Name: レーザー組織修復にローズベンガル-キトサン膜の作製と応用 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-23T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 6 s
Description: 学ぶレーザー活性化キトサン接着剤の作製と末梢神経修復への応用手法。ラット神経を用いて緑色レーザー照射による組織接着と結合強度測定を実演し、縫合より低侵襲な治療選択肢を示す。

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1。キトサン貼付製剤<ol><li>キトサン粉末が酢酸溶液に可溶であり、酢酸（2％v / v）のストック溶液を調製するために、490ミリリットルの脱イオン水（DI-H 2 O）に10 mlの氷酢酸を追加します。 </li><li>酢酸中ローズベンガル（RB）（0.01％w / v）のストック溶液の調製のために、退色を避けるためにアルミホイルで包まれたバイアル中でRBの5mgを量る。酢酸原液（1.1項で説明）の49.5ミリリットルを加えて粉末を溶解するためのDI-H 2 Oの0.5 mlを加える。 </li><li>キトサン溶液（1.7％w / v）の調製のために、キトサン粉末（ミディアムMW、アセチル化の85％程度）の0.85グラムの重量を量るとRB酢酸溶液50mlに追加します。コントロールは、RBなし酢酸溶液にキトサンを溶解することによって調製した。 </li><li>キトサン混合物にマグネチックスターラーを追加し、室温で撹拌。コンポーネントの完全な溶解を確実にするために、キトサンをかき混ぜる2週間と5日間酢酸中のキトサン（コントロール）用酢酸中+ RB。キトサンが解散されたときは、溶液のpHは約2.6から〜3.9に増加します。 RBは酸性pHに難溶性であり、それは溶液のpHと溶解する拡張撹拌時間の増加が必要であることに注意してください。 </li><li> 1時間3270 xgで遠心し、ソリューションを使用して上清を回収し、例えば、無菌の10mlシリンジ。不純物の沈殿を乱さないようにしてください。このステップの間、溶液は肉眼で見える不純物、不溶物から洗浄される。 </li><li>無菌の注射器を使用してフラットperpexスラブ上（遠心分離）キトサン溶液を注入します。乾燥したフィルムの厚さは、溶液の調剤量と溶液が広がっているその上に表面積との比に依存する。ソリューションは気泡がないと均等にスラブの上に広げていることを確認します。 〜13μmの厚さの薄膜を得るために、12 cm 2の表面の上に〜1mlの溶液を注入面積（寸法は〜3×4センチ、 図1A）。 </li><li>溶液の退色を避けるために、例えばアルミ箔製のスクリーンを持つ風防スラブを、カバーしています。十分な換気が画面の下に溶液を乾燥することが保証されていることを確認します。 </li><li>得られたフィルムは水に不溶であり、肉眼的に膨潤しないまで室温（25℃）及び圧力（1気圧）で乾燥するソリューションを残す。これは一般的に2週間で達成される。 </li><li>慎重に薄くて平らなへらを使用してフィルムをはずす：これらのフィルムは、簡単にそれらを損傷することなく、風防スラブに剥離することができる。 </li><li>マイクロメーターを用いてフィルムの厚さを測定します。 </li><li>きれいな鋭いはさみで短冊で接着剤をカットし、その平坦な形状を維持するために滅菌したガラススライドの間に配置します。遮光のためにアルミホイルでスライドを包み、室温で保管してください。または &quot;キトサンadhes&quot;接着バラ &quot;として、RBの有無にかかわらず、接着剤のラベルを付けますそれぞれ &quot;IVE。 </li><li>バラの接着フィルムをエタノール（90％）またはガンマ線（24時間0.1 KGy / h）で4,5とを用いて滅菌することができる。 </li></ol> 2。接着剤光減衰<ol><li>石英キュベット内のバラ接着剤を固定します。 </li><li>デュアルビーム分光光度計4を使用して 800nm ​​の- 400の範囲で、その減衰スペクトルを記録します。 </li><li>次のように接着剤の減衰長を計算し、ベールの法則の妥当性を仮定すると、I = I 0のe-AXここで私は0は入射ビーム強度は、1 /減衰長であり、xは膜厚である。 </li><li>キトサン接着剤の2.1から2.3にコントロールとして機能するように手順を繰り返します。 </li></ol> 3 体外アプリケーションで次の操作を行います 。小腸におけるレーザーティッシュボンディング<ol><li>収穫ウシ腸直後は-80℃で、動物安楽死と℃で保存</li><li>使用前に、霜と水和物TI10分間のDI-H 2 O中に浸漬してssue。 </li><li>手術用顕微鏡（×10）の下で＃10ブレードを使用してセクション（2×1cm）をに組織を二分。 DI-H 2 Oを使用してセクションの潤いを保つ</li><li> （エンドツーエンド）近くに一緒に切開の切り株を持参してください。綿のヒントを使用して表面から余分な水分を拭き取ります。 </li><li>腸（ 図2）と完全に接触を確保microforcepsと漿膜層に切開を横切っバラの粘着ストリップ（10×6 mm）を配置します。 </li><li>バラの接着剤の組織の癒着は、マルチモード光ファイバ（コア径200μm）を4に結合されているダイオード励起固体レーザによって活性化される。 </li><li> 180 mWにレーザーのパワーレベルを設定し、 表1に記載されたパラメータを使用して〜5mmのビームスポットサイズで〜6分、のための接着剤を照射します。各スポットは、隣接するスポットにビームを移動する前に、約5秒間照射されていることを確実に接着剤をスポット照射します。 T彼の手順では、レーザービームが接着剤を数回の全体の表面積をスキャンすることを保証します。 </li><li>組織接着強度を評価するために、機械的なグリップを使用して校正された単一の列テンシオメータ（インストロン、MA、USA）に試料をクランプします。 4つの独立した二つの組織の切り株まで22ミリメートル/分でグリップを移動します。 </li><li>ステップ3.5で説明されるように組織上のバラの接着剤を置きます。試料に照射し、手順3.8で説明したように、組織の接着強度を測定しないでください。このサンプルでは、​​コントロールとして機能します。 </li></ol> 4 in vivo用途で次の操作を行います 。脛骨神経の吻合<ol><li> O /イソフルラン2混合物（以後誘導中に4％、2％）5と落ち着いたWistarラット。皮下術中鎮痛作用を提供し、できるだけ痛みや不快感を軽減するためにBuprenexを（0.03 mg / kg）を注入します。 </li><li>以下の外科的処置は、手術用顕微鏡（×10）の下で行われるべきである。斜めの肌を作る右大腿部の背外側部で長く臀筋2を介して筋肉分割アプローチで脛骨神経を露出さ約3cm切開。 </li><li>部分的に分析し、ストレートマイクロ剪刀を用いて脛骨神経の外膜をトリミングして、滅菌ガーゼや綿のヒントと余分な水分を吸収する。 </li><li>マイクロはさみで脛骨神経を切断。 </li><li>マイクロ鉗子を用いて脛骨神経の下に位置無菌キトサンストリップ（寸法は5×4 mm）です。 </li><li>バラ粘着ストリップ上のマイクロピンセットで近似神経切り株エンドツーエンド。 </li><li>ストリップが完全にストリップのレーザー照射時に神経の回転に伴って、支援することができます襟を形成する神経にも準拠しています。 </li><li> ）ステップ3.6で説明されるようにレーザーでバラの接着剤を活性化）と3.7。 </li><li>作動神経の襟から冗長バラ接着剤をトリムします。 </li><li> 5 3から0縫合糸5と筋肉と皮膚を閉じます。 </lI&gt; <li>必要に応じて標準的な術後の回復手順は、裂開や膿形成や鎮痛剤投与のための日常点検を含む従うべきである。 </li></ol> 5。