Name: コラゲナーゼと中性プロテアーゼの精製の組合せを用いて単離ランゲルハンスマウスの膵島 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 59 s
Description: 学ぶマウス膵島の単離法。コラゲナーゼと中性プロテアーゼの精製酵素を用いて、膵管カニューレーションによりランゲルハンス島を効率的に単離し、形態と品質を最適化する方法です。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

この作品は、NIHの助成金R01 DK060581、R01 DK083583（RGMの両方）によって部分的にサポートされていました。

A.材料は、必要なもの：表1（試薬）を参照して準備する前に<ol><li> HBSS（P / S）：100ミリリットル10×HBSS + 900 mlのH 2 0 +1％ペニシリン/ストレプトマイシン（冷蔵庫で保存したり、氷の上に保たれる）。 </li><li> 20パーセントBSAの在庫は水で作られ、小分けして-20℃で保存されている</li><li> HBSS（BSA）：200ミリリットル1X HBSS（P / S）20％のBSA +3 ml（最終BSAの濃度は0.3％である） </li><li>膵島培地：RPMI + 10％FBS + 1％グルタミン+ 1％ペニシリン/ストレプトマイシン</li><li> HISTOPAQUE 1100：240ミリリットル1119 HISTOPAQUE + 200ミリリットル1077 HISTOPAQUE </li><li> 4から0縫合糸（マッケソンは）：2¾インチの小片に切断し、10cmシャーレに格納されている</li><li>楽器：鉗子のすべての3つのペアの鋸歯状の歯が下90°、およびファイルへのファイン科学ツールから鉗子を曲げます。目標は、それらを削除しないように、退屈な歯になります。 </li><li>コラゲナーゼ/プロテアーゼ混合物を投与するためのカニューレ：27G針½インチ、30½インチ針、ピース12インチにカットPE50チューブ。シャープなエッジを持っていない滑らかな丸みを帯びた端に両方の針を下に提出。 PE50チューブのピース12インチの一端に27G針を挿入します。ケーシング¼たびにターンを回し、プライヤーでケーシングを粉砕することによりケーシングから30G針を外します。ケーシングからプライヤーで針を外して、解剖顕微鏡下PE50チューブのもう一方の端に挿入します。あなたはPE50チューブに針を挿入すると、チューブをねじらないようにしてください。 27G針を使用すると、コラゲナーゼのシリンジを添付することは終わりです。 </li><li>コラゲナーゼ（CI zyme MA）および中性プロテアーゼ（CI zyme BP）。メーカーの指示に従って再構成TDE。酵素活性の濃度を算出する分析多くの特定の証明書を参照してください。再構成されたコラゲナーゼ35万コラーゲン分解活性（CDA）の単位とreconstitの100,000中性プロテアーゼ単位の合計を転送uted BPのコニカルチューブにプロテアーゼ及びHBSS中の15mlの合計（P / S）まで希釈</li></ol> B.ステップバイステップのプロトコル 1。コラゲナーゼ/プロテアーゼ混合物による膵臓のインフレ<ol><li>頸椎脱臼によりマウスを安楽死させる、70％エタノール、任意の解剖ハサミとピンセットで完全に肛門から横隔膜に開いて腹腔内にマウス胴体を飽和させる。 </li><li>解剖顕微鏡のプラットフォーム上にマウスを置きます。 </li><li>盲腸および上行結腸を引き出し、あなたの左に体腔外に設定してください。次の手順の概要は、 図1を参照してください。 </li><li>ダイアフラムに対して肝臓のローブを置き、体腔が十分開いている場合、彼らはそこに残っているはずです。肝動脈、門脈および湾曲鉗子で十二指腸を把持することにより肝臓につながる胆管の束を見つける。湾曲した鉗子の別のペアを使用すると、動脈、静脈の下に到達し、ダクトBUndleや動脈、静脈、胆管の下4から0縫合糸の部分インチ¾2を引き、一度それを結ぶ、できるだけ肝臓の近くにタイトな引き出します。 </li><li>湾曲した鉗子の2ペアを使用して、慎重に十二指腸をつかむと、乳頭で十二指腸に接続されている胆管を見つける。乳頭に近い胆下膵臓および結合組織の右側を通って突くために鉗子のはさみを使用しています。穴を作り、それから通って鉗子のトング両方を入れて、4から0縫合糸の別の2¾インチの部分を介して取得し、それを一度結ぶと小さな円に引いたが、タイトな引っぱらずに臓器を素早くあなたの鉗子を突く。 </li><li> 90°鉗子及び超微細Vannasはさみに変更します。胆管がピンと張ったようになるまで90℃鉗子で、慎重に小腸をつまんで引っ張る。腸内にオープンハサミを刺してから、1つのモーションで切断してハサミで乳頭を挟んで水平にカットしておきます。唯一のoを作ってみるneは乳頭から胆管が外れずに乳頭を横切る。 </li><li>それでも90°鉗子で腸を押さえながら、胆管の長さの半分までの胆管にカニューレを挿入し、静かにカニューレの周りにタイトな縫合糸を引き出します。 </li><li>コラゲナーゼ/プロテアーゼ混合物の2.0ミリリットルを3 mlシリンジを埋め、ゆっくりと、一定のペースでカニューレ内に注入します。 </li><li>膵臓のインフレが完了した後、胆管からカニューレを取り外し、下行結腸から開始して、腸をプルアップするように結合組織を切り取ることによって膨張した膵臓を除去するために湾曲した湾曲した鉗子と春のはさみを使用しています。