Name: マウス胚性幹細胞の維持と自己複製を制御する遺伝子を研究するためにOct4GiPレポーターアッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-30T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 1 s
Description: 学ぶマウス胚性幹細胞の維持と自己複製を制御する遺伝子をOct4GiPレポーターアッセイで探索する方法。遺伝子サイレンシングとフローサイトメトリーにより、GFP陰性細胞の割合変化を定量的に評価し、幹細胞生物学における遺伝子機能を迅速に解析できます。

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私たちは、原稿を読んで、編集するためのブラッドLackfordに感謝します。この研究は国立環境健康科学研究所、保健学内研究プログラム国立研究所Z01ES102745（GHまで）によってサポートされていました。

1。 Oct4GiPマウスES細胞の維持 Oct4GiP細胞は、親切に博士はオースティンスミスによって提供されました。彼らは、Oct4の-GFPiresPacトランス4,5を運ぶ129/Olaマウスから得られた。彼らはESGRO完全プラスクローングレード培地（ミリポア社製）、またはM15培地でゼラチンコート組織培養プレートに保持されます：DMEM（Invitrogen社）は、15％FBS、1000 U / mlのESGRO（ミリポア社製）、1Xを添加した非必須アミノ酸（Invitrogen社製）、1X EmbryoMax Nucleasides（ミリポア社製）、および10μMβ-メルカプトエタノール。 <ol><li> 30分間室温で0.1％ゼラチン（シグマ）（0.1ミリリットルゼラチン溶液/ cm 2）を持つコートプレート。 </li><li> 〜2で、ゼラチンコートしたプレートのプレートOct4GiPセル×10 4 / cm 2である 。 </li><li> 0.05％トリプシンですべての二日間のセルを分割します。 </li></ol> 2。 Oct4GiP細胞におけるsiRNAトランスフェクション Oct4GiPレポーターアッセイは、最もconvenienです。M15培地中でまたは384ウェルプレート（CorningまたはBD） - TLYゼラチンでコーティングされた平坦な底部96に実施した。全体的な手順は、 図1に概説されています。 <ol><li> siRNAを脂質複合体のアセンブリ： <ol><li> 96ウェルプレートでトランスフェクションのために、U底96ウェルプレートでのsiRNA-脂質複合体を組み立てる。 </li><li>各ウェルに、10μlののOptiMEM（Invitrogen社製）、0.3μlのリポフェクトアミン2000（Invitrogen）を混合し、室温で5分間インキュベートします。 </li><li>脂質のOptiMEM混合物に5 pmolのsiRNAを追加し、さらに15分間インキュベートします。 siRNAは：6ul：脂質比は100 pmolのです。 </li><li>マルチチャンネルピペットを用いてゼラチンでコーティングされた平底プレートにU-底板からのOptiMEM中のsiRNA-脂質複合体を転送します。 </li><li> 384ウェルプレートでトランスフェクションのために、0.1μlのリポフェクタミン2000および10μlのOptiMEM 2 pmolのsiRNAを用いたsiRNA-脂質複合体を準備します。 </li></ol></li></ol>注：最終siRNA濃度でトランスフェクションは50nmである。 3月4日の生物学を行うそれぞれのsiRNAトランスフェクションのために複製されます。平底ゼラチンコートプレートにU-底板とアリコート中のsiRNA-脂質複合体のマスター混合物を設定します。 <ol start="2"><li> Oct4GiP細胞播種とトランスフェクション： <ol><li> 96ウェルプレートでトランスフェクションのために、Oct4GiP細胞を収集し、9×10 4細胞/ mlに、新鮮なM15培地に再懸濁します。 </li><li>よくマルチチャンネルピペットを用いて各細胞懸濁液100μlを添加します。 </li><li>上下に3-5回のピペッティングでよくで事前に分注したsiRNA-脂質複合体と細胞懸濁液を混ぜる。異なるsiRNAのトランスフェクションするためのヒントを変更します。 </li><li> 384ウェルプレート、再懸濁しOct4GiPセル〜6×10 4細胞/ ml、アリコート30μlの細胞懸濁液中のトランスフェクションのために各ウェルに。 </li></ol></li></ol>注：最適な細胞播種密度は通常3×10 5細胞/ cm 2であるが、メートルAYは劇的に細胞の増殖または生存に影響を及ぼすsiRNAをさらに最適化する必要があります。低播種密度は、トランスフェクション時に悪い細胞の生存につながる。高いメッキ密度が高い細胞合流分化誘導による高いバックグラウンドの原因になります。 2から4×10 5細胞/ cm 2の間に必要に応じて、テストの播種密度。 <ol start="3"><li>メディア変更： <ol><li>マルチチャンネルアスピレーター（コーニング）または真空ワンド（VP-Scientific）を使用して、古い培地を除去します。プレートの下部にある細胞を傷つけないように注意してください。 </li><li>毎日のマルチチャンネルピペットを用いて新鮮なES細胞用培地（96ウェルプレートに100μlと384ウェルプレートで30μl）を持つ細胞を供給します。 </li></ol></li></ol> 3。 FACS分析<ol><li>細胞解離： <ol><li>四日間トランスフェクション後、マルチチャンネルアスピレーター（コーニング）または真空ワンド（VP-Scientific）を用いて培地を除去します。 </li><li> 96ウェルプレートの場合は、100μで一度細胞をリンスリットルPBS。 </li><li>よくマルチチャンネルピペットを用いて、それぞれに25μlの0.25％トリプシンを追加します。 </li><li>時折撹拌しながら5分間室温でインキュベートし、視覚的に細胞の完全な分離を確保するために点検してください。 </li><li>トリプシンを不活性化し、繰り返しピペッティングによって単一細胞懸濁液に細胞を解離するために10％FBSを含むPBS90μlのを追加します。 </li><li> 384ウェルプレートの場合は、10％FBS、30μlのPBSと10μlのトリプシンとクエンチで細胞を解除します。 </li></ol></li><li> FACS分析： <ol><li> HTS装置または他の似たようなFACSアナライザ（例えばAccuriまたはIntellicytなど）を搭載したBD LSRII FACSアナライザのGFP蛍光を分析する。 </li><li> HTSの高スループットモードを使用し、細胞懸濁液10μlを分析します。 1.0×10 4細胞にカウントしきい値を設定します。 </li><li>前方に対側の散布図の細胞をキャプチャするためにPMT電圧としきい値を調整します。 FORWのライブ細胞集団にゲートARD対側の散布図。 </li><li> GFPチャネルのヒストグラムプロットを作成します。細胞の約10％は、モックまたはコントロールsiRNAをトランスフェクトした細胞ではGFP陰性であることが表示されるように、GFPチャネルのゲートを設定します。 </li><li> ％分化した細胞=％GFP陰性細胞：各治療から％GFP陰性細胞を決定します。 2両側t検定を用いた実験およびコントロールsiRNAをトランスフェクションの間に％分化した細胞を比較し、p値&lt;0.01と正のヒットを獲得。 </li></ol></li></ol> 4。代表的な結果 OCT4、Nanogの、とSox2はES細胞の自己複製6,7,9-11の維持に重要な役割を果たして3遺伝子である。 図2は、Oct4GiPレポーターアッセイが容易にこれらの要因をサイレンシングによって引き起こされる分化を検出することができますOct4GiP ES細胞。 図2Aは、ESとして維持するときOct4GiP ES細胞がGFP陽性であることを示して<html> 図2Bの細胞が前方に対側の散布図と制御またはOct4の-siRNAでトランスフェOct4GiP細胞のGFPチャネルのヒストグラムを示しています。死んだ細胞や破片はGFP陰性であり、バックグラウンドを増加させるとして、前方対側の散布図でのライブセルのゲートに必要である。一方、可能な細胞塊を除外するために二重の差別は常に必要ではありません。コントロールsiRNAをトランスフェクトした細胞において、細胞の大半はGFP陽性でなければなりません。明らかにGFP陰性集団はコントロールsiRNAをトランスフェクトしたウェル中に存在する場合、開始Oct4GiP細胞やトランスフェクション手順が損なわれている可能性があり、その結果が解釈されない場合があります。 図2Cは、コントロール、Oct4の - 、Nanogの、、とSox2-siRNAをトランスフェクトした細胞から分化した細胞％（％分化した細胞=％GFP陰性細胞）のバーグラフを示しています。 <html> d/3987/3987fig1.jpg &quot;/&gt; 図1。 Oct4GiPレポーターアッセイの概要 。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/3987/3987fig2.jpg" /> 図2。 Oct4GiPレポーターアッセイは、Nanog、Oct4のか、Sox2のサイレンシングによって引き起こされるES細胞の分化を検出することができます。 A）E14Tg2a（野生型、黒線）とOct4GiP（グリーンライン）細胞をFACSで解析した。 GFP-チャンネルのヒストグラムはOct4GiP細胞がGFP陽性であることを示している。B）Oct4GiP細胞はトランスフェクション4日後に分析し、コントロールまたはOct4の-siRNAとFACSで96ウェルプレートでトランスフェクトした。側方散乱プロットとトランスフェクトした細胞のGFP-チャンネルのヒストグラムが示されている前方に対。C）Oct4GiP細胞が制御- 、Nanogの- 、Oct4の-、または-Sox2のsiRNAでトランスフェクトした。 ％分化細胞は4日間トランスフェクション後の％のGFP陰性細胞から決定され、+ /意味としてプロットした - 平均の標準誤差（N = 4）。F = &quot;https://www.jove.com/files/ftp_upload/3987/3987fig2large.jpg&quot;ターゲット= &quot;_blank&quot;&gt;拡大図を表示するには、ここをクリックしてください。

