Name: 抗精神病薬の作用のメカニズムを研究するための方法線虫（Caenorhabditis elegans） (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-04T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 35 s
Description: 学ぶ抗精神病薬の作用機序をCaenorhabditis elegansで研究する方法。同期化した線虫を薬物処理し、発育遅延と咽頭ポンピング抑制を評価することで、薬理学的メカニズムの理解に貢献します。

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作品は、NIH臨床科学開発賞K08NS002083、Shervertフレイジャー研究所グラント、そしてエドガー·A.ビュトナーにNARSAD若手研究者賞によってサポートされていました。

1。発達遅延/致死アッセイ：野生型（N2）と2つの突然変異（MUT1とMUT2）株を12ウェルプレートに三クロザピン濃度で試験されています<ol><li> 1日目に、（直径2cmの各ウェル）を12ウェルプレートの各ウェルに2ミリリットルNGM培地10を入れ、一晩、室温（RT）にてベンチ上で硬化することを可能にする。同じ日、一晩220 rpmで回転で50ミリリットルのLB液のボトルに感染、 大腸菌 OP50細菌のコロニーを採取し、37℃のシェーカーで培養し、それを。 </li><li> 2日目に、各ウェルNGMの中心に20μLOP50細菌培養を転送します。 37℃のインキュベーターで培養するか、細菌ローンを厚く成長させるために室温で一晩置いておく。 </li><li> DMSO（ジメチルスルホキシド）溶媒中にクロザピンを溶解させて80 mMのクロザピン原液を作る。その後、1.7 mMの酢酸Bで希釈した原液を80μLワーキング溶液を作る表1にバイアスさ。 注 ：興味のある特定の薬剤のための実用的なソリューションは、変異体からの野生型を区別するために最も適切な濃度を見つけるために予備的な濃度の一連のテストを行うことによって決定されなければならない。 </li><li>よくシードされたNGMプレート上に溶液をワーキング転送80μlのクロザピン、溶液が表面に均等に分配することができるように、プレートを旋回。プレートが乾燥するのを待ちます。同じ日にアッセイプレートを使用するか、次の日に使用されるように20℃のインキュベーターに入れてください。 注意 ：ワーキングソリューションは、特に高濃度で、原因クロザピンの溶解度が低いため、薬物懸濁液である。従って、薬物濃度が正確であることを保証するために、薬物プレートに溶液を移す前に、チューブをボルテックス。 </li><li> M9緩衝液を用いて、多くの妊娠成人を含む3.5センチメートルプレートをワームを洗い流した後、15ミリリットルチューブでそれらをスピンダウン1分間2,000 rpmで。 </li><li>上清を吸引除去する。 5ミリリットル漂白液（：次亜塩素酸：NaOHを4時01分05秒でのddH 2 O）を加え、穏やかにチューブを反転させて線虫を混乱させる。 </li><li>そのうちの半分は、約5分で溶解するまで動物を観察します。 1分間2,000 rpmで卵をスピンダウン。 </li><li>上清を吸引し、急速に14ミリリットルのM9バッファーを追加します。 </li><li> 1分間2000 rpmで卵をスピンダウンし、上清を吸引し、約100μlのソリューションを残す。卵を中断する渦。 </li><li>転送され、どのように多くの卵をテストするために定期的なNGMプレートにM9に懸濁2μlの卵を移す。約30〜35卵は各転送であることを保証するために中断した卵の音量を調整します。アッセイプレートの各ウェルに30〜35卵を移し、次いで24時間20℃のインキュベーター中でインキュベートする。 </li><li>アッセイの初日に、孵化した卵の数をスコア。 pickiで25/wellする斜線の動物の合計数を調整します必要に応じて追加のワームをオフngの。 </li><li>次の日には、動物を観察し、それらを24時間毎に得点。発生段階は、動物の大きさおよび外陰部11の形状に基づいて採点される。実験は、通常、第三または第四日目に見た最も強力な効果が5-6日間続きます。 </li><li> Excelファイルに入力データを、実験の日々のために各発達段階での動物の割合を計算します。メニュー &#39;&#39;2次元欄の&#39;関数&#39;100％積み上げ縦棒でグラフを生成します。 </li></ol> 2。咽頭ポンピングアッセイ：野生型および変異株のためのヤングアダルト動物はクロ​​ザピンアッセイプレート上で採点される<ol><li>アッセイプレートを、発育遅延/致死性アッセイに使用したのと同じプロトコルに従って行われる。 </li><li>アッセイの前にシードされたNGMプレートに各菌株を24時間50 L4動物を選択し、20℃でワームをインキュベート</li><li> ASSAに10匹の動物を選ぶYは、ウェルプレート。そして、次のウェルごとに15〜20分に10匹の動物を選ぶ。 </li><li>最初のウェル中の動物は、30分間、薬物に曝露された後、解剖顕微鏡下咽頭ポンピングを観察することによってアッセイを開始し、20秒9のポンプのスコア。咽頭ポンピングが採点されると、プレートからワームを選ぶ。 </li></ol>

