Name: 血漿レチノール結合タンパク質の膜受容体によってレチノール交通のリアルタイム解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-01-28T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 32 s
Description: 学ぶ 血漿レチノール結合タンパク質の精製と再折りたたみ法を用いたSTRA6受容体のリアルタイム解析技術。この方法によりビタミンA輸送メカニズムの研究が可能となる。

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1。ホロRBPの生産、リフォールディングし、HPLC精製<ol><li> pET3aベクトルがN末端に6×Hisタグを有するヒトRBPのcDNAを保有するとともに、BL-21cellsを変換します。 600 nmでのODまでカルベニシリンと40mlのLB培地で37℃で振とう機における形質転換BL-21細胞を成長させるには0.5に達する。 1mMとなるようにIPTGを添加し、RBPタンパク質の発現を誘導する。 37℃で細菌を培養℃でさらに5時間。 </li><li> 大腸菌で生産RBPは不溶性の封入体中にほとんど存在しています。 20分間、10,000×gで封入体、細胞をペレット化を豊かにする。その後、凍結融解を2サイクルに続いて、プロテアーゼ阻害剤で5mlのPBSで細胞を氷上で超音波洗浄します。ダウンしてペレットを4℃で30分間20,000 xgで封入体℃、上清を除去し、氷の上にペレットを保つ。 </li><li> 10ミリリットル7.5 M塩酸グアニジンで超音波処理し、封入体ペレットを可溶化する。最後のcに25mMトリス緩衝液、pH 9.0およびDTTの半量（5ミリリットル）を追加10mMのonc​​entration。精力的に完全に削減し、タンパク質を変性させ一晩室温でボルテックスミキサーで溶液を混合。 </li><li> 4℃で20分間18000×gで不溶性物質を除去したタンパク質溶液を遠心スピンした後、上清を新しいチューブに移し、チューブを氷上に置きます。 </li><li>リフォールディング緩衝液の4倍量（60ミリリットル）を（25 mMトリス、pH 9.0、0.3 mMのシスチン、3.0 mMのシステイン、1mM EDTA）を準備します。ドガリフォールディングバッファー。また薄暗い赤い光の下でエタノールに600μlの10 mMのレチノールを準備します。氷上で暗所に保管しておいてください。リフォールディング緩衝液およびレチノールソリューションの両方が新たに調製する必要があります。 </li><li>タンパク質溶液と、少なくとも30分間氷上でリフォールディングバッファーの両方を冷却する。温度が高いと思わリフォールドRBPの品質を低下させる。タンパク質溶液を激しく氷上ビーカー内で混合している間に順番に1 mlのリフォールディングバッファーを滴下し、10μlのレチノールソリューションを追加します。すべてのリフォールディングバッファーまで、この手順を繰り返しますとレチノール追加されます。 5時間、暗所で氷上で反応を攪拌しておいてください。 </li><li> 4℃で30分間24000×gでリフォールディング反応をスピンダウンそれは右のフォールディング反応の後に凝集物を除去することが不可欠である。 </li><li>約10mlまでアミコンウルトラ15コンセントレータ（MWCO 10 K）を使用して、上澄み液を濃縮する。このレベル以上のリフォールディング溶液を濃縮しないでください。あまりにも集中させるタンパク質凝集につながり、正しく折り畳まRBPの最終収量や品質を低下させます。冷PBSで100mlに濃縮したサンプルを希釈します。このステップの目的は、ニッケル精製を妨害フォールディング反応のコンポーネントを削除することです。 </li><li> 4℃で20分間24000×gでソリューションを1つのより多くの時間を紡ぐこれは、任意の沈殿物を除去することが重要です。 2つの50 mlチューブに、PBSで洗浄されている各含む1mlのNi-NTAスラリーに上清を移してください。 1時間4℃でチューブを回転させます。希釈液fをインキュベートまたは1時間を削除する必要がミスフォールドタンパク質の沈殿を生じることがあります。 </li><li> 3分間、500×gでチューブをスピンダウンします。慎重に上清を除去します。フローティング何も削除する必要があります。