Name: T細胞の定量的なハイスループットシングルセル細胞毒性アッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 28 s
Description: 学ぶT細胞のハイスループットシングルセル細胞毒性アッセイ。ナノウェルアレイと蛍光顕微鏡を用いて、効果細胞と標的細胞の一対一相互作用を定量的に解析し、がん免疫療法の研究に応用できます。

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研究は賞の数R01CA174385下国立衛生研究所（NIH）の国立癌研究所によってサポートされていましたこの文書に報告した。内容はもっぱら著者の責任であり、必ずしも国立衛生研究所の公式見解を示すものではありません。

1。試薬の調製<ol><li> 500ミリリットルのRPMI-1640と5 mlペニシリン - ストレプトマイシンそれぞれ、L-グルタミン、およびHEPES溶液を混合することにより、RPMI-PLGHを準備します。 </li><li> 10％ウシ胎児血清（FBS）を含むRPMI-PLGHを混合することにより、R10溶液を調製します。 FBSはさらに〜30分間56℃の前で熱不活化である。 </li><li> 37℃でプレ暖かい℃のRPMI-PLGH 50mlのPBSを15ミリリットル、無菌コニカルチューブでR10の15ミリリットル。 </li><li> PDMSにおけるnanowellsのアレイの作製：シリコンマスターは、本質的に以前に10を説明したフォトリソグラフィを用いて作製される。徹底的にプラスチック製のナイフを使用して使い捨てカップの10:1の重量比でシルガード184エラストマーキットのベースと硬化剤を混ぜる。ドガ1時間真空チャンバー内で混合。 、nanowellアレイ上に混合物を注ぐスライドガラスで密閉して、30分間放置します。 ℃で2時間、80に設定したオーブンにアセンブリを移し、1時間室温で冷ます。エラストマーは最新版でしょうこの期間中の電子と意志スライドガラスに接着する。 PDMS nanowell配列を含有するガラススライドは慎重に、シリコンマスターリフトオフスコッチテープで覆われており、将来使用するまで保存されています。 </li></ol> 2。標的細胞（T）のラベル<ol><li> 5分間、340×gで遠心分離することにより滅菌15mlコニカルチューブに血球計数器とペレット細胞を用いた細胞培養から500万標的細胞をカウントします。細胞培養は5ミリリットル総容積（密度= 100万/ ml）に前日分割し、T-25フラスコ（VWR）中で培養される。血球計数器を用いて細胞計数のためのプロトコルは、以前11を詳細に説明してきた</li><li>メディアの約50μlを残して余分なメディアを吸引します。 </li><li> （最終濃度2.5μM）を150μlのRPMI-PLGHに0.5μlのCTRストック（1mM）を混合することにより、携帯トラッカーレッド（CTR）のワーキング溶液を調製します。標的細胞への作用溶液を150μlを加え、P200のピペットを用いてよく混合します。交互に、PKH 26（最終濃度2μM）を製造元の指示に従って、ラベル標的細胞を使用することができます。 </li><li> 20分間37℃/ 5％CO 2でインキュベートする。 </li></ol> 3。エフェクター（E）細胞標識<ol><li> 5分間、340×gで遠心分離することにより滅菌15mlコニカルチューブに血球計およびペレット細胞を用いた細胞培養から500万エフェクター細胞をカウントする。 </li><li>余分なメディアを吸引</li><li> R10のメディアの1ミリリットル（5μMの最終濃度）を5mMのVybrantバイオレット株式1μlを添加してVybrant DyeCycleVioletステインソリューションの作業溶液を調製します。細胞への実用的なソリューションを追加し、P200のピペットを用いて再懸濁します。交互に、PKH 67（最終濃度2μM）を製造業者の指示に従って、ラベル標的細胞を使用することができます。 PKH 67が使用されている場合は、それらが同じ蛍光チャンネルにあるので、その後SYTOXグリーンは使うべきではありません。アポトーシス目標の列挙は、専ら使用して行われこの場合nnexinV染色。 注：時間経過ではなく、エンドポイントの測定を行う場合は、Vybrantバイオレットのような紫の染料は避けるべきである。 </li><li> 20分間37℃/ 5％CO 2でインキュベートする。 </li></ol> 4。密度勾配を用いた生細胞と死細胞の分離<ol><li>それぞれ、ターゲットとエフェクター細胞に6.8ミリリットルおよびRPMI-PLGHの6.0ミリリットルを加え、穏やかに上下にピペッティングにより混和します。 </li><li>標的細胞とエフェクター細胞を含む各コニカルチューブの底にのFicoll-Paque Plusの層3.5ミリリットル。 FICOLLとメディア間の層の良好な形成を確保するためFICOLLゆっくり層。 </li><li> 30分間340 xgで両方のチューブを遠心分離します。ノーブレーキと加速しています。 </li><li>遠心中、4ウェルプレートにあらかじめ温めておいたPBSを7ミリリットルを転送します。 nanowellアレイ（PDMSで作製）を準備エタノールでスライドガラスの底をきれいにし、1分間のプラズマ酸化剤を用いた高RF設定でPDMSを酸化させる。このステップでは、STEますまた、親水性のPDMSをレンダリング中nanowell配列をrilize。直ちにPBSを含むプレートにnanowellアレイを移動する。 </li><li>バイオセーフティキャビネットにプレートを移し、過剰のPBSを吸引除去する。 30から45秒後、10ミリリットルのDI水と電子レンジ、それに100mgの寒天粉末を添加して10ミリリットル1パーセントNoble寒天を作る。配列を固定化して凝固寒天は10分待機するnanowellの配列が含まれているスライドガラスの上端と下端に暖かい一パーセントノーブル寒天を適用します。 3ミリリットルPBSおよび吸引過剰寒天を追加します。 </li><li> nanowellアレイの上面上にR10の3ミリリットルを追加し、約10分間平衡化しましょう​​。 </li><li>遠心分離をフィコールに続いて、各管の最上層から5ミリリットルメディアを吸引除去する。細胞を含有する層を吸引しないように注意してください。 </li><li> 、P1とFICOLLとメディアの間の層1〜2ミリリットルを回収することにより細胞（白層）収穫000ピペットと新しい滅菌コニカルチューブに移動します。それがあなたの格言を確認しながら細胞の両方のセットに対してこの手順を繰り返し回復細胞をIZE。 </li><li>フル加速とブレーキで5分間340×gで遠心分離によるピペッティングし、ペレットによるミックス、各チューブにあらかじめ温めておいたRPMI-PLGHの3ミリリットルを追加します。 </li><li>余分なメディアを吸引し、各チューブにあらかじめ温めておいたRPMI-PLGH 5 mlを加え、5分間、340×gで遠心操作を繰り返します。 </li><li>余分なメディアを吸引除去し、R10の500μlの細胞ペレットを再懸濁します。 </li><li>血球計算盤にトリパンブルー排除法を用いて生細胞数を数えます。 </li></ol> 5。 Nanowellアレイ上にセルの読み込み<ol><li> nanowellアレイから余分なメディアを吸引除去し、アレイ全体の新鮮なR10の2ミリリットルを追加します。 nanowellアレイの上面は、それが細胞の分布に影響を与えるとして、あまりにもウェット/ドライでないことを確認しながら再度吸引してください。 </li><li> nanowellアレイ表面上にR10の200μlの預金1×10 5個のエフェクター細胞（密度= 5×10 5細胞/ ml）。 </li><li>細胞は5分間静とenに標準的な組織培養顕微鏡検査を使用してみましょう細胞の分布が望ましいことを確認してください。必要に応じて複数のセルを追加します。 </li><li>敷金1×10 nanowellアレイ表面上の200μlのR10の5の標的細胞（密度= 5×10 5細胞/ ml）。 </li><li>細胞は5分と細胞の分布が望ましいことを確実にするために標準的な組織培養顕微鏡検査を使用するために解決しましょう​​。必要に応じて複数のセルを追加します。 </li><li> 2ミリリットルR10と吸引余分なメディアで慎重nanowell配列をすすぐ。 </li><li> 15ミリリットル滅菌コニカルチューブに3ミリリットル予め温めR10を準備します。ステイン0.5mMのSYTOXグリーン核酸の3μL（終濃度0.5μM）及びワーキング溶液を調製したアネキシンV-アレクサフルオル647の60μlを添加する。細胞をウェルからはずれていないことを確認しながら慎重に4ウェルプレート上に実用的なソリューションを追加します。 </li><li> 15分間37℃/ 5％CO 2でインキュベートする。 </li></ol> 6。イメージングの1 <ol><li>蛍光MICRを使用nanowell配列の画像を取得oscope：この例では、我々は電動ステージとLambda-DG4を装備し、Z-1顕微鏡ツァイスObserverを使用。 </li><li>ソフトウェアや顕微鏡を初期化し、透過光や他の蛍光チャンネル上の信号強度を確認してください。全体的に、に対応した5つのチャンネルがあるでしょう：透過光、アネキシンV-647（Cy5のフィルタ）、CTR（DsRedをフィルタ）、SYTOXグリーン（FITCフィルター）、およびVybrantバイオレット（DAPIフィルター）。顕微鏡は、それが飽和状態を回避しながら、ノイズに対する最大の信号を確実にするためにセットアップしていることを確認します。 </li><li> nanowellアレイ用のXとYの位置を設定します。ゼロの位置を設定するとnanowellアレイスタンプの左上隅に7×7 nanowell·アレイ·ブロックの中心にフォーカスを初期化することによって、プロセスを開始します。正確には、各ブロックに焦点を反映するように各ブロックの中心とz値と一致するように、x、yの位置を設定します。 </li><li>位置とフォーカスがすべて設定されたら、リニアモードで画像取得を設定し、画像を取得するようにしてください。 <sチョン·&gt;注意：実験前に顕微鏡で少なくとも30分でインキュベーターとCO 2に必要な有効にした場合。 </li></ol> 7。ポストイメージング 6時間インキュベーター（37℃/ 5％CO 2）にnanowell配列を含む4ウェルプレートを転送します。 8。イメージング2 ステップ6で説明したように第二の時点で画像を取得。 9。画像解析<ol><li> nanowells内の細胞の占有率は、適切な画像分割プログラムの使用（ 例えば ImageJは、によって決定され<a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/</a> ）本質的には以前に説明した9,12。 </li><li>顕微鏡画像（T = 0時間; トン0）の初期セットの分析は、正確に1つのライブターゲットセル（同定含む個別nanowellsのデータベースを生成するために使用され赤）と無死んだ細胞（Annexin V染色により同定、緑）[T1t 0 nanowells]; CellTracker赤で。 </li><li>顕微鏡画像の第2セットの分析は（T = 6時間、6トン） が独立して1標的細胞（赤）[T1t 6 nanowells]を含むnanowellsの2番目のデータベースを決定するために使用されます。整合性チェック（データベースクエリ）がt 0におけるすべてのライブの目標が一致した目標の最終的なセットを（T1t 0 T1matchとして指定された= T1t 6を持って nanowellsとして実装）を生成するためにトン6でターゲットにマッチしていることを確認するために実装され</li><li> nanowellsにおけるエフェクター細胞の数がt 0でVybrantバイオレット染色法を用いて決定される[E1 nanowells] </li><li>データベースクエリ（E1T1として指定されたE1およびT1 が一致しているnanowellsとして定義）は、単一のターゲットと同時インキュベートシングルエフェクターを含むnanowellsを識別するために実装されています</li><li>エフェクター誘導アポトーシスは、iによって採点される<html> t 0とt 4（トン6のアネキシンVターゲット染色によるE1T1）で正アネキシンVでの負のアネキシンVで目標をdentifying。 </li></ol> 10。ニコンBioStation IMを使って殺すのオプションタイムラプスイメージング<ol><li>カバーガラスの底が付いてペトリ皿を取ると正確にカバースリップに収まるnanowellアレイチップ（ステップ5で調製したもの）の小片を切り出す。カットしながらチップが濡れたままでいることを確認してください。 </li><li>ミックス1×10 6目標と100μlの培地で1×10 6 T細胞、カバーガラス上に移します。 </li><li>約15〜30分で細胞が落ち着くようにすることができます。 </li><li>急速に小nanowellアレイチップを反転してカバースリップの上に置きます。 </li><li>なお、チップの上部にイメージング、場所中に1つまたは2つの20ミリメートル×20mmのカバーグラスを動かすことができないことを確実にするために。皿の底にチップをプッシュするように優しく圧力をかける。 </li></ol>テント&quot;&gt; 注意：nanowellアレイチップの底が高分解能イメージングのために厚すぎるので、逆さまにしなければならないこの時には、細胞の多くが洗い流され、これはステップ9.2で、セル番号を容易に制御することができないので。そしてステップ9.3におけるインキュベーション時間は、最適化されなければならない。