<ol><li>Donohoe, D. R., Jarvis, R. A., Weeks, K., Aamodt, E. J., Dwyer, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+adaptation+in+C.+elegans+produced+by+antipsychotic+drugs+requires+serotonin+and+is+associated+with+calcium+signaling+and+calcineurin+inhibition%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Behavioral adaptation in C. elegans produced by antipsychotic drugs requires serotonin and is associated with calcium signaling and calcineurin inhibition.</a> Neurosci. Res. 64, 280-289 (2009).</li>
<li>Karmacharya, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clozapine+interaction+with+phosphatidyl+inositol+3-kinase+%28PI3K%29%2Finsulin-signaling+pathway+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Neuropsychopharmacology%22%5BJournal%5D)">Clozapine interaction with phosphatidyl inositol 3-kinase (PI3K)/insulin-signaling pathway in Caenorhabditis elegans.</a> Neuropsychopharmacology. 34, 1968-1978 (2009).</li>
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</ol>

著者は、関係する利害の衝突がないことを宣言します。

ここでは、C.の開発および動作上のAPDの効果を試験するための方法を記載虫 。薬物は水に比較的不溶性であるため、DMSO又はエタノール、クロザピンを溶解するために使用される。溶媒は、C.に影響を与えることが報告されているので、 エレガンス生物 12は 、DMSO単独またはエタノール単独の対照群は、必須である。私たちのアッセイで使用のDMSOの最高濃度は、C上の明らかな効果を持っていない最大3％であり、開発エレガンス 。 DMSOは、さらに多くの小分子、またはいくつかの大きな分子、 例えば、脂質のアミノ酸のために使用することができる。 これらのアッセイにおいて使用されるAPD濃度は、ヒトに与えられたものより高い。これはC言語のほとんどの小分子の研究に共通している虫 、高濃度での浸透のために必要とされるため、キューティクルエレガンス 。 HPLCの研究...