各チューブに30 mlに冷PBSを追加します。再びスピンし、上清を除去します。あなたはチューブではなく、ビーズ何も見えなくなるまで、このプロセスを繰り返します。 </li><li>空の列にNi-NTA樹脂を転送します。 10mMイミダゾール、PBS中500mMのNaClの20カラム体積で樹脂を洗浄します。 PBS中100mMイミダゾールを5カラム容量におけるHis-RBPを溶出する。長時間、このソリューションを保存し、凍結は最終収量と品質を削減しないでください。最良の結果のために、直ちにHPLCによりRBPを清める。 </li><li> 25 mMトリス、pH 8.4、120 mMのNaClに対するNi-NTA樹脂から精製したHis-RBPを透析する。コンセントレータは、バッファの交換のために使用することができます。 °Cの右各実行の前に4℃で10分間16000×gで遠心分離によるHPLC用のクリアサンプル。 </li><li>イオンを用いたHPLCでホロRBPを清める交換カラムに1ml /分で移動相として25 mMトリス、pH 8.4を用いてNaClの段階的勾配（220 mMの12分、360 mMの15分であり、1,000 mmの15分）で、AX-300。 NaCl濃度が上昇すると、ホロのHis-RBPはアポRBPながら解放され、RBPがカラム（ 図1）に結合した滞在ミスフォールドされています。 RBPのリフォールディングが最適に行われていない場合、RBP（ 例えば、 図1 に RBP-Iをミスフォールド）製剤全体を風靡することができミスフォール。 </li><li> 360 mMのNaClのピーク画分から正しく折り畳まれたホロRBPを回復します。慎重に正しく折り畳まれたHis-RBPミスフォールドの溶出プロファイルを監視します。 1000℃のNaCl、ほとんどのは、His-RBPが解放されるべきミスフォール。 </li><li>ホロRBPを含む画分をプールし、濃縮し、4℃で一晩、PBSに対して透析する分光光度計による最終的な収量と品質（330 nm/280 nm）を確認してください。正しく折り畳まれた製品には、1（図 ​​1）よりも若干高いの330 nm/280 nmの比を持っている必要があります。 </li><li>生産へ電子アポRBPは、精製されたホロRBPにヘプタンの等量を追加し、4℃で一晩回転させることにより穏やかに混合4℃で10分間16,000 gで遠心し、注意深く新しいチューブ（インターフェイスで沈殿を避ける）に底水相を転送します。各3時間のインキュベーションを使用してプロセスを3回繰り返します。 330 nmのピークがバックグラウンドレベルまで減少していることを確認するためのナノドロップ分光光度計の吸収を確認してください。 </li></ol> 2。 STRA6触媒によるレチノールリリースおよびレチノール読み込みのリアルタイム監視<ol><li>一晩ブロッカーカゼイン（Pierce）を200μlで黒96ウェルMicrofluor-2プレート（サーモサイエンティフィック）4℃プラスチックにホロRBPの非特異的付着を防止するためにブロックします。ブロッカーカゼインは、我々がテストしたすべてのブロッキングソリューションの最良のブロッキング効果を与えます。 </li><li>たてSTRA6またはコントロール細胞を発現する細胞から調製した膜は、PBSを用いて洗浄し、ハミルトンシリンジ（Gasti通されるGHT＃1710）をPBSで均一な懸濁液を生成するために6回。我々は通常、反応あたり100 mmディッシュで培養した細胞の1/100〜1/20〜由来の膜を使用しています。 </li><li> 200μlのPBSで一回Microfluor-2プレートのコーティングしたウェルを洗浄します。膜懸濁液（ウェルあたり50μl）を添加する前に、氷の上でプレートを冷却する。 </li><li>レチノール蛍光のリアルタイムモニタリングは、励起フィルタ320EX及びエミッションフィルタ460から10とPOLARstarオメガ（BMG LABTECH）の蛍光光学系を用いて測定される。プログラムは、エンドポイントの読み取りモードに設定されています。平板モードも時間間隔を変化させていない場合、時間経過を測定するために使用することができます。各時点からの信号は、10回の測定（2ミリメートルの直径を持つ軌道平均）の平均値であり、ゲインは1800に設定されています。プレートは、各測定の前に二重軌道振とうを使用して500rpmで10秒間振とうする。 </li><li>レチノール放出アッセイを開始するには、井戸がメートルを読んでエンドポイントを使用して1度読まれるホロRBP前頌歌（典型的には、1μMの最終濃度）0分に追加されます。ホロRBPが追加されるとすぐに、反応は1-3時間、連続して5〜10分毎に監視されています。レチノールローディングアッセイを開始するには、オールトランスレチノール（典型的には、1μMの最終濃度）の薄暗い赤い光の下でウェルに添加する。アポRBPを0分に追加される前にプレートが一度読み取られます。アポRBPが追加されるとすぐに、反応は1-3時間、連続して5〜10分毎に監視されています。 </li><li>すべての測定が完了したら、データ分析のためのMicrosoft Excelへのオメガのデータ解析ソフトウェア（BMG LABTECH）からの生データ（ 図2の例）をダウンロードしてください。それぞれの時点では、すべての実験条件の測定値を含むファイルを生成します。 20時間ポイントがある場合は、データ分析のための1つのExcelファイルに20個のファイルを統合します。 </li><li>データ分析は、0分でレチノールまたはホロRBPの添加前蛍光シグナルは、バックグラウンドシグナルを考えられているdはすべての時点で最終蛍光信号から減算。バックグラウンド信号を低減算、ホロRBPでレチノール蛍光と比較されますが、背景には膜による光散乱の非特異的な影響を排除し、それが0分で追加されたホロRBPまたはレチノールレチノール蛍光に集中することが可能になります。 </li></ol> 3。 CRBP-IにホロRBP-レチノールからのSTRA6触媒による輸送のリアルタイム監視<ol><li>レチノール-EGFPは、最近41確立された新しい蛍光共鳴転移（FRET）のペアです。ホロRBPからEGFP-CRBP-Iはレチノール-EGFPを測定することにより、リアルタイムでモニターされているにSTRA6触媒によるレチノール輸送はFRET。 6xHisタグ（EGFP-CRBP-I）とEGFP-CRBP-I融合タンパク質は、哺乳動物細胞で産生されており、実験の前にNi-NTA樹脂で精製する。 EGFP-CRBP-Iは4℃で短時間のプロテアーゼ阻害剤を含むPBSに格納することができますあるいは、融合タンパク質Isは-80℃·小アリコートで凍結した。 </li><li>上記のように反応する前に、ブロックされMicrofluor-2プレートと膜を調製する。膜懸濁液（ウェルあたり50μl）を添加する前に、200μlのPBSで一度Microfluor-2プレートのコーティングしたウェルを洗浄します。 </li><li>リアルタイムレチノール-EGFP FRETは、励起フィルタ320EXと同時決闘放射蛍光光学系を用いた発光フィルター460から10と510から10とPOLARstarオメガを使用して測定される。プログラムは、エンドポイントの読み取りモードに設定されています。平板モードも時間間隔を変化させていない場合、時間経過を測定するために使用することができます。各時点からの信号は、10回の測定（2ミリメートルの直径を持つ軌道平均）の平均値であり、利得はチャネルあたり1800に設定されています。プレートは、各測定の前に二重軌道振とうを使用して500rpmで10秒間振とうする。 </li><li>反応を開始するには、EGFP-CRBP-I（通常は、1μMの最終濃度）をウェルに添加する。プレート上に読み込まれホロRBP前にエンドポイントの読み取りモードを使用してCEは0分に追加されます。ホロRBPが追加されるとすぐに、この反応は、測定により連続的に1〜2時間ごとに5〜10分を監視されています。 </li><li>すべての測定が終了したら、上記のようなデータ分析のためのオメガのデータ解析ソフトウェアからMicrosoft Excelへの生データ（ 図3に示す例）をダウンロードしてください。 </li><li>レチノール-EGFPは、アクセプター/ドナー発光ピーク47の比率のダイナミックな変化によって計算されるFRET。この比率を計算するための式（41）は [（510 トン -510 B）/（460トン -460 b）]を、ここで510 トン 、510 B、460トン 、460 bは反応開始後510 nmでの排出量を表す（ t =時間ポイント）は、レチノールまたはホロRBP前510nmで反応（T =時点）開始後の460nmで、（B =バックグラウンド）を加え、レチノールまたはホロRBP前460nmで追加されます（B =バックグラウンド）であった。 </li></ol>

