Name: ドーパミン作動性ニューロンの開発における遺伝子機能を研究するためのニワトリ中脳でのOVOエレクトロポレーションに (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 57 s
Description: 学ぶニワトリ中脳のin ovoエレクトロポレーション法によるドーパミン作動性ニューロン発生における遺伝子機能。この手法は神経前駆細胞への標的遺伝子導入と発生メカニズム解明に有用です。

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我々はpCAG-mCherryが構築提供するために博士隆彦松田に感謝します。 YCMはSchweppe財団からのキャリア開発賞とホワイトホール財団からの助成金によってサポートされています。

1。電源の準備（ないビデオ） <ol><li> 1X PBSでペニシリン/ストレプトマイシン（ペン/連鎖球菌）の新鮮な1X希釈を準備します。以上50 mLのが必要です。 0.22μmのシリンジフィルターでろ過する。 </li><li>所望のプラスミドコンストラクトを組み合わせることにより、注入構造を準備します。我々は〜10μLの最後のボリュームに適切な化学量論でpCAG-フラグベクトル内のすべての構成要素を入れた。また、pCAG-GFP 14またはpCAG-mCherryは、トラッキングエレクトロポレーションの効率化とエレクトロポレーションした細胞を追加する必要があります。我々はこの実験のためにpCAG-mCherryを使用しています。最後に、ニワトリ胚midbrainsに注入効率を視覚化するために0.05％の最終濃度でプラスミドDNAの混合物に0.22μmのろ過ファストグリーン染料を追加します。 </li></ol> 2。卵の準備（ビデオで） <ol><li> 11胚を取得HHステージにするために、卵は25から40パーセントの湿度と受精後約41時間°F（37.8℃）100℃でインキュベートする必要があります。場所彼らの側に卵と鉛筆ダッシュそれぞれのトップをマークします。予め温めておいた、加湿インキュベーター中トレイを置きます。ゆっくりにインキュベータープラットフォームの回転機能を設定することによって、卵を揺する &quot;自動&quot;湿度と水のレベルを24時間ごとにチェックしてください。 </li><li>右の実験を開始する前に、インキュベーターから卵を除去し、室温のまま。これは、開発を遅らせると開発上のを防ぐのに役立ちます。 </li><li> 70％エタノールでそれぞれの卵の表面をきれいにし、キムワイプで拭いてください。 </li><li>スコッチテープの2つの4センチの部分を取り、鉛筆のダッシュ上に大きな四角形を作るために卵の上に並べて貼り付けます。卵に対してテープを滑らかにします。ウィンドウが行われる場所です。テープは、ウィンドウが開いているカットされたときに落ちるから卵殻の小片を防ぐことができます。 </li><li> 10 mLの注射器と18½卵のアルブミンのうち5 mLを描画するためのゲージの針を使用しています。邪魔しないようにするようなシェルを貫通した後、卵黄から離れて針を角度アルブミン除去しながら、または胚を損傷するおそれがあります。卵の間に70％エタノールで針を清掃しますが、針が次の卵を貫通する前に乾燥していることを確認してください。 </li></ol> 3。ガラスの注射針の準備（ビデオで） <ol><li>ヒート670、プル120、ヴェル、40時間165：注射針は、フレーミング/ブラウンマイクロピペットプラー（サッターインストゥルメント·モデルP-97）に次の設定を使用して作られています。世界精密機器（API）4インチ1.0ミリメートルの薄壁ガラスキャピラリー（API TW100F-4）針を作るために使用されています。 </li><li> P10ピペットおよび長期の先端キャピラリーローディングピペットチップ（エッペンドルフ5242956.003）を使用して、プルダウンガラス針をロードします。注入する方法を多くの卵に応じて、5〜10μLをロードします。気泡のないプラスミド溶液を連続的にカラムを作成し、徐々にガラス針を記入してください。 </li><li>マイクロマニピュレーター（ナリシゲMM3）とPicospritzer IIIインジェクターに接続された針ホルダーにロードされた針を配置します。 dissectiの下に針を見る顕微鏡で、緑色の液体が停止した時点で針をトリミングします。それは良い針を可視化するために暗い背景を使用するのに役立ちます。