Name: として不死化マウス脳微小血管内皮細胞株の生成 in vitroで血液脳関門モデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-29T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: 学ぶマウス脳微小血管内皮細胞の不死化培養法。新生マウス脳から単細胞懸濁液を調製し、ポリオーマミドルT抗原で不死化することで、血液脳関門モデルとして神経炎症や虚血性脳障害の病態生理学的研究に応用できます。

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この研究は、助成番号FO 315/4-1とDFGのSFB 688の下にドイツ学術振興DFGによってサポートされていました。

1。脳微小血管の分離<ol><li>それぞれの準備のためにどちらかの性別の五から十新生児マウス（3-5日齢）を使用します。 </li><li>地元の動物実験委員会/獣医師の推奨事項に従って、マウスを安楽死させる、直ちに脳を削除し、次の解決策を含むペトリ皿に転送：15mMのHEPES（pH7.4）中、153 mMのNaCl、5.6のKCl、2.3 mMのCaCl 2×2H 2 O、2.6 mMのMgCl 2×6H 2 O、1％（w / v）のBSA（バッファと呼ぶ）。 </li><li>特に断らない限り、すべての分離手順は、層流フードの下で室温（RT）（22-24℃）で行われるべきである。バッファ内に滅菌メスを使用して、髄膜および毛細血管の断片を除去した後、脳を（小脳、脳幹、大脳なし）カット。組織がない塊が表示されなくなるまで10mlのピペットを用いて上下に断片化し、ピペット。室温で5分間、250×gで50ミリリットルのファルコンチューブと遠心分離機に懸濁液を移す。 </li></ol> 注：髄膜は脳組織の表面に薄い透明膜として識別することができます。彼らは慎重に滅菌ピンセットで除去することができる。 <ol start="4"><li>上清を捨てる。 </li><li> 4.5ミリリットルバッファ0.75％の1.5ミリリットル（w / v）のコラゲナーゼ/ディスパーゼ（Roche）を用いて、37℃で45分間インキュベート℃の水浴（時折揺れ）にCでペレットを溶解する。 </li><li>一方、コラーゲンIV（0.1 mg / mlの50 mM酢酸に溶解したもの）でコーティングする4つのウェルで12ウェルプレートを準備します。 1時間付着することができます。 </li><li>氷冷緩衝液Aを徹底的にペレットを再懸濁し、15ミリリットルを添加することによって消化を停止します。 </li><li>室温で10分間250 xgで懸濁液を遠心分離します。 </li><li>上清を捨てる。 </li><li>ミエリンを削除するには、4℃で20分間、1,000×gで10ミリリットル25％（w / v）のBSA（Sigma社製、純度&gt; 98％）と遠心分離機を追加25％のBSAを1×PBS（PAAラボラトリーズ）に溶解し、0.2μmのfに通して濾過されるべきであるILTER）。 </li><li>慎重に上清を捨て、10mlのバッファーと新しいファルコンチューブに移すでペレットを溶解する。 </li><li>室温で5分間、250×gで懸濁液を遠心分離します。得られたペレットは、内皮細胞が含まれています。 </li><li> PBSで二回IV型コラーゲンコートした12ウェルプレートを洗浄してください。 </li><li> 2井戸、各ウェルに2ミリリットルに4成長培地1ml（DMEM、10％FCS、50U/mlペニシリン/ストレプトマイシン、1％L-グルタミンを含む）とプレートの細胞懸濁液中にペレットを再懸濁します。 37℃で45分間、4μg/ mlのインキュベートし、最終濃度°細胞培養インキュベーター中でC​​にピューロマイシンを追加します。このステップでは、急速に接着した細胞を除去することができます注：ピューロは、24時間のために追加されます。 ECSは、他の細胞型のピューロのために、それを代謝することができる唯一の脳は14有毒である。 </li><li> 2新鮮ウェル（これらの井戸は、EC画分を含む）にステップ1.14から非付着細胞を含む2 mlの培地を転送します。 STEから接着した細胞をウェルの中に埋める2ミリリットル新鮮培地（これらの井戸は、他の細胞型、 例えば 、線維芽細胞、アストロサイトが含まれており、並行して成長し、形態の比較のために使用することができる）を持つp 1.14。 </li><li>翌日、培地を変更します。 </li></ol> 2。脳微小血管内皮細胞を不死化する<ol><li> 10％熱不活性化FCS、50U/mlペニシリン/ストレプトマイシン、および2 mg / mlのG418を（含むDMEM培地でオーマミドルTの癌遺伝子とGP + E-86ネオ（GPENeo）15線維芽細胞、分泌複製欠損ウイルスを養うゼラチンコートフラスコでPAAラボラトリーズ） 注：オーマミドルTの癌遺伝子のトランスフェクションは、非-ECS文化の内皮細胞形態4〜6週間で細胞の均質な単層につながるオーバーECの増殖の利点を引き起こす。 GPENeoは市販されていないと（オリジナルの刊行物4,16を参照してください）共有公的材料として得ることができる。 </li><li>のウイルス含有培地を使用するには<html>不死化、24時間G418を含まない培地でGPENeo細胞を養う。 </li><li> GPEneo上清10mlを取り外し、8μg/ mlの最終濃度にポリブレン（ヘキサジメトリンブロマイド）（シグマ）を追加し、細胞破片を除去するために0.45μmのフィルターで滅菌します。 </li><li>パート1で調製したEC培養から培地を除去し、ウェルにGPEneo上澄み/ポリブレン混合液2mlを加える。新鮮GPEneoポリブレン/上清混合物を使用して次の日にそれを繰り返す注：ポリブレンはウイルス粒子）の感染を容易にするために、細胞壁に孔を作るために使用されます。 </li><li> GPEneoポリブレン/上清を混合翌日を削除し、PBSで細胞を2回洗浄し、3日ごとにそれを変更する増殖培地中で細胞を維持。合流時には、コラーゲンIVコーティングプレート上の細胞1:2に分割します。 </li><li>典型的には、安定した脳血管内皮（CEND）細胞株は4-5週間後に得られるべきである。 </li></ol>E &quot;&gt; 3。脳微小血管内皮細胞の育成<ol><li> 10ミリリットルあらかじめ温めておいた培地を用いて15ミリリットル·ファルコンで水浴して転送でcryoaliquotから細胞を解凍します。 </li><li>室温で5分間、250×gで懸濁液を遠心分離します。 </li><li>培養液を除去し、あらかじめ温めておいた増殖培地とコラーゲンIVコーティングされたTの25cm 2の細胞培養フラスコ（めっき用の細胞密度が少なくとも1×10 4細胞/ mlであるべきである）でペレットを転送します。 </li><li>翌日、培地を変更して、細胞がコンフルエントに達した後（通常5日後）セルを​​分割する。 </li></ol> 4。 CEND細胞の分裂（注：分割は週に一度の間隔で行われる必要があり、1:4より高い分割を避ける）。 <ol><li> 、培地を除去し、PBSで細胞を洗浄する。 </li><li> 37℃でインキュベート暖かいトリプシン-EDTA溶液（PAAラボラトリーズ）（T 75cm 2フラスコ）、3 mlを追加℃、細胞層まで待つ（通常5〜15分以内）に分散されている。 </li><li> 5ミリリットルoを追加fの成長培地、ピペッティングと、新しいコラーゲンIVコーティングしたフラスコへの転送。 </li></ol> 5。 CEND細胞の凍結<ol><li>ステップ4で説明したように細胞懸濁液を得</li><li>室温で5分間、250×gで懸濁液を遠心分離します。 </li><li> 6ミリリットルの凍結培地中で細胞ペレット（1 T 75cm 2フラスコから得られた）（95％成長培地、5％DMSO）を懸濁します。 </li><li> 。4 1.5ミリリットルクライオアリコートに細胞懸濁液を分割注：Oneクライオアリコートは、T 25cm 2フラスコに播種することができます。 </li><li>液体窒素蒸気温度下クライオアリコートを格納します。 </li></ol> 450ミリリットルDMEM、10％FCS、10ミリリットルのL-グルタミン、2％MEM-キット、2％NEAA、10mlのピルビン酸ナトリウム、50 U / mlペニシリン/ストレプトマイシン：増殖培地をCEND 6。代表的な結果 CENDとcerebEND細胞は内皮の免疫染色によって特徴づけられたND BBBは経内皮電気抵抗（TEER）と透磁率の測定によって、ならびにマーカー。 CENDとcerebENDは合流での成長阻害を示したすし詰め状態細長い細胞の単層で、脳ECの初代培養と同様の形態を有していた。細胞は、免疫蛍光（ 図3）4,5で示される細胞間結合に局在していたクローディン-5、オクルディンとVE-カドヘリンタンパク質の良く検出可能なレベルを、表明した。