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</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

我々はnanowellsの配列（ 図1）でエフェクターや目標の共インキュベーションを介して有効高スループット、単一セルの細胞傷害性アッセイのためのプロトコルの概要を示している。スループットに加え、技術の主な利点は、順番に標的細胞として、自己またはプライマリ/マッチした腫瘍細胞の使用を可能にする標的細胞工学を必要とせずに所望の標的細胞に対するエフェクター媒介細胞傷害性を監視する機能です。空間的な閉じ込めは、検索およびアッセイ9の末端に官能T細胞のその後のクローニングを可能にします。アッセイの制限は、自動化されたステージと高速スイッチング光学た特殊な顕微鏡の必要性である。しかしながら、これは、これらのマシンは現在研究中核施設の一部として広く利用可能であることを考えれば重大な制限はありません。 preserviながら、より高いスループットを提供し、フローサイトメトリーに基づいたアッセイの様々なものがありますngの単一セルの解像度。これらは、エフェクターやターゲット13,14におけるカスパーゼ/グランザイム活性...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬/材料の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> 注釈 </td></tr><tr><td> RPMI-1640 W / O、L-グルタミン</td><td> Cellgro </td><td> 15から040-CV </td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン - ストレプトマイシン</td><td> Cellgro </td><td> 30から002-CI </td><td> 10,000 IUペニシリン万μg/ mlのストレプトマイシン</td></tr><tr><td> L-グルタミン酸</td><td> Cellgro </td><td> 25から005-CI </td><td> 200 mM溶液</td></tr><tr><td> HEPES </td><td>シグマアルドリッチ</td><td> H3537 </td><td> 1M </td></tr><tr><td>ウシ胎児血清（FBS） </td><td>アトランタバイオ</td><td> S11150 </td><td>たくさんのテスト</td></tr><tr><td>セルトラッカーレッド染色</td><td>インビトロジェン</td><td> C34552 </td><td> 50μgの</td></tr><tr><td> Vybrant DyeCycleバイオレット染色</td><td>インビトロジェン</td><td> V35003 </td><td> 5mMの</td></tr><tr><td> SYTOX緑色核酸染色</td><td>インビトロジェン</td><td> S7020 </td><td> 5mMの</td></tr><tr><td>アネキシンV-のAlexa Fluor 647 </td><td>インビトロジェン</td><td> A23204 </td><td> 500μlの</td></tr><tr><td>ダルベッコPBS </td><td> Cellgro </td><td> 21から031-CV </td><td> 500ミリリットル</td></tr><tr><td> Noble寒天</td><td> DIFCO </td><td> 2M220 </td><td> 100グラム</td></tr><tr><td>トリパンブルー</td><td>シグマアルドリッチ</td><td> T8154 </td><td> 0.4％液、滅菌濾過</td></tr><tr><td>血球計</td><td> Hausserサイエンティ</td><td> 1492 </td><td>輝線</td></tr><tr><td> 4ウェルプレート</td><td>サーモフィッシャー</td><td> 167603 </td><td></td></tr><tr><td> Harrickプラズマクリーナー</td><td> Harrickプラズマ</td><td> PDC-32G </td><td>基本的なプラズマクリーナー</td></tr><tr><td> Observer.Z1 </td><td>ツァイス</td><tD&gt; </td><td>蛍光顕微鏡（以下の三つの部分で動作します） </td></tr><tr><td>ラムダ10月3日</td><td>サター·インストゥルメント</td><td></td><td>フィルタコントローラ</td></tr><tr><td>ラムダDG-4 </td><td>サター·インストゥルメント</td><td></td><td>超高速波長スイッチャー</td></tr><tr><td>浜松EM-CCDカメラ</td><td>浜松市</td><td> C9100-13 </td><td> CCD-顕微鏡カメラ</td></tr><tr><td> 15 mlコニカルチューブ</td><td> BDファルコン</td><td> 352097 </td><td></td></tr><tr><td> 50 mlコニカルチューブ</td><td> VWR </td><td> 3282-345-300 </td><td></td></tr><tr><td>ニコンBiostation </td><td>ニコンインスツル株式会社</td><td> Biostation IM </td><td></td></tr><tr><td>ガラス底培養皿</td><td>マテック株式会社</td><td> P35G-0 </td><td> 35ミリメートルペトリ皿、10ミリメートルマイクロウェル</td></tr></tbody></table>