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<li>Toyooka, Y., Shimosato, D., Murakami, K., Takahashi, K., Niwa, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+subpopulations+in+undifferentiated+ES+cell+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of subpopulations in undifferentiated ES cell culture.</a> Development. 135, 909-918 (2008).</li>
</ol>

利害の衝突が宣言されません。

我々は上記の記述Oct4GiPレポーターアッセイは、定量的に自己再生対分化の程度を測定することができます。そのような形態をベース12と増殖/生存性アッセイなど他の利用可能な方法に比べ、より高い感度とスループットだけでなく、ES細胞の状態のより直接的な測定を提供しています。したがって、大規模な画面や遺伝的エピスタシス解析のために適している。実際、我々と他の成功したゲノムワイドなRNAiスクリーニングのために3,8 Oct4GiPレポーターアッセイを使用しています。全てのアッセイと同様に、しかし、それはまた、制限があります。それは、直接または間接的にOct4のプロモーター活性を調節する遺伝子を研究するために、それが誤って、転写後にGFPの発現、安定性や機能に影響を与える遺伝子を識別することができる使用することができます。したがって、追加のアッセイあるいはアルカリホスファターゼ染色13（ミリポア、SCR004）と免疫蛍光染色または定量RTなどの二次の画面、多能性マーカーの-PCRは、3,8,12,14、この方法から得られた結果を確認する必要があります。 <...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名前 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td> ESGRO完全プラスクローングレード媒体</td><td>ミリポア</td><td> SF001-500P </td></tr><tr><td> DMEM（高グルコース1X） </td><td>インビトロジェン</td><td> 11965 </td></tr><tr><td> 0.25％トリプシン-EDTA </td><td>インビトロジェン</td><td> 25200 </td></tr><tr><td>リポフェクタミン2000 </td><td>インビトロジェン</td><td> 1001817 </td></tr><tr><td> OPTI-MEM（血清培地を減らす） </td><td>インビトロジェン</td><td> 31985 </td></tr><tr><td> ESGRO mLIF（10 7 units/1ml） </td><td>ミリポア</td><td> DAM1776540 </td></tr><tr><td> MEM NEAA（非必須アミノ酸） </td><td>インビトロジェン</td><td> 11140 </td></tr><tr><td> ES細胞のために100倍ヌクレオシド</td><td>ミリポア</td><td> 10620から1 </td&gt; </tr><tr><td> 2 - メルカプトエタノール</td><td>シグマ</td><td> M7522-100ミリリットル</td></tr><tr><td> ES-修飾されたウシ胎児血清</td><td>インビトロジェン</td><td> 10437 </td></tr><tr><td> NanogのsiRNAを</td><td>インビトロジェン</td><td> MSS231181 </td></tr><tr><td> Oct4のsiRNAを</td><td> Dharmacon </td><td> D-046256から02 </td></tr><tr><td> Sox2のsiRNAを</td><td> Dharmacon </td><td> M-058489から01 </td></tr></tbody></table>コントロールsiRNA：Dharamconによって合成されたホタルルシフェラーゼ（5&#39;-CGTACGCGGAATACTTCGA）を標的とするsiRNAの二重。

