Name: 膜脊柱：膜タンパク質のタンパク質 - タンパク質相互作用を識別するために、生化学的ツールインビボ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-07T19:35:00.000+00:00
Duration: 10 min 53 s
Description: 学ぶ膜タンパク質のタンパク質-タンパク質相互作用を同定する生化学的手法。ホルムアルデヒド架橋とアフィニティー精製、質量分析を組み合わせ、低親和性や一過性の相互作用も検出可能です。

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この研究は、SHにドイツ学術振興GraKo1121、Hu1011/2-1とSFB940の補助金によって支えられて

注意：プロトコルに示されたバッファに関する詳細な情報は、 表1で提供されています。 1。生細胞におけるホルムアルデヒド架橋によってタンパク質 - タンパク質相互作用の固定<ol><li>増殖培地、ストック溶液とバッファP1の準備を開始するには<ol><li>培地500ミリリットルを準備します。媒体が膜baitタンパク質と獲物タンパク質間の相互作用をサポートする条件を提供する必要があります。さらに、1つの実験は、（ 例えば、架橋せず）の相互作用が期待されない条件下で行われるべきである。 注意：我々は強調し、非ストレス細菌中のタンパク質 - タンパク質相互作用を比較する。そのため、私たちは、2Lの三角フラスコ中のストレス誘導剤（ 例えば 、0.5M NaCl）で補完する500ミリリットルルリアベルターニ（LB）培地（ 表1）を準備します。制御のために、我々は0.17のNaCl（pH7.0）で、通常のLB培地を使用しています。 </li><li>トリス緩衝液を調製し（20mMのTris-HClでpHを8.0）および0.1 Mエチレンジアミン四酢酸（EDTA）、pH8.0の原液（ 表1）。 </li><li>バッファP1を準備します。トリス緩衝液中の0.5 Mの最終濃度になるようにスクロースを溶解させる。濾過によりバッファP1を滅菌し、4℃で保存し</li></ol></li><li>ベクターからC-末端のStrep-tag融合有する膜ベイトタンパク質を発現する細胞を成長させる。十分な時間のための膜ベイトタンパク質の発現を誘導する。 注：我々 500 mlの培地を250μlの1 Mイソプロピル-β-D-チオガラクトピラノシド（IPTG）の添加により早期対数増殖期（A 600 = 0.3）で（最終濃度：0.5mMの）を細菌膜のベイトタンパク質の発現を誘導する。十分な発現を可能にするために、我々は対数期後期（600 = 1.2）まで、細菌を培養する。 </li><li> 300ミリリットルそれぞれの最小​​容積と各培養用の2遠心ビーカーを用意し、氷の上に置きます。 </li><li>ホルムアルデヒド架橋を行う。 CAUTION：ホルムアルデヒドは毒性が強く私たちは、安全性のヒュームフードの下で働いてお勧めします。 <ol><li>安全ヒュームフードの下で培養容器を移す。 （ - X）と架橋ホルムアルデヒド（+ X）を含む一つのサンプルは、架橋を省略一つに各サンプルを分割。 0.6％の最終濃度に達するように250mlの培養物に4ミリリットルの37％ホルムアルデヒド溶液を添加する。 </li></ol></li><li>バック培養容器を転送し、以前のように、さらに20分間細胞を増殖。 </li><li>安全ヒュームフードの下の遠心管にあなたの文化を記入してください。 30分間3000×gの遠心分離によって細胞を収集します。 </li><li>慎重に安全ヒュームフードの下でそれをピペッティングにより上清を捨てる。有毒なホルムアルデヒド含有上清を収集し、適切に廃棄してください。 </li><li>膜タンパク質の調製中に最適な収率を達成するために、第一のスフェロプラストを調製する。ここでは、グラム陰性細菌のスフェロプラスト形成のためのプロトコルを提供する。 <ol><li>た準備凍結乾燥粉末から電子バッファP2（ 表1）。穏やかに1.5mlチューブに、0.1 M EDTA、pHを8に2mgのリゾチームを溶解する。常に実験の日のために新鮮にバッファP2を準備します。 </li><li>プロテアーゼ阻害剤（バッファP3）とトリス緩衝液を準備します。トリス緩衝液10mlに、10mMの最終濃度を0.1 mlの1 Mフェニルメチルスルホニルフルオリド（PMSF）（ 表1）を加える。プロテアーゼ阻害剤PMSFとしての適切な機能を確保するために、すぐにバッファを使用する。 </li><li>プロテアーゼ阻害し、15mlのコニカルチューブに移す溶液で10mlトリス緩衝液に再懸濁した細胞ペレット。 </li><li> 1ミリリットルの緩衝P2を追加し、30分間氷上でインキュベートする。 </li><li> 30分間3000×gの遠心分離によりスフェロプラストを収集し、慎重に上清を捨てる。 </li></ol></li><li> -20℃で一晩フェロプラストペレットをインキュベート</li></ol> 2。 Strepタグの膜タンパク質の精製（ベイト） <ol><li>氷上でフェロプラストペレットを配置します。&lt;/李&gt; <li>フェロプラストペレットを氷上で解凍時間の間に、それぞれのスフェロプラストを調製するための10ミリリットルバッファP3を準備します。