あなたが胆管に到達するまで、腸から膵臓の削除を続行し、その後、その後脾臓から胃膵臓を削除してから、腹腔の内臓から。縫合糸を離れて切り取ることによって除去を完了します。 HBSSの5ミリリットルを含む50 mlチューブに膵臓を追加（P / S）。このチューブは氷の上になければなりません。 </li><li>最大4つの動物にそれぞれの動物については、上記の手順を繰り返します。最適な結果を得るためには、一度に4つしか膵臓を解離させる。最初の4つは、37℃の水浴中であるが、典型的には、我々は別の4膵臓を膨らませる。 </li></ol> 2。膵臓解離<ol><li> 15分間37℃の水浴中に膵臓を含む50 mlチューブを置きます。 </li><li>優しくチューブを揺すると組織解離をチェックするには、蓋で管を保持している間に組織は渦管を次に、簡単にバラバラに12回来てください。 </li><li>最大30 HBSS（BSA）は（これは遠心分離工程のために管のバランスをとるために必要とされるどのくらいに応じて、低量であってもよい）のmlと1分間290×gで遠心分離器を追加します。 </li><li>注意深く上清を吸引除去し、細胞ペレットを妨害しないように、下部に上清（2-3 ml）を少量にしておきます。 </li><li> 30ミリリットル注射器を使用してATTAC14G針にHED、HBSS（BSA）の10以上のミリリットルを追加し、2回ダウンサスペンションを吸引し。 </li><li> 50 mlチューブにプラスチック製の茶こしを通して細胞混合物を濾過し、別の10ミリリットルHBSS（BSA）ですすいでください。 </li><li> 2分間、330×gで遠心分離します。 </li><li>デカントで上清と1分間吸収紙タオルの上に排出するためのチューブを反転させる。 </li><li> 10ミリリットル冷たい1100 HISTOPAQUEで各チューブを再懸濁します。 </li><li> 10ミリリットルHBSS（BSA）でHISTOPAQUEをオーバーレイし、18分間、900×gで遠心分離します。 </li><li>大口径25mlのピペットを用いて上清の全体の20ミリリットルを取り外し、反転70μmのフィルターを通過し、上清を渡す。 </li><li>皿の上に右側を持ち上げながらフィルターを通して10mlの膵島メディアをピペッティングにより10cmペトリ皿に小島をすすぐ。 </li><li>実験の準備が整うまでは文化37℃、5％CO 2の組織培養インキュベーター内膵島を。典型的には、島を手摘みされ、exper前に数えimentation。 </li></ol> 3。代表的な結果膵島収量、形態、品質は膵島分離の成功を判断するために使用される一般的なパラメータである。我々の手では、平均のC57BL / 6マウスからの膵島収量は、このプロトコルを（表2を参照）を使用して150から250膵島の範囲にあり、最適化されたシグマXI型コラゲナーゼを用いて得られたデータに匹敵する。しかし、利回りは使用マウス系統とマウスの年齢に応じて変えることができる。我々は採用して動物のほとんどは8-16週齢の範囲でこのプロトコルは、C57BL / 6（180から250の小島/マウス）、CD1（200-300小島/マウス）、129 /を含む、複数のマウス系統でテストされていますアールB6（200-300小島/マウス）、BLKS-db/db（120から200の小島/マウス）、NOD（10週齢、100から150の小島/マウス）、およびNOD-SCID（100-150小島/マウス）。典型的な膵島の形態は、小島が比較的均一な大きさ（サイズunifものの持つ楕円形状にラウンドを持っている、 図2に示されているormity）がひずみにひずみから変えることができます。 図3のC57BL /精製TDES対シグマXI型コラゲナーゼを用いて単離された6マウスの膵島からグルコース刺激インスリン分泌の私たちの代表的な分析を示している。典型的には、2.5mMのグルコースで観察されるものより6から20倍である25mMグルコースにおけるインスリン刺激で高品質の膵島準備結果。その他のアプリケーションはまた、単離された膵島の品質をテストするために使用され、これらは他の11の間でperifusion技術の使用は、Ca 2 +イメージング（Fura2付き）、逆転写PCRを含めることができます。 <img src="/files/ftp_upload/4137/4137fig1.jpg" alt="図1" /> 図1。胆管カニュレーションの要約。 <img src="/files/ftp_upload/4137/4137fig2.jpg" alt="図2" /> 図2。 24時間以下の分離であるC57BL / 6小島の典型的な外観。画像は内に取得した40Xの倍率でverted顕微鏡。 <img src="/files/ftp_upload/4137/4137fig3.jpg" alt="図3" /> 図3。 C57BL / 6マウス膵島のグルコース刺激インスリン分泌。24時間以下の分離では、100島を37℃で1時間で2.5 mMのグルコースを含むクレブス-リンガーHEPES緩衝溶液中で12ウェルディッシュ中でインキュベートした。小島は、その後、上清を二部位免疫酵素免疫測定法（ELISA）（クリスタルケム）を使用してインスリン測定のために収集された後に、追加の時間2.5mMのグルコースでクレブス - リンガーHEPESに移した。同じ島はその後、25mMのグルコースを含むクレブス - リンガーHEPES緩衝液に移し、培地へのインスリン放出がインキュベーションの1時間後にELISA法により測定した。