線虫（Caenorhabditis elegans）は、大規模、順方向および逆方向遺伝子スクリーニング、化学遺伝学的スクリーニングを受けやすいシンプルな遺伝的生物である。C.エレガンスは、生物活性化合物の広いスペクトルに敏感であり、したがってそのような化合物の種々の作用メカニズムを定義するために首尾よく使用されている。例えば、生物活性化合物は、アセチルコリン受容体アゴニスト（ 例えばレバミゾール、ニコチン、モランテル、およびピランテル）、麻酔薬（ 例えばハロタン）、カフェイン、コリンエステラーゼ阻害剤（ 例えばアルジカルブ、lannate、およびトリクロルホン）、フッ化物、GABA関連を含むワームの薬理遺伝学を用いて研究化合物（ 例えば 、GABAおよびムシモール）、イベルメクチン、パラコート、ホルボールエステル、およびセロトニン関連薬（ 例えばセロトニンおよびimiprimine）3。さらに、C.エレガンスは、新規生物活性化合物の発見を可能にする、大規模な小分子のスクリーニングに使用されているSおよび新規の遺伝子標的4の識別。 C.エレガンスゲノムは、神経伝達物質合成およびシナプスの構造および機能5に必要なタンパク質をコードする遺伝子を含む潜在的な抗精神病薬（APD）は、ヒトにおいて保存ターゲットを含む。このように、C.虫の神経遺伝とのAPDの新しい作用の分子メカニズムを発見するための神経生物学の提供方法。線虫では、APDの露出は開発の初期段階で発育遅延、および高濃度で、致死2,6を生成します。成人期のAPDの暴露は、行動の表現型を生成します。例えば、クロザピン露出が移動し、咽頭ポンプを阻害し、1,2,7産卵を強化します。 APD誘発性発達遅延と致死は、大規模な化学遺伝学的スクリーニングのための強力な表現型である。これらの表現は、これまでのところ、彼らはおそらく、複数の細胞および遺伝バシを持っているように複雑でS。したがって、このような遺伝子スクリーニングは、間接薬物標的の様々もたらすことが期待される。しかし、私たちの研究室では、候補遺伝子の画面およびAPD誘発性発達遅延と致死性の抑制のためのゲノムワイドなRNAiスクリーニングを実施しており、成功しそうドーパミン、インスリン、およびニコチン性アセチルコリン受容体2,8を含む直接の標的をコードする遺伝子を回復しました。成人におけるAPD誘発の行動に基づいた遺伝子スクリーニングはまた、新規のAPD標的の同定につながっている、と我々は今、哺乳類7の発達と行動の両方の画面からターゲットを検証する。このように、APDの作用の新たな分子メカニズムを発見する無脊椎動物の化学遺伝学的ア ​​プローチは、5,8実現可能であるように思われる。 C.エレガンスの咽頭20ニューロン、20筋細胞および基底膜により包まれた20アクセサリー細胞を含む器官である。哺乳類の心臓と同様に、咽頭、自律AですND絶えず外部環境から9に食べ物を圧送する。レート妥協食品摂取をポンピング咽頭の阻害、したがって、咽頭ポンプを阻害変異または薬は発達遅延が発生したり、9を逮捕。 APDは、開発および生存率1,2に対する効果についての部分で占め、咽頭ポンピング速度を阻害する。ここでは、線虫の開発および咽頭ポンピングするための薬物アッセイを実証する例として、非定型のAPDクロザピンを使用しています。

<table><tbody><tr><td>クロザピン</td><td>シグマ</td><td>C6305</td><td></td></tr><tr><td>ジメチルスルホキシド(DMSO)</td><td>シグマ</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>酢酸(HAC)</td><td>フィ</td><td>ッシャーBP2401</td><td></td></tr>水<tr><td>酸化ナトリウム(NaOH)</td><td>EMD</td><td>SX0590-13</td><td></td></tr>次<tr><td>亜塩素酸塩</td><td>シグマアルドリッチ</td><td>425044</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機5810</td>エ<td>ッペンドルフ</td><td>5810 000.017</td><td></td></tr><tr><td>インキュベーターシェーカー</td><td>ニューブランズウィックサイエンティフィック</td><td>M1246-0006</td><td></td></tr><tr><td>低温インキュベーター 815</td><td>プレシジョンサイエンティフィック</td><td>J1790-1B</td><td></td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>オリンパス</td><td>SZX12</td><td></td></tr><tr><td>シャーレ 35 x 10 mm</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>NC9434271</td><td></td></tr><tr><td>12ウェル 組織培養プレート</td><td>BD ファルコン</td><td>REF 353043</td><td></td></tr></tbody></table>

