Name: 仮想現実環境をナビゲートマウスにおける二光子カルシウムイメージング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-20T22:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 12 s
Description: 学ぶ マウスの仮想現実ナビゲーション中の二光子カルシウムイメージング法。空気浮上式トレッドミルとLEDプロジェクターを用いて運動アーティファクトと光漏れを低減し、行動中の神経活動を安定して記録する技術を習得できます。

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この作品は、生物医学研究のためのフリードリッヒミーシャー研究所、マックスプランク協会、およびヒューマン·フロンティア·サイエンス·プログラムによってサポートされていました。

全ての動物手順は、認可されカントンバーゼルシュタットの獣医学科のガイドラインに従って実施した。 1。ハードウェアおよびソフトウェアのセットアップ<ol><li>二光子顕微鏡のセットアップ： <ol><li>照明光源（パルス幅&lt;120フェムト秒）のようなパルス状の赤外線レーザーを使用してください。 </li><li> 8または12 kHzの共振スキャナおよび標準の検流計で構成されるスキャンヘッドを使用してください：これは750×400ピクセルで40または60Hzのフレームレートを可能にします。高フレームレートは、画像の歪みを誘発した脳の動きを最小限に抑えるために重要である。より高い信号の収率でさらに高速な共振スキャン結果および16および光毒性を退色低減します。 </li><li>複数の深さで取得時間インタリーブ画像を順次ピエゾ電気高速のzステッパを使用注：これは、任意のフレームレートを犠牲にしてデータの収率を増加させるために使用される。 </li><li> AMを使用組織へのレーザー露光を減らすためechanicalブランカ。共振スキャナの振幅に応じて、ブランカの幅を調整注：原因レゾナントスキャナのスキャン·パスの正弦波特性により、レーザービームは、スキャン方向転換点での比較的遅い移動します。レーザー露光が最大であるこれらのターンアラウンド点における組織の損傷を防止するために、機械的なブランカは、レーザビーム走査を停止し、チューブレンズの焦点面との間に導入される。 </li><li> FPGAハイパスフィルタと画素にPMT信号をビン：データ収集のためのメモフィールド·プログラマブル·ゲート·アレイ（FPGA）と組み合わせた高速デジタイザ（800 MHz）を使用する。バンドパスフィルタにおけるPMT増幅結果FPGA上で効果的なローパスフィルター上のハイパスフィルタの組み合わせは、概ねレーザ（80メガヘルツ）の繰り返し率を中心。サンプルFPGAコードは、サプリメントとして提供される。 </li></ol></li><li> Dombeckや同僚の設計に基づいて、空気がサポートしているトレッドミルのセットアップ2 <ol><li>少なくとも10mm、内径の空気供給管を用いて空気供給ラインにボールホルダーを接続する。ボールホルダ空気供給口の断面積を最大にし、主空気供給とボールホルダーとの間にチューブの十分な量を配置注増加断面および空気供給管の長さの増加は、ノイズの発生を低減する。 </li><li>カスタム設計と3D印刷のボールホルダーに発泡スチロールのボール（直径20cm）を配置します。 </li><li>行動パラダイムにおいて、前方向（および逆方向）移動が必要な場合は、ボールの側面にピン（ 例えば 19gの皮下注射針）を挿入して横（ピッチ）軸とボールの動きを制限注意：一般的に動物はに適応この減速回転パラダイムにおけるより迅速にセットアップ。 </li><li> 1つまたは2つのコンピューターの光学式マウスを用いて、ボールの軌道運動それぞれ、2または3つの軸を中心に動きを検出することに注意してください：コンピュータのマウスは、理想的に画像化した少なくとも干渉赤外線ダイオードで動作する必要があります。 </li></ol></li><li>仮想現実環境のセットアップ<ol><li>仮想現実環境を準備します（注）。Panda3D、自由に利用できるゲームエンジンに基づいてサンプル環境を、サプリメントとして提供されています。仮想環境のオブジェクトはWings3D、オープンソースの3Dモデラーを使用して生成されます。サンプルプログラムは、データ取得カードの位置情報を読み取り、仮想環境での移動にこれを変換する。コー​​ドは、トロイダルスクリーンに投影される環境に必要な非線形変換を実行します。トロイダル型スクリーンの詳細な構造は他14,17について説明した。 </li><li>仮想環境を表示するためのLEDプロジェクターやLEDバックライトコンピュータの画面を使用してください。ゲーティングCIRを統合撮影時のLEDの迅速なちらつきのためCUIT 注：視覚刺激中2光子イメージングに内在する問題は、客観的に遮蔽することによって低減することができ、視覚的刺激システム、から発生する光漏れです。しかし、視覚刺激システムからの光漏れを完全に撮像中に視覚的な刺激のために使用されるLEDアリーナで行われているように、（データが取得されていない）、共振スキャナのターンアラウンドポイントにプロジェクターの光出力を同期させることにより廃止することができますショウジョウバエ 18。これは、視覚刺激およびデータ収集の有効高速交番（ 図2参照）をもたらす。フリッカ周波数（24 kHzの）は、ちらつきがもはや動物によって知覚されていない上に、フリッカー値以上の桁である。商用LEDプロジェクタに本変形例の電子回路図を図3に示す。 </li></ol></li><li>子犬ILの追跡<ol><li>瞳位置追跡のためのCM​​OSベースのビデオカメラ（30 FPS）を使用します。カメラは赤外線カットフィルタが含まれていないことを確認してください。瞳孔は目を通って出る二光子励起レーザーからの迷光による録音時に高コントラストで表示されます。