Name: 原子間力顕微鏡と内皮グリコカリックスの機械的性質の定量化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-02-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 24 s
Description: 学ぶ原子間力顕微鏡を用いた内皮グリコカリックスの弾性率と厚さの直接測定法。生理学的流動下で培養した細胞にマイクロビーズ付きプローブを押し込み、二層モデルで解析することで、0.7kPaの弾性率と380nmの厚さを定量化できます。

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著者は、このプロジェクトと彼らの支援のためのエレナLomakina、リチャードBauserman、マーガレットヤングマン、シェイVaknin、ジェシカ·スナイダー、クリスStriemer、Nakulナタラジ、鴻李鄭、テジャスKhire、エリックラムに感謝したいと思います。このプロジェクトは、NIH＃PO1 HL 018208によって賄われていた。

1。メソッド 1.1セル·フローチャンバー細胞は1.0 Paの（10ダイン/ cm 2）のせん断下で成長してから、アサイラムMFP3D AFM（サンタバーバラ、カリフォルニア州）に直接転送することができるように、図1に示すフローチャンバーは、構築した。 <ol><li> 15分間、次いで蒸留水でそれらを洗濯：フローチャンバーは最初ピラニア溶液（H 2 O 2 3：01、H 2 SO 4）内にスライドガラスを洗浄することにより、実験のために用意された。彼らはその後に焼成した乾燥した真空蒸着チャンバー内のシランアミノプロピルトリエトキシシラン（APTES）で被覆した。 </li><li>シリコーンガスケットはシルエットSDの切削工具を用いて切断した。これは、私たちは細かく細胞増殖時の流速とせん断応力を制御するためのフローチャンバーの寸法を制御することができました。典型的には、チャネル、0.4 mmのシリコンのシートから長い19ミリメートルで幅の広い6.4ミリメートルを切断した。属に必要な流量TE 1.0 PA（10ダイン/ cm 2）のせん断応力は、次式を有する矩形チャネル内の層流を仮定して計算されます： </li></ol><img alt="式（1）" fo:content-width="0.737in" fo:src="/files/ftp_upload/50163/50163eq1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50163/50163eq1.jpg" /> Qは流量であり、τはせん断応力であり、μは 、1.0メガパスカル（0.01ダイン*秒/ cm 2）であることがここで想定媒体の粘度であり、hは高さであり、wはフローチャンバーの幅です。 <ol start="3"><li>フローチャンバーのトップピースは、細胞培養皿にガスケットと整列し、磁気リングで固定した。アセンブリは、滅菌のためにイソプロピルアルコール（IPA）で満たされていた。 </li><li>フルフローシステムを組み立てた。細胞培養皿内のフローポートは三方弁に接続されていた。バルブは30ミリリットルのシリンジを開くために接続されていたsである。 IPAは、その後4％ウシ胎児血清（FCS）をマッコイ培地30mlで洗浄したシステムを介して流した。システムは、その後、Vecはテクノロジーズ細胞増殖培地20mlを充填した。カバーは​​シリンジのトップスの上に置かれた。キャッチ·リザーバーシリンジキャップ、フィードタンクに戻ってメディアを移動する場所に針を持っていた。滅菌0.2μmのフィルターは、システムの汚染を防止するためにカバーに空気口に取り付けた。フローチャンバーは、次に細胞播種の準備ができていた。 </li></ol> 1.2細胞培養<ol><li>ヒト臍帯静脈内皮細胞（HUVECの）と増殖培地はVecはテクノロジーから購入（レンセラー工科大学、ニューヨーク州）とT25フラスコでコンフルエントになるまで増殖させた。 </li><li>増殖培地をフラスコと2.5％トリプシンの2ミリリットルでリリースされた細胞の単層から除去された。細胞は溶液中であったら、トリプシン処理をフラスコに細胞培養培地10mlを加えてクエンチした。 </li><li>木曜日eの細胞懸濁液を5分間遠心分離した上清を除去した。細胞は、フローチャンバーに注入するための細胞培養培地（血清を含む）1mlに再懸濁した。 </li><li>細胞懸濁液（0.5ミリリットル、〜50,000細胞）をシリンジに装填し、三方弁を介してフローチャンバーに注入した。 </li><li>細胞は、フローが開始される前に2時間のために解決し、ガラス基板に付着させた。細胞がコンフルエントになるまで1〜5日間37℃でインキュベーター内の流れの下で成長させた。 </li></ol> 1.3カンチレバーの作製と細胞のインデント<ol><li>チップレスのAFMカンチレバー（ナノワールド、スイス）を5分間硝酸で洗浄、蒸着室でシランアミノプロピルトリエトキシシラン（APTES）で官能化された。 </li><li>ハンクス緩衝塩溶液中の重量のNHS-スルホ-LC-ビオチンで5 mg / mlの溶液（HBSS）を調製した。カンチレバーは、コンジュ〜15分間溶液中に浸漬したN-ヒドロキシスクシンイミド（NHS）化学とシランゲート。 </li><li>ビオチンを含まない培地の溶液を12時間streptavadinビーズ200μlでVecは技術、細胞培養培地（血清を含む）の20ミリリットルをインキュベートすることにより行った。ビーズを磁石で培地から除去し、培地を0.22μm滅菌フィルターで濾過した。 </li><li>フローチャンバーは、細胞培養皿から除去し、細胞を37℃ビオチンを含まない培地で洗浄した。 </li><li>ビオチンを含まない培地を1mlのストレプトアビジンでコーティングされた2.4μmのビーズ1μlの原液を調製し、株式100μlの細胞培養皿に添加した。 </li><li>ストレプトアビジンビーズは、ビーズ、後退の横のガラス表面上の先端を着陸ビーズ上にカンチレバーの頂点を配置した後、ビーズとの憩いの数秒にカンチレバーを押し下げることによってカンチレバーで拾い上げた。 </li><li>カンチレバーの感度は、メジャーだった裸のガラスの領域にインデントや電圧の関数としての先端のたわみを設定するには、曲線の傾きを指定することで、D。 </li><li>カンチレバーのばね定数は、次にMFP3Dソフトウェアの熱キャリブレーションから算出した。 </li><li> 図2に示すように校正されたカンチレバーは、その後、サンプルをインデントするために使用された。これらの2.4μmのビーズは柔らかい糖衣層の機械的特性を検出することができるように、細胞表面との接触面積を提供します。カンチレバーは、セルに細胞核と先端の柔らかいアプローチに近いセルの上に配置された細胞表面上約3μmカンチレバーの高さを設定するために使用された。ソフトウェアは7 NNの最大の力〜1μmで/秒の速度で20繰り返さくぼみに設定されました。約6秒の連続接点間経過。これらの初期ではあるが、グリコカリックスの時間依存特性をテストするためにインデントの異なるレートを使用することが可能です<html>実験は、単一のインデント率は（1ミクロン/秒）を用いた。 </li></ol> 2。インデント論半径Rの球との半空間弾性にインデントはインデントの力Fは 、式で与えられるヘルツ理論を用いて説明することができます： <img alt="式（2）" fo:content-width="1.157in" fo:src="/files/ftp_upload/50163/50163eq2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50163/50163eq2.jpg" /> 押し込み深さここで、δであり、E * は 、被試験材料（ 図3）の減少率である。均一な弾性半空間を無限に当たる硬い圧子の場合、E *は次式で与えられます。 3/50163eq3.jpg &quot;/&gt; Eはどこ弾性率、νは材料のポアソン比である。ポリマーフィルムと最近の研究では、薄膜1の弾性率と厚さを決定するための2層モデルの開発にインスピレーションを与えてきました。我々は、細胞体の表面に均一な薄膜軟質フィルムとして糖衣を扱うことによって、細胞生物学に本モデルを適用しています。このモデルを使用して、システムの縮小率は次のようになります。 <img alt="式（4）" fo:content-width="2.85in" fo:src="/files/ftp_upload/50163/50163eq4highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50163/50163eq4.jpg" /> Eの GCはグリコカリックスの係数であり、E 細胞は細胞体の弾性率であり、P、Qおよびnは、経験的にポリマー収まるから決定された、 および z は次式で与えられる定数です。 <p class="jove_content" fo:keep-together.withinページ= &quot;always&quot;を&gt; <img alt="式（5）" fo:content-width="1.257in" fo:src="/files/ftp_upload/50163/50163eq5highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50163/50163eq5.jpg" /> ここで、t は、糖衣層の厚さである。これらのパラメータの概略を図3に示します。モデルは硬めの基板1上に薄膜の弾性率と厚さを決定する正確な方法であることが示されている。 図4に示すように、この式は、内皮グリコカリックスの弾性率と厚さを決定するために、細胞内にインデントから得られた曲線に合わせて使用することができます。