トリミング適切な針は練習が付属しています。 </li></ol> 4。中脳/神経管注入（ビデオで） <ol><li>卵2〜2.5センチメートル径ウィンドウを削減する春のはさみを使用しています。アルブミンを描画するときに行われた前回の針穴からウィンドウを起動し、カットのように手で卵を回転させます。卵の間に70％エタノールで飽和したキムワイプではさみをきれいにしてください。 </li><li>解剖顕微鏡下でのニワトリ胚を表示します。それは目を訓練する必要があるかもしれません。それはニワトリ胚の下にPBSで0.22μmのろ過20パーセント、インドのインクを注入して胚を可視化するために役立つことがあります。しかし、我々は、可能であれば、それが生存率を低下する傾向にあるようにこのステップは、避けるべきであることを発見した。 </li><li>胚は針のパスに平行に配置されている場合は注射針の距離から頭で、最適に動作します。徐々に穴を開ける中脳後脳接合〜45度の角度で神経管。それだけで前脳と後脳の領域に重要な拡散せずに、プラスミドDNAとファストグリーン色素で脳を表す神経小胞を埋めるために非常に重要です。 25ミリ秒に設定されPicospritzerインジェクターの期間で注入を開始、これは針がトリミングに応じて変更する必要があります。一般的には、10から50 msの間使用しています。 </li></ol> 5。エレクトロポレーション（ビデオで） <ol><li>注射針を取得します。場所胚における卵のPBS溶液で1Xペン/連鎖球菌の3滴。 </li><li> BTX EMC830エレクトロの設定を確認します。 <table border="1"><tbody><tr><td> 電圧： </td><td> 20 V </td></tr><tr><td>パルスの長さ： </td><td> 25ミリ秒</td></tr><tr><td> ＃パルス： </td><td> 3 </td></tr><tr><td> INTERVAL： </td><td> 500ミリ秒</td></tr><tr><td>極性： </td><tD&gt;ユニポーラ</td></tr></tbody></table></li><li>別に2 3ミリメートルの電極間の中央に座っている胚の中脳と神経管の底と同じ水平レベルで2ミリメートル長いL字型の白金電極を配置します。神経管の下部に電極を整列する腹側中脳の効率的なエレクトロポレーションのために重要です。脳特有のエレクトロポレーションを達成するために、我々は短い2ミリメートル長いのヒントを持つ2つのカスタムメイドのプラチナL字型の電極と、元のBTX電極を置き換えられます。これらの白金電極は0.5mm径の白金線（アルファAesar社）で作られています。これらの白金電極だけで十分な長さくらい前脳や後脳領域のをターゲットにせずに長さ約0.9ミリメートルであり、ステージ11ニワトリ胚の脳をカバーしようとしています。 BTXフットスイッチを一度押します。気泡が成功するたびにエレクトロポレーションの電極の周りに生成する必要があります。慎重に卵から電極を取り外してあるelectrを拭く70％エタノールで覆われたキムワイプでオフオード。胚で卵の1Xペン/連鎖球菌のソリューションは、他の3滴を配置します。 </li><li>明確な包装テープのは5cm x 5cmの部分でウィンドウをカバーしています。よく、その卵を密封するために卵の内容がテープに接触しないようにしてください。 </li></ol> 6。インキュベートと収穫<ol><li>インキュベーターに戻した卵を置きます。インキュベータープラットフォームの転換がOFFになっていることを確認してください。希望するHHステージ23が達成されるまで卵をインキュベートします。 </li><li>収穫は胚を生きていると、各条件の一般的なPBSを充填したペトリ皿に入れます。画面には、mCherry式でのみ胚を維持し、蛍光解剖顕微鏡下で胚を回収した。 </li><li> 24ウェルディッシュの個々のウェルに胚を移します。たて2％パラホルムアルデヒド（PFA）を1 mLの各ウェルを記入し、4℃で2-3時間を修正することができ℃の</li><li> 10分PBSで各固定胚3回洗浄します。場所胚順次I平衡化するまで、nは15％および30％ショ糖。胚は、当初はスクロースに浮かぶだろうが、平衡時にシンクします。 </li><li>各胚についてmCherry発現パターンとレベルでメモを取り、蛍光解剖顕微鏡下で胚を確認してください。 OCTで各胚を埋め込むことができます。