特別な利害関係は宣言されません。

RBPの生産および精製手順が正しく折り畳まれたRBPを生成するために重要ですので、我々はここで最適化されたRBP生産プロトコルを共有しています。ミスフォールドRBP種の可能性、さらにはHPLC精製細菌生産RBP内細菌タンパク質の微量の存在を考えると、それは、RBPに関連した結論を確認するために血清からネイティブRBPを使用すると便利です。市販されている尿中RBPは、アポRBPとホロRBP 48,49含むRBPの多くの種の複雑な混合物である。 ここで説明するリアルタイム·モニタリング技術はレチノールの固有蛍光に基づいています。これらのアッセイを開発するためのオリジナルの弾みは、我々は古典的な放射性アッセイおよびHPLCベースアッセイによって明らかにすることができる情報が限られていたということでした。例えば、私たちはSTRA6少しビタミンAビタミン取り込みアッセイで単独で取り込み活性を有することを見出したが、我々は簡単にSの低活性を説明することはできませんビタミンでTRA6 LRATまたはCRBP-Iの41せず取り込み。レチニルエステルベー...

ビタミンAは、人類の生存と、ほとんどすべての人間の臓器を適切に機能させるために不可欠である有機分子である。ビタミンA誘導体（レチノイド）は視力1,2と胚の発生過程および成体組織3-6の遺伝子発現とタンパク質翻訳の調節のための光センシングなど多様な生化学的および細胞イベントに参加しています。レチノールは全身に拡散する能力を持っていますが、進化論は血漿レチノール結合蛋白質、ビタミン、高効率と特異性を達成し、7月10日ランダム拡散に関連する毒性を避けるために、血液中の輸送のための特定のキャリアタンパク質を思い付いた。 RBPに結合し、ビタミンを占める高親和性受容体は、1970 11月13日に仮定された。 RBP受容体14から31の存在に30年間で蓄積された証拠があるにもかかわらず、受容体仮説が原因existencに長年にわたり議論されたホロRBPの間違った定義のe。ホロRBPの正しい定義は、それがレチノールおよびRBPとの間に高い親和性1:1複合体であるということです。有機溶媒によるホロRBPの繰り返し抽出がアポRBPを生成する必要がある。この定義は、RBP 7,9,32-35またはRBP受容体14-31,36-42を勉強し 、ほぼすべてのラボで使用されます。 RBP受容体の存在を反証するために使用されたホロRBPの誤った定義がアポRBPとの自由レチノールの急性混合物である。ビタミンにおけるRBP受容体の機能ホロRBPから取り込みはホロRBPからレチノールを解放することであるので、レチノールが（ホロの間違った定義によって提案で始まって自由である場合には、RBP受容体はレチノール取り込みに何の役割も果たしていないでしょう-RBP）。 ホロRBPで36から43から取り込みが強く、RBPがないという仮説に対して主張している最近のSTRA636呼ばmultitransmembraneドメインタンパク質としてRBP受容体の同定とビタミンにおけるその機能STRA6は、N末端 ​​細胞外に位置しており、細胞内に位置する40 C-末端の9の膜貫通ドメインを有することが明らかになったビタミンAの詳細な分析を提供するために受容体を必要としています。貫 ​​通6と7の間に位置することが不可欠RBP結合ドメイン39です。 STRA6がLRATとビタミンでCRBP-IホロRBPから取り込みの両方に結合されたが、どちらもLRATさCRBP-Iは絶対に強化された41 STRA6活動のために必要です。