静かに10ミリリットルトリス緩衝液中で1mgのDNアーゼIを溶かす。使用直前に0.1ミリリットルの1M PMSFを追加します。 </li><li> 6ミリリットルの新たに調製し、P3でペレットを再懸濁します。スフェロプラストを破壊するために、各バーストの間に1分間の休止と氷上で1分間、連続的に試料を4回超音波処理する。 </li><li>収穫細胞細片を10分間、10,000×gで試料を遠心分離する。超遠心管にピペットを用いて上清を転送します。 </li><li> 30分、100,000×gで膜画分をペレット化。それを溶解することなく、トリス緩衝液中で慎重にペレットを洗浄。紙の組織（ 例えばクリネックス）でチューブを乾燥させます。いつでもペレットを乱さないようにしてください。 </li><li>丁寧に1ミリリットルのトリス緩衝液（=膜）ペレットを再懸濁。 例えば、BCAアッセイによりタンパク質濃度を決定するために、20μlのアリコートを使用する。このステップでは、膜は、リチウムでショック凍結することができる頭の良い窒素と-80℃で保存</li></ol> 3。 Strepタグメンブレンbaitタンパク質とSDS-PAGEの精製<ol><li>トリスバッファーで5 mg / mlの、膜画分のタンパク質濃度を正規化する。超遠心分離管に2.5ミリリットルの膜画分（5 mg / mlの）を取り、膜タンパク質を可溶化するために、2％の最終濃度に達するように、20％トリトンX-100 0.25mlの投稿。マイクロ磁気棒を加え、氷上で1時間撹拌する。 注：一般に、我々は洗浄剤としてトリトンX-100を使用して良い結果を持っていますが、最適化のための界面活性剤を変更することが役に立つかもしれません。この点において、我々は、それぞれの膜ベイトタンパク質の機能的な精製の ​​ために使用されるもの清浄剤で最良の結果を有している。 </li><li>ステップ3.1を実行している間、（ 表1）から50ミリリットル液Wと5ミリリットル緩衝液Eを準備します。 10ミリリットルの5×50ミリリットルにW濃縮液をバッファリングし、150μlの20％トリトンX-100を追加埋める。 <ol><li> 1ミリリットル5X buffeを埋めるR E 10ミリリットルに集中し、30μlの20％トリトンX-100を追加します。 8ミリリットルバッファーWに1ミリリットルのStrep-Tactinのスーパーフロー自然落下カラムを平衡化 注：これは、精製手順の間の任意の緩衝液中の臨界ミセル濃度（CMC）以上の濃度の10倍で可溶化に使用される界面活性剤を添加することが必須である。 </li></ol></li><li>不溶性膜画分をペレット化し、30分間、100,000×gで可溶化サンプルと超遠心機からマイクロ磁気棒を取り外します。さらに精製するためにピペットを用いて上清を取り除きます。 </li><li>カラムに上清をロードします。唯一の重力流でカラムを実行します。 W.この洗浄工程を5回繰り返して、5ミリリットル緩衝液でカラムを洗浄します。 </li><li>この溶出ステップ4Xを繰り返して1ミリリットルバッファーEで膜ベイトタンパク質を溶出。 </li><li>遠心式フィルターユニットで溶出画分2,3、および4から300μLを濃縮する。 </li><li> 50μlの5倍のSDS-PAGで各サンプルを200μlを混ぜてEローディングダイ。 125μlを各準備を分割します。ホルムアルデヒド架橋を逆にする、95℃で20分間の各製剤の1アリコートを沸かす。サンプルは作業台の上に、少なくとも10分間、室温まで冷却してみましょう。 </li><li>免疫ブロッティングに適しポリアクリルアミドゲルの単一のレーンに負荷各サンプルから30μlの。最良の方向について予め染色した分子量マーカーを使用し、SDS-PAGE 10を実行します。 </li></ol> 4。相互作用パートナーを確認するためのイムノブロット分析<ol><li>一旦3.8は、例えばセミドライによりニトロセルロース膜に転写タンパク質を終了するステップ。 </li><li>非特異的な標識を防ぐための膜をブロックします。 0.05％のTween-20（TBS-T）の最終濃度を補充したトリス緩衝食塩水で体積当たり3％の重量を達成するために、ウシ血清アルブミン（BSA）を秤量して、ブロッキング緩衝液調製する。メンブレンをカバーするために、ブロッキング緩衝液の十分なボリュームを使用。室温で1時間、膜をブロックします。 </li><li>希薄NDいつものように獲物タンパク質特異的一次抗体をインキュベートする。二次抗体としてHRP結合抗体を使用してください。 </li><li>高感度化学発光検出キットを用いたイムノブロットを開発。古典映画の処理手順やデジタルイメージング機器を用いて信号を監視します。 </li></ol> 5。相互作用パートナーを識別するためにNanoLC-ESI-MS/MS高解像度実験<ol><li>識別されるべきである特定の抗体が獲物タンパク質または未知の相互作用パートナーのために提供されていない場合には、識別のために質量分析（MS）を使用します。ケラチン汚染を防止するために、使用は、タンパク質分離のためにゲルをプレキャスト。 </li><li>銀は、製造業者のプロトコルに従ってMS適合性染色キットを用いてSDS-PAGEを染色する。ガラスタンク内のすべての染色および洗浄の手順を実行します。 </li><li>消費税各バンドと高分解能LC / MS 9でこれらを分析します。 </li></ol>