瞳位置および直径は、Sakataniとアイサ19の設計に基づいて、カスタムプログラムソフトウェアを用いてリアルタイムに抽出する。 </li></ol></li></ol> 2。遺伝的カルシウムインジケータとウィンドウインプラントの注入以前に以下の追加で説明したようにカルシウム指示薬20と頭蓋窓21の注入の注入が実行されます。 <ol><li>ウイルス溶液を充填し、圧力注入システムに接続されたガラス注入ピペットを用いて関心領域内にウイルスを注射する。ピペットに応じて圧力を調整インナー直径、通常は約70〜140ミリバール、1〜2分間かけてウイルス溶液約100 NLを注入する。低周波数で供給低容量噴射パルス（2 Hzで0.05秒パルス）が注射中にピペット沿っウイルスのオーバーフローを防止するために使用されるべき注：注入量を監視するために、ピペットは、小さなにマークすることができる均等立体顕微鏡下での長さ（ 例えば 、0.5ミリメートル）離間されている。マーキング間のメニスカスの変位は次いで、注入量を推定するために使用することができる。 </li><li>数週間注射後は、これは約500μmの直径が密集標識された細胞の塊を生じるはずである。関心領域におけるGECI式の有効性GECIの選択とプロモーターの組み合わせだけでなく、使用される組換えAAVの感染力価および血清型に依存します（注）。とAAV2/1-EF1α-GCaMP5の代表例として、射出ウイルスTIT満足な表情でのマウスの結果の一次視覚野に8×10 12 GC / mlとERは約2週間は、注射（ 図1）を投稿してください。 </li><li>ヘッドバーは、マウスの視野を妨げないはずですが、行動の間に安定したイメージングを可能にするのに十分に剛性でなければなりません。これは、典型的には、（ 図1を参照）ヘッドバーの両側に2つの結合点を必要とする。しっかりと頭蓋骨にヘッドバーを取り付けるには、ヘッドバーが付いてしまいますさらさ頭蓋骨の面積を最大化し、乾燥させることを確認してください。さらに、メスまたはシリンジを使用し、それによって接着する表面積を増加浅溝を作成するために頭蓋骨を傷つける。歯科用セメントでヘッドバーを取り付ける前に、シアノアクリレート組織接着剤で骨をカバーしています。 </li></ol> 3。実験手順<ol><li>ウイルス注射後2〜3週間、エピの下で明確さと表現のための頭蓋窓インプラントをチェック蛍光照明。表在血管の明瞭かつはっきりと定義された境界は、窓インプラント（ 図1参照） を撮像するのに適していることをよく示している。 </li><li>測定したサンプルで50 mWの低い値にレーザーパワーを調整します。 </li><li>球形トレッドミルへの気流をオンにします。 </li><li>顕微鏡下で、ヘッド固定のために、簡単にストレスを減少させるためにイソフルランで動物を麻酔する。イソフルラン麻酔容器に動物を配置し、動物が（約10秒）を移動させる停止するまで待ちます。動物を取り外し、すぐに頭を顕微鏡下でそれを修正する。 </li><li>まだ動物へのアクセスを可能にするために、動物にできるだけ近いビジュアル·ディスプレイ·システムを配置します。少ない視認動物実験で、少ない動物は、実験の最初の段階の間になります強調している。 </li><li>頭蓋窓のインプラントは埃や汚れのないことを確認します。水できれいに必要に応じて。 </li><li>頭蓋窓と水浸対物レンズの間に液浸媒体として明確な超音波ゲルを適用します。これは、水の蒸発や漏れが遅い画像劣化の問題を解決し、水を保持するためにヘッドバーにコーンをマウントする必要性を軽減する注：遠心の使用前のゲルは、すべての気泡を除去し、空気を作成しないように注意するゲルの適用中に気泡。気泡が厳しく、画質を劣化させる可能性がある。 </li><li>遮光のための客観的かつヘッドバーの周囲に黒いテープの一部を包む。 </li><li>その最終的な位置に仮想環境アリーナを移動し、瞳孔追跡のためのビデオカメラを調整します。 </li><li>実験中に使用される走査振幅に合わせてレーザーブランカを設定します。 </li><li>データの記録を開始。 </li></ol>

<ol><li>Helmchen, F., Fee, M. S., Tank, D. W., Denk, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Miniature+Head-Mounted+Two-Photon+MicroscopeHigh-Resolution+Brain+Imaging+in+Freely+Moving+Animals%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">A Miniature Head-Mounted Two-Photon MicroscopeHigh-Resolution Brain Imaging in Freely Moving Animals.</a> Neuron. 31 (6), 903-912 (2001).</li>
<li>Dombeck, D. A., Khabbaz, A. N., Collman, F., Adelman, T. L., Tank, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+large-scale+neural+activity+with+cellular+resolution+in+awake%2C+mobile+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Imaging large-scale neural activity with cellular resolution in awake, mobile mice.</a> Neuron. 56, 43-57 (2007).</li>