代表的な結果得られたフィルムは明るいカラーでバラ薄く、滑らかな表面（ 図1）を持っている。彼らはまた、柔軟であり、涙や他の明らかな損傷（ 図1B）を発生させることなく小径のチューブにロールバックすることができます。バラの接着剤は、530および562 nmの2つの吸収ピークを有し、緑のレーザーはこのように強力に接着剤で吸収し、532nmで対応する減衰長は〜12μmで（ 図3）である。これとは対照的に、RBなしキトサンフィルムはおそらく、弱く散乱によるレーザー（1 /〜162μm）を減衰させる。それはRBの有意な凝集が映画の中で発生していないことをスペクトルプロットから表示されます。 しっかりと接着結合をバラ0.9障害発生時の典型的な最大負荷を達成するため、レーザー照射（ 図2）±0.4（N = 30）の時に腸へ。接着強度は、接着表面積、すなわち、15で割った最大荷重±6キロパスカル（​​n = 30）のように推定された。非照射バラ接着剤は組織に結合して有意に少ない（2±2kPaと、n = 30の、対応のないt-検定、p &lt;10 6）。脛骨神経の生体内吻合は正常に緑色のレーザーと一緒にバラの接着剤の塗布及び接合後に達成された。術後一週間、運営神経が継続していたと修理の強度は17歳±9キロパスカル（​​n = 10）であった。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/4158/4158fig1.jpg" /> 図1。）RB-キトサン溶液は、フラットパースペックススラブ（スラブ厚さ約5 mm）の上にキャストされています。方眼紙は、乾燥キャストステップを容易にするスラブの下に配置されています。水不溶性FILMは2週間鋳造後に得られる。 B）はバラ接着剤は柔軟性があり、小さなシリンダーにロールバックすることができます。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/4158/4158fig2.jpg" /> 図2：バラの接着剤は、レーザー照射後の子牛の腸に接着されている。均一照射は組織ボンディング時のRB接着剤に適用されますが選択されたスポットは、接着剤にレーザーの光漂白効果を説明するために、この絵に示されている。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/4158/4158fig3.jpg" /> 図3：バラの接着剤の吸収スペクトルは、（任意の単位）530および562 nmの2つのピークを示す。緑色レーザー（λ= 532 nm）をこのように強くレーザー露光時の接着剤によって吸収される。 RBなしキトサン接着が不十分なレーザー光を吸収。 <table border="1"><tbody><tr><td></td><td> N </td><td><s&gt;面積（mm 2）チョン· </td><td> 消費電力（W） </td><td> 時間（s） </td><td> フルエンス（J / cm 2）を </td><td> I（W / cm 2）を </td><td> 最大負荷/エリア（KPA） </td></tr><tr><td> 接着剤+レーザー </td><td> 30 </td><td> 60±10 </td><td> 0.18±0.03 </td><td> 365±5 </td><td> 〜110 </td><td> 〜0.9 </td><td> 15±1 </td></tr><tr><td> 接着剤 </td><td> 30 </td><td> 60±10 </td><td> NA </td><td> NA </td><td> NA </td><td> NA </td><td> 2±2 </td></tr></tbody></table> 表1。伝説。 nはサンプル番号、エリア、バラの接着剤の表面積（±最大誤差を意味する）、パワー、レーザパワー（±最大誤差を意味する）、時間、照射時間（±最大誤差を意味する）、フルエンス、平均レーザフルエンス、私、推定IRRadiance、最大負荷/エリア、接着表面積で割った修復組織の破壊時の最大荷重（平均±SE）。

