</td><td> Nalgeヌンク国際</td><td> 178905 </td></tr><tr><td> 15 mlチューブ</td><td>文化ウェア</td><td> BDファルコン</td><td> 352096 </td></tr><tr><td> 50mlチューブ</td><td>文化ウェア</td><td> BDファルコン</td><td> 352070 </td></tr><tr><td> EGF </td><td>増殖因子</td><td>研究開発</td><td> 2028-EG </td></tr><tr><td> CellTrace CFSE細胞増殖キット</td><td>蛍光細胞分裂が追跡用色素</td><td> Molecular Probes社、Invitrogen社</td><td> C34554 </td></tr></tbody></table>

カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（cfse）を用いてヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定および単離

Identification and Isolation of Slow-Dividing Cells in Human Glioblastoma Using Carboxy Fluorescein Succinimidyl Ester (CFSE)

腫瘍の不均一性は、腫瘍の堅牢性を支える基本的な特徴を表しており、治療戦略1の発展に中心的な障害となる。腫瘍の不均一性の問題を克服するためには、特定の疾患の病態を推進し、臨床的に関連するターゲットを表す腫瘍集団の表現型、（エピ）の遺伝的および機能的同定および特徴付けを可能にするアッセイおよびツールを開発することが不可欠である。それは、腫瘍は細胞分裂の周波数の異なる細胞の異なる亜分画を示すこと、および低速サイクリングという機能的な基準を積極的に脳を含めたいくつかの癌における腫瘍形成能力に関連付けられていることを今では十分に確立されている乳房、皮膚、膵臓ならびに白血病2-8。蛍光色素カルボキシスクシンイミジルエステル（CFSE）は、in vitroおよび血液媒介トンを用いたin vivo での細胞の分裂頻度を追跡するために使用されてきたumorsや膠芽腫などの固形腫瘍2,7,8。 CFSEの細胞透過性の非蛍光プロドラッグは、安定したアミド結合9を形成する細胞内のアミン基とのスクシンイミジル部分との反応によってタンパク質と共有結合することにより細胞内に保持される蛍光化合物に細胞内エステラーゼによって変換されます。蛍光染料が均等にすべての細胞分裂による蛍光強度の半減につながる、部門により娘細胞の間で分配される。これは、部門10の8〜10ラウンドまでの細胞周期の周波数のトラッキングが可能です。 CFSE保持能力は、癌幹細胞活性2に濃縮されることが実証遅いサイクリング亜集団（上位5％の色素保持する細胞）を同定し、単離する脳腫瘍細胞で使用されました。 このプロトコルは、人間の文化の中でglio CFSEで細胞を染色する技術と、個々の集団の単離を記載芽腫（GBM）の由来のフローサイトメトリー2を使用して異なる分裂速度 ​​を有する細胞。技術はCFSE標識を保持する能力によって細胞の脳腫瘍スローサイクリング人口を同定および単離するのに役立っています。

このビデオプロトコルは、細胞分裂の頻度に基づいて、ヒト神経膠芽腫の細胞の異なるサブ集団の同定と分離するための蛍光色素カルボキシスクシンイミジルエステル（CFSE）のアプリケーションを示しています。

カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）を用いてヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定および単離