抗精神病薬の作用のメカニズムを研究するための方法<em&gt;線虫（caenorhabditis elegans）</em

Methods for Studying the Mechanisms of Action of Antipsychotic Drugs in Caenorhabditis elegans

線虫（Caenorhabditis elegans）は、前方、大規模に従順と遺伝子スクリーニング、化学遺伝学的スクリーニングを逆に単純な遺伝的生物である。 C.エレガンスゲノムは、神経伝達物質合成およびシナプスの構造および機能に必要なタンパク質をコードする遺伝子を含む潜在的な抗精神病薬（APD）は、ヒトにおいて保存ターゲットを含む。 APD露光は、濃度依存的に、線虫において発達遅延および/または致死性を生じる。これらの表現型は、咽頭のポンピング1,2のAPD誘導阻害によって部分的に引き起こされる。このため、発生表現型は神経遮断薬の薬理遺伝学的研究のためには有用なものに、神経筋基盤を持っています。ここでは、線虫の開発および咽頭ポンプ上のAPDの影響をテストするための詳細な手順を示しています。発達のアッセイのために、同期化された胚は、線虫の成長培地のAPDを含有する（NGM）プレート、および肛門の開発段階に配置されているMALSは、その後毎日採点されます。咽頭ポンピング速度アッセイのために、若い成人の動物はAPDのを含むNGMプレート上でテストされて上演した。単位時間当たりの咽頭ポンプの数が記録され、ポンピング速度を算出する。これらのアッセイは、小分子または大分子であっても他の多くのタイプを研究するために使用することができる。

1。発達遅延/致死アッセイ結果発達遅延/致死性アッセイのための典型的な結果を図1aおよび1bに示されている。対照群の野生型動物が妊娠成体段階（ 図1a）まで成長したら、クロザピンに露出野生型動物は死んだ（ 図1b）。図1c、比較の代表的な結果を示している若い幼虫期に残っているか、あるサプレッサー変異体（MUT1）と3種類のクロザピン濃度で野生型とエンハンサー変異体（MUT2）。すべての3つのクロザピン濃度において、MUT1の致死性は、野生型よりも低く、MUT2の致死性が高くなる。生き残ったMUT2動物は野生型と比較して発達遅延を表示しながら、生き残ったMUT1の動物は、野生型よりもより高度な幼虫期に進行。&lt;/ pの&gt; 2。咽頭ポンピング速度アッセイの結果<p class="jove_...

線虫（Caenorhabditis elegans）における抗精神病薬（APDの）の影響をテストするためのアプローチが実証されています。アッセイを開発および生存に咽頭のポンピング速度に対する薬物の効果を試験するために記載されている。これらの方法は、APDの以外の薬剤クラスと薬理遺伝学的実験に適用可能である。

抗精神病薬の作用のメカニズムを研究するための方法<em&gt;線虫（Caenorhabditis elegans）</em

Caenorhabditis elegans is a simple genetic organism amenable to  large-scale forward and reverse genetic screens and chemical genetic screens. The C.  ...