<ol><li>Krogh, A., Larsson, B., von Heijne, G., Sonnhammer, E. L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predicting+transmembrane+protein+topology+with+a+hidden+markov+model%3A+application+to+complete+genomes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Predicting transmembrane protein topology with a hidden markov model: application to complete genomes.</a> J. Mol. Biol. 305, 567-580 (2001).</li>
<li>Bakheet, T. M., Doig, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Properties+and+identification+of+human+protein+drug+targets%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Properties and identification of human protein drug targets.</a> Bioinformatics. 25, 451-457 (2009).</li>
<li>Yildirim, M. A., Goh, K. I., Cusick, M. E., Barabasi, A. L., Vidal, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drug-target+network%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Drug-target network.</a> Nat. Biotechnol. 25, (2007).</li>
<li>Daley, D. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+assembly+of+membrane+proteins+into+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Struct.+Biol%22%5BJournal%5D)">The assembly of membrane proteins into complexes.</a> Curr. Opin. Struct. Biol. 18, 420-424 (2008).</li>
<li>Jung, K., Fried, L., Behr, S., Heermann, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histidine+kinases+and+response+regulators+in+networks%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Histidine kinases and response regulators in networks.</a> Curr. Opin. Microbiol. 15, 118-124 (2012).</li>
<li>Müller, V. S., Jungblut, P. R., Meyer, T. F., Hunke, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane-SPINE%3A+An+improved+method+to+identify+protein-protein+interaction+partners+of+membrane+proteins+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics%22%5BJournal%5D)">Membrane-SPINE: An improved method to identify protein-protein interaction partners of membrane proteins in vivo.</a> Proteomics. 11, 2124-2128 (2011).</li>
<li>Herzberg, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SPINE%3A+A+method+for+the+rapid+detection+and+analysis+of+protein-protein+interactions+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proteomics%22%5BJournal%5D)">SPINE: A method for the rapid detection and analysis of protein-protein interactions in vivo.</a> Proteomics. 7, 4032-4035 (2007).</li>
<li>Sutherland, B. W., Toews, J., Kast, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Utility+of+formaldehyde+cross-linking+and+mass+spectrometry+in+the+study+of+protein-protein+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mass+Spectrom%22%5BJournal%5D)">Utility of formaldehyde cross-linking and mass spectrometry in the study of protein-protein interactions.</a> J. Mass Spectrom. 43, 699-715 (2008).</li>
<li>Hernandez, P., Müller, M., Appel, R. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+protein+identification+by+tandem+mass+spectrometry%3A+Issues+and+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Mass+Spectrom.+Rev%22%5BJournal%5D)">Automated protein identification by tandem mass spectrometry: Issues and strategies.</a> Mass Spectrom. Rev. 25, 235-254 (2006).</li>
<li>Laemmli, U. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cleavage+of+structural+proteins+during+the+assembly+of+the+head+of+bacteriophage+T4%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4.</a> Nature. 227, 680-685 (1970).</li>
<li>Hunke, S., Keller, R., Müller, V. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signal+integration+by+the+Cpx-envelope+stress+system%5BTitle%5D)+AND+%22FEMS+Microbiol.+Lett%22%5BJournal%5D)">Signal integration by the Cpx-envelope stress system.</a> FEMS Microbiol. Lett. 326, 12-22 (2012).</li>
<li>Weber, R. F., Silverman, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Cpx+proteins+of+Escherichia+coli+K12+%3A+Structure+of+the+CpxA+polypeptide+as+an+inner+membrane+component%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">The Cpx proteins of Escherichia coli K12 : Structure of the CpxA polypeptide as an inner membrane component.</a> J. Mol. Biol. 203, 467-478 (1988).</li>
</ol>