腫瘍の不均一性は、腫瘍の堅牢性を支える基本的な特性であり、治療法の開発における中心的な障害となっています。

このビデオプロトコルでは、カルボキシフルオレセインジアセテート（CFSE）を用いて、ヒト膠芽腫における低分裂細胞を同定および単離する方法を解説します。まず、ニューロスフィアアッセイを用いて膠芽腫腫瘍細胞を培養します。その後、得られたスフィアを単一細胞に解離させ、CFSEで染色します。CFSEを導入した細胞を再び播種します。ニューロスフィア培養では、得られたスフィアを単一細胞に解離させ、フローサイトメーターで解析します。細胞分裂に伴う蛍光強度の変化に基づいて、分裂速度の遅い細胞と速い細胞を識別し、分取します。頻度の不均一性は、がんにおける本質的な特徴です。この不均一性は腫瘍の堅牢性を支えており、完全に効果的な治療法の開発にとって大きな障害となっています。したがって、遺伝的、表現型的、および機能的に定義されるこの不均一性を研究し理解するためのツールやアッセイを開発することが極めて重要です。このビデオプロトコルでは、fluesおよびI-C-F-S-Cを用いたスタンディング法について説明します。この手法により、異なる機能的特性を持つヒト神経膠芽腫（グリオブラストーマ）由来細胞の培養物中から、個々のサブポピュレーションをフローサイトメトリーで同定および分離することが可能になります。我々はこの手法を用いて、腫瘍の開始に関連することが示されている機能的特性である、低分裂率を示す腫瘍細胞集団を単離し、特性解析を行いました。Gliomas sphere Cultureは、画面上のアドレスにある別のビデオで説明されているneuros sphere assayを用いて構築および維持されます。神経膠腫のスフィアの直径が150～200 µmに達したら、スフィアを含む培地を除去して適切なサイズの滅菌組織培養チューブに移し、室温で800 RPMまたは110 Gで5分間遠心分離します。その後、上清を捨て、スフィアのペレットを1 mLの予温したtrypsin EDTAに再懸濁し、37 °Cのウォーターバスで3～5分間インキュベートします。次に、等量のトリプシン阻害剤を加え、ピペッティングで穏やかに混ぜ合わせることでスフィアを解離させます。細胞懸濁液を再度遠心分離します。上清を除去し、細胞を1 mLのニューロステム細胞基礎培地で再懸濁します。単一細胞懸濁液10 µLを90 µLのトリパンブルーとよく混ぜ合わせ、染色対象の細胞100万個ごとに細胞計数を実施します。5 mMのCFSE染料1 µLを神経幹細胞基礎培地1 mLに添加し、最終染色濃度を5 µMとした染色試薬1 mLを調製します。その後、染色溶液を適切に混合します。次に、必要数の細胞を別のチューブに移して遠心分離し、上清を除去します。次に、CFSE染色液をペレットに加えて均一になるまで穏やかに混合し、室温で10分間インキュベートして染色工程を停止させます。CFSEを導入した細胞に、氷冷した神経幹細胞基礎培地を5〜10倍量加え、十分に混合します。その後、細胞懸濁液を遠心分離し、上清を除去します。この時点で、チューブの底部に緑色を帯びた細胞のペレットが形成されており、染色の成功が確認できるはずです。過剰なCFSE染料を除去するため、ペレットを1 mLの神経幹細胞基礎培地で再懸濁し、遠心分離して上清を捨てるという洗浄操作を2〜3回行います。3回目の洗浄後、細胞を1 mLの神経幹細胞基礎培地で再懸濁し、前述の方法で細胞数を計測して播種します。完全神経幹細胞培地には、最終濃度が20 ng/mLとなるようにEGFを添加します。その後、CFSE負荷群および非負荷群の細胞を、最終濃度が50,000 cells/mLとなるようにそれぞれのチューブに加えてください。次に、細胞懸濁液を十分に混合し、滅菌済みの組織培養フラスコに播種します。その後、フラスコにラベルを貼ります。蛍光顕微鏡下で細胞を観察してCFSE染色の確認を行い、37 °C、5% CO2の加湿インキュベーターに5～10日間置きます。フローサイトメトリーを用いてCFSE染色の確認を行うため、CFSEをロードした群およびロードしていない陰性対照群からそれぞれ500,000個の細胞を別々の FACSチューブに移します。フローサイトメーターは、ユーザーマニュアルの指示に従って関連パラメータを調整します。まず、ロードしていない対照細胞を解析し、前方散乱光（FSC）および側方散乱光（SSC）の特性に基づいてイベントを記録します。次に、細胞頻度対CFSE強度のヒストグラムプロットにおいて、主要な細胞集団にゲートを設定し、CFSE蛍光強度のレベルを確認します。次に、CFSE負荷細胞を、コントロール細胞に使用したものと同じパラメータを用いて解析します。明らかなように、CFSE陽性細胞はコントロール細胞よりも数桁高い蛍光強度を示します。グリオーマスフィアの平均直径が約150～200 µmに達したとき。前述の方法に従い、スフィアを継代し、CFSE負荷群と非負荷群の両方から単一細胞懸濁液を調製します。次に、細胞を適切な量の滅菌済み1×PBSに再懸濁し、細胞数をカウントして死細胞または損傷細胞を除外します。フローサイトメトリーによるソーティングでは、緩慢増殖細胞および急速増殖細胞を回収するため、細胞懸濁液1 mlあたり1 µLの濃度でプロピジウムヨードを添加します。ソートを行う際、完全神経幹細胞培地を1 mLずつ含む滅菌済みの15 mL組織培養チューブを2本準備します。その後、細胞を氷上に置いてフローサイトメトリー施設へ運搬します。まず、未負荷細胞群の細胞懸濁液をフローサイトメーターで解析します。死細胞または損傷細胞を除去するため、前方散乱光（forward scatter）対側方散乱光（side scatter）に基づいてイベントをプロットします。次に、側方散乱光対PI反応性に基づいて細胞をプロットし、単一の生細胞集団をポピュレーション1としてゲートします。続いて、ポピュレーション1から前方散乱および側方散乱の特性に基づいて均一な細胞集団を選択し、ポピュレーション2としてゲートします。そして、同一のパラメータおよびゲーティング戦略を用いて、ポピュレーション2を細胞頻度対CFSE強度のヒストグラム（対数スケール）としてプロットします。CFSEラベルした細胞をフローサイトメーターで解析します。続いて、下位85%の細胞を速い分裂細胞として、上位5%の細胞を遅い分裂細胞としてゲートします。これらの目的とする異なる細胞集団を選択し、1 mLの完全神経幹細胞培地を含む15 mL滅菌組織培養チューブにそれぞれ分注してソートします。ソーティングの閾値速度は、1秒あたり2,500イベントを超えないように調整する必要があります。ソーティング終了後、細胞を遠心分離して上清を廃棄し、ペレットを適切な量の培地で再懸濁して細胞数を測定します。その後、異なるソート済み集団の細胞を50,000 cells/mlの密度で播種します。20 ng/mLのEGFを添加した完全神経幹細胞培地を用い、細胞を5〜10日間培養してスフィアを形成させます。これは細胞の例です。CFSE染料で負荷した後、蛍光顕微鏡で観察すると、すべての細胞に強い緑色蛍光が認められます。これは、A-C-F-S-Eを導入した細胞を播種して6日後に得られた代表的な神経膠腫（グリオーマ）スフィアの画像です。一部の細胞では、依然として非常に明るいCFSE染色が見られることに注目してください。こちらは、CFSE強度が時間とともに減衰することを示すフローサイトメトリーのヒストグラムの例です。青色は、CFSEを新たに導入し、蛍光強度を示している細胞を表しています。これは、赤色で示された未導入の細胞よりも数桁高い値です。緑色は、CFSE導入後6日間にわたる細胞分裂に伴い、減衰した蛍光強度を表しています。これらは、速い分裂速度と遅い分裂速度の細胞集団を分離して7日後に育成した代表的なスフィアである。スフィア形成頻度は2つのグループ間で差はないが、CFSC保持細胞はCFSC希釈細胞と比較して増殖が遅く、結果としてより小さなスフィアとなる。CFSCを用いて細胞分裂速度に基づいた細胞サブポピュレーションを同定および分離することは、ダウンストリーム実験やさらなる特性解析の出発点となる。本プロトコルでは、ヒト神経膠腫（グリオマ）由来の培養細胞において緩徐に分裂する細胞を同定する例を示しましたが、これは他の腫瘍細胞株や非癌性システムにも適用可能です。ご視聴ありがとうございました。本プロトコルが皆様の研究に役立つことを願っております。