それは、その後の解析（ 図1）に最適な脳の断面を生成するために適切な方向の胚に非常に重要です。 </li><li>ライカCM3050Sのクライオスタットを用いて厚さ18μmの脳切片を作製します。適切な細胞型マーカーで免疫染色することによって脳の発達とドーパミン作動性ニューロンへの分化を分析します。 </li></ol> 7。代表的な結果ニワトリ胚中脳をelectroporatingと分析の概略を図1に示されています。が正常に注入し、エレクトロポレーションニワトリ胚では、mCherry式は、さらなる開発の後脳領域に表示する必要がある（ <stronG&gt;図2A、B、C）。 mCherryは、他の共同エレクトロ遺伝子の発現と相関すると仮定すると、適切なmCherryの発現を示す胚はその後修正され、さらなる研究（ 図2D）は中脳の凍結切片を調製するために埋め込 ​​むことができます。一般的には、腹側中脳神経前駆細胞の約50％が効率的に上記のプロトコルをトランスフェクトすることができます。エレクトロポレーション神経前駆細胞におけるドーパミン作動運命の仕様は、チロシンヒドロキシラーゼ（TH）（ 図3）ドーパミンニューロンマーカーとmCherry、Flag標識遺伝子の共局在して調べることができます。腹側中脳前駆細胞ドメインのパターニングは、異なる前駆細胞ドメインのマーカーとの共同immnostainingの凍結切片を調査することができます。 不十分なmCherry式は、異所性の遺伝子がおそらく効率的に発現されないことを示唆している。この条件の下で胚はさらなる研究のために使用すべきではありません。同様に、胚のその実験手順の最後に生存しなかったデータの収集と分析に使用することはできません。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/4017/4017fig1.jpg" /> 図1。OVOエレクトロポレーションアッセイにおけるニワトリ胚中脳のイラスト。 HHステージ11ニワトリ胚の胚（）は、注入プロセスを可視化するために、高速グリーンと混合して目的の遺伝子と一緒にpCAG-mCherryを注入されています。 DNA構築物を充填した後、midbrainsは、方形波のエレクトロとエレクトロポレーションされています。希望するHHステージ23に到達するまでの胚はさらに培養されています。その後mCherry陽性胚は、収穫を固定し、組み込み（B）されています。中脳の凍結切片は、図1Bの中の白線で示された平面を切断して調製し、そのようなチロシンヒドロキシラーゼ（TH）（C）のような脳のマーカーで免疫染色によって分析されています。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4017/4017fig1large.jpg" target="_blank">ここをクリック</a>拡大図を表示します。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/4017/4017fig2.jpg" /> 図2ニワトリ胚中脳から凍結切片の調製。 41時間のインキュベーションの後、mCherryと関心のある遺伝子を発現するHHステージ23ニワトリ胚は、（A、BおよびC）が収穫されるPFAで固定し、ショ糖で処理し、セクショニングのOCTに包埋した。ニワトリ胚中脳切片の準備を確実にするために慎重に配向している。中脳切片を得るための典型的な胚の形態と切断面は、（D）が表示されます。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4017/4017fig2large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/4017/4017fig3.jpg" /> 図3エレクトロ脳切片の分析。 mCherryの発現レベルの高い胚から凍結切片（A）は不格好なやつを準備し、染色される興味のあるFlag標識遺伝子（B）と中脳ドーパミン作動性ニューロンマーカーTH（C）を認識IES。胚midbrainsはpCAG-mCherryでエレクトロとpCAG -フラッグ空のベクトルは、コントロールとして機能します。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4017/4017fig3large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。