<ol><li>O'Neill, A. C., Winograd, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microvascular+anastomosis+using+a+photochemical+tissue+bonding+technique%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg.+Med%22%5BJournal%5D)">Microvascular anastomosis using a photochemical tissue bonding technique.</a> Lasers Surg. Med. 39, 716-722 (2007).</li>
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<li>Lauto, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integration+of+extracellular+matrix+with+chitosan+adhesive+film+for+sutureless+tissue+fixation%5BTitle%5D)+AND+%22Lasers+Surg.+Med%22%5BJournal%5D)">Integration of extracellular matrix with chitosan adhesive film for sutureless tissue fixation.</a> Lasers Surg. Med. 41, 366-371 (2009).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

酸性pHにおけるRBの溶解が延長キトサン溶液の攪拌を要求している接着剤の製造は、シンプルな乾式キャスト法に基づいていました。それは水に不溶性の膜となるまで溶液が乾燥させることが重要です。重量含水率は乾燥膜6〜10％であるとき、これは起こります。不溶性のフィルムは、通常、温度と圧力の標準条件（〜25℃、約1気圧）で2週間乾燥キャスティング後に得られる。それは隣接組織への接着剤からRBの拡散が、レーザーは、組織の界面に効率的に光活性化することができていることが観察されたが、組織の接着のメカニズムは、まだ明らかではない。これは、一重項酸素を生成するRBの能力は、光照射によって、そのアミノ基を介して、7,8架橋組織コラーゲンとキトサンの役割を果たすかもしれないと推測することができる。バラの接着剤に関する最近の研究では、最高温度がTISの間に達成することも示されたSUE-接着は光化学過程4の仮説を支持する、〜32℃であった。組織修復のための他の縫合技術は現在いくつかの研究グループによって検討されている。例えばレーザー溶接組織（LTW）が正常ピーニら 9<...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> コメント（オプション） </td></tr><tr><td>ローズベンガル</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 632-69-9 </td><td></td></tr><tr><td>キトサン（ミディアムMW） </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 10318AJ </td><td></td></tr><tr><td>氷酢酸</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> 08050051 </td><td> DI水で2％v / vの</td></tr><tr><td>マグネチックスターラー</td><td> Heidolph </td><td> MR特ミックスS </td><td></td></tr><tr><td>遠心</td><td>ベックマン·コールター</td><td>アレグラX-12R </td><td></td></tr><tr><td>分光光度計</td><td>バリアン</td><td>ケーリー4000紫外可視</td><td></td></tr><tr><td>レーザー</td><td> CNIレーザー</td><td> MGL-532 </td><td></td></tr><tr><td>マイクロメータ</td><td>ミツトヨ</td><td>シリーズ227 </td><td></td></tr><tr><td>外科用顕微鏡</td><td>ツァイス</td><td> OPMI </td><td></td></tr></tbody></table>

レーザー組織修復にローズベンガル-キトサン膜の作製と応用

Fabrication and Application of Rose Bengal-chitosan Films in Laser Tissue Repair

光化学組織結合（PTB）は、2つの組織の縁部1,2の間にローズベンガル（RB）のソリューションを適用することによって達成される組織修復のための縫合テクニックです。次いで、これらは、選択的にRBによって吸収されるレーザーが照射される。その結果、光化学反応は、おそらく最小限の熱産生3で、組織内のコラーゲン繊維を架橋する。本報告では、RBはレーザーで活性化される新規の組織接着剤を製造するために薄いキトサン膜に組み込まれています。キトサンおよび〜0.1重量％RBを含むに基づく接着剤フィルムは、固体レーザ（λ= 532nmで、フルエンス〜110 J / cm 2であり 、スポットサイズは約0.5cm）により製造され、子牛腸およびラット脛骨神経に接合されている。パソコンとのインタフェースの単一列テンシオメータは、接合強度をテストするために使用されます。 RB-キトサン接着ボンドしっかりと15の強度を持つ腸±6 kPaで、（N = 30）。接着強度は、2＆に低下plusmn;レーザーを接着剤に適用されていない2キロパスカル（​​N = 30）。脛骨神経の吻合も縫合糸を使用せずに完了することができます。新規なキトサン接着剤が糸を光化学的に組織に結合し、必要としないことを試作した。

縫合糸は通常、外科手術の際に組織を修復するために必要とされている。彼らは侵襲的であり、組織に損傷を与える可能性があるしかし、そのアプリケーションが問題になることがあります。小説組織接着剤の製造、およびアプリケーションの方法はここで報告されます。この接着フィルムは、レーザー活性化され、縫合糸の使用を必要としません。

光化学組織接着（PTB）は、2つの組織の間にローズベンガル（RB）溶液を塗布することにより達成される、縫合を必要としない組織修復技術であり、...