<ol><li>Clifford, C., Seah, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoindentation+measurement+of+young%27s+modulus+for+compliant+layers+on+stiffer+substrates+including+the+effect+of+poisson%27s+ratios%5BTitle%5D)+AND+%22Nanotechnology%22%5BJournal%5D)">Nanoindentation measurement of young's modulus for compliant layers on stiffer substrates including the effect of poisson's ratios.</a> Nanotechnology. , (2009).</li>
<li>Gouverneur, M., Spaan, J. A. E., Pannekoek, H., Fontijn, R. D., Vink, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluid+shear+stress+stimulates+incorporation+of+hyaluronan+into+endothelial+cell+glycocalyx%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart.+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Fluid shear stress stimulates incorporation of hyaluronan into endothelial cell glycocalyx.</a> Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 290 (1), 458-452 (2006).</li>
<li>Hocde, S. A., Hyrien, O., Waugh, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+adhesion+molecule+distribution+relative+to+neutrophil+surface+topography+assessed+by+tirfm%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Cell adhesion molecule distribution relative to neutrophil surface topography assessed by tirfm.</a> Biophysical Journal. 97 (1), 379-387 (2009).</li>
<li>Lipowski, H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+endothelial+glycocalyx+as+a+barrier+to+leukocyte+adhesion+and+its+mediation+by+extracellular+proteases%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+biomedical+engineering%22%5BJournal%5D)">The endothelial glycocalyx as a barrier to leukocyte adhesion and its mediation by extracellular proteases.</a> Annals of biomedical engineering. 40 (4), 840-848 (2012).</li>
<li>Lu, L., Oswald, S. J., Ngu, H., Yin, F. C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+properties+of+actin+stress+fibers+in+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Mechanical properties of actin stress fibers in living cells.</a> Biophysical Journal. 95 (12), 6060-6071 (2008).</li>
<li>Pries, A. R., Secomb, T. W., Gaehtgens, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+endothelial+surface+layer%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Archiv.+European+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">The endothelial surface layer.</a> Pflugers Archiv. European Journal of Physiology. 440 (5), 653-666 (2000).</li>
<li>Spillmann, C. M., Lomakina, E., Waugh, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+adhesive+contact+dependence+on+impingement+force%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Neutrophil adhesive contact dependence on impingement force.</a> Biophysical Journal. 87 (6), 4237-4245 (2004).</li>
<li>vanden Berg, B. M., Vink, H., Spaan, J. A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+endothelial+glycocalyx+protects+against+myocardial+edema%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">The endothelial glycocalyx protects against myocardial edema.</a> Circulation Research. 92 (6), 592-594 (2003).</li>
<li>Williams, T. E., Nagarajan, S., Selvaraj, P., Zhu, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+the+impact+of+membrane+microtopology+on+effective+two-dimensional+affinity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Quantifying the impact of membrane microtopology on effective two-dimensional affinity.</a> J. Biol. Chem. 276 (16), 13283-138 (2001).</li>
<li>Vink, H., Duling, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+Distinct+Luminal+Domains+for+Macromolecules%2C+Erythrocytes%2C+and+Leukocytes+Within+Mammalian+Capillaries%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Identification of Distinct Luminal Domains for Macromolecules, Erythrocytes, and Leukocytes Within Mammalian Capillaries.</a> Circulation Research. 79, 581-589 (1996).</li>
</ol>