<li>Dombeck, D. A., Harvey, C. D., Tian, L., Looger, L. L., Tank, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+imaging+of+hippocampal+place+cells+at+cellular+resolution+during+virtual+navigation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Functional imaging of hippocampal place cells at cellular resolution during virtual navigation.</a> Nat. Neurosci. 13 (11), 1433-1440 (2010).</li>
<li>Harvey, C. D., Coen, P., Tank, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Choice-specific+sequences+in+parietal+cortex+during+a+virtual-navigation+decision+task%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Choice-specific sequences in parietal cortex during a virtual-navigation decision task.</a> Nature. 484 (7395), 62-68 (2012).</li>
<li>Huber, D., Gutnisky, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiple+dynamic+representations+in+the+motor+cortex+during+sensorimotor+learning%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Multiple dynamic representations in the motor cortex during sensorimotor learning.</a> Nature. 484 (7395), 473-478 (2012).</li>
<li>Keller, G. B., Bonhoeffer, T., Hübener, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensorimotor+mismatch+signals+in+primary+visual+cortex+of+the+behaving+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Sensorimotor mismatch signals in primary visual cortex of the behaving mouse.</a> Neuron. 74 (5), 809-815 (2012).</li>
<li>Akerboom, J., Chen, T. -W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+a+GCaMP+Calcium+Indicator+for+Neural+Activity+Imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Optimization of a GCaMP Calcium Indicator for Neural Activity Imaging.</a> J. Neurosci. 32 (40), 13819-13840 (2012).</li>
<li>Zhao, Y., Araki, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+expanded+palette+of+genetically+encoded+Ca2%2B+indicators%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">An expanded palette of genetically encoded Ca2+ indicators.</a> Science. 333 (6051), 1888-1891 (2011).</li>
<li>Mittmann, W., Wallace, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+calcium+imaging+of+evoked+activity+from+L5+somatosensory+neurons+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Two-photon calcium imaging of evoked activity from L5 somatosensory neurons in vivo.</a> Nat. Neurosci. 14 (8), 1089-1893 (2011).</li>
<li>Katona, G., Szalay, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fast+two-photon+in+vivo+imaging+with+three-dimensional+random-access+scanning+in+large+tissue+volumes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Fast two-photon in vivo imaging with three-dimensional random-access scanning in large tissue volumes.</a> Nat. Methods. 9 (2), 201-208 (2012).</li>