t細胞の定量的なハイスループットシングルセル細胞毒性アッセイ

Quantitative High-throughput Single-cell Cytotoxicity Assay For T Cells

癌免疫療法は、腫瘍を標的とし、排除する免疫応答の特異性を活用することができます。遺伝的にキメラ抗原受容体（CAR）を発現するように改変T細胞の養子移入に基づく養子細胞療法（ACT）は、臨床試験1-4のかなりの約束を示している。そこに車を使用して+ T細胞を、MHC非制限抗原を標的とし、宿主内でホーミングと永続最適な生存のためのT細胞を、官能化する能力を含む癌の治療のためにはいくつかの利点があり、そして最後に、CARのアポトーシスを誘導するために+宿主毒性5のイベントでのT細胞。 CARの最適な機能を線引き+臨床的利点を伴うT細胞は臨床試験の次の世代を設計するために不可欠です。多光子顕微鏡のように生きている動物のイメージングにおける最近の進歩は、免疫細胞機能の研究に革命をもたらした私nの生体6,7。これらの研究は、in vivoでのT細胞の機能についての我々の理解を進めているが、臨床試験でのT細胞ベースのACTは、T細胞の調製に利用することにより、臨床的有効性の注入後との事前注入の分子および機能的特徴をリンクする必要があるのを必要とします細胞毒性およびサイトカイン分泌、のようにT細胞の機能を監視し、インビトロアッセイ。標準的なフローサイトメトリーに基づいたアッセイは、単一細胞レベルでのT細胞の集団の全体的な機能を決定するが、これらは抱合体形成と寿命または複数のターゲット8を殺すために同じ細胞の能力を監視するには適さないことが開発されている。 ポリジメチルシロキサン（PDMS）のような生体適合性ポリマーで設計微細加工された配列は、空間的に小さなボリューム9のエフェクターや目標を閉じ込めるために特に魅力的な方法です。自動化されたタイムラプス蛍光顕微鏡との組み合わせで、カントーエフェクター - 標的相互作用のusandsはnanowell配列の撮像個々のウェルで同時に監視することができます。我々はここで広く、T細胞の細胞傷害機能を研究に適用することができ、単一細胞レベルでのT細胞媒介性細胞傷害性を監視するためのハイスループットな方法論を提示する。

ハイスループット細胞傷害アッセイのアプリケーションの例を図2に示されています。簡単に説明すると、ラベルの付いたCD19特異CAR + T細胞はnanowellアレイ（セクション1-5）の各ウェルに標識マウスEL4標的細胞と共培養した。最初のイメージは、アレイ上のすべての単一のnanowell（第6項）の占有を（エフェクターおよび/またはターゲット）を識別するために自動化された蛍光顕微鏡で記録された。画像処理は正確に単一のターゲットを含むすべてのnanowellsと単一エフェクターを特定し、死んだ目標（第9節）を含むnanowellsを除外するために使用されていました。チップは6時間インキュベーターに移した後、チップの第2の画像（セクション7-8）を記録した。標的細胞にアポトーシスを誘導するエフェクターの能力を正確に1つのエフェクターと一つのターゲットを含むnanowellsに、アネキシンVで染色することにより測定した。二つの平行実験は同じエフェクターと2セットoに実行されました抗原特異的溶解（ 図2）の周波数を決定するために、fの標的細胞（EL4-...

我々は、腫瘍標的細胞とインキュベートした場合、T細胞の細胞傷害活性を測定するための単一セルハイスループットアッセイが記載されている。この方法では、空間的に定義された比率で、T細胞と標的細胞を閉じ込めるために、サブナノリットルウェル（〜100,000ウェル/配列）の高密度、エラストマー配列を採用しており、エフェクター - 標的抱合及びその後アポトーシスを監視するために、蛍光顕微鏡に接続されている。

T細胞の定量的なハイスループットシングルセル細胞毒性アッセイ

Cancer immunotherapy can harness the specificity of  immune response to target and eliminate tumors. Adoptive cell therapy (ACT)  based on the adoptive ...