<ol><li>Li, D. -S., Yuan, Y. -H., Tu, H. -J., Liang, Q. -L., Dai, L. -J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+protocol+for+islet+isolation+from+mouse+pancreas%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">A protocol for islet isolation from mouse pancreas.</a> Nat. Protoc. 4, 1649-1652 (2009).</li>
<li>Szot, G. L., Koudria, P., Bluestone, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+pancreatic+islet+isolation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Murine pancreatic islet isolation.</a> J. Vis. Exp. (7), e255(2007).</li>
<li>Zmuda, E. J., Powell, C. A., Hai, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+murine+islet+isolation+and+subcapsular+kidney+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">A method for murine islet isolation and subcapsular kidney transplantation.</a> J. Vis. Exp. (50), e2096(2011).</li>
<li>Kin, T., O'Gorman, D., Senior, P., Shapiro, A. M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experience+of+islet+isolation+without+neutral+protease+supplementation%5BTitle%5D)+AND+%22Islets%22%5BJournal%5D)">Experience of islet isolation without neutral protease supplementation.</a> Islets. 2, 278-282 (2010).</li>
<li>Gramignoli, R., Green, M. L., Tahan, V., Dorko, K., Skvorak, K. J., Marongiu, F., Zao, W., Venkataramanan, R., Ellis, E. C. S., Geller, D., Breite, A. G., Dwulet, F. E., McCarthy, R. C., Strom, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+application+of+purified+tissue+dissociation+enzyme+mixtures+for+human+hepatocyte+isolation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Transplant%22%5BJournal%5D)">Development and application of purified tissue dissociation enzyme mixtures for human hepatocyte isolation.</a> Cell Transplant. , Forthcoming (2012).</li>
<li>McCarthy, R. C., Spurlin, B., Wright, M. J., Breite, A. G., Sturdevant, L. K., Dwulet, C. S., Dwulet, F. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+characterization+of+a+collagen+degradation+assay+to+assess+purified+collagenase+used+in+islet+isolation%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant.+Proc%22%5BJournal%5D)">Development and characterization of a collagen degradation assay to assess purified collagenase used in islet isolation.</a> Transplant. Proc. 40, 339-342 (2008).</li>
<li>Gotoh, M., Ohzato, H., Porter, J., Maki, T., Monaco, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crucial+role+of+pancreatic+ductal+collagenase+injection+for+isolation+of+pancreatic+islets%5BTitle%5D)+AND+%22Horm.+Metab.+Res.+Suppl%22%5BJournal%5D)">Crucial role of pancreatic ductal collagenase injection for isolation of pancreatic islets.</a> Horm. Metab. Res. Suppl. 25, 10-16 (1990).</li>
<li>Ohzato, H., Gotoh, M., Monden, M., Dono, K., Kanai, T., Mori, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improvement+in+islet+yield+from+a+cold-preserved+pancreas+by+pancreatic+ductal+collagenase+distention+at+the+time+of+harvesting%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Improvement in islet yield from a cold-preserved pancreas by pancreatic ductal collagenase distention at the time of harvesting.</a> Transplantation. 51, 566-570 (1991).</li>
<li>McCall, M. D., Maciver, A. H., Pawlick, R., Edgar, R., Shapiro, A. M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histopaque+provides+optimal+mouse+islet+purification+kinetics%3A+comparison+study+with+Ficoll%2C+iodixanol+and+dextran%5BTitle%5D)+AND+%22Islets%22%5BJournal%5D)">Histopaque provides optimal mouse islet purification kinetics: comparison study with Ficoll, iodixanol and dextran.</a> Islets. 3, 144-149 (2011).</li>
<li>Breite, A. G., Dwulet, F. E., McCarthy, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+dissociation+enzyme+neutral+protease+assessment%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant.+Proc%22%5BJournal%5D)">Tissue dissociation enzyme neutral protease assessment.</a> Transplant. Proc. 42, 2052-2054 (2010).</li>
<li>Evans-Molina, C., Robbins, R. D., Kono, T., Tersey, S. A., Vestermark, G. L., Nunemaker, C. S., Garmey, J. C., Deering, T. G., Keller, S. R., Maier, B., Mirmira, R. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PPAR-%7Bgamma%7D+Activation+Restores+Islet+Function+in+Diabetic+Mice+Through+Reduction+of+ER+Stress+and+Maintenance+of+Euchromatin+Structure%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">PPAR-{gamma} Activation Restores Islet Function in Diabetic Mice Through Reduction of ER Stress and Maintenance of Euchromatin Structure.</a> Mol. Cell. Biol. 29, 2053-2067 (2009).</li>
</ol>