<li>Mank, M., Santos, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genetically+encoded+calcium+indicator+for+chronic+in+vivo+two-photon+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">A genetically encoded calcium indicator for chronic in vivo two-photon imaging.</a> Nat. Methods. 5 (9), 805-811 (2008).</li>
<li>Margolis, D. J., Lütcke, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reorganization+of+cortical+population+activity+imaged+throughout+long-term+sensory+deprivation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Reorganization of cortical population activity imaged throughout long-term sensory deprivation.</a> Nat. Neurosci. 15 (11), 1539-1546 (2012).</li>
<li>Zariwala, H. A., Borghuis, B. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Cre-dependent+GCaMP3+reporter+mouse+for+neuronal+imaging+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">A Cre-dependent GCaMP3 reporter mouse for neuronal imaging in vivo.</a> J. Neurosci. 32 (9), 3131-3141 (2012).</li>
<li>Harvey, C. D., Collman, F., Dombeck, D. A., Tank, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+dynamics+of+hippocampal+place+cells+during+virtual+navigation%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Intracellular dynamics of hippocampal place cells during virtual navigation.</a> Nature. 461 (7266), 941-946 (2009).</li>
<li>Hölscher, C., Schnee, A., Dahmen, H., Setia, L., Mallot, H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rats+are+able+to+navigate+in+virtual+environments%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Biol%22%5BJournal%5D)">Rats are able to navigate in virtual environments.</a> J. Exp. Biol. 208, 561-5519 (2005).</li>
<li>Borlinghaus, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MRT+letter%3A+high+speed+scanning+has+the+potential+to+increase+fluorescence+yield+and+to+reduce+photobleaching%29%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Res.+Tech%22%5BJournal%5D)">MRT letter: high speed scanning has the potential to increase fluorescence yield and to reduce photobleaching).</a> Microsc. Res. Tech. 69 (9), 689-692 (2006).</li>
<li>Reiff, D. F., Plett, J., Mank, M., Griesbeck, O., Borst, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Virtual+Reality+for+Mice%2C+mousevr.blogspot.com%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Virtual Reality for Mice, mousevr.blogspot.com.</a> Nat. Neurosci. 13, 973-978 (2010).</li>
<li>Sakatani, T., Isa, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+spontaneous+saccade-like+rapid+eye+movements+in+C57BL%2F6+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of spontaneous saccade-like rapid eye movements in C57BL/6 mice.</a> Neurosci. Res. 58, 324-331 (2007).</li>