我々は、開示することは何もありません。

膜脊椎分析は1を確認し、この時点まで膜タンパク質の未知の相互作用パートナーを識別でき、生化学的なアプローチである。メンブレン背骨がStrep-tag IIタグの膜ベイトタンパク質の精製をホルムアルデヒドによって生体内架橋を兼ね備えています。免疫ブロット法との併用は、予測された相互作用パートナー（ 図2）の確認を容易にする。さらに、MS解析との組み合わせは、未知の相互作用パートナー（ 図3）の同定を可能にする。両方のアプリケーションのために、あなたの獲物タンパク質を修飾するための必要はありません。また、メンブレン背骨が内因獲物タンパク質6の検出を可能にするために十分に敏感である。 ここでは、グラム陰性細菌の膜タンパク質のための最適化されたプロトコルを提示する。グラム陰性細菌のエンベロープは、他に、環境や武装隊から細胞質を分離する細胞膜、外膜とムレイン球形嚢。したがって、我々のプロトコルは、いわゆるフェロプラスト、その結果、外膜の除去とムレイン球形嚢が含まれてい...

タンパク質の機能を理解するためには、その相互作用パートナーを知ることが不可欠である。いくつかの古典的な手法は、可溶性タンパク質の相互作用パートナーの同定のために用意されています。しかし、これらの技術は、簡単に自分の疎水性の性質4による膜タンパク質に譲渡することはできません。この制限を克服するために、我々は、膜のStrep-タンパク質相互作用実験（膜- SPINE）6を開発した。これは、可溶性タンパク質7にのみ適した脊椎法に基づいています。 架橋剤のホルムアルデヒドの二つの利点から、膜-背骨の利点は：まず、ホルムアルデヒドは簡単に膜を透過し、そのため生細胞8のインタラクトームの正確なスナップショットを生成することができます。第二に、ホルムアルデヒド架橋が9を沸騰させることによって逆転させることができる。ここで、これらの二つの利点は、膜proteの永久的でなく、過渡のPPIだけを識別するために使用されプラグ6。 要するに、Strepタグは内在性膜ベイトタンパク質のC末端に融合される。膜ベイトタンパク質を発現する細胞は、架橋は、膜ベイトタンパク質にタンパク質を捕食ホルムアルデヒド（ 図1）とともにインキュベートする。獲物タンパク質の修正は必要ありません。次に、膜画分を調製する。したがって、膜タンパク質は、治療およびベイトタンパク質は、アフィニティー精製を使用して、その獲物タンパク質と同時精製される界面活性剤によって可溶化される。続いて、架橋を沸騰させることによって反転され、餌及びその共溶出獲物タンパク質は、SDS-PAGEによって分離されている。最後に、獲物タンパク質は、イムノブロット分析または質量分析によって同定することができる。