この実験システムは、T細胞を介した細胞毒性をシングルセルレベルでモニタリングするためのハイスループットな方法論を提供します。まず、エフェクターT細胞と腫瘍標的細胞を蛍光色素ダイで標識します。両方の細胞タイプをナノウェルアレイにロードし、チップ全体をcyt greenおよび蛍光標識ネキシンを含む培地に浸します。5。壊死細胞とアポトーシス細胞の両方を同定するために、アッセイ開始時に初期プレイメージを記録して、ウェル占有率と細胞生存率を決定します。6時間のインキュベーション後、2枚目の画像を記録します。次に、自動画像解析を使用して、カー陽性T細胞によるEL 4 CD 19陽性の抗原特異的溶解を定量化します。このハイスループット法から得られた結果は、サイトキシンによる陽性染色に基づいて、エフェクター細胞による標的の抗原特異的溶解をスクリーニングできます。5。この技術の主な利点は、クロム51放出アッセイのような既存の方法よりも、真の1対1の効果的なターゲット相互作用を達成することができ、衛星周波数が測定されることですこの技術の意味は、それが自家細胞療法における有効性の相関を研究することを可能にするため、癌のどのような治療に拡張されますシリコンマスターを使用してナノウェルを製造するために、まず葉巻180 4エラストマーキットベースと硬化剤を徹底的に混合します。プラスチックナイフを使用した使い捨てカップの重量比は10対1です。真空チャンバー内で混合物を1時間脱気します。次に、混合物をシリコンマスターに注ぎ、30分間放置します。エラストマーを硬化させるために、アセンブリを摂氏80度のオーブンで2時間加熱した後、室温で1時間冷却します。PDMS nano well アレイをシリコンマスターから慎重に取り外します。実験通過前日までスコッチテープで覆い、5ミリリットル中に500万個の標的細胞を通過させる。実験の日。滅菌済みの15ミリリットルの円錐管に500万個の細胞をペレット化し、340 Gで5分間遠心分離します。余分な培地を吸引し、約50マイクロリットルの培地を残して細胞を標識します。150マイクロリットルの新鮮なセルトラッカー赤色作業溶液を加え、P 200ピペットを使用して5%二酸化炭素と摂氏37度で20分間インキュベートして完全に混合します。ヘモサイトメーターを使用して、培養物から採取したエフェクター細胞を列挙します。次に、遠心分離により、滅菌済みの15ミリリットルの円錐管に500万個の細胞をペレット化します。余分なメディアを吸引します。次に、5マイクロモルの鮮やかなDサイクルバイオレット染色の新鮮な作業溶液を追加し、P 200ピペットを使用して懸濁液を蘇生します。細胞をインキュベートし、摂氏37度で20分間、5%二酸化炭素、6.8ミリリットルおよび6.0ミリリットルのR-P-M-I-P-L-G-Hをそれぞれ標的細胞およびエフェクター細胞に添加し、ピペッティングにより混合します。次に、各チューブの底に3.5ミリリットルのフィアルパックプラスをゆっくりと層にし、両方のチューブを340GSで30分間遠心分離し、遠心分離中に中断や加速を行わずに、ナノウェルアレイを準備します最初に7ミリリットルの戦前のPBSを4ウェルプレートに移します。プラズマ酸化剤を使用して、スライドガラスの底をエタノールで清掃します。PDMS を高 RF 設定で 30 秒から 45 秒間処理します。次に、配列をPBSに配置します。プレートをバイオセーフティキャビネットに移し、余分なPBSを吸引し、スライドガラスの上端と下端に温かい1%貴金属の寒天を塗布してアレイを固定します。10分後にPDMSを3ミリリットルのPBSで乾燥させ、余分な寒天を吸引しないようにしてください。次に、ナノウェルアレイの上部に3ミリリットルのR 10を加え、約10分間平衡化します。Fial遠心分離に続いて、各チューブの最上層から5ミリリットルの培地を吸引します。細胞を含む層をP 1000ピペットで吸引しないように注意してください。フィアルと培地の間の細胞の白い層を収穫します。細胞を新しい滅菌円錐管に移します。次に、収穫したエフェクターとターゲットセルを、戦前の3ミリリットルのR-P-M-I-P-L-G-Hで2回洗浄します。