特別な利害関係は宣言されません。

我々は、2層モデルと内皮壁と血液中を循環する白血球の相互作用をモデル化するためのヘルツ理論から算出した値を使用していました。我々は、10 PN荷重下50nmの直径を持つ白血球上の微絨毛は糖衣に約150nmをインデントすることを全体の厚さのほんの一部を計算した。これは、この実験で測定された特性を持つグリコカリックスは、細胞間相互作用に大きな障害となり、細胞は白血球の接着時に接着カスケードの間に克服しなければならない大きな立体障害であることを示しています。 モデルでは、等方性弾性構造として糖衣我々はおおよそ、ここで使用される。我々は、これはそうではありませんを示すために、任意の機械的測定に気づいていながら、何のグリコカリックスの分子構造についてはほとんど知られていないと、これはおそらく過剰な単純化であることを示唆している。実際には、グリコカリックスは複雑かつ多様である細胞の表面上の構造。それは指向分子構造から構成され、明確に定義された外側の境界を欠いている、と思わ細胞表面に近いより密になります。ここで使用される2つの層の弾性モデルは、細胞を循環させることによって、観測されたグリコカリッ...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬/材料の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> 注釈 </td></tr><tr><td>マッコイミディアム</td><td>ギブコ</td><td> 16600-082 </td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎仔血清</td><td> Hyclone社</td><td> SH30070 </td><td></td></tr><tr><td>内皮細胞増殖培地</td><td> VEC Technologies社</td><td> MCDB-131 </td><td></td></tr><tr><td>プールしたヒト臍帯静脈内皮細胞</td><td> VEC Technologies社</td><td> PHUVEC/T-25 </td><td></td></tr><tr><td>硫酸</td><td> JTベーカー</td><td> 9681から02 </td><td></td></tr><tr><td>過酸化水素</td><td> VWR </td><td> BDH3742-1 </td><td></td></tr><tr><td> （3 - アミノプロピル）トリエトキシシラン</td><td>アルドリッチ</td><td> 440140-100ML </td><td></td></tr><tr><td>イソプロピルアルコール</td><td> VWR </td><td> BDH8999-4 </td><td></td></tr><tr><td>トリプシン</td><td> Cellgro </td><td> 25から054-C1 </td><td></td></tr><tr><td>ハンクス緩衝塩溶液</td><td>ギブコ</td><td> 14175-095 </td><td></td></tr><tr><td>スルホ-NHS-LC-ビオチン</td><td>サーモサイエンティフィック</td><td> 21335 </td><td></td></tr><tr><td> Streptavadinビーズ</td><td>ダイナ</td><td> 112.06D </td><td></td></tr><tr><td> MFP-3D AFM </td><td>アサイラムリサーチ</td><td></td><td></td></tr><tr><td>チップレスカンチレバー</td><td>ナノワールド</td><td> ARROW-TL1-50 </td><td></td></tr><tr><td>シルエットのSD </td><td> Quickutz </td><td>シルエット-SD </td><td></td></tr><tr><td>シリコーンゴム</td><td>ストックウェルElastomerics </td><td> SE50-RS </td><td></td></tr><tr><td> 30mlのシリンジ</TD&gt; <td>ベントンディッキンソン</td><td> 309650 </td><td></td></tr><tr><td> 18ゲージの針</td><td>ベントンディッキンソン</td><td> 305196 </td><td></td></tr><tr><td>拡張セット</td><td>ホスピーラ</td><td> 4429から48 </td><td></td></tr><tr><td> 4方弁</td><td> Teleflexは</td><td> W21372 </td><td></td></tr><tr><td>男性/女性ポートキャップ</td><td>スミスの医療</td><td> MX491B </td><td></td></tr><tr><td>蠕動ポンプ</td><td>ワトソン·マーロー</td><td> 401U / D </td><td></td></tr><tr><td>蠕動チューブ</td><td>ワトソン·マーロー</td><td> 903.0016.016 </td><td></td></tr><tr><td>滅菌フィルター</td><td>ポールライフサイエンス</td><td> 4652 </td><td></td></tr></tbody></table>

原子間力顕微鏡と内皮グリコカリックスの機械的性質の定量化

Quantifying the Mechanical Properties of the Endothelial Glycocalyx with Atomic Force Microscopy