<ol><li>Wightman, R. M., Robinson, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transient+changes+in+mesolimbic+dopamine+and+their+association+with+%27reward%27%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurochem%22%5BJournal%5D)">Transient changes in mesolimbic dopamine and their association with 'reward'.</a> J. Neurochem. 82, 721-735 (2002).</li>
<li>Kelley, A. E., Berridge, K. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neuroscience+of+natural+rewards%3A+relevance+to+addictive+drugs%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">The neuroscience of natural rewards: relevance to addictive drugs.</a> J. Neurosci. 22, 3306-3311 (2002).</li>
<li>Moore, D. J., West, A. B., Dawson, V. L., Dawson, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+pathophysiology+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Molecular pathophysiology of Parkinson's disease.</a> Annu. Rev. Neurosci. 28, 57-87 (2005).</li>
<li>Dailly, E., Chenu, F., Renard, C. E., Bourin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine%2C+depression+and+antidepressants%5BTitle%5D)+AND+%22Fundam.+Clin.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Dopamine, depression and antidepressants.</a> Fundam. Clin. Pharmacol. 18, 601-607 (2004).</li>
<li>Sesack, S. R., Carr, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+prefrontal+cortex+inputs+to+dopamine+cells%3A+implications+for+schizophrenia%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Behav%22%5BJournal%5D)">Selective prefrontal cortex inputs to dopamine cells: implications for schizophrenia.</a> Physiol. Behav. 77, 513-517 (2002).</li>
<li>Ang, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptional+control+of+midbrain+dopaminergic+neuron+development%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Transcriptional control of midbrain dopaminergic neuron development.</a> Development. 133, 3499-3506 (2006).</li>
<li>Andersson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+intrinsic+determinants+of+midbrain+dopamine+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Identification of intrinsic determinants of midbrain dopamine neurons.</a> Cell. 124, 393-405 (2006).</li>
<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Series+of+Normal+Stages+in+the+Development+of+the+Chick+Embryo%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Morphol%22%5BJournal%5D)">A Series of Normal Stages in the Development of the Chick Embryo.</a> J. Morphol. 88, 49(1951).</li>
<li>Bellairs, R., Osmond, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBellairs%2C+R+%22The+atlas+of+chick+development%22">The atlas of chick development</a>. , 2nd edn, Elsevier. (2005).</li>
<li>Itasaki, N., Bel-Vialar, S., Krumlauf, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((%27Shocking%27+developments+in+chick+embryology%3A+electroporation+and+in+ovo+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">'Shocking' developments in chick embryology: electroporation and in ovo gene expression.</a> Nat. Cell Biol. 1, 203-207 (1999).</li>
<li>Momose, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+targeting+of+gene+expression+in+chick+embryos+by+microelectroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Growth+Differ%22%5BJournal%5D)">Efficient targeting of gene expression in chick embryos by microelectroporation.</a> Dev. Growth Differ. 41, 335-344 (1999).</li>
<li>Muramatsu, T., Mizutani, Y., Ohmori, Y., Okumura, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+three+nonviral+transfection+methods+for+foreign+gene+expression+in+early+chicken+embryos+in+ovo%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">Comparison of three nonviral transfection methods for foreign gene expression in early chicken embryos in ovo.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 230, 376-380 (1997).</li>
<li>Nishi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-efficiency+in+vivo+gene+transfer+using+intraarterial+plasmid+DNA+injection+following+in+vivo+electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">High-efficiency in vivo gene transfer using intraarterial plasmid DNA injection following in vivo electroporation.</a> Cancer Res. 56, 1050-1055 (1996).</li>
<li>Matsuda, T., Cepko, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electroporation+and+RNA+interference+in+the+rodent+retina+in+vivo+and+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Electroporation and RNA interference in the rodent retina in vivo and in vitro.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 16-22 (2004).</li>
<li>Blank, M. C., Chizhikov, V., Millen, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+Ovo+Electroporations+of+HH+Stage+10+Chicken+Embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In Ovo Electroporations of HH Stage 10 Chicken Embryos.</a> J. Vis. Exp. (9), e408(2007).</li>
<li>Chesnutt, C., Niswander, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmid-based+short-hairpin+RNA+interference+in+the+chicken+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Plasmid-based short-hairpin RNA interference in the chicken embryo.</a> Genesis. 39, 73-78 (2004).</li>
</ol>