ホロRBPからレチノールの放出を触媒するSTRA6の能力は、そのビタミン取り込み活性41への鍵となります。そのレチノールを解放するSTRA6に頼ることによって、ビタミンRBPによる配達は、ビタミン、高い特異性と効率性末梢組織中の細胞をターゲットに転送することができます。 ホロRBPの定義と準備が非常に重要であることは、RBP受容体の存在に関する歴史的論争ではなく、ホロRBP定義差に基づいて、3つの関連する最近の論文だけでなく示されているオリジナルと正しい定義44から46からferent。最初の論文は、RBP受容体44を勉強するRBP受容体の存在を不承認とするために使用されたホロRBPの定義を使用していました。 2番目と3番目の論文は、RBP 45,46との適切な複合体を形成するために検討すべきことがあっても可能性が低いレチノールのために作らホロRBPの3番目の定義を思い付いた。これらの研究は、3 H-レチノールとホロRBPを（なくてもアポRBP）混合することにより、3 H-retinol/RBPを用意しました。このアッセイは3 H-retinol/RBPが形成され、過度の自由、3 H-レチノール45,46を削除しなかった持っていなかったので、3 H-retinol/RBPから3 H-レチノール取り込みのためのアッセイではありませんが、無料です3 H-レチノール拡散アッセイ。それはSTRA6がLRAT 38またはCRBP-Iの41でフリーレチノールの細胞への取り込みを増強しないことが以前に示されている。事実上すべてのレチノールは、血液中のRBPに結合され、検出可能な周波数がありません電子レチノール。 RBP受容体の主な機能は、ホロRBP 41からレチノール取り込み時にホロRBPからレチノール放出を触媒することがあります。レチノールが人為的に放出または45,46で始まるように遊離体であるされている場合は、RBP受容体は必要ありません。正しくホロRBPはRBPの正しい調製を例示する準備に基づくアッセイに比べて自由なレチノール拡散アッセイから得られた劇的に異なった結果は、その機能アッセイするために重要です。 RBPは、ヒト血清41から精製され、手順が複雑であり、収率が低いことができます。別のアプローチは、EにRBPを生成することです大腸菌。ため、E.大腸菌が正しくRBPようなジスルフィド結合の複数のペアで哺乳類の分泌タンパク質をフォールドする能力を持っていない、それがフォールディングRBP、正しく折り畳まれたタンパク質を精製するために不可欠です。ミスフォールドタンパク質は、様々なアッセイに折り畳まれたRBPを訂正とは異なる動作をするだけでなく、だけでなく、貯蔵中のタンパク質凝集を引き起こす。同じ理由で、アポRBPは、高品質のホロRBPから生産されています。我々はここで細菌発現、フォールディング、及びHPLC精製を通じてレチノールでロード高品質RBP 100％を生成する最適化されたプロトコルを記述します。 HPLC精製は、誤って折り畳まれたRBPはなく、RBPはシグナル伝達アッセイで使用されている場合、重大なアーチファクトを引き起こす可能性があります重要な細菌汚染を除去するだけでなく。またSTRA6によってレチノール輸送を研究するには、2つの敏感なリアルタイム監視手法について説明します。両方の技術は、高品質のRBPによって異なります。スペースの制限のため、放射性レチノイドベースおよびHPLCベースのビタミンの古典的な技法は取り込みアッセイは、ここでは説明しません。