マウス胚性幹細胞の維持と自己複製を制御する遺伝子を研究するためにoct4gipレポーターアッセイ

Oct4GiP Reporter Assay to Study Genes that Regulate Mouse Embryonic Stem Cell Maintenance and Self-renewal

多能性と自己複製は、胚性幹細胞（ES細胞）の2つの定義特性です。基本的な分子機構を理解することは非常に発生生物学研究、疾患モデル、創薬、再生医療（1,2日で）のES細胞の使用を容易にします。 ES細胞の維持と自己複製の新たな調節因子の同定と特徴付けを促進するために、我々は定量的にOct4GiPセル3を用いたマウスES細胞における自己複製の状態を測定する蛍光レポーターベースのアッセイを開発しました。 Oct4GiP細胞は4,5 Oct4の遺伝子のプロモーター領域の制御下にある緑色蛍光タンパク質（GFP）を発現する。 Oct4のは、ES細胞の自己複製に必要とされており、非常にES細胞で発現し、急速に分化6,7の間にダウンレギュレートされています。その結果、レポーター細胞におけるGFPの発現と蛍光が忠実に相関ES細胞のアイデンティティー5と、蛍光活性化セルソーティング（FACS）で分析が密接に単一細胞レベル3,8の細胞の自己複製状態を監視するために使用することができます。 RNAiのと相まって、Oct4GiPレポーターアッセイは、すぐにES細胞の維持と自己複製3,8のレギュレータを識別し、研究するために使用することができます。自己複製を分析するための他の方法に比べ、それ以上の、便利な高感度、定量的、かつ低コストである。それは、96に実施することができる - または、ハイスループットスクリーニングや遺伝子のエピスタシス解析などの大規模研究のための384ウェルプレート。最後に、他の系統特異的レポーターES細胞株を使用することによって、我々はここで説明するアッセイはまた、ES細胞の分化の間に運命の仕様を勉強するように変更することができます。