血清低減培地で培養CEND細胞はTEERの増加（Ωcmの2 150から2％血清の存在下で500Ωcmで2〜10％血清の存在下）ヒドロコルチゾンを添加することによって増強された、（800Ω·cmであったにつながった2）またはインスリン（1,000Ω·cmであった2）4。 21日間血清低減培地で培養CENDの単分子膜は、900Ω·cmであった2（ 図4）のTEERを持っていた。 TEERは、アセンブリを使用して測定した現在のパッシングと電圧測定電極（ワールド·精密機器）を含む。比較のために、主要な微小血管脳ECは200から600Ω·cmであった2と市販のマウス細胞株bEnd.3のTEER値はアボット2005とTothさんらを参照してください最近のレビューのために100から140Ωcmの2（のTEER値を持っていたことが報告されているら 、2011年17,18）。加えて、4時間かけてこのような非荷電分子量4、10、70、500 kDaのFITC-デキストラン、または2％FCSの分化培地でCENDの単層にわたるフルオレセイン（300 Da）のような巨大分子の通過は低下した10％FCSを含む成長培地中で維持コントロール細胞と比較して：傍細胞フラックスはFITC-デキストラン10〜70 kDaのために26％に、フルオレセインの制御細胞の30％に減少した、フラックスをFITC用コントロール細胞の4.5％に減少した-dextrtan 500kDaの。値をTEERと同様に、透磁率がglucの存在下で培養した細胞では、最低レベルであったocorticoids（GC）4。さらなる研究では、脳血管内皮4,7,9にクローディン-5およびVE-カドヘリン、オクルディン、グルココルチコイド標的遺伝子を同定した。 GCの治療は、これらのタンパク質の発現が増加したこと及び細胞骨格へのVE-カドヘリンの転位につながった。タイトジャンクションタンパク質オクルディンとクローディン-5の直接GC媒介規制は、そのプロモーター領域4,7,19のGC応答エレメントを通して表示されます。また、クローディン-5は血管内皮10における新規エストロゲン標的として同定された。 内皮機能障害の根底にさまざまな病気を。我々は、酸素/グルコース欠乏（OGD）条件下でCEND培養した。 OGDは、GCおよびプロテアソーム阻害剤ボルテゾミブ12との併用治療後に再構成することができるのBBB機能の破壊につながった。 OGD条件はグルコース取り込みの強い増加につながったとグルコースtransporの発現にMK801、NMDA受容体13の非競合的阻害剤を添加することにより減衰させることができるcerebENDでTERS、。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/4022/4022fig1.jpg" /> 図1。脳微小血管内皮細胞の形態（CEND）分離後の1週間。光顕微鏡写真は6倍（A）と15倍（B）の倍率で撮影した。内皮細胞の島形成されたコロニーが表示されています。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/4022/4022fig2.jpg" /> 図2。一ヶ月隔離と不死化後の脳微小血管内皮細胞の形態（CEND）。光学顕微鏡写真は15倍の倍率で撮影した。コンフルエントに、均質な内皮細胞単層を観察することができる。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/4022/4022fig3.jpg" /> 図3。不死化脳microvascularの内皮細胞はクローディン-5、オクルディンとVE-カドヘリン。CEND細胞がコラーゲンIVコーティングされたカバースリップ上で成長し、クローディン-5に対する抗体（）、オクルディン（B）およびVE-カドヘリン（C）で染色した。画像は40倍の倍率でツァイスAxioscop2顕微鏡を用いて撮影した。 <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/4022/4022fig4.jpg" /> 図4。 CEND単層。CENDの経内皮電気抵抗（TEER）の測定は、コラーゲンIVコーティングされたトランスウェルフィルター（孔径0.4μm）の上に成長した。コンフルエントに達した後、細胞を2％FCSを含む培地中で維持した。 TEERは、電流通過および電圧測定用電極を含むアセンブリを使用して、7日、14日及び21日後に測定した。