<table><tbody><tr><td>37% ホルムアルデヒド</td><td>Roth</td><td>4979.1</td><td>1 年より古いものであってはなりません</td></tr><tr><td>DNaseI</td><td>Sigma</td><td>DN25</td><td></td></tr><tr><td>BCA タンパク質アッセイキット</td><td>Pierce</td><td>23225</td><td></td></tr><tr><td>マイクロマグネティックロッド</td><td>Roth</td><td>0955.2</td><td>長さ 5 mm、直径 2 mm</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Roth</td><td>6683.1</td><td>可溶化</td></tr><tr><td>用標準洗剤n-ドデシル-&β;-マルトシド</td><td>グリコン</td><td>D97002-CC</td><td>を可溶化するのに最適な界面活性剤 CpxA</td></tr><tr><td>1 ml Strep-Tactin superflow重力フローカラム</td><td>IBA</td><td>2-1207-050</td><td></td></tr><tr><td>Strepタグタンパク質精製バッファーセット</td><td>IBA</td><td>2-1002-001</td><td>バッファーWとバッファーE</td></tr>が含まれています <tr><td>Amicon Ultra-4遠心フィルター</td><td>ミリポア</td><td>UFC803024</td><td></td></tr><tr><td>SuperSignal West Pico 化学発光基質</td><td>Pierce</td><td>34080</td><td></td></tr><tr><td>Silverstaining kit</td><td>Invitrogen</td><td>LC6070</td><td></td></tr><tr><td>FireSilver Staining Kit</td><td>Proteome Factory</td><td>P-S-2001</td><td></td></tr><tr><td>超遠心分離機</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

膜脊柱：膜タンパク質のタンパク質 - タンパク質相互作用を識別するために、生化学的ツールインビボ

Membrane-SPINE: A Biochemical Tool to Identify Protein-protein Interactions of Membrane Proteins In Vivo

膜タンパク質は、細胞の生存に必須であり、したがって、重要な治療標的である1-3。これらは複合体4で機能するので、それらの相互作用を同定し、特徴付けるための方法が5必要です。この目的のために、我々は、膜- SPINE 6と呼ばれる膜のStrep-タンパク質相互作用実験を、開発した。この技術は、 インビボ Strepタグ膜ベイトタンパク質のアフィニティー精製の ​​可逆架橋剤ホルムアルデヒドを用いて架橋で組み合わせる。処置中に、架橋された獲物タンパク質は、膜ベイトタンパク質と共精製し、続いて沸騰させることによって分離される。イムノブロッティングによって提案された相互作用パートナーの第一、確認、および質量分析による新たな相互作用パートナーの第2の識別：膜 - SPINEを用いた膜タンパク質のタンパク質 - タンパク質相互作用薬（PPI）を分析するとき、したがって、二つの主要なタスクを実行することができる。また、あってもLOW親和性、一過性のPPIは、この技術によって検出可能である。最後に、膜 - SPINEは、膜タンパク質の同定のPPIをスクリーニングするための強力なツールとして、適用すること、ほぼすべての細胞型に適用可能である。

膜SPINE分析は、膜タンパク質の同時精製および一過性の相互作用タンパク質パートナーを可能にする。共精製は、架橋剤、ホルムアルデヒドを使用することによって達成される。ホルムアルデヒド濃度および架橋時間：2つのパラメータは、非特異的な架橋を防止するために重要である。ホルムアルデヒドのに十分ではなく、過度の使用を容易にイムノブロッティングによって制御することができる。ホルムアルデヒド架橋されたタンパク質複合体は、SDS処理により沸騰ではなくによって分離することができる。したがって、それらは、煮沸試料の免疫ブロットの上部のスメアとしてStrepタグ膜ベイトタンパク質をブロッティングした後に可視化することができる。 すべての必要なコントロールを含む膜SPINEアッセイの代表的結果を、 図2に示されている。ベイトタンパク質として大腸菌の内在性膜タンパク質CpxAは6,11を用いた。 CpxAはセンサーキナーゼであるとで構成されています大きな細胞質外センサードメインとC末端の高度に保存された細胞質触媒ドメイン1...