この手順の全体的な目標は、ウミエルカの発育と咽頭ポンプに対する抗精神病薬の効果を調べることです。これは、最初に成虫の線虫の個体数を増加させ、それらから動物の同期した個体群を生成することによって達成されます。次のステップは、同期卵または成体を薬物混入アッセイプレートに移すことです。最後のステップは、線虫に対する薬の効果を観察し、採点することです。最終的に、この結果は、抗精神病薬が薬物に曝露された動物の発達を遅らせ、咽頭ポンプを阻害することを示すことができます。この方法は、抗精神病薬の作用機序についての洞察を提供することができるが、それはまた、他の小分子、さらには脂質のような大きな分子を研究するために適用することができる既知の作業濃度で関心のある薬物を準備している。まず、12ウェルプレートに2ミリリットルのNGM(ウェルあたり培地)をロードします。プレートを脇に置いて、室温で硬化させます。次に、OP 50細菌のコロニーを選び、それをLB培養液の50ミリリットルボトルに移します。バクテリアは摂氏37度で一晩中、翌日220RPMで振とうして、準備したプレートの各ウェルに入れます。細菌培養物の20マイクロリットルで、プレートを翌日摂氏37度で一晩インキュベートするように設定します。作業濃度で関心のある薬物の80マイクロリットルをそれぞれよく着座させてください。この場合、薬はCクロザピンです。アリコートを服用する前に、必ず溶液をボルテックスしてください。溶液を渦巻いてウェル内に均等に分布させ、プレートの蓋を外した状態で室温で吸収させます。その後、アッセイを続行するか、プレートを摂氏20度で一晩保存し、翌日からアッセイを開始します。関心のある遺伝子型から卵を採取することから始めます。多くのGR成虫がいるワームの集団から始めます。M nineバッファーを使用して、3.5センチメートルのプレートでワームを洗い流します。次に、15ミリリットルのチューブで2000RPMで1分間スピンダウンします。吸引によって上清を取り除き、5ミリリットルの漂白剤と交換します。次に、チューブを反転させて成虫をそっと乱し、動物が連続的に溶解し始めるのを待ちます。スコープの下で溶解するワームを観察します。ワームの約半分が溶解したとき。約5分後、チューブを回転させて卵を採取し、上清を吸引し、すぐにM nineバッファーと交換します。次に、前と同じようにチューブを再び回転させ、約100マイクロリットルのMナイン上清を除くすべてを取り除きます。卵を懸濁するには、チューブを渦巻きにします。次に、2マイクロリットルの懸濁液をNGMプレートに移し、移された卵の数を数えます。次に、薬物処理されたプレートにウェルあたり30〜35個の卵をロードし、プレートを摂氏20度で24時間インキュベートします。24時間後、孵化した卵の数をスコアリングします。25匹を超えるワームが存在する場合は、余分なワームをよく取り除きます。プレート上の線虫をインキュベーターに戻し、後で毎日24時間間隔で観察し、線虫のサイズと外陰部の形状に基づいて井戸内の線虫の発達段階をスコアリングします。通常、3日目と4日目に強い効果が見られます。実験は約1週間続く予定です。このプロトコルでは、前日に説明したように薬物テストプレートを準備し、アッセイを開始します。実験の各遺伝子型に対して50 Lの4段階動物を選びます。それらをNGMプレートに移し、プレートを摂氏20度で24時間インキュベートします。翌日、15分から20分ごとに、グループが薬物に30分間さらされた後、10匹の動物をテストウェルにロードします。解剖顕微鏡で咽頭ポンプの観察を開始します。まず、線虫を見つけ、次にその咽頭ポンプを20秒間数えます。得点したら、プレートからワームを選びます。同じ方法で井戸内のすべてのワームにスコアを付けます。実験遅延を実施した場合の期待される結果。野生型コントロールによる致死性アッセイは、典型的な成長速度とは異なり、cクロザピンに曝露された動物はまだ若い幼虫期にあるか、または死んでいることを示す必要があります 異なるクロザピン濃度の変異体をテストすると、ミュート1などの抑制変異体とMU2などのエンハンサー変異体が明らかになりました。普遍的に、ミュート1の致死率は野生型よりも低く、MU2の致死率は、対照群の生存者であるミュート1の動物はより発達しやすく、ミュート2の生存者はより遅れているのに対し、予想通り高かった。さらなる調査により、クロザピン曝露は濃度依存的に咽頭ポンプ速度を低下させることが明らかになりました。しかし、ミュート1の減少率は野生型よりも低く、ミュート2の減少率は野生型よりも大きかった。このビデオを見れば、抗精神病薬のアッセイを小規模で行う方法についてよく理解できるはずです。また、メッセージをスケールアップして、大規模な遺伝子スクリーニングを実施することもできます。

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抗精神病薬の作用のメカニズムを研究するための方法

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