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬/材料の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> 注釈 </td></tr><tr><td>塩酸グアニジン</td><td> EMD </td><td> 5010 </td><td></td></tr><tr><td>シスチン</td><td>シグマ</td><td> C8755 </td><td></td></tr><tr><td>システイン</td><td>シグマ</td><td> C7352 </td><td></td></tr><tr><td> EDTAを</td><td>フィッシャー</td><td> BP118-500 </td><td></td></tr><tr><td>トリス</td><td>フィッシャー</td><td> 7786から1 </td><td></td></tr><tr><td> DTT </td><td> EMD </td><td> 3860 </td><td></td></tr><tr><td>レチノール</td><td>シグマ</td><td> R7632 </td><td></td></tr><tr><td>カルベニシリン</td><td>フィッシャー</td><td> BP2648-5 </td><td></td></tr><tr><td> IPTG </td><td> EMD </td><td> 5810 </td><td></td></tr><tr><td> PBS </td><td> EMD </td><td> 6508 </td><td></td></tr><tr><td> NaClを</td><td>フィッシャー</td><td> BP358-10 </td><td></td></tr><tr><td>のNi-NTA </td><td>キアゲン</td><td> 1018244 </td><td></td></tr><tr><td>イミダゾール</td><td> EMD </td><td> 5720 </td><td></td></tr><tr><td>ヘプタン</td><td> EMD </td><td> HX0295-1 </td><td></td></tr><tr><td>ブロッカーカゼイン</td><td>ピアース</td><td> 37528 </td><td></td></tr><tr><td>アミコンウルトラ15コンセントレータ（MWCO10K） </td><td>ミリポア</td><td> UFC901024 </td><td></td></tr><tr><td> Microfluor-2板</td><td>フィッシャー</td><td> 14-245-177 </td><td></td></tr><tr><td>ハミルトンガスタイトシリンジ＃1710 </td><td>フィッシャー</td><td> 14-824-655 </td><td></td></tr></tbody></table>

血漿レチノール結合タンパク質の膜受容体によってレチノール交通のリアルタイム解析

Real-time Analyses of Retinol Transport by the Membrane Receptor of Plasma Retinol Binding Protein

ビタミンAは視力とほぼすべての人間の器官の成長/分化に必須である。血漿レチノール結合タンパク質（RBP）は、原則とビタミン血液中の特定のキャリアである。ここで我々が​​生産し、高親和性受容体RBP STRA6によるビタミンの輸送を研究するためにホロRBPと2つのリアルタイム·モニタリング技術を浄化するための最適化手法について述べる。最初の方法は、それが可能な高品質のビタミンのためのホロRBP（100レチノール％ロード）輸送アッセイを大量に製造することができる。ミスフォールドRBPリリースビタミン容易にし、汚染細菌RBP準備ではアーチファクトを引き起こす可能性があるので、高品質のRBPは機能アッセイのために不可欠です。電気生理学のようなリアルタイムのモニタリング技術は膜輸送の研究に重要な貢献をしてきました。 RBP受容体媒介性のレチノール輸送はリアルタイムで最近まで分析されていません。ここで説明する2番目の方法はREAですSTRA6触媒によるレチノールリリースや負荷のl時間分析。第3の方法は、細胞のレチノール結合タンパク質I（CRBP-I）にホロRBPからSTRA6触媒によるレチノール輸送のリアルタイム分析である。これらの技術は、RBP受容体のビタミン取り込み機構を明らかにすることで、高感度と分解能を提供します。