NDSは、土、RGMは開示することは何もありません。著者AGBはVitaCyteで採用されています。著者RCMはVitaCyteにおける所有持分を有しています。

このプロトコルでは、ランゲルハンス島を単離することを目標に、カニュレーション、コラゲナーゼ灌流、及びネズミの膵臓の解離のために私たちの手順を説明してきました。技術的には、我々の方法は、一度マスターして、動物の安楽死の4分以内に膵臓の分離を可能にする必要があり、1時間することで、単一の動物から膵島の分離をもたらすべきである。技術の速さは、それによって3000小島までの分離で、その結果、私たちは典型的なストレッチで12匹までから膵島を分離することができます。 コラゲナーゼの粗調製物を使用する他のプロトコルとは異なり、我々のプロトコルは、精製されたプロテアーゼは、CI zymeコラゲナーゼマサチューセッツおよびCI zyme BPのプロテアーゼの使用を特徴とする。市販されているTDE製剤の一貫性のばらつきは各ロットは個別に一般的に使用する前にテストされ、最適化されている必要があります。このロット間変動は、私たちはプリの使用を考慮するために導いVitaCyteからfied TDES。これらの高度に精製されたTDESは敏感な蛍光標識基質アッセイの使用を含む複数の方法によって特徴づけられる。蛍光CDAのアッセイが劣化天然コラーゲンで異なる動態を持っコラゲナーゼの異なる分子形態の影響を受けやすくなります。歴史的なペプチド基質アッセイは、コラゲナーゼの不完全なアセスメントを提供します。複数のメソッドでコラゲナーゼを特徴付けることはロット間の大きい酵素活性を確実にします。 市販のコラゲナーゼ製剤のさまざまな方法を使って、社内テストに基づいて、我々は、精製酵素の組み合わせが再現可能なロットの結果をもたらしたことがわかった。最適な酵素組成物を定義した後、このアプリケーションで高度に精製され、厳格に特徴付けTDESを使用する主な利点は、ロット間の性能の一貫性が保証されています。この一貫性は、通常必要とされる多くの資格の労働集約的なプロセスを排除原油または濃縮コラゲナーゼ製品の。精製TDESはまた、異なるマウス系統から回収された膵島の収量と品質を向上させるための組成物の追加の変更を有効にしてください。マウスの異なる系統から膵島を分離するための最適な酵素組成物を報告することは、より効果的に伝達することができます。これは、順番に、実験的なデザインのリソースと柔軟性の向上をより生産的な利用につながる。 我々のプロトコルを使用して、膵島単離の結果に影響を与えることができる多くの重要なステップがあります。第一は、酵素製剤の血中に、膵臓の効果的なインフレ率を達成する必要があります。シリンジに優しい力でインフレを起動して、膵臓が膨らむような力を高めることが重要である。それが腸を移動し、コラゲナーゼ全体臓器を灌流ように膨張時に膵臓を持ち上げておくと便利です。もう一つの重要なステップは、1つは、チューブafteを振るする力である37℃（ステップ2.2）において、rはインキュベーション。私たちは、チューブのキャップかたい膵臓を振ると、膵島の断片化が発生しますが、この段階で機械的解離の任意のフォームなしで、膵島収量が劇的に減少することを見出した。それは、シリンジ（ステップ2.5）との解離工程中に、中レベルの力は、プランジャと上下運動中に適用されることも不可欠ですが、これはフィルタリングステップ（2.6）の前に十分な組織解離を保証し、どこに非常に少ない組織は、茶漉しフィルター上に保持されるべきである。最後に、慎重にフォローするための最後のステップは、HISTOPAQUE画し膵島の全体の20ミリリットルの願いです。小島はHISTOPAQUEし、HBSSの界面に典型的であるが、我々は唯一のインタフェースを削除しようとしたとき私たちは島を失うことを発見したのではなく、我々は今、大口径25mlのピペットを使用することで全体の20ミリリットルを削除します。我々は、cに必要性を排除するために反転さ70μmのフィルター（ステップ2.11）を通して濾過を追加しましたHISTOPAQUEを洗い流すために繰り返し膵島をentrifuge。

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td></td><td> カタログ＃ </td></tr><tr><td> 10X HBSS </td><td>ライフテクノロジーズ</td><td> 14065 </td><td></td></tr><tr><td> RPMI </td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 10から040 </td><td></td></tr><tr><td> BSA </td><td>シグマアルドリッチ</td><td>任意の</td><td></td></tr><tr><td> HISTOPAQUE 1077 </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 