<li>Golshani, P., Portera-Cailliau, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+2-photon+calcium+imaging+in+layer+2%2F3+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In vivo 2-photon calcium imaging in layer 2/3 of mice.</a> J. Vis. Exp. (13), (2008).</li>
<li>Holtmaat, A., Bonhoeffer, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term%2C+high-resolution+imaging+in+the+mouse+neocortex+through+a+chronic+cranial+window%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Long-term, high-resolution imaging in the mouse neocortex through a chronic cranial window.</a> Nat. Protoc. 4 (8), 1128-1144 (2009).</li>
<li>Schmidt-Hieber, C., Häusser, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+mechanisms+of+spatial+navigation+in+the+medial+entorhinal+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Cellular mechanisms of spatial navigation in the medial entorhinal cortex.</a> Nat. Neurosci. 16 (3), 325-331 (2013).</li>
</ol>

著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

行動2光子イメージングの成功の鍵は、二つの方法で製剤の安定性です。 <ol><li>ウィンドウ移植後日間にわたって、組織の炎症反応は、妨げたり、画像化を防ぐことができます肉芽組織や軟骨の形成の向上につながることができます。 </li><li>実験中に脳が神経活動に関連する蛍光シグナルを破損からモーションアーチファクトを防ぐのに十分安定していなければならない。 </li></ol>最小限に炎症性免疫応答を維持するために頭蓋窓注入手術は、脳への可能性と直接的な被害はすべてのコストで避けなければならないほど迅速に行われるべきである。最も重要頭蓋窓のインプラントが炎症を防ぐために、実験の全期間のための気密のままであることを保証することである。 脳の動きを最小限にするために関連するイメージング·アーティファクトが損傷しないように注意して取るか手術中に硬膜を除去します。残りの運動によって引き起こされた脳の運動は、動きが撮像面に平行な面（x / y平面）に限定されているときに補正することができる。 X / Yの動きの最大許容標準偏差はおよそ...

（遺伝子GCaMP5 7またはR-GECO 8、又はOGB又はFLUO4など合成染料のような符号化された）カルシウム指示薬の2光子イメージングは、マウス1-6挙動におけるニューロン活性を測定する強力な方法として登場した。それは、脳表面9,10の下約800ミクロンまでのほぼ単一の活動電位解像度での細胞の何百もの活性の同時測定を可能にします。さらに、遺伝的にコードされたカルシウム指示薬（GECIs）を用いたニューロンの活動は、慢性的に5,11,12を測定することができ、遺伝学的に定義された細胞型における13。一緒に、これらの方法は、生体内での神経計算の研究に新たな可能性の多くを開く時間的および空間分解能の程度を提供する。 外科的介入は、イメージングのためのマウス脳を露出させ、標識する必要がある。細胞は、通常、組換えアデノ随伴VIRを使用してトランスフェクトする<html> GECI送達および頭蓋窓のためのボランティア（AAV）系は、脳への光学的アクセスを得るために注射部位上に移植される。ヘッドバーは、次いで、二光子顕微鏡下で、ヘッド固定用の頭蓋骨に取り付けられている。目を覚ましイメージングに関する問題のほとんどは準備中の不安定性に起因するとして、これらのステップの設計と実装は非常に重要です。理想的には、ここで説明する手順は、手術後数ヶ月までの慢性的なイメージングを可能にする必要があります。 2光子イメージングの際に視覚的に導かれた動作を有効にするには、ヘッド固定マウスが空気に座って、それが仮想現実環境をナビゲートするために使用できる球状のトレッドミルを、サポートしていました。トレッドミル上でのマウスの移動は、マウス14,15を囲むトロイダル画面上に表示される仮想環境内の動きに連結されている。このような運動、視覚刺激、及び瞳位置などの行動変数が06を記録することができる。 tは &quot;&gt;我々は仮想現実環境を探索したマウスの慢性2光子イメージングに関わる手順を説明し対処さのキーポイントは次のとおりです。運動アーチファクトの低減、光漏れの低減、同時に記録する細胞の数の最大化、および最小化光損傷。また、空気がサポートしているトレッドミル、瞳孔の追跡、および仮想現実環境の設定について詳しく説明します。ここで説明する手順は行動パラダイムの可能性のある多種多様なヘッドを固定したマウスにおいて、蛍光標識された細胞集団を画像化するために使用することができます。