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</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

説明する手順は、血管内皮機能の特定の変化を研究するために、異なるマウス系統からだけでなく、さまざまなノックアウトマウス系統からの微小血管ECの切り分けに使用することができます。 不死化の方法として、我々は、マウスポリオーマウイルス、ポリオーマミドルT抗原の癌タンパク質の形質転換を使用していました。これは、in vivoおよび in vitro 20,21,22 で急速に未熟な内皮細胞を変形させる。文献に記載されているECの不死化する他の方法は、例えばSV40ラージサル空胞化ウイルスのT抗原40 23、アデノウイルス遺伝子産物E1A 24またはヒトテロメラーゼ3の触媒サブユニットを過剰発現させると不死化を含む。 PymTと不死化は短時間で新生児マウスから均質のEC文化を得ることを可能にするマウス未熟ECS、特異的である。不死化は、細胞及び番目のプロパティを変更不死化細胞株を用いて得られた電子の結果は、一次細胞またはマウスを用いたin vivoでの実験とのどちらと比較する必要があります。 PymT不死ECはウロキナーゼ型プラスミノーゲン活性化因子の産生の増加に起因する線維素溶解活性を高レベルに発現することが記載とプラスミノーゲン活性化因子阻害剤25の産生を減少させてきた。プライマリとPymT bEND5不死細胞株の直接比較は 、in vitro BBBモデルの両方がよくT細胞接着の研究26に適していることを明らかにしたECS。 記載の手順に従って確立された細胞株は、細胞が老化中にこれらのプロパティを失うように、BBBとECの接合部タンパク質の高発現によりバリア性を維持するために低継代数で使用することができます。したがって、バリア性の損失の後、新たな細胞株の調製は、考慮されるべきである。これは細胞増殖に重要であるとして、細胞播種密度は、ECSの高いはずです。これは、単離手順と同様に不死ECのメンテナンスの際に考慮しなければならない。それぞれの新しい細胞株は、その障壁特性及び他の細胞型では不可能汚染物質に対するテストする必要があります。 ECの単層をオリゴデンドロサイト、アストロサイトおよび周皮4,27による汚染を除外するために一次抗体として抗ガラクトセレブロシド、抗グリア線維性酸性タンパク質と抗平滑筋抗原で染色することができます。 meningal血管系による汚染を排除するために、トロンボモジュリンの発現が脳の28を除いた全ての血管床で表現されて、テストすることができます。 興味深いことに、異なる脳領域から分離された不死化微小血管内皮細胞株は、プロ炎症性刺激に彼らのバリア性と感受性が異なります。例として、大脳や小脳CEND cerebEND細胞株を4,5挙げることができる。 CerebEND比較で示した、主要なタイトジャンクショ​​ンコンポーネントclaudin-1のとオクルディンの低い発現レベルをCENDます。しかし、クローディン-3、-12のレベルはcerebENDで高かった。 cerebEND細胞のバリア機能は、炎症性メディエーターを用いた治療の下ではるかに苦しんだ、CEND細胞のバリア特性よりTNFαは5でした。炎症性刺激に高い小脳の脆弱性、多発性硬化症患者における脳脊髄炎と29の実験自 ​​己免疫の動物モデルを用いたin vivo で観察することができます。これらの興味深い知見は、脳の中に将来の薬物ターゲティングを改善するために、異なる脳領域のためのin vitroモデル個体を生成し、特徴付けるの必要性を示す。