我々はすぐに識別し、マウス胚性幹細胞の維持と自己複製を制御する遺伝子を特徴付けるための蛍光レポーターアッセイを説明します。

マウス胚性幹細胞の維持と自己複製を制御する遺伝子を研究するためにOct4GiPレポーターアッセイ

多能性と自己複製能は、胚性幹細胞（ES細胞）の2つの決定的な特徴である。その根底にある分子メカニズムを理解することは……

本実験の全体的な目的は、マウス胚性幹細胞（ES細胞）の自己複製能の維持における目的遺伝子の役割を迅速に決定することです。まず、目的遺伝子をサイレンシングするために使用するトランスフェクション用マスターミックスを調製します。次に、トランスフェクションマスターミックスをゼラチンコートプレートに移し、T 4G IP細胞を添加します。その後、通常のES細胞培養条件下で細胞を培養し、遺伝子サイレンシングの効果を発現させます。4日間の培養後、細胞をプレートから回収し、フローサイトメトリーによって自己更新能の状態を判定します。最終的に、コントロール群とsiRNAをトランスフェクションした実験群のT 4G IP細胞におけるGFP陰性細胞の割合の差を評価します。細胞形態やリネージマーカー解析などの既存の手法に対する本手法の主な利点は、より高い感度とスループットが得られることであり、そのため中規模から大規模の遺伝学的スクリーンや遺伝子エピスタシス解析により適しています。この方法は、ESLの維持および自己複製に重要な遺伝子の研究を大幅に促進させることができます。また、ESL分化中に起こる自己分化イベントにも適応させることが可能です。T 4G IP細胞は、ゼラチンコーティングしたプレートで維持する。細胞を約2 × 10⁴/cm²の密度で播種し、トランスフェクションのために2〜3日ごとに継代する。96ウェル平底プレートを用い、まず0.1%ゼラチンでプレートをコーティングし、次にOptumとLipofectamine 2000のマスターミックスを調製して、96ウェルU底プレートに分注する。プレートを室温で5分間インキュベートし、次に5 picomolesのI aを脂質最適化混合液に加え、さらに15分間インキュベートします。次に、96ウェル平底プレートからゼラチンを取り除き、マルチチャンネルピペットを用いて、U底プレートから平底プレートへoptimum中のi a脂質複合体を転送します。ここでOC 4G IP細胞を回収し、新鮮なM 15培地を用いて9×10⁴ cells/mLになるように再懸濁します。次に、マルチチャンネルピペットを使用して、96ウェル平底プレートの各ウェルに細胞懸濁液を100 µLずつ添加し、ピペッティングを3〜5回行い、細胞懸濁液をあらかじめ添加した脂質複合体と混合させます。異なるsiRNAをトランスフェクションする場合は、チップを交換してください。その後、プレートを37 °C、5% CO₂インキュベーターに入れ、細胞を4日間培養します。培養期間中は毎日、マルチチャンネルアスピレーターを使用して古い培地を除去しますが、プレート底面の細胞を傷つけないよう注意してください。次に、マルチチャンネルピペットを使用して、トランスフェクションの4日後に100 µLの新鮮なES細胞培地を細胞に添加します。マルチチャンネルアスピレーターを用いて培地を除去し、100 µLのPBSで細胞を1回洗浄します。その後、マルチチャンネルピペットを用いて、各ウェルに25 µLの0.25%トリプシンを添加します。室温で5分間、時々揺らしながら細胞をインキュベートします。その後、プレートを視覚的に確認し、細胞が完全に剥離していることを確かめます。トリプシンを不活性化させるため、10% FBSを含むPBSを90 µL加え、細胞溶液を数回ピペッティングして、細胞を単一細胞懸濁液に解離させます。最後に、 FACSアナライザーのHTSユニットの高スループットモードを使用して、10 µLの細胞懸濁液を解析します。カウント閾値を1.0 × 10⁴個に設定し、前方散乱光対側方散乱光プロットで細胞を捉えられるようPMT電圧を調整します。前方散乱光対側方散乱光プロットにおいて生細胞集団の解析ゲートを設定し、次にGFPチャネルのヒストグラムプロットを作成します。mockまたはコントロールのSINAトランスフェクト細胞において、細胞の約10%がGFP陰性に見えるようにGFPチャネルのゲートを設定し、GFP陰性細胞の割合に基づいて分化細胞の割合を決定します。各処理について、実験群とコントロールsiRNAトランスフェクト群の間で分化細胞の割合を比較します。最初の図は、黒いヒストグラムで示される野生型E 14 TG two A細胞がGFP陰性であるのに対し、緑のヒストグラムで示されるT 4G IP細胞は、続く2つの図のようにES細胞として維持された状態でGFP陽性であることを示しています。散布図には、コントロールまたはT four siRNAをトランスフェクションして4日後のT 4G IP細胞の前方散乱光対側方散乱光プロットおよびGFPチャンネルのヒストグラムが示されています。死細胞やデブリはGFP陰性であり、コントロールsiRNAトランスフェクション細胞のヒストグラムデータに見られるように背景ノイズを増加させるため、まず前方散乱光対側方散乱光プロットで生細胞をゲートします。大部分の細胞がGFP陽性です。これらの棒グラフは、トランスフェクションから4日後のコントロール群、nano OCT4およびSOX2のsiRNAをトランスフェクションしたOCT4G IP細胞における分化細胞の割合を示しています。いずれの場合においても、予想通り、siRNAをトランスフェクションした細胞はコントロール群よりも高い分化レベルを示すことが確認されました。この手法を習得すれば、96ウェルプレート1枚あたり1時間の作業時間で実施可能です。このビデオを視聴することで、Oxford GIPレポーターアッセイを用いて、マウスESLの維持における目的遺伝子の役割を迅速に決定する方法について、十分に理解することができます。

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このビデオでは、誘導レンチウイルスを用いて誘導多能性幹細胞を生成するための手順を示して発現するOct4は、レトロウイルスベクター、c -...