白血球と白血球キャプチャ時の血管壁の相互作用についての我々の理解は、内皮表面層の機械的特性の不完全な理解によってのみ制限されます。それは、白血球上の接着分子が表面トポグラフィー3に対して不均一に分布していることが知られており、その地形が他の表面9に接着結合の形成を制限し、その生理的な接触力（≈5.0 -微絨毛あたり10.0 PNが）と微絨毛を圧縮することができます対向面3,7に分子のアクセシビリティを増やし、彼らの休憩の長さの3分の少し。我々は2層構造と、比較的剛性の細胞体、プラス糖衣、腔面6に柔らかい保護糖コーティングなどの内皮を検討してください。それはグリコカリックスは内皮表面4への白血球の付着を低減するための障壁として作用し得ることが示されている。本稿では、内皮の機械剛性が結合形成に影響を与える可能性のある方法を理解する内皮表面の変形に対処するために開始されます。静置培養で増殖した内皮細胞は、堅牢な糖衣を発現しないが、生理的な流動条件下で培養した細胞は 、in vivo で観察された2近似糖衣し始める。内皮細胞体の弾性率は、約5〜20kPaで5であることが、原子間力顕微鏡（AFM）を用いて測定されています。グリコカリックスの厚さや構造は電子顕微鏡8を使用して研究されており、グリコカリックスの弾性率は、間接的な方法を用いて近似されていますが、私たちの知る限りでは、生きた細胞で糖衣弾性率の直接測定は発表報告されていない。そこで本研究では、MAに彼らの糖衣式を最大化するための条件で培養した細胞上で小説AFMプローブで作られたインデントの実験を提示内皮グリコカリックスの弾性率と厚さのke直接測定。

典型的な実験では、20力片対距離曲線は近くで​​はなく、核（〜2μm以内）に、通常は核周辺領域で、セルの指定された領域から得られた。曲線は測定期間にわたって任意のサンプルのドリフトを考慮するために整列した後、図4に示すように、カンチレバーのノイズを除去するために平均化した。曲線を分析し、薄いポリマーフィルム1の弾性率と厚さを決定するために開発された2層モデルに適合させた。 25セルの曲線の発作から、我々は、内腔の層の弾性率は0.7±0.5 kPaであり、 図5に示すように、厚さは、380±50nmであることを決定した。細胞体の弾性率は、16±6 kPaです。これらの値は、細胞体と糖衣5,8の厚さの係数の前の測定値とよく一致している。 図1。私...

内皮グリコカリックスの機械的特性は、AFMカンチレバー上にミクロンサイズの球を使用して、インデントによって測定した。内皮細胞は糖衣発現を誘導する生理的な流動条件下でカスタム室で培養した。データはグリコカリックス厚さと弾性率を決定するために、薄膜モデルを用いて分析した。

Our  understanding of the interaction of leukocytes and the vessel wall during  leukocyte capture is limited by an incomplete understanding of the ...

次の実験の全体的な目標は、原子間力顕微鏡またはFMを使用して内皮グリコカリックスの機械的特性を測定することです。これは、第2のステップとしてグリコカリックス層を構築するために、バイオリアクター内の生理学的流れの下で内皮細胞の単層を最初に培養することによって達成されます。ミクロンサイズのビーズをFMカンチレバーに取り付け、インデンテーション中の細胞体とグリコカリックスの抵抗力を測定するためのプローブとして使用します。次に、グリコカリックスの弾性率を決定するために、インデンテーション曲線を2層モデルで適合させ、2層解析に基づいて内皮グリコカリックスの弾性率が0.7キロパスカル、厚さが380ナノメートルであることを示す厚さの結果が得られます。こんにちは、私はリック・ワです。ロチェスター大学の生物医学工学の教授です。近年、炎症における内皮グリコカリックスの役割の可能性、特に炎症中の不要な細胞接着を防ぐための保護バリアとして機能するかどうかについて、多くの議論が行われています。この問題を取り巻く問題を解決するための鍵の1つは、通常の状態と炎症反応中の両方で、この層の厚さと剛性という物理的特性を測定する能力です。グラハム・マーシュです。私はロチェスター大学医学部の大学院生です。内皮グリコカリックスを特徴付ける際の大きな問題は、それが信じられないほど柔らかいことです。私たちが思いついたアプローチは、測定された力がAで解決できるように、A an A FMカンチレバーの先端に大きなビーズを貼り付けることです この手順を開始する FM.To、ここに示されているようなフローチャンバーを構築し、1.0パスカルのせん断応力下で細胞を成長させることができます。まず、ピラニア溶液でスライドガラスを15分間洗浄することにより、実験用のフローチャンバーを準備します。蒸留水で3回すすぎ、摂氏70度で30分間乾燥させます。次に、スライドをアミノプロピルトリキシ、サイレーン、またはアプテで蒸着してコーティングします。サンプルと一緒に真空チャンバーに取り付けられているフラスコに1ミリリットルのアプテを追加します。次に、フラスコにキャップをし、0.7バールの真空を1時間引き出します。この間に、掃除機を3回更新します。次に、厚さ0.4mmのシリコンシートから、シルエットSDの切削工具で新しいフローチャンバーガスケットをカットします。チャネルは幅6.4ミリメートル、長さ19ミリメートルで、外径はアサイラム培養皿に収まるように35ミリメートルにカットされています。これらの寸法を使用して、ここに示す式で 1 パスカルのせん断応力を生成するために必要な流量を計算します。Qは流量を表します。タウは純粋なストレスです。Muは媒体の粘度です。Hは流路の高さ、Wは流路の幅です。次のステップは、フローチャンバーの上部を細