この手順の全体的な目的は、レーザー活性化キトサン接着剤を作製し、末梢神経の修復に適用する方法を提示することです。まず、酢酸溶液中でキトサンとローズベンガル粉末を溶解させます。次に、この溶液をドライキャストして薄膜を得ることで、作製を完了します。3番目のステップは、ラットの神経を露出させ、それを解剖することです。最後のステップは、解剖した神経の周囲にフィルムを配置し、グリーンレーザーを照射してフィルムを組織に結合させることです。最終的に、ローズフィルムが組織に結合する強さを、校正済みのテンシオメーターを用いて測定します。このレーザー接着剤は生体適合性を有しており、組織に直接結合できるという利点があります。そのため、縫合が困難な深部や到達しにくい部位の組織修復に非常に有用です。また、硬膜や腸管など、水密性の高い閉鎖が重要となる組織の修復においても利点があります。接着剤の調製には複数の工程が含まれ、また組織への接着剤塗布時には外科的手技において細心の注意が必要であるため、altoおよび接着技法を視覚的に示すことが重要です。デモンストレーションの大部分は、私の研究室の大学院生であるMatt Bartonが行い、外科手術はQuare UniversityのMarcus Studley教授が行います。まず、ローズベンガルを添加した酢酸でKita sand溶液を調製することから始めてください。コントロール溶液は、単にローズベンガルを除いた組成で調製でき、室温でマグネチックスターラーを用いて攪拌します。ローズベンガルを含まないコントロールの場合、約2週間または5日で準備が完了します。この期間中、キトサンが溶解するにつれて、pHはおよそ2.6から3.9まで上昇します。調製後、溶液を1時間遠心分離し、不純物のペレットから溶液を分離します。緩やかに吸引し、ペレットを乱さないようにしてください。滅菌シリンジを使用して、溶液を平らなパースペックス板上に注入します。気泡が入らないように、溶液を均一に広げます。厚さ約13 micronsの薄膜を作成するには、12 square centimetersの範囲に溶液1 milliliterを広げてください。溶液の光退色を防ぐため、Perspexスラブをアルミホイルのスクリーンで覆いますが、薄膜が乾燥するように十分な通気スペースを確保してください。室温・常圧で溶液を乾燥させます。フィルムが乾燥したら、細いスパチュラを使用して慎重にスラブから剥がし、テストを行います。接着剤が乾燥していることを確認したら、少量のサンプルを切り出し、水が入ったバイアルに入れます。フィルムが不溶性で、マクロ的に膨潤しなくなった状態を乾燥完了とする。通常、これには2週間かかる。その後、清潔で鋭利なハサミを用いてフィルムを切り出し、マイクロメーターで厚さを測定する。フィルムを、用途に合わせて必要なサイズの長方形のストリップに切断します。ローズ接着剤またはコントロール接着剤の断片を、アルミホイルで包んだ滅菌済みのガラススライドの間に挟み、室温で保存します。アプリケーションにフィルムを使用する前に、その光学的減衰度を測定してください。これは、石英キュベットに小さなフィルム片を固定することで達成されます。次に、ダブルビーム分光光度計を用いて、400から800ナノメートルの範囲でフィルムの減衰スペクトルを記録します。測定結果は、Beerの法則を用いて解析することで減衰長を算出でき、これはフィルムの厚さと比較可能な値となります。本プロトコルでは、動物の安楽死後直ちに採取し、-80°Cで保存した子牛の腸を使用する必要があります。組織を脱イオン水に10分間浸し、解凍および水和させます。次に、低倍率の手術用顕微鏡下で、10番メスを用いて組織を2 cm × 1 cmのセクションに二等分します。