我々は、HPLC（ 図1）、アポRBP（ 図2）とのリアルタイム分析にホロRBP及びレチノールのローディングからSTRA6触媒によるレチノールリリースをリアルタイムで分析することによりここにホロRBPの生産および精製の ​​ための代表的な結果を提示ホロRBPからEGFP-CRBP-IへSTRA6触媒によるレチノール輸送（ 図3）。 リフォールディングすることなく、細菌で産RBPはほぼ完全に多くの誤ったジスルフィド結合の存在に起因するミスフォールドされています。したがって、リガンドレチノールの存在下でリフォールディングすると、よく折られたRBPを得ることに非常に重要である。私たちは、リフォールディング反応が正しく行われていない場合は、RBP種（ 例えば、 図1 に RBP-Iをミスフォールド）製剤全体とホロRBPは、HPLC精製後に非常に低くすることができ、高品質の収量を風靡することができミスフォールことがわかった...

ここでは、高品質のビタミン/ RBP複合体とSTRA6、RBP受容体によってビタミンAの輸送を研究するには、2つのリアルタイム·モニタリング技術を生成するように最適化手法を説明します。

Vitamin A is essential for vision and the growth/differentiation of almost all human organs.  Plasma retinol binding protein (RBP) is the principle and ...

このプロトコルは、レチノール結合タンパク質受容体の活性をリアルタイムで研究するために使用される高品質の血漿レチノール結合タンパク質の産生を示しています。これは、まず細菌から大量のレチノール結合タンパク質を発現し精製することによって達成されます。精製されたレチノール結合タンパク質は、そのリガンドレチノールの存在下で完全に変性し、ゆっくりとリフォールディングされます。次に、正しくリフォールディングされたレチノール結合タンパク質をHPLCを使用して精製し、誤ってフォールディングされたタンパク質と細菌の汚染物質を除去します。高品質のレチノール結合タンパク質が得られたら、それを使用して、レチノール放出、レチノール負荷、または細胞性レチノール結合タンパク質へのレチノール輸送を触媒するその膜受容体の活性を研究することができる。リアルタイムで。本日は、レチナール結合タンパク質産生細菌を改質および精製するための改良されたプロトコルを実演します。この技術により、機能アッセイに不可欠な高品質の網膜結合タンパク質を作製することができます。新たに開発された網膜結合タンパク質の受容体を研究する技術について実演します。これらの手法が、放射能ベースやHPRCベースの手法などの既存の手法と比較した場合の主な利点は、複数の反応の進行状況をリアルタイムで監視できることです。この手順で最も難しいのは、RVPの品質と利回りの両方を決定する可能性のあるRVP源泉徴収です。タンパク質が正しく産生されない場合、得られたRVP調製物は機能性酸に使用できません。ここでは、成功を確実にするために長年にわたって開発したいくつかの改善点を紹介します。BL 21 e大腸菌の40ミリリットル培養物から不溶性封入体でこのプロトコルを開始し、6 x 彼のタグを持つヒトRBPタンパク質は、封入体に7.5モルギネ塩酸塩の10ミリリットルを追加し、超音波処理します。次に、5ミリリットルの25ミリモルトリスpH9と75マイクロリットルの10ミリモルDTTを追加し、一晩回転させます。翌日、18 Gで摂氏4度で20分間遠心分離し、不溶性タンパク質を除去します。スピン後、上清を新しいチューブに移し、チューブを氷の上に置きます。次に、添付のテキストで説明されているように、氷上にリフォールディングバッファーを準備します。次に、薄暗い赤いライトの下で部屋の照明を消しながら、氷の上のビーカーでタンパク質溶液を激しく混合します。あるいは、リフォールディング緩衝液1ミリリットルごとに10マイクロリットルのレチノール溶液を添加し、合計600マイクロリットルのレチノール溶液と60ミリリットルのリフォールディング緩衝液を添加します。その後、別の遠心分離の後、暗闇の中で5時間攪拌を続けます。上清をAnacon Ultra 15を使用して約10ミリリットルに

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Research

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Biology

生物学

本研究の目的は、ラット同系内皮細胞とアストロサイトの共培養が関与する生体外 BBBモデルの再現性を検証することでした。内皮細胞単層は、高いTEERと低LY透過性を提示した。特定のTJタンパク質の発現は、炎症および輸送体および受容体の機能性に機能的応答を評価した。...