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> 注釈 </td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン（BSA） </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> A7906 </td><td>純度&gt; 98％ </td></tr><tr><td>コラーゲンIV </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> C5533 </td><td> 50mM酢酸で50μg/ mlの</td></tr><tr><td>コラゲナーゼ/ディスパーゼ</td><td>ロッシュ</td><td> 10269638001 </td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコ改変イーグル培地（DMEM） </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> D5796 </td><td></td></tr><tr><td>ジメチルスルホキシド（DMSO） </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> D2650 </td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清（FCS） </td><td> PAAラボラトリーズ</td><td> A15110-1333 </td><td>最終濃度10％、熱不活化（56℃で30分間C） </td></tR&gt; <tr><td> L-グルタミン酸</td><td> Biochrom AG </td><td> K0282 </td><td>保管時：≤-15℃ </td></tr><tr><td> MEMビタミン</td><td> Biochrom AG </td><td> K0373 </td><td>保管時：≤-15℃ </td></tr><tr><td> NA-ピルビン酸塩</td><td> Biochrom AG </td><td> L0473 </td><td></td></tr><tr><td>ネオマイシン（G418） </td><td> PAAラボラトリーズ</td><td> P11-012 </td><td></td></tr><tr><td>非必須アミノ酸（NEA） </td><td> Biochrom AG </td><td> K0293 </td><td> 4°Cでの保存</td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン</td><td> Biochrom AG </td><td> A2212 </td><td>保管時：≤-15℃ </td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水（PBS） </td><td> Biochrom AG </td><td> L1825 </td><td></td></tr><tr><td>ポリブレン（ヘキサジメトリンブロマイド） </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 107689 </td><td> PBS中0.8 mg / mlと、-20℃で貯蔵</td></tr><tr><td>ピューロマイシン</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> P8833 </td><td></td></tr><tr><td>トリプシン/ EDTA </td><td> Biochrom AG </td><td> L1825 </td><td> 0.05％、PBS中の0.02％EDTA </td></tr></tbody></table>

として不死化マウス脳微小血管内皮細胞株の生成<em&gt; in vitroで</em&gt;血液脳関門モデル

Generation of an Immortalized Murine Brain Microvascular Endothelial Cell Line as an In Vitro Blood Brain Barrier Model

上皮および内皮細胞（EC）は、外部と内部の環境から組織を保護する傍細胞壁を構築しています。 ECから成る血液脳関門（BBB）、アストロサイトのエンドフィート、周皮細胞と基底膜は、脳実質の保護や恒常性に責任があります。 体外 BBBのモデルでは BBBの構造と機能を研究するための一般的なツールである細胞レベルで。 in vitroでのBBBモデルで異なるの相当数は、これまでの異なる研究室の研究のために設立されています。通常、細胞は、ウシ、ブタ、ラットまたはマウスの脳組織（ウィルヘルムらによる審査で詳細に議論した。1）から得られる。ヒト組織試料は、実験室や企業2,3の限られた数でのみご利用いただけます。初代細胞の調製物は、時間がかかり、ECの文化がバッチにバッチとは異なる場合があります、不死のEC LINの設立ですがesは科学的関心の焦点となっています。 ここでは、新生児マウスの脳からの不死化脳微小血管ECのラインを確立するための方法を提案する。我々は、プロシージャ·ステップ·バイ·ステップのリストを使用した試薬および解決策を説明します。私たちの研究室で確立した方法は、4〜5週間以内に均質な不死化血管内皮細胞株の単離を可能にする。脳毛細血管内皮細胞株はCEND 4と呼ばれる（大脳皮質から）、5（小脳皮質から）cerebEND、フェルスターの研究室では、この手順に従って単離した、効果的に、BBBの異なる生理学的および病理学的プロセスの説明のために使用されている。 CENDを使用して、我々は、これらの細胞はグルココルチコイド4,6-9およびエストロゲン治療10まで並びにTNFアルファ5,8としてプロinfammatoryメディエーターに応答することが実証されているcerebEND。また、複数のSCの病理を研究してきたlerosis 11とEC-レベルの低酸素12,13。 CENDとcerebEND線はBBBの構造と機能を研究するための優れたツール、リンパ球や癌細胞と異なる刺激やECの相互作用にECの細胞応答とみなすことができる。