生化学的ア ​​プローチは、膜タンパク質のin vivoでのタンパク質-タンパク質相互作用（PPI）を識別するために記載されている。この方法は、タンパク質架橋、アフィニティー精製および質量分析を組み合わせて、ほぼすべての細胞型または生物に適用可能である。このアプローチでは、一過性のPPIのさえ識別が可能となる。

Membrane proteins are essential for cell viability and are therefore important therapeutic targets1-3. Since they function in complexes4, methods to ...

この手順の全体的な目標は、膜連鎖球菌タンパク質相互作用実験または膜スパインを通じて、in vivoタンパク質、膜タンパク質のタンパク質相互作用を同定することです。これは、ホルムアルデヒド用の可逆的架橋剤を用いたin vivo架橋によって達成されます。2番目のステップは、鎖状にタグ付けされたメンブレンベイトタンパク質を架橋された獲物タンパク質と一緒に精製することです。次に、沸騰させることで架橋を逆転させます。最後のステップは、デザル硫酸ナトリウム、ポリアクリルアミドゲル電気泳動、またはSDSページによるメンブレンベイトタンパク質と共精製された獲物タンパク質の分離です。最終的には、イムノブロッティングおよび質量分析分析を使用して獲物タンパク質を同定し、膜タンパク質相互作用の解析を可能にします。私はサビーナ・フンカで、今日はメンブレンスパイン技術をお見せします。この技術がco IPのような既存の方法と比較した場合の主な利点は、低親和性または一過性のタンパク質タンパク質相互作用さえも検出できることです。クライン・シャーナが手順を実演します。彼女は、この手順を開始するためのプロトコルを開発した私の博士課程の学生の一人です、C末端連鎖球菌タグ融合で膜ベイトタンパク質を発現する細菌細胞を成長させると、0.5ミリモルのIPTGを培地の500ミリリットルに添加することにより、初期の対数段階で膜ベイトタンパク質の発現を誘導し、十分な発現を可能にします。バクテリアを後期対数期までインキュベートします。ホルムアルデヒドの毒性のため、安全ヒュームフードの下でホルムアルデヒド架橋を行う準備をしてください。培養容器を安全ヒュームフードの下に移します。各サンプルを2つのサンプルに分割し、1つは架橋を省略し、もう1つはホルムアルデヒド架橋を含むサンプルにします。250ミリリットルの培養物に37%ホルムアルデヒド溶液を4ミリリットル加えて、最終濃度0.6%に到達します培養容器を戻して、以前と同様にさらに20分間細胞を増殖させます。次に、安全ドラフトの下で培養物を遠心分離チューブに充填します。Gの3000倍で30分間遠心分離することにより、細胞を回収します。最初にデカンテーションし、次に吸引して上清を取り除きます。安全ドラフトの下のピペットを使用して、上清を含む有毒なホルムアルデヒドを適切に処理する上清を廃棄します。膜タンパク質調製中に最適な収率を達成するために、まず、Spheroプラットを調製し始め、1.5ミリリットルのチューブ内の0.1モルE-D-T-A-P-H 8に2ミリグラムのリゾチームを穏やかに溶解します。緩衝液P 2を調製するには、実験の日に新鮮にする必要があります。Resusは、プロテアーゼ阻害剤を含む新たに調製したトリススクロース緩衝液10ミリリットルに細胞ペレットを懸濁し、溶液を15ミリリットルのコニカルチューブに移します。1ミリリットルの緩衝液P 2を加え、氷上で30分間インキュベートします。SpheroプラットをGの3000倍で30分間遠心分離して回収し、上清を捨てます。Spheroプラストペレットをマイナス20°Cで一晩、氷上で慎重にインキュベートします。Resusは、Sphero Plastの口蓋を6ミリリットルの新しく調製した緩衝液に浮遊させます。Pスリー。サンプルを氷上で1分間連続して4回超音波処理し、各バーストの間に1分間の一時停止を空けます。Sphero plastを中断するためには、遠心分離に続く細胞の破片を収穫するために10分間10、000倍Gでサンプルを遠心分離します。ピペットを使用して上清を超遠心チューブに移します。膜画分をGの100,000倍で30分間ペレット化します。ペレットを溶解せずに、pH 8の20ミリモルトリス緩衝液で慎重に洗浄します。次に、ペレットを邪魔しないように、ペーパーティッシュでチューブを駆動します。