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JoVE Journal

Bioengineering

バイオエンジニアリング（生体工学）

このビデオでは、内皮細胞を介した細胞外マトリックスの硬さ依存性リステリア菌の播種を評価するための定量的なタイムラプス顕微鏡法を紹介しています。より柔らかいヒドロゲルは、硬いヒドロゲルと比較して、内皮細胞を介した細菌の拡散を容易にし、マトリックスの硬さが細菌の播種に及ぼす影響を強調しています。...

細胞外マトリックスの硬さ依存性細菌播種を評価するための定量的タイムラプス顕微鏡法

内皮グリコカリックス/内皮表面層は、理想的には生体顕微鏡を用いて研究されています。生体顕微鏡検査は、肺などの臓器に移動技術的に困難である。私たちは、同時明視野と蛍光顕微鏡を自由に移動させる際に内皮表面層の厚さを推定するために使用することができる方法を示してい...

マウス肺内皮表面層の in vivo測定における

本論文では、原子間力顕微鏡（AFM）を用いて、microindentationにより、生きた細胞の機械的性質を特徴づけるためのプロトコルを示しています。...

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我々は、免疫学的研究のための単一のT細胞およびビーズ粒子を用いて原子間力顕微鏡(AFM)片持ちを機能化するプロトコルを提示する。AFMによる単一対T細胞樹状細胞結合をプローブし、蛍光イメージングを用いてAFMによる単一固体粒子に対するマクロファージのリアルタイム細胞応答を監視する手順が示されている。...

免疫学的単一細胞力分光法のための単一T細胞または単一粒子による原子間力顕微鏡片持ちの機能化

近紫外線リソグラフィーとトラクションフォース顕微鏡を組み合わせて、マイクロパターン化されたヒドロゲル上の細胞力を測定します。単一細胞のターゲット光誘導放出により、同じサンプル上で多数の測定が可能になります。...

牽引力顕微鏡における応用のためのハイドロゲルパターン法を用いた細胞接着制御

原子間力顕微鏡(AFM)プローブチップが試料表面に与える接触面積と力を定量化することで、ナノスケールの機械的特性測定が可能になります。弾性率やその他のナノ機械的特性を測定するために、柔らかいサンプルと硬いサンプルの空気または流体にAFMカンチレバーベースのナノインデンテーションを実装するためのベストプラクティスについて説明します。...

原子間力顕微鏡カンチレバーを用いたナノインデンテーション:空気および流体中のナノスケールでの機械的特性測定

私たちは、関連する血管流条件下で血管内皮細胞(EC)を培養するための調整可能なゼラチンベースの基質を合成し、特徴付けました。この生体模倣表面は、生理学的条件と病理学的条件の両方を再現し、ECの挙動に対する機械的な力の研究を可能にし、血管の健康と疾患のメカニズムの理解を深めます。...

内皮細胞応答を研究するための基質の剛性と流れを統合するin vitroモデル

このプロトコルは、マウス肺組織の凍結切片を調製する方法、原子間力顕微鏡の力マップ実験を行う方法、およびデータを分析してネイティブマウス肺基底膜のヤング率を決定する方法を視覚化します。...

原子間力顕微鏡から得られたフォースマップからのネイティブマウス肺基底膜のヤング率の抽出

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原子間力顕微鏡と内皮グリコカリックスの機械的性質の定量化

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