著者らは、開示する潜在的な利害を持っていません。

ニワトリ胚中脳の卵エレクトロポレーションで中脳ドーパミン作動性ニューロンの開発に遺伝子機能のin vivo試験で実行するトランスジェニックやノックアウト動物の世代に、低コストかつ迅速な代替手段を提供しています。胚の中脳特異的DNAインジェクションと一緒に短い2ミリメートル長いL字型の白金電極を使用すると、中脳ドーパミン作動性ニューロン前駆細胞に目的遺伝子の効率的な発現を達成するための鍵となります。さらに、正しいHHステージ11ニワトリ胚を使用することが重要です。最初に、HHステージ11で、ニワトリの脳の開発が十分に前脳、中脳、後脳とは形態的に区別するように進んでいるためです。これは、中脳領域での注射針と電極の正確な位置決め、したがって、効率的なDNAインジェクションとトランスフェクションが可能になります。第二に、HHステージ11で、ニワトリ胚の前神経孔は、まだ完全に閉じません。D、注入されたプラスミドDNAは容易に脳領域に特異的に入力することができます。胚の前脳、中脳と後脳の間の狭い接合部は、DNAの高速拡散を防ぐことが脳に特異的に注入されたコンストラクト。最後に、...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名前 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント </td></tr><tr><td>受精鶏卵</td><td>チャールス·リバー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>卵インキュベーター</td><td> GQF製造</td><td> 1502スポーツマン</td><td></td></tr><tr><td> BTXエレクトロ</td><td> BTXハーバード装置</td><td> ECM830 </td><td></td></tr><tr><td>電極</td><td> BTXハーバード装置</td><td> 45から0162 L字型genetrodes </td><td> ECM830エレクトロで使用するために</td></tr><tr><td>プラチナイリジウム線</td><td>アルファAesar社</td><td> ＃10056 </td><td>直径0.5mm 2ミリメートル長さの電極を作るため</td></tr><tr><td>ガラス毛細管</td><td>世界の精密機器</td><td> TW100F-4 </td><td></td></tr><tr><td> Microloaderピペットチップ</td><td>エッペンドルフ</td><td> 5242 956.003 </td><td></td></tr><tr><td>墨</td><td>ステープルズ</td><td></td><td>使用前に20％をフィルタリングする</td></tr><tr><td>微量注入器</td><td>パーカーオートメーション、 パーカー·ハネフィンの協力</td><td> Picospritzer III </td><td></td></tr><tr><td>蛍光解剖顕微鏡</td><td>ライカ</td><td> MZ16F </td><td></td></tr><tr><td>マイクロピペットプラー</td><td>サッターインストゥルメント</td><td> D-97 </td><td></td></tr></tbody></table>

ドーパミン作動性ニューロンの開発における遺伝子機能を研究するためのニワトリ中脳でのovoエレクトロポレーションに

In ovo Electroporation in Chick Midbrain for Studying Gene Function in Dopaminergic Neuron Development

腹側中脳のコントロールの動きにありますドーパミン作動性ニューロン、感情的な動作、および報酬のメカニズム1-3。腹側中脳ドーパミン作動性ニューロンの機能不全は、パーキンソン病、統合失調症、うつ病、認知症1-5に関与している。したがって、中脳ドーパミン作動性ニューロンの分化の調節を研究することだけ脳の開発と神経前駆細胞の運命仕様を制御するメカニズムに重要な洞察を提供することができませんでしたが、また人間の神経疾患の様々を治療するための新たな治療戦略の開発に役立つ。 ドーパミン作動性ニューロンは、胚腹側中脳の脳室帯の内側を覆う神経前駆細胞から分化する。神経前駆細胞の開発は、6,7の遺伝子発現プログラムによって制御されます。ここでは、（目のハンバーガーハミルトン（HH）ステージ11の脳に特異的に遺伝子を発現するエレクトロポレーションを利用する技術を報告するirteen体節、42時間）ニワトリ胚8,9。ニワトリ胚の外部の開発は、後の発達時点10月13日で決定の影響で、特定胚の段階で便利な実験操作が可能になります。以前のHHステージ13（19体節、48時間）以上のニワトリ胚神経管、神経系の異なる細胞型に分化することができる多能性神経前駆細胞で構成されています。 CMVプロモーターおよびニワトリβ-アクチンエンハンサーの両方が含まれていますpCAGベクトルは、旗やニワトリ胚神経管14内の他のエピトープタグ付き構造体の強い発現が可能になります。本稿では、DNAは胚の中脳領域に特異的に構築し、どのように小さなカスタムメイドの電極をエレクトロポレーションを特定するために注入する方法など、胚の中脳ドーパミン作動性ニューロン前駆細胞に地域制限の遺伝子発現を達成するための特別措置を強調しています。 Cの分析後の段階で田舎者の脳は、脳開発のプラスミドベクターによるゲインの関数と機能喪失研究のための生体システムに優れた提供しています。実験システムの変更が運命マッピング解析を実行するために、遺伝子発現の調節を調べるための神経系の他の部分に分析を拡張することができます。