10771 </td><td></td></tr><tr><td> HISTOPAQUE 1119 </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 11191 </td><td></td></tr><tr><td> 4から0縫合糸100ヤードロール</td><td>マッケソン</td><td> 451521 </td><td></td></tr><tr><td> 14グラム平滑末端針</td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 14-8216M </td><td></td></tr><tr><td>VannasのスーパーファインSciss </td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 501778 </td><td></td></tr><tr><td>湾曲した春のはさみ</td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 14127 </td><td></td></tr><tr><td>湾曲した鉗子（2） </td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 15914G </td><td></td></tr><tr><td>湾曲した鉗子（90°用） </td><td>ファイン科学ツール</td><td> 11052から10 </td><td></td></tr><tr><td> 27G 1/2インチ針</td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 305109 </td><td></td></tr><tr><td> 30G 1/2インチ針</td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 305106 </td><td></td></tr><tr><td> PEの管</td><td>ベクトン·ディッキンソン</td><td> 427411 </td><td></td></tr><tr><td>コラゲナーゼマサチューセッツ</td><td> Vitacyte、LLC </td><td> 001-2030 </td><td></td></tr><tr><td> BPプロテアーゼ</td><td> Vitacyte、LLC </td><td> 003-1000 </td><td></td></tr><tr><td> 3ミリリットルのシリンジ</td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 309585 </td><td></td></tr><tr><td> 30mlのシリンジ</td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 309650 </td><td></td></tr><tr><td> 70μmのフィルター</td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 352350 </td><td></td></tr><tr><td> 10cm 2のペトリ皿</td><td>フィッシャー·サイエンティフィック</td><td> 351005 </td><td></td></tr><tr><td>プラスチック製の茶こし</td><td>どんなキッチンサプライ</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 表1試薬および器具 </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td><table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0" width="510"><tbody><tr><td> シグマXI型 （l010M8618） </td><td> MA（100615） BP（110329） </td><td> MA（081104） BP（100823） </td><td> MA（091211） BP（101109） </td></tr><tr><td> 216（±74） </td><td> 260（±45） </td><td> 157（±37） </td><td> 200（±4） </td></tr></tbody></table></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> 表2異なるTDEロット*を使用して平均膵島収量（±SD） ※データは、少なくとも10匹のマウスの平均膵島収量を表す。括弧内のロット番号</td></tr></tbody></table>