2つのセクションを接合させるため、水滴を落としてセクションを湿らせておきます。セクションを端と端で合わせ、表面の余分な水を拭き取ります。この操作には、マイクロ鉗子と綿棒を使用してください。ciero層上の切開部をまたぐように、ローズ粘着フィルムのストリップを貼付します。フィルムが腸管に完全に密着していることを確認してください。マルチモード光ファイバーに結合したDDE励起固体状態レーザーを準備します。レーザーパラメータが正しく設定されているか確認します。次に、接着剤に照射します。ビームのスポット径は、接着剤のスポットに接する部分で約5 mmになるようにし、接着剤の各部分に約5秒間照射してください。最終的に、約6分間かけて表面を数回スキャンします。照射したサンプルを取り出します。組織の接着強度を評価します。サンプルを校正済みシングルコラム万能試験機に、メカニカルグリップを用いてクランプします。2つの組織断端が分離するまで、分速 22 millimeters の速度でグリップを移動させ、コントロールとして測定します。組織の上にローズ接着剤を配置します。サンプルに照射を行わず、組織の結合強度を測定します。この手順では、ローズ接着剤フィルムを滅菌させる必要があります。これは90%ethanolまたはガンマ線照射を用いて行うことができます。Wistarラットを4%の気化isof fluorineで鎮静させ、動物が疼痛反射に反応しなくなった時点で濃度を2%に下げます。趾（あしゆび）の挟み込みテストなどで確認し、ラットの大腿部を剃毛して消毒します。手術用顕微鏡下で手術位置に固定し、右大腿部の背外側に約3cmの斜切開を加えます。直線型マイクロ scissors を用い、臀筋を分ける muscle splitting approach により脛骨神経を露出させます。脛骨神経の外膜を部分的に剥離し、トリミングします。余分な液体を滅菌ガーゼまたは綿棒で吸収させます。次に、マイクロ鉗子を用いて脛骨神経を切断します。切断した脛骨神経の下に、滅菌済みのローズ接着ストリップを配置します。次に、ローズ接着ストリップ上で神経断端同士を端的に近似させます。神経に張力がかからないようにすることが重要です。ストリップが神経に完全に密着してカラーを形成し、これが神経の回転を補助します。レーザー照射中、既述の手順に従ってレーザーでローズ接着剤を活性化させます。最後に、5-0縫合糸で筋肉と皮膚を閉鎖し、ラットの回復に向けて標準的な術後プロトコルに従ってください。以上のプロトコルに従い実施します。得られたフィルムは明るい桃色で薄く、表面は滑らかである。また、フィルムは柔軟性があり、破断やその他の明らかな損傷を生じることなく小径のチューブ状に丸めることができる。ローズ接着剤は、530および562 nanometersに2つの吸収ピークを持つ。したがって、緑色レーザーは接着剤に強く吸収され、532ナノメートルにおける対応する減衰長は約12ミクロンとなります。対照的に、RBを含まないEsanフィルムのレーザーによる減衰はわずかです。ローズ接着剤はレーザー照射によって腸管に強固に結合し、破断時の典型的な最大荷重は約1ニュートンに達します。接着強度は、最大荷重を接着表面積で除して算出した。非照射のローズ接着剤は、組織への接着力が有意に低かった。ケトおよび接着剤は、水に完全に不溶になるまで乾燥させることが重要である。約2週間かかります。また、接着剤を調製する際は酸を使用するため、酸の取り扱いは必ずドラフトチャンバー内で行ってください。さらに、本手順ではレーザーを使用し、非常に危険であるため、常にレーザー保護メガネを着用してください。