機能や中脳ドーパミン作動性ニューロンの開発中の遺伝子の調節を評価するために、我々は、関与の方法について説明します。<emOVOで&gt;</emニワトリ胚腹側中脳ドーパミン作動性ニューロン前駆細胞にプラスミドDNAコンストラクト&gt;エレクトロポレーション。この手法は、脳の発達とドーパミン作動性ニューロンへの分化のさまざまな側面を研究する目的遺伝子の効率的な発現を達成するために使用することができます。

ドーパミン作動性ニューロンの開発における遺伝子機能を研究するためのニワトリ中脳でのOVOエレクトロポレーションに

腹側中脳に位置するドパミン作動性ニューロンは、運動、感情行動、および報酬系を制御している1-3。腹側中脳の機能不全は...

本実験では、外来遺伝子の発現が中脳の発達およびドパミン作動性ニューロンの分化に及ぼす影響を調べるため、ニワトリ中脳へのin ovoエレクトロポレーション法を実演します。まず、ハンバーガー・ハミルトン（Hamburger Hamilton）ステージ11のニワトリ胚の中脳に、目的のプラスミドDNAを注入し、発達中の中脳胞へ外来DNAを特異的に導入します。次に、特製の小型電極を用いて中脳胞にエレクトロポレーションを行い、外来DNAを中脳の神経前駆細胞へ特異的に導入します。次に、中脳で良好なM cherry発現が見られるステージ23の胚を回収し、最適な中脳横断切片を作成します。最終的に、チロシン水酸化酵素などのドーパミン作動性ニューロンマーカーを用いた免疫染色解析を行うことで、目的遺伝子の発現によって誘導された神経前駆細胞から成熟ドーパミン作動性ニューロンへの分化を確認することができます。in ovo electroporationの他の既存手法に対する本手法の主な利点は、本プロトコルにより膜特異的なエレクトロポレーションが可能となり、中脳ドーパミン作動性ニューロンの分化を研究できる点にあります。この手法は中脳の発達に関する知見を得るのに有用ですが、神経系の他の部位における運命マップ分析や、遺伝子発現の制御に関する研究にも適用可能です。ハンバーガー・ハミルトン期ステージ11の胚を得るために、各受精卵を横向きに配置し、上部に鉛筆で印を付けます。その後、トレイをあらかじめ加温した加湿インキュベーター内のロッカースイングに設置します。受精後41時間目に、24時間ごとに湿度と水位を確認します。卵をインキュベーターから取り出し、室温で保存します。各卵の表面を70% ethanolで洗浄し、拭き上げます。次に、2枚の4 cmのセロハンテープを卵の上に並べて貼り、鉛筆の印の上に大きな長方形を作ります。テープを卵に密着させ、窓枠を固定します。18ゲージの針を装着した10 mLシリンジを用いて、胚を刺激したり傷つけたりしないよう、針を卵黄から遠ざける方向に傾けて卵殻を貫通させます。卵から5 mLのアルブミンを吸引します。針を70% ethanolで洗浄してください。次の卵を穿刺する前に、針を乾燥させます。flaming brown マイクロピペットプラーの設定を入力します。次に、P 10 ピペットを用いて、薄壁キャピラリーチューブを注入針に引き伸ばします。ロングチップキャピラリーピペットチップに 5 to 10 µL のプラスミド溶液を吸い取ります。次に、気泡が入らないように、ガラス針に溶液をゆっくりと連続的に充填します。充填した針を、マイクロマニピュレーターとマイクロインジェクターに取り付けられたニードルホルダーに装着します。続いて、解剖顕微鏡下で、針をより明確に視認するために背景を暗くし、緑色の液体が止まっている箇所でスプリングシザーを用いて針をカットします。前の針穴から、直径2〜2.5 cmの窓を開けます。これは白出（アルブミン）を抽出するためです。卵を片手で回転させながら切断してください。卵を処理するごとに、70%エタノールに浸したキムワイプでハサミを拭き取ってください。解剖顕微鏡下でヒヨコ胚を観察します。必要に応じて、ヒヨコ胚の下に0.22 µmフィルターを通した20%インディアインク（PBS溶液）を注入し、胚を可視化します。胚の頭部を針から遠ざけるようにして、針の進行方向と平行に胚を配置します。