この方法では、マウスの脳から微小血管内皮細胞を分離し不死化する方法について説明します。我々は、脳組織、消化手順、播種し、細胞の不死化の均質化から始まるステップ·バイ·ステップのプロトコルを記述します。通常、それは均質、不死化血管内皮細胞株を得るために約5週間かかります。

上皮細胞および内皮細胞（EC）は、組織を外部および内部環境から保護するパラセルラーバリア（細胞間バリア）を構築しています。

本手順の全体的な目的は、均質化された不死化脳血管内皮細胞培養株を得ることであります。まず、新生子マウスから脳を単離し、単一細胞懸濁液を調製します。次に、ポリオーマ中間T抗原を用いて細胞を不死化させます。次に、均一な内皮細胞単層が形成されるまで、細胞を約4週間培養します。最終ステップとして、免疫染色、ウェスタンブロット、およびQ-Q-P-C-Rなどの手法を用いて、新しい細胞株の特性評価を行います。この技術は、前臨床的な治療評価や病態生理学的知見を得られるため、神経炎症性または虚血性脳疾患の治療への応用が期待されます。手順のデモンストレーションを行うのは、私の研究室のポストドクターであるElaine Salvador博士です。バッファーAを含むペトリ皿に移された生後3〜5日の新生マウスから脳を取り出します。ラミナーフローフード内で作業を行い、1回の調製につき5〜10匹分の脳を用意します。各脳から小脳、脳幹、髄膜、および毛細血管の断片を取り除きます。次に、大脳をバッファーAを含む2枚目のペトリ皿に移します。滅菌済みメスを使用して大脳を細かく切り刻み、10 mLピペットで組織とバッファーを吸引・排出して、塊がなくなるまで均質化します。この時点で、脳組織を室温で250 ×gで5分間遠心分離した後、懸濁液を50 mL遠心チューブに移します。上清を捨て、ペレットを4.5 mLのバッファーAと1.5 mLの0.75% w/vに溶解させます。コラゲナーゼを添加します。組織とコラゲナーゼ溶液を37 °Cのウォーターバスで、時々撹拌しながら45分間インキュベートします。その間に、12ウェルプレートの4つのウェルに0.1 mg/mLの滅菌溶液をコーティングし、組織培養プレートを準備します。コラーゲンと 50 millimolar 酢酸を用いて、室温で1時間、コラーゲンをウェルに付着させます。45分間のインキュベーション時間が経過したら、15 milliliters の緩衝液Aを加えて脳組織の消化を停止させ、ペレットをこの溶液中で十分に再懸濁します。その後、250 times G で10分間遠心分離し、上清を捨てます。次に、調製物からミエリンを除去するため、組織に10 mLの滅菌済み25% w/v B, s, A, およびPBSを加え、4°Cで1000 ×gで20分間遠心分離します。遠心分離後、上清を慎重に廃棄し、ペレットを15 mLのバッファーAに溶解して新しい50 mL遠心チューブに移し、室温で250 ×gで5分間再遠心分離します。その間に、コラーゲンIVコーティングプレートをPBSで2回洗浄します。2回目の洗浄後、2つのウェルを空のままにし、残りの2つのウェルに2 mLの増殖培地を加えます。上清を廃棄した後、主に血管内皮細胞で構成される細胞ペレットを、4 µg/mLのピューロマイシンを含む4 mLの増殖培地で再懸濁し、その細胞懸濁液を2 mLずつ、空のコラーゲンコートウェル2つに播種します。急速に接着する非内皮細胞を死滅させるため、37 °Cで45分間インキュベートします。次に、細胞が入っていない2つのウェルから増殖培地を吸引して廃棄します。次に、内皮細胞画分を含む、非接着細胞を含む培地をこれら2つのウェルに転送します。前のウェルに2 mLの新鮮な培地を補充します。これらのウェルには線維芽細胞やアストロサイトなどの他の細胞種が含まれており、並行して培養して形態の比較に使用できます。翌日、細胞を組織培養インキュベーターで一晩インキュベートします。新鮮な培地と交換し、ポリオーマ middle T オンコジーンを含む複製不能ウイルスを分泌する GPE neo 線維芽細胞を、ゼラチンコートした GPE neo 培地入りフラスコで培養します。Polyoma medial T oncogene のトランスフェクションにより、非内皮細胞よりも内皮細胞に増殖上の優位性が生じ、内皮細胞の形態を持つ均一な単層細胞が得られます。