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

小説の製造、FDAが承認した成分からフレキシブル薄膜外科用接着剤、キトサンおよびインドシアニングリーンが記載されている。低出力の赤外線レーザーで簡単なアクティベーションプロセスによりコラーゲン組織にこの接着剤の接着性を示す。...

キトサンベース、レーザー活性薄膜外科用接着剤、 &#39;SurgiLux&#39;：準備とデモ

現在の幹細胞治療の主要なハードルは、ホスト組織にこれらの細胞を提供するための最も効果的な方法を決定しています。ここでは、その多能性を維持するために、脂肪由来幹細胞を可能にしながら、アプローチの効率的かつ単純であるキトサンベースの配信方法について説明します。...

幹細胞にロードされたキトサンミクロスフェアの配信のためにコラーゲンハイドロゲルの構築

細胞やタンパク質と機能化することができる生体適合性フィルムを作成するためのバイアス電極の存在下で刺激応答性多糖類の沈着：この資料では、biofabricationアプローチを説明しています。我々は、ラボ·オン·チップ·アプリケーション用の対話biofunctionalizedサーフェスを作成するためのフィルムだけでなく、その基本的な用途を生成するためのベンチトップ型の戦略を示しています。...

Biofabricationとバイオエレクトロニック·インタフェースをブリッジする

このプロトコルは、心筋梗塞の幹細胞治療のための細胞生着不良の制限を、ハイドロゲルシステムとフィブリンベースの接着剤の使用を通じて緩和することを目的としています。このアプローチにより、梗塞後の細胞間接触を維持でき、損傷部位における有益な薬剤の治療可能性が高まります。...

ヒドロゲルは、構築し、マウス心筋梗塞モデルにおける治療薬を送達するためのフィブリンベースの接着剤のアプローチ。

ポリ（N-イソプロピルアクリルアミド） - グラフト - コンドロイチン硫酸からなる注射可能な組織工学足場は、（のPNIPAAm-G-CS）含有アルギン酸微粒子を調製しました。接着強度、膨潤性及び生体適合性、インビトロでは、この研究で分析されています。ここで開発された特性決定技術は、他の熱ゲル化システムにも適用可能です。...

組織工学のためのアルギン酸微粒子と熱ゲルポリ（N-イソプロピルアクリルアミド） - グラフト - コンドロイチン硫酸複合材料の合成

リアルタイムでのキトサンフィルム上にペプチドグラフトを監視するためのキャピラリー電気泳動

ここでは、ヒト歯周靭帯(PDL)細胞スフェロイドをキトサン膜で培養するプロトコルを紹介する。三次元(3D)細胞スフェロイドの培養は、従来の組織培養ポリスチレン(TCPS)培養システムに代わるものとなる。...

キトサン膜上のヒト歯周靭帯細胞スフェロイドの形成

本プロトコールは、キトサン−ゲニピンミクロゲルの作製のための非エマルジョンベースの方法を記載する。これらのミクロゲルのサイズは正確に制御することができ、pH依存性の腫脹を示し、...

組織工学用途のためのサイズ制御およびエマルジョンフリーのキトサン-ジェニピンミクロゲルの製造

機械的に単離された間質血管画分(SVF)とフィブリンハイドロゲルの組み合わせは、組織工学や創傷治癒目的など、さまざまな適応症で生存脂肪由来の間質細胞の容易で効率的なキャリアを提供します。ここでは、トランスレーショナルリサーチおよび臨床応用のための機械的SVF(mSVF)-フィブリンハイドロゲルコンストラクトの調製について紹介します。...

機械的に単離されたStromal Vascular画分およびFibrinのヒドロゲルの組合せ:処理のプロトコール

この研究では、連続的および断続的な圧力設定の下で 72 時間を超える圧力と体液の収集を評価することにより、創傷被覆材と陰圧創傷治療システムとの適合性を評価するように設計されたベンチトップ...

創傷被覆材と陰圧閉鎖療法システムとの適合性を評価するためのベンチトップモデルの開発

ウサギの角膜間質創傷修復のための現場ブルーライト交差ゲラチンリボフラビンハイドロゲルの調製、濃縮、適用に関する再現可能なプロトコルを提示し、手術的取り扱い、部分的な足蘠切除術、術後ケアの手技手順を含みます。...

ウサギの角膜創傷修復のための強化光交連ゲラチン–リボフラビンハイドロゲルの製造および外科的応用

学ぶレーザー活性化キトサン接着剤の作製と末梢神経修復への応用手法。ラット神経を用いて緑色レーザー照射による組織接着と結合強度測定を実演し、縫合より低侵襲な治療選択肢を示す。

レーザー組織修復にローズベンガル-キトサン膜の作製と応用

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