中脳後脳境界部にて、神経管を45度の角度でゆっくりと貫通させます。pico spritzer マイクロインジェクターを用い、注入時間を25ミリ秒に設定して注入を開始します。針の先端の状態に応じて時間を調整し、Fast Green染料を含むプラスミドDNAを、中脳に相当する神経胞にのみ満たします。注入針を回収した後、胚の上にペンストレプト溶液を3滴滴下します。効率的なエレクトロポレーションを行うため、B-T-X-E-M-C eight 30 electroporの設定を確認してください。腹側中脳の位置において、神経管の底部と同じ水平レベルに、カスタムメイドの小型L字型白金電極を配置し、胚の中脳が2つの電極の中央に位置するようにします。BTXフットスイッチを1回押し、電極周辺に気泡が発生することを確認します。電気穿孔が成功するたびに、電極を卵から慎重に抜き取り、電極を拭き取ります。70% ethanolを浸したケムワイプを用いて、胚の上にペニシリン・ストレプトマイシン溶液をさらに3滴滴下します。次に、5 cm × 5 cmの透明な梱包用テープで窓を覆います。卵の内容物に触れないようにして卵をしっかりと密封し、ターンテーブルをオフにした状態で卵をインキュベーターに戻します。目的の段階に達したら、条件ごとに、生存している胚をPBSを満たした共通のペトリ皿に回収します。次に、蛍光解剖顕微鏡を使用します。回収した胚をスクリーニングしてm cherryの発現を確認し、陽性胚を24ウェルプレートの個々のウェルに転移させます。各ウェルに、調製したばかりの2%パラホルムアルデヒド1 mLを加え、4 °Cで3時間インキュベートします。固定した胚をPBSで3回洗浄し、平衡化して同期するまで15% sucroseに浸します。同様の平衡化を30% sucroseで繰り返し、その後、各胚をOCTに包埋します。その後の解析のために最適な中脳横断面が得られるよう、胚を適切に配向させてください。胚鶏のin ovoエレクトロポレーションアッセイhhにおける後続解析のため、厚い中脳の18 µm厚のクライオスタット切片を調製します。ステージ11の鶏胚に、m cherry蛍光マーカーと目的遺伝子を含むプラスミッドカクテル、および注入プロセスの追跡用のfast green染料を注入します。中脳へのエレクトロポレーション後、胚をさらにインキュベートし、m cherry陽性の胚を回収して、固定および包埋を行います。次に、中脳の凍結切片を作製します。注入および電気穿孔が成功したニワトリ胚において、チロシン水酸化酵素などの中脳マーカーを用いた免疫染色によりサンプルを解析します。さらに発生させた後、m cherryの発現を注入マーカーとして用いることで、通常、中脳領域にm cherryの発現が認められます。m cherryが適切に発現している胚を固定、包埋し、中脳の凍結切片を作成するために方向を調整します。ここでは、m cherryおよびflagタグ付き遺伝子と、ドーパミン作動性ニューロンマーカーであるチロシン水酸化酵素との共局在により、エレクトロポレーションした神経前駆細胞におけるドーパミン作動性運命の決定を検討します。このビデオを視聴することで、中脳領域への特異的なDNAコンストラクトの注入方法や、小型のカスタム電極を用いたエレクトロポレーションのピンポイントな実施方法を含め、胚の中脳ドーパミン作動性ニューロン前駆細胞への遺伝子発現を領域的に限定する方法について十分に理解できるはずです。RNI媒介のロックダウンや、レポーター遺伝子に連結したエンハンサーの発現などの他の手法を用いることで、神経系の特定の領域や細胞型における遺伝子機能や遺伝子調節を研究することが可能です。

in-ovo-electroporation-chick-midbrain-for-studying-gene-function

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

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