4〜6週間の培養後、GPE neo 細胞は市販されていませんが、共有の公的材料として入手可能です。GPE Neo Fiberblastを24時間培養した後、培地を10 milliliters除去し、最終濃度が8 micrograms/milliliterになるように滅菌済みのpoly brain solutionを添加します。上清混合液を0.45 micronフィルターに通し、細胞断片を除去します。次に、血管内皮細胞培養物から培地を吸引し、ウェルに上清poly brain混合液を2 milliliters添加して、一晩インキュベートします。翌日に、新鮮な上清ポリ脳混合物のアリコートを用いて、この手順を繰り返します。上清ポリ脳混合物を取り除きます。細胞をPBSで2回洗浄し、その後、新鮮な増殖培地を添加します。細胞がコンフルエントになるまで3日ごとに培地交換を継続し、コラーゲンIVコートプレートに1〜2回継代します。安定した脳血管内皮細胞株は、通常4〜5週間の継続培養後に得られます。均一な血管内皮細胞の単層がウェル全体を覆った状態にします。安定した細胞株が得られたら、コラーゲンIVをコーティングした組織培養フラスコに移行させ、3 mLのトリプシンEDTAを用いて37 °Cで5〜15分間、細胞層が分散するまでインキュベートし、トリプシン処理による継代は週に1回までにとどめてください。5 mLの培地を添加した後、新しいフラスコに播種し、分割比が1:4を超えないようにしてください。T 75フラスコがコンフルエントになるまで十分な細胞が得られたら、後で使用するために細胞の凍結保存ストックを調製します。そのために、前述と同様にトリプシンで細胞を回収し、細胞懸濁液を250 ×gで5分間遠心分離します。室温で、細胞ペレットを6 mLの凍結培地で再懸濁し、細胞懸濁液1.5 mLを4本のクライオバイアルに分注します。クライオバイアルをイソプロパノールを満たしたNalgene凍結容器に入れ、-80 °Cで1日間保持します。最終的に、クライオバイアルを液体窒素下で保存します。細胞のクライオクアッドをウォーターバスで融解し、10 mLの増殖培地を含む15 mL遠心チューブに移します。培地を37°Cに予熱し、チューブを室温で250×gにて5分間遠心分離します。培地を吸引した後、ペレットを適切な量の増殖培地で再懸濁します。細胞懸濁液を、予熱した増殖培地と共にコラーゲンIVでコーティングしたT25細胞培養フラスコに移します。播種時の細胞密度は、少なくとも1×10⁴ cells/mLである必要があります。翌日に培地を交換し、これまでと同様に継代を続けてください。約5日後に細胞がコンフルエントに達し、準備が整ったら、以降の実験で必要となる所定の密度で細胞を播種します。C end細胞は、内皮マーカーおよび血液脳関門マーカーの免疫染色によって特性評価が行われました。この画像は、clain 5で免疫染色したC and細胞の形態を示しています。C and細胞は、増殖抑制を示す密に詰まった細長い細胞の単層を形成しており、脳ECSの初代培養と同様の形態をしています。完全なコンフルエンスに達した状態で、細胞は検出可能なレベルのclainを発現していました。ここでは、C CN細胞をオクルディンに対する抗体で免疫染色しています。また、免疫蛍光染色により示されているように、細胞間接合部に局在するVEカドヘリンタンパク質の発現が確認できます。経内皮電気抵抗は、電流通過電極と電圧測定電極を含むアセンブリを用いて測定しました。この図から、C end細胞の経内皮電気抵抗は、分化後の培養時間とともに増加することがわかります。この技術により、神経科学分野の研究者がマウスモデルを用いて脳血管障害を探索する道が開かれました。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

血液脳関門（BBB）のヒトモデルの確立は、BBBの障害に関連する脳条件の研究に利益をもたらすことができる。ここでは、多孔質膜の両側に、ヒト星状細胞および脳内皮細胞の共培養を可能に接触BBBモデルを調製するための改善された技術が記載されている。...