設定アップ<em&gt;体外</emラット血液脳関門の&gt;モデル（BBB）：BBB不透過性および受容体媒介輸送に注力

ヒト網膜色素上皮細胞(H-RPE)の代謝状態は、その健康と機能を反映しています。ここでは、高解像度の呼吸測定を使用してH-RPEのリアルタイムの代謝フラックスを調べるための最適化されたプロトコルを紹介します。...

高分解能肺活量測定法を用いた初代ヒト網膜色素上皮細胞における生体エネルギーのリアルタイム解析

ここでは、眼組織と全身組織の両方における視覚機能の促進に関与する重要なレチノイドを検出および定量するための順相高速液体クロマトグラフィー法について説明し、全身性ビタミンA供給の文脈で、必須の光感受性ロドプシン発色団11-シス-レチナールを生成します。...

高速液体クロマトグラフィーを用いたマウス眼組織および非眼組織における食事性ビタミンA代謝物の定量分析

ここでは、ビタミンA膜受容体および光受容体オプシンとそれぞれの生理的リガンドとのタンパク質-リガンド相互作用を研究するための2つの定量的手法について説明します。...

レチニリデンタンパク質の生成におけるビタミンA膜受容体およびオプシンタンパク質とそれらのリガンドとの相互作用を研究するための方法論

規制エンドサイトーシスは、膜タンパク質の大部分の細胞表面発現レベルを制御します。ここでは、ドーパミントランスポーター（DAT）、ポリトープ膜​​タンパク質のエンドサイトーシス率を測定するために還元、膜非透過性ビオチン化試薬を利用する。メソッドは、ほとんどの細胞膜タンパク質のエンドサイトーシス率を測定するための直接的なアプローチを促進する。...

リバーシブルビオチン化によって原形質膜タンパク質エンドサイトーシス率を測定

このプロトコルは、フローサイトメトリーにより細胞質から細胞の形質膜へのGLUT4のトランスロケーションを定量化するために迅速なテクニックを説明します。...

フローサイトメトリーによる細胞膜へのGLUT4転の定量的測定

ステロイド受容体の生化学的再構成には、•Hsp90のタンパク質複合体とリガンド結合の再活性化

複数のターゲットトレースは、生きた細胞の細胞膜内で個別に標識分子を追跡するために開発した自家製のアルゴリズムである。効率的に検出するナノ膜のダイナミクスを調べるためにユーザーフレンドリーな、包括的なツールを提供し、高密度で時間をかけて分子を推定し、トレースします。...

複数のターゲットトレース（MTT）による原形質膜中の分子拡散のマッピング

我々は、共役高分子ポリジアセチレン（PDA）およびフルオロフォアの生体分子の検出のためのPDAのリポソームの表面に付着した間のFRETを示しています。 PDAのリポソームはまた、プローブとして使用する生体分子のための彼らの表面上の受容体分子が含まれていました。リガンド -...

蛍光共鳴エネルギー移動によるリガンド - 受容体相互作用のリアルタイム監視

マイクロ熱泳動（MST）が広く細胞溶解物から標的タンパク質を精製することなく結合親和性の決定のために用いることができる。プロトコルは、GFP融合タンパク質、非変性条件下での細胞溶解、及びリガンドの濃度を変化させるの存在下で、MST信号の検出の過剰発現を伴う。...

マイクロスケール熱泳動によって結合親和性の決定のタンパク質精製·フリー法

学ぶ 血漿レチノール結合タンパク質の精製と再折りたたみ法を用いたSTRA6受容体のリアルタイム解析技術。この方法によりビタミンA輸送メカニズムの研究が可能となる。

血漿レチノール結合タンパク質の膜受容体によってレチノール交通のリアルタイム解析

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