膜を含むペレットを再懸濁するためには、トリスの1ミリリットルを追加し、マイクロ磁気ロッドを緩衝し、そしてペレットを再懸濁し、部分的には氷上でピペット攪拌で1時間、タンパク質濃度を決定するために20マイクロリットルのアリコートを使用する。トリスバッファーピペットで膜画分の2.5ミリリットルを超遠心チューブにタンパク質濃度を5ミリグラム/ミリリットルに正規化し、0.25ミリリットルの20%Triton X 100を加えて最終濃度2%に到達し、膜タンパク質を可溶化します。次に、マイクロマグネティックロッドを追加し、氷の上で1時間攪拌します。1ミリリットルのストレプトアクチンスーパーフロー重力フローカラムを8ミリリットルのバッファーで平衡化します。W.可溶化サンプルからマイクロマグネティックロッドを取り出し、Gの100,000倍で30分間超遠心分離し、不溶性膜画分をペレット化します 実行が完了した後、ピペットを使用してセートを除去します。さらに精製するには、重力流を使用して上清をカラムに塗布します。4ミリリットルのバッファーWでカラムを洗浄します この洗浄ステップを5回繰り返します。1ミリリットルのバッファーE.この溶出を繰り返すことで、メンブレンベイトタンパク質を溶出します。4回ステップし、言及されたフラクションを濃縮します。2、3、および4〜300マイクロリットル、遠心フィルターユニット付き。各サンプルの200マイクロリットルを、DSページローディング色素として50マイクロリットルの5×と混合します。沸騰させる前に、各調製物を125マイクロリットルのアリコートに分割します。各調製物の1アリコートを摂氏95度で20分間、ホルムアルデヒド架橋を逆転させます。サンプルをベンチで少なくとも10分間室温まで冷まします。各サンプルから30マイクロリットルを、免疫ブロッティングに適したポリアクリルアミドゲルのシングルレーンにトップロードします。染色済みの分子量マーカーを使用する 最適な配向のために、タンパク質のニトロセルロース膜への転写後にDSページとして機能します。メンブレンをブロックして、非特異的な標識を1時間防ぎます。室温で、獲物タンパク質特異的一次抗体を希釈してインキュベートします。HRP結合抗体を二次抗体として使用し、化学発光検出キットを用いて高感度のイムノブロットを作製します。従来のフィルム処理手順またはデジタルイメージング機器を使用して信号を監視します。獲物、タンパク質、または未知の相互作用に対して特異的な抗体が利用できない場合は、パートナーを特定する必要があります。同定には質量分析またはMSを使用してください。MS適合染色キットを使用してSDSページを銀染色します。メーカーのプロトコルに従って、ガラスタンクですべての染色および洗浄手順を実行します。それぞれのバンドを切除してから、ベイトタンパク質として高分解能LCMSで分析します。VISIA大腸菌の内在性膜タンパク質CPXAを使用しました。CPXAはセンサーキナーゼであり、大きな余分な細胞質センサードメインとC末端の高度に保存された細胞質触媒ドメインを統合した2つの膜貫通ドメインを持つN末端センサードメインで構成されています。刺激後、CPXAは同族の応答調節因子を活性化し、CPXRで活性化されたCPXRは拡散して膜脊椎の応答を媒介します。連鎖球菌タグはCPXのC末端に融合しました。メンブレンスパイン解析により、CPXA連鎖球菌は、明らかにされたホルムアルデヒド処理サンプルの塗抹標本で示される他のタンパク質またはタンパク質複合体に架橋されていることが明らかになりました。ホルムアルデヒド処理がなければ、この塗抹標本は存在しません。さらに、CPXA連鎖球菌と、その同族応答調節タンパク質CPXRとの直接的なタンパク質タンパク質相互作用は、ホルムアルデヒドの存在下でのみ検出可能です。ホルムアルデヒド架橋と銀染色の特異性をサポートします。煮沸されたサンプルに特異的なバンドが明らかです。矢印は、MS によって解析されたバンドを示します。分析し、CPXRがCPXAのインタラクションパートナーとして確認されました。このビデオを見た後、彼は質量分析でプロアフィニティー精製と架橋アフィニティー精製を組み合わせて、膜タンパク質の相互作用パートナーを特定する方法についてよく理解しているはずです。

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Research

JoVE Journal

Bioengineering

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