人間の細胞に基づく、血液脳関門の接触モデルの作製のための改善された方法

本研究の目的は、ラット同系内皮細胞とアストロサイトの共培養が関与する生体外 BBBモデルの再現性を検証することでした。内皮細胞単層は、高いTEERと低LY透過性を提示した。特定のTJタンパク質の発現は、炎症および輸送体および受容体の機能性に機能的応答を評価した。...

設定アップ<em&gt;体外</emラット血液脳関門の&gt;モデル（BBB）：BBB不透過性および受容体媒介輸送に注力

脳微小血管内皮細胞(BMEC)は、血液と中枢神経系(CNS)を分離する高度に制御された障壁を形成する特定の接合タンパク質によって相互接続されています。このプロトコルで述べられているように、初代マウス脳微小血管内皮細胞の単離により、BBBの詳細なin...

初代マウス脳微小血管内皮細胞の単離

ここでは、インピーダンス細胞分光法を利用した血液脳関門のin...

アン<em&gt;インビトロ</em&gt;インピーダンス分光法を用いた血液脳関門のモデル：T細胞 - 内皮細胞の相互作用に焦点を当て

血液脳関門のカバレッジを維持することは、中枢神経系の恒常性にとって重要である。このプロトコルは、血液脳関門のカバレッジを調節する基本的および病理学的プロセスを描写するためのインビトロ技術を記載する 。...

血液脳関門メッシュ様血管形成および崩壊を評価するためのインビトロアッセイ

プロトコルの目的は、プライマリ ブタ脳血管内皮細胞 (pBECs) に基づく体外血液脳関門 (BBB)...

体外血液脳関門ブタ脳血管内皮細胞に基づくモデルの確立のための改良法

人間の血液脳関門は、親水性の分子や病原体の脳への侵入を選択的に防ぎます。髄膜炎や術後せん妄を含むいくつかの病理は、血液脳関門の透過性の増加に関連している。ここでは、微生物トラバーサルによるバリア透過性を試験する内皮細胞培養モデルについて説明する。...

微小血管内皮細胞を介した微生物トラバーサルによる血液脳関門の透過性の解析

血液脳関門(BBB)は、多細胞神経血管の単位は、密接に脳の恒常性を調節します。ヒトiPSCと臓器オンチップ技術を組み合わせることで、疾患モデリングやCNS薬物浸透性予測に適したパーソナライズされたBBBチップを生成しました。BBBチップの生成と動作に関する詳細なプロトコルについて説明します。...

ヒトiPSCベースの血液脳バリアチップの生成

本プロトコルは、ヒト人工多能性幹細胞を分化して得られる脳内血管内皮細胞を導き出し、拡大、および凍結保存し、 また、ex vivo...

ヒト人工多能性幹細胞由来脳微小血管内皮細胞の誘導、拡大、凍結保存および特性評価

ここでは、多能性幹細胞を脳微小血管内皮細胞(BMEC)様細胞に分化させるプロトコルである拡張内皮細胞培養法(EECM)について述べる。これらの細胞は内皮細胞接着分子発現を示すため、in...

ヒト人工多能性幹細胞の成熟免疫表現型を有する脳微小血管内皮細胞様細胞への分化

学ぶマウス脳微小血管内皮細胞の不死化培養法。新生マウス脳から単細胞懸濁液を調製し、ポリオーマミドルT抗原で不死化することで、血液脳関門モデルとして神経炎症や虚血性脳障害の病態生理学的研究に応用できます。

として不死化マウス脳微小血管内皮細胞株の生成

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