コラゲナーゼと中性プロテアーゼの精製の組合せを用いて単離ランゲルハンスマウスの膵島

Mouse Islet of Langerhans Isolation using a Combination of Purified Collagenase and Neutral Protease

β細胞の遺伝子発現とin vitroでの機能の尋問は、真正面から、げっ歯類の腫瘍形成性細胞株の研究から単離されたげっ歯類の小島の研究に長年にわたってシフトしている。主要な島は、彼らがより忠実に細胞内シグナル伝達経路および分泌応答の生物学を反映していることの明確な利点を提供します。組織解離酵素（TDE）の製剤を用いた膵島分離の方法は、多くの実験室1月4日に設立されているのに対して、任意のげっ歯類の系統から膵島収量と品質の一貫性の変動は、主膵島研究の範囲と実現可能性を制限します。これらの変化はしばしば膵島分離手順で使用される部分的に精製された原油TDESの結果として発生します。頻繁に活動のロット間のばらつきを示し、多くの場合、使用する酵素の投与量の調整が必要になるTDES。レポートの数が少ないの齧歯類の細胞単離のためのTDES 5,6を精製し使用している</supは&gt;が​​、実際には、ヒト膵島単離のためのTDES、精製の日常的な使用と利点にもかかわらず普及していない。 VitaCyte、LLC（インディアナポリス、インディアナ州）と共同で、我々は、を介して粗組織分画に続いTDESをマウスの膵管に直接灌流されている後藤7,8、、によって記載されたものに基づいて修正されたマウスの膵島単離プロトコルを開発HISTOPAQUE勾配9、および精製された膵島の単離。我々のプロトコルには有意差は、精製されたコラゲナーゼ（CI zyme MA）および中性プロテアーゼ（CI zyme BP）の組み合わせを使用することである。コラゲナーゼは、基板6のように蛍光標識された水溶性の子牛の皮の繊維を利用して6蛍光コラーゲン分解活性（CDA）のアッセイの使用によって特徴づけられた。それは基質として天然コラーゲンに依存しているので、この基板は、組織マトリックスにおけるコラーゲン分解の動力学のより予測です。プロテアーゼはchであった感受性蛍光カイネティックアッセイ10でaracterized。より伝統的な生化学的な分析とともに、これらの改善されたアッセイを活用することでロット間の改良された性能の一貫性につながる、より一貫して製造することTDEを有効にしてください。ここで説明されたプロトコルは、最大限の膵島収量およびC57BL / 6マウスを用いて最適な膵島の形態用に最適化された。このプロトコルの開発時には、コラゲナーゼと中性プロテアーゼのいくつかの組み合わせが異なる濃度で評価し、コラゲナーゼの最終比：35:10の中性プロテアーゼ、シグマXI型に匹敵する酵素の性能を表しています。ラットやマウスの異なる株から平均膵島収量の大幅な変動が報告されているので、TDEの組成物の追加変更は、異なる種や菌株から回収された膵島の収量と品質を向上させるためになされるべきである。