最終遠心分離後、余分な培地を吸引し、細胞ペレットを再懸濁します。500マイクロリットルのR 10で、ヘモサイトメーターでトライアンブルー排除法を使用して生存細胞をカウントし、ナノウィルアレイから余分な培地を吸引します。次に、2ミリリットルの新鮮なR 10吸引液を追加します。繰り返しになりますが、ナノウィルアレイの上部が濡れすぎたり乾燥しすぎたりしないようにすると、細胞の分布に影響が出ます。次に、ナノにR 10の200マイクロリットルでフェクター細胞の10〜5分の1をナノに堆積させ、配列表面に細胞が5分間沈殿することを可能にしました。次に、標準的な組織培養顕微鏡を使用して、細胞の目的の分布を確認します。次に、R10の200マイクロリットルで第5の標的細胞に1×10を1回R10を、エフェクター細胞を含むナノウェルアレイ表面上に堆積させる。5分後、顕微鏡で細胞の分布を評価します。次に、ナノウェルアレイを2ミリリットルのR 10で慎重にすすぎ、別の滅菌15ミリリットルの円錐管で余分な媒体を吸引します。3マイクロリットルの0.5ミリモルサイト、緑色の核酸染色、および60マイクロリットルのXを5つのLOR6 47で3ミリリットルのプレウォームR10をピペッティングで完全に混合します。次に、染色液を4ウェルプレートに静かにピペットで固定し、細胞がウェルから移動しないようにし、摂氏37度、二酸化炭素5%で15分間インキュベートし、電動ステージとLambda DG fourを装備したzes observer Z one顕微鏡のような蛍光顕微鏡を使用してナノウェルアレイの画像を取得します。ソフトウェアと顕微鏡を初期化します。透過光と他の蛍光チャンネルの信号強度を確認してください。マイクロスコープのセットアップを調整して、飽和を避けながら最大の信号対雑音量を確保します。次に、nelle 配列の x と Y の位置リストを開きます。XY のゼロ位置を設定し、nelle 配列スタンプの左上隅にある 7 x seven nelle 配列ブロックの中心にフォーカスをゼロにします。XY 位置を各ブロックの中心と一致するように設定し、Z 値を各ブロックの焦点を正確に反映するように設定します。次に、画像取得をリニアモードに設定し、画像を取得します。最初のイメージングシリーズの後、ナノウェルアレイを細胞培養インキュベーターに6時間戻します。攪拌に注意を払うと、細胞の変位につながる可能性があります。次に、2 番目の時点で画像の取得を繰り返します。このハイスループット細胞溶解アッセイは、ナノLアレイの個々のウェルにおいて、標識されたCD 19特異的CAR陽性T細胞を標識マウスELの4つの標的細胞と共インキュベートした抗原特異的溶解の頻度を測定します。ターゲットセルのヒストグラムプロットは、1つのエフェクターセルと1つのターゲットセルを含むウェルを表しています。6時間の共インキュベーション後、エフェクターを含まない標的細胞の一致したヒストグラムをネガティブコントロールとして使用し、バックグラウンド細胞死の頻度を報告しました。ナノウェルアレイは、エフェクター、標的結合、およびその後の細胞死の観察を可能にするために、タイムラプスイメージングに適合させることができる2〜4%の範囲で非特異的溶解の低頻度を達成することが望ましい。ここでは、非標識カー陽性T細胞をNOL中のNA LM 6 GFP標的細胞と共インキュベートし、動的モニタリングを行いました。Xin fiveを培養培地に添加すると、アポトーシス細胞は一度習得すると赤色にラベルされます。この手法は、この手順に続いて10〜12時間で適切に実行できます。マイクログラビングなどの他の方法を使用して、細胞のサイトカイン分泌プロファイルを決定できます。

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免疫学と感染症

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T細胞の定量的なハイスループットシングルセル細胞毒性アッセイ

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