2012年5月25日
このプロトコルは、その周囲の細胞外マトリックスからヒントを得るために、複数の表現型に分化するよう誘導される幹細胞の固有の能力を活用に焦点を当てています。このメソッドの原稿は、同時に脂肪由来幹細胞を共区別するために、PEG-フィブリンおよびコラーゲンから成る二層ハイドロゲルを利用したモデルでは、我々の説明とその特性を拡張する 1。
この手順の全体的な目標は、創傷治癒を助けるために幹細胞を送達および分化するために使用できる天然の生体材料から作られた複合マトリックスを作成することです。これは、まず試験動物から脂肪由来幹細胞またはSCを単離することによって達成されます。次に、A SCを既製のキトサン微小球にロードします。
次に、FIBRILLIZEDコラーゲンゲルをキャストし、コラーゲンゲルの上にA-S-C-C-S-Mビーズを重ねます。最後に、PEGフィブリンゲルをA-S-C-C-S-Mコラーゲンゲルにキャストし、培地を添加します。最終的には、CSMビーズからコラーゲンおよびPEGフィブリンマトリックスの両方へのA SCの双方向同時移動を示す結果を得ることができます。
この手順により、1つの幹細胞源がコラーゲンおよびPEGフィブリン微小環境から異なる手がかりを取得し、異なる刺激を受けて多面的因子を産生し、血管前構造のネットワークを形成することができます。この手法の主な利点は、単一材料複合材料や脱細胞化皮膚代替品などの既存の方法よりも優れているため、これらの他の製品は、宿主による製品の血行再建に積極的に対処しないことです。この方法のアイデアを最初に思いついたのは、単離されたRAD A SEがブタのフィブリンマトリックスで培養すると血管表現型に分化する傾向があることに気付いたときでした。
この観察結果から、単一の幹細胞源を、他の異なる生体材料で構成されるシステムで同時に利用できるという考えが生まれました。脂肪由来幹細胞またはASCを単離および培養した後、キトサンマイクロスフェアまたはCSMを調製し、ASCをCSMにロードし、ポリエチレングリコール、フィブリンヒドロゲルを調製し、4ミリリットルのトリス緩衝生理食塩水にサクシニルグルトディレート修飾ペグを溶解します。実験の直前に、0.22ミクロンのフィルターを使用して溶液を滅菌します。
6ウェルプレートミックスの培養井で、500マイクロリットルのフィブリノーゲンストックと250マイクロリットルのPEGストックを、摂氏37度の5%二酸化炭素加湿インキュベーターで20分間インキュベートします。次に、予め調製したA-S-C-C-C-S-Mの250マイクロリットルをペグ化フィブリノーゲン溶液と混合し、直ちにトロンビンストック溶液1ミリリットルを加え、ピペットを使用して素早くトライレートを1回または2回、直ちに細胞ゲル混合物を12ウェルプレートに入れ、37°Cの5%二酸化炭素加湿チャンバーで10分間インキュベートする。次に、得られたペグフィブリンをHBSSで2回洗浄し、標準的な光学顕微鏡技術を用いて、摂氏37度の5%二酸化炭素加湿インキュベーターで10%FBSを添加したアルファ最小必須培地と11日間にわたってインキュベートします。
CSMからゲルミックスA-S-C-C-C-S-Mへの細胞の移動を観察し、2つの正常水酸化ナトリウムを使用してラット尾腱から抽出した1型コラーゲンを含む。pHを6.8に調整し、フィブリル化します。フィブリル化コラーゲンA-S-C-C-S-M混合物を12ウェルプレートに加え、5%二酸化炭素加湿インキュベーターで摂氏37度で30分間インキュベー
トします。細動が完了したことを確認した後、コラーゲンA-S-C-C-S-Mゲルを5%二酸化炭素加湿インキュベーターで摂氏37度で最大11日間インキュベートします。標準的な顕微鏡技術を使用して、CSMからゲルへの細胞の移動を11日間観察し、幹細胞の単一供給源の遊走特性と共誘導特性を研究するための二重層構造を開発します。2つのバイオスキャフォールドを使用。
コラーゲンゲルとPEGフィブリンゲルの両方を以下のわずかな変更を加えて調製し、コラーゲン1ミリリットルあたり7.5ミリグラムの1ミリリットルを調製します。次に、混合物を6ウェル組織培養インサートに移し、摂氏37度で30分間インキュベートします。完全な細動化後、コラーゲン表面に5ミリグラムのA-S-C-C-S-Mを200マイクロリットルの培養液で覆います。
マイクロスフェアがゲル上に沈殿した後、250マイクロリットルの細胞培養培地を使用してPEGフィブリンゲルを調製します。次に、ペグ化フィブリノーゲントロンビン溶液をA-S-C-C-S-Mコラーゲン層に重ねます。完了したら、5%二酸化炭素加湿インキュベーターでコンストラクトを30分間インキュベートして、完全な化を達成します。
最後に、1ミリリットルの培地をコンストラクトの上の上部チャンバーに置き、3ミリリットルの培地を下チャンバーに置きます。この足場に埋め込まれたSCの特性評価により、SCを充填したCSMは、コラーゲンとペグフィブリンの層の間に同時に挟まれ、両方の細胞外環境から異なる形で手がかりを得て、新しい条件下で繁栄することが明らかになりました。ここに示されているように、コラーゲンは、ASCが幹細胞を保持する能力をサポートしており、緑色でstro oneが発現していることや、線維芽細胞のような形態が示しています。
対照的に、PEGフィブリンは、ここに示されているチューブ状の形態によって示されるように、ASCが無血管表現型に向かって分化するように誘導し、ルーメンとここに赤で示されているフォンウィローブランドの内皮細胞特異的発現を備えています。さらに、ここで示したように、これらの観察された表現型は培養の初期に発生し、11日間にわたって維持されたようです。このビデオを見れば、ラット脂肪由来幹細胞を単離し、それらをキトおよびマイクロスフェアにロードし、FDA承認の生体材料を使用して二層ハイドロゲルに組み込む方法について十分に理解できるはずです。
このプロトコルで利用される生体材料と細胞は動物や人間に由来し、宿主からの病原体で汚染されている場合、非常に危険である可能性があることを忘れないでください。また、これらの手順を実行する際には、個人用保護具や無菌細胞培養技術などの予防措置を常に講じる必要があります。
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このプロトコルは、幹細胞が周囲の細胞外マトリックスから刺激を受け、複数の表現型に分化する能力を活用することに焦点を当てています。全体的な目標は、自然な生体材料で作られた複合マトリックスを作り、それによって幹細胞を届け、分化させ、創傷治癒を助けることです。
Engineering a bilayered hydrogel to control adipose-derived stem cell (ASC) differentiation addresses a critical challenge in regenerative medicine: enabling precise, simultaneous control of cell fate within complex tissue environments. This approach enhances predictive confidence in tissue engineering by providing a platform for mechanistic de-risking and functional target validation. The method supports portfolio advancement by enabling robust evaluation of biomaterial-cell interactions relevant to wound healing and tissue regeneration.
This bilayer hydrogel method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis testing, target validation, and translational modeling within a single workflow.