マウス膵島分離の詳細な説明はコラゲナーゼと中性プロテアーゼの精製組み合わせのin situ膵管カニュレーションと灌流の技法を用いて説明する。

in vitroにおけるβ細胞の遺伝子発現および機能の解析は、長年にわたり、げっ歯類の腫瘍形成性細胞株の研究から……へと明確に移行してきました。

この手順の全体的な目的は、マウスの膵臓からアイレットを正常に単離することです。まず、周囲の組織から膵臓を単離します。次に、胆管にカニューレを挿入し、コラゲナーゼプロテアーゼ混合液で膵臓を膨張させます。膨張後、膵臓を取り出し、アイレットを慎重に分散させます。最後に、単離したアイレットをろ過し、今後の使用に備えてプレートに播種します。最終的に、精製コラゲナーゼと中性プロテアーゼを用いたこのアイレット単離法により、最大のアイレット収量と最適なアイレット形態を得ることができます。この手法の既存のアイレット単離法に対する主な利点は、精製酵素を使用することでロット間のばらつきを排除したことです。さらに、アイレットの形態を改善するために、いくつかのプロトコルを変更または改善しました。安楽死させた後、肛門から横隔膜まで腹腔を完全に開く前に、体幹を70%ethanolで覆います。次に、マウスを解剖顕微鏡のステージ上に置きます。盲腸と上行結腸を引き出し、体腔の外側の左側に配置し、肝葉を横隔膜の方へ押し寄せます。そのままの位置に固定されない場合は、体腔の開口部を広げてください。曲鉗子で十二指腸を把持し、肝臓に向かう肝動脈、門脈、胆管の束を確認します。別の曲鉗子を用いて、動脈、静脈、および胆管の束の下に縫合糸を通し、可能な限り肝臓に近い位置で締め付けます。2対の曲型鉗子を用い、慎重に十二指腸を把持して、乳頭に付着している胆管を確認します。鉗子の片方の先端を用いて、胆管の直下かつ乳頭付近にある膵臓および結合組織を突き抜けます。速やかに、その穴に鉗子を通し、縫合糸を緩く挿入します。90度鉗子を使用して、胆管の周囲に縫合糸を小さく円状に結びます。胆管が張るまで小腸を牽引します。腸を保持しながら、超極細剪刀を用いて、胆管を乳頭から外さないように乳頭を横方向に1回切開します。胆管にカニューレを挿入し、カニューレの周囲の縫合糸をゆっくりと締め付けます。次に、3 mLのシリンジに2.0 mLのコラゲナーゼプロテアーゼ混合液を満たします。この混合液をゆっくりと一定の速度でカニューレに注入してください。膵臓の膨張が完了したら、胆管からカニューレを抜去します。下行結腸から始めて、胆管に到達するまで腸を上に引き上げながら、結合組織を切り離します。次に、膵臓を脾臓および周囲の組織から分離します。最後に、縫合糸を切断し、膵臓を取り出します。摘出した後、膵臓を5 mLのHBSSが入った50 mLチューブに入れ、氷上で保持します。すべてのサンプルの回収が完了したら、膵臓組織の入った50 mLチューブを37 °Cの水槽に入れます。15分間、チューブを緩やかに揺らしながら、組織が解離しているかを確認します。チューブの蓋を持ち、組織が容易に分散することを確認してください。さらに12回旋回させ、組織をさらに解離させます。HBSSを30 milliliters以下加え、遠心分離を行います。上清を注意深く吸引しますが、細胞ペレットを乱さないよう、底に少量の超清を残しておきます。14ゲージの針を装着した30 mLシリンジを用いて、10 mL以下のHBSSを加え、懸濁液を2回吸い上げと排出を繰り返します。細胞混合物をプラスチック製Tストレーナーでろ過し、50 mLチューブに回収します。さらに10 millilitersのHBSSで洗浄し、遠心分離します。上清を捨て、チューブを逆さまにして吸収性のペーパータオルの上で1分間水気を切ります。各チューブを10 millilitersで再懸濁します。1100で冷却します。不透明なオーバーレイを不透明な状態で、10 millilitersのHBSSとともに遠心分離します。25 milliliterの大口径ピペットを用いて20 millilitersの上清をすべて除去し、その上清を逆さまにした70 micronフィルターに通します。アイレットをペトリ皿に直接ろ過し、アイレット培地10 millilitersをピペッティングしてフィルター培養液を洗浄します。実験準備が整うまで、アイレットを組織培養インキュベーター内で保持します。アイレットの収量、形態、および品質が、アイレット分離の成功を判断するための一般的な指標となります。典型的なアイレットの形態をここに示します。アイレットは円形から楕円形の形状をしており、サイズは比較的均一です。ここでは、単離したアイレットを用いて、グルコース刺激性インスリン分泌の解析を行いました。Sigma Type 11で調製したアイレットとci zyme TM、MABPで調製したアイレットでは、インスリン刺激に差がなく、アイレット調製の質が高いことが示されました。このビデオを視聴することで、マウス胆管のカニューレ挿入方法を十分に理解できるはずです。あらゆるアッセイのために、zymeコラゲナーゼおよびニュートロプロテアーゼを用いてアイレットを分離してください。

mouse-islet-langerhans-isolation-using-combination-purified

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

マウス膵島単離

膵島は、ランゲルハンス島とも呼ばれ、グルコース調節やその他の重要な生物学的機能のためのホルモンを産生する内分泌細胞のクラスターです。このプロトコルでは、最初にAmpulla of...