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CFSEは共有結合蛍光色素、カルボキシで長寿命の細胞内分子にラベルを付けます。このように、CFSE標識細胞が分裂するときに、その子孫は、それによって細胞分裂を評価するために使用できる蛍光の半分の量を、持っている。この資料では、通常CFSEでマウスのリンパ球を標識するために使用される手続きを説明します。...

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神経膠腫浸潤末梢血単核細胞の単離およびフローサイトメトリー分析

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流れの Cytometry ベースの医薬品スクリーニング システム神経膠芽腫幹細胞の細胞分化を促進する小さい分子の同定に関する研究

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ここでは、パターン化されたニューロン上で神経膠芽腫(GBM)の移行を分析するための使いやすい共培養アッセイを提示する。我々は、ニューロン上のGBM細胞移動を容易に定量化するためのFiJiソフトウェアでマクロを開発し、ニューロンがGBM細胞侵襲能力を変更することを観察した。...

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ゼブラフィッシュ脳に侵入する膠芽腫細胞における微小管動態のライブイメージング

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細胞増殖染色を用いたゼブラフィッシュT細胞急性リンパ芽球性白血病モデルにおける静止細胞の同定 

新たに診断され再発した腫瘍から生成された患者由来の磁気膠腫を用いて、3次元膠芽腫移動モデルを提示します。このプラットフォームは、患者特有の移動動態の可視化と治療効果の評価を可能にします。このアッセイは移動後に多重化され、タンパク質の局在化や発現パターンを評価することができます。...

磁気ナノ粒子媒介の球状定在を用いた低酸素条件下での再現可能な3D膠芽腫移動アッセイ

学ぶ CFSEを用いたヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定・単離法。フローサイトメトリーで細胞集団を分離し、腫瘍異質性と治療抵抗性の理解に役立つ技術を習得できます。

カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル（CFSE）を用いてヒト神経膠芽腫のスロー非分裂細胞の同定および単離

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