ソックス- 2の強制発現によってMEFSからiPS細胞を生成し、OCT - 4、c - Mycの、とKLF4

Stemgent Doxの誘導性マウスTFのレンチセットは、人工多能性幹（iPS）細胞に、マウス胚性繊維芽細胞（MEF）を再プログラムすることができます。ここでは、マウスプログラミング転​​写因子Oct4のDOX誘導性発現のためのプロトコルを示す、レトロウイルスベクター、KLF4およびc -...

4つの転写因子とマウス胚線維芽細胞を再プログラムすることによって誘導多能性幹細胞の生成、ドキシサイクリンは、レンチウイルス伝達系の誘導性

LIFの不在下で自己再生MESCをサポートするためのSC1（Pluripotin）の使用

このビデオは、マウス胚のレチノイン酸活性を評価するための技術を示しています。マウス胚から細胞を単離すると、細胞はレチノイン酸(RA)レポーター細胞と共培養されます。胚性細胞はRAを産生し、レポーター細胞にβ-ガラクトシダーゼの発現を誘導し、胚性細胞におけるRA活性を示しています。...

レポーター細胞を共培養に用いたマウス胚細胞によるレチノイン酸産生の研究

単一細胞の遺伝子発現アッセイは、幹細胞の不均質性を理解するために必要とされる。...

定量的RT-PCRによって個々のヒト胚性幹細胞のプロファイリング

この研究では、非ウイルスベースのトランスポゾンシステムを使用して、マウスの羊水細胞から人工多能性幹細胞を生成します。...

トランスポゾンのシステムを用いたマウスの羊水細胞から多能性幹細胞の作製

ここで、我々は、ナイーブプライム多能性転移のキナーゼレギュレーターの標的小分子スクリーニングを実施するための定量的かつスケーラブルなプロトコルを提示する。...

ハイスループットインヒビタースクリーニングによる胚性幹細胞の多能性を調節するキナーゼを同定するための簡単な方法

我々 はマウス胚性幹細胞を培養するための 2 つの化学ベースのプロトコルについて説明します。この新しいメソッドは、(ビタミン C)、テトを介した酸化を促進し、DNA 低いメチル化とマウス胚性幹細胞の多能性を維持するために、5-メチルシトシン (PD0325901)...

MEK 阻害剤 PD0325901 とビタミン C を用いたマウス胚性幹細胞のゲノムの低いメチル化を維持するために代替カルチャ メソッド

本プロトコルは、アクチノマイシンD処理、RT-qPCR、非線形回帰解析を用いて、マウス胚性幹細胞における遺伝子間および遺伝子内強化RNAの安定性と半減期を定量的に測定します。位置特異的な正規化戦略を組み込み、文脈依存的なeRNA崩壊動態を正確にモデル化します。...

マウス胚性幹細胞におけるエンハンサーRNA安定性の最適化された定量的評価

このプロトコルは、初期のエンハンサー転写産物を定量化するための合理化された計算パイプラインを提供します。クロマチンアクセシビリティ、クロマチン特徴、転写データを統合することで、複雑な遺伝子内領域におけるエンハンサー活性の正確な検出と鎖特異的分析を可能にし、広範なバイオインフォマティクスのトレーニングを受けなくても研究者がアクセスできるようにします。...

マウス胚性幹細胞における遺伝子間/遺伝子内エンハンサーRNA定量のための計算パイプライン

学ぶマウス胚性幹細胞の維持と自己複製を制御する遺伝子をOct4GiPレポーターアッセイで探索する方法。遺伝子サイレンシングとフローサイトメトリーにより、GFP陰性細胞の割合変化を定量的に評価し、幹細胞生物学における遺伝子機能を迅速に解析できます。

マウス胚性幹細胞の維持と自己複製を制御する遺伝子を研究するためにOct4GiPレポーターアッセイ

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