コラゲナーゼ灌流による膵島単離:膵島細胞を単離するための酵素的方法

ランゲルハンス単離したマウスの膵島を用いたin vitroβ細胞機能をアッセイすることは、糖尿病の病態と治療薬の研究に重要な要素である。多くの下流のアプリケーションが利用可能であるが、このプロトコルは、具体的にはβ細胞機能を決定する本質的なパラメータとして、細胞内サイクリックアデノシン一リン酸（cAMP）の測定を記載する。...

マウス膵島の単離と細胞内cAMP測定法

ここでは、2型糖尿病のマウスモデルから膵島を分離するためのプロトコル、Leprdb、および2光子顕微鏡を利用した無傷の膵島からのインスリン分泌を測定するための生細胞アッセイの詳細を紹介します。...

LEPR<sup&gt; DB</sup&gt; 2型糖尿病のマウスモデル：無傷の膵島の膵島単離およびライブセル2光子イメージング

我々は、新生児マウスから無傷の膵島を単離するために、本明細書のプロトコルを記述します。膵臓は、部分的に洗浄し、ハンドピッキング続いて、コラゲナーゼで消化しました。 20から80膵島クラスタは、いくつかの島の研究に適しており、新たに生まれたマウスから膵臓ごとに取得することができます。...

新生児マウスの膵臓からの機能性膵島の効果的な分離

この島分離プロトコルは、外分泌組織を消化するコラゲナーゼ注射の新しい経路と、マウスから島を精製するための簡略化された勾配手順を説明した。これは、酵素消化、勾配分離/精製、およびアイレット手摘みを含みます。分離に成功すると、マウスあたり250~350の高品質で完全に機能する島が生じます。...

マウスからの膵島分離のための簡単な高効率プロトコル

ここで潜在的な糖尿病誘発異物化学物質を識別するために、化学物質によって ROS の帰納法をスクリーニングするためのマウスの膵島細胞を分離するためのプロトコルを提案する.

マウスの膵島細胞ベースの糖尿病誘発環境化学物質のスクリーニング

このプロトコルでは、マウスの小口分離および、皮下白色脂肪組織への移植の方法が記載されている。単離された同系マウス島は、基質膜ヒドロゲルを用いてマウスレシピエントに移植される。レシピエントの血糖値をモニターし、そして、血小移植片のヒストロジー分析を行う。...

マウス島の口内皮下白色脂肪組織(ISWAT)移植モデル

ここでは、初代マウス肝臓正弦波内皮細胞(LSEC)単離のためのプロトコールを概説し、実証する。このプロトコールは、肝臓コラゲナーゼ灌流、低速遠心分離による非実質細胞精製、およびCD146磁気ビーズ選択に基づいている。また、フローサイトメトリーと走査型電子顕微鏡を用いて、これらの単離されたLSECの表現型と特性評価も行っています。...

マウス初代肝臓正弦波内皮細胞の単離と特性評価

本研究は、マウス膵臓から機能的な一次膵島および腺皮細胞を効率的に抽出する簡略化された方法を開発し、急性膵炎誘発性糖尿病の病因における細胞間コミュニケーションの研究に貴重なツールを提供しました。...

マウスから一次膵島および一次膵臓細胞を同時に分離するための簡単かつ迅速な方法

このプロトコルは、ルイスラット膵島の外科的収穫、酵素的消化、密度勾配精製のための標準化された方法を説明し、移植や in vitro...

酵素による消化および密度-勾配分離を用いたルイスラットからの膵島の分離と精製

学ぶマウス膵島の単離法。コラゲナーゼと中性プロテアーゼの精製酵素を用いて、膵管カニューレーションによりランゲルハンス島を効率的に単離し、形態と品質を最適化する方法です。

コラゲナーゼと中性プロテアーゼの精製の組合せを用いて単離ランゲルハンスマウスの膵島

さらに動画を探す