<table><tbody><tr><td>カバースリップ(直径= 3-5 mm)</td><td>Menzel</td><td></td>ウィンドウ<td>インプラント</td></tr><tr><td>InSight DeepSeeレーザー</td><td>スペクトル物理学</td><td></td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>12 kHz共鳴スキャナー</td>ケン<td>ブリッジテクノロジーG1-003-30026</td><td></td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>ガルボメーター</td>ケン<td>ブリッジテクノロジーG6215H</td><td></td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>デジタイザー</td><td>国立インスツルメンツ</td><td>NI 5772</td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>FPGA</td><td>National Instruments</td><td>PXIe 7965R</td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>アクイジションカード</td><td>National Instruments</td><td>PCIe 6363</td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>エミッションフィルター 525/50</td><td>Semrock</td><td>FF03-525/50-25</td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>ピエゾ電 Z-drive</td><td>Physikinstrumente</td><td>P-726.1CD</td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>圧電用コントローラードライブ</td><td>Physikinstrumente</td><td>E665 LVPZT</td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>対物レンズ 16X, 0.8NA</td><td>ニコン</td><td>CFI75</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡 電流増幅器</td><td>フェムト</td><td>DHPCA-100</td><td>顕微鏡</td></tr><tr><td>光電子増倍管</td><td>浜松顕微鏡</td><td></td><td></td></tr><tr><td>USB カメラ IRフィルターなし</td><td>イメージングソース</td><td>DMK22BUC03</td><td>瞳孔追跡</td></tr><tr><td>対物レンズ 50 mm</td><td>イメージングソース</td><td>M5018-MP</td><td>瞳孔トラッキング</td></tr><tr><td>マクロ アダプター リング</td><td>イメージングソース</td><td>LAexSet</td><td>瞳孔トラッキング</td></tr><tr><td>光学コンピュータ マウス</td><td>ロジクール</td><td>G500</td><td>モーション トラッキング</td></tr><tr><td>発泡スチロール ボール 20 cm</td><td>例</td>: <td>idee-shop.de 08797.00.15</td><td>仮想環境</td></tr><tr><td>LED プロジェクター</td><td>サムスン</td><td>SP-F10M</td><td>バーチャル環境</td></tr><tr><td>取得カード</td><td>National Instruments</td><td>NI 6009</td><td>仮想環境</td></tr><tr><td>Panda3D ゲームエンジン</td><td></td><td><a href="http://www.panda3d.org/">www.panda3d.org</a></td><td>仮想環境</td></tr><tr><td>Python</td><td></td>用Numpyライブラリ<td><a href="http://www.scipy.org/">www.scipy.org</a></td><td>仮想環境</td></tr><tr><td>ScipyPython</td><td></td><td>用ライブラリ<a href="http://www.scipy.org/">www.scipy.org</a</td><td>>仮想環境</td></tr><tr><td>NI-DAQmxドライバ</td><td>National Instruments</td><td><a href="http://www.ni.com/">www.ni.com</a></td><td>virtual environment</td></tr><tr><td>超音波ゲル</td><td>Dahlhausen</td><td>5701.0342.10</td><td>イメージング</td></tr></tbody></table>

仮想現実環境をナビゲートマウスにおける二光子カルシウムイメージング

Two-photon Calcium Imaging in Mice Navigating a Virtual Reality Environment

それは行動1-6中に遺伝的に特定された細胞の活性の慢性的測定を可能にするように、近年では、2光子イメージングは、神経科学の非常に貴重なツールとなっています。ここでは、動物は仮想現実環境をナビゲートするときにマウスの皮質における二光子イメージングを実行するための方法を記載している。私たちは、明るく照らされた仮想環境内で動作して、動物におけるイメージングの鍵と実験手順の側面に焦点を当てる。我々はここでアドレスされ、この実験で発生する主要な問題：、脳の運動関連する成果物を最小限にするバーチャルリアリティ投影システムからの光漏れを最小限に抑え、レーザー誘導される組織の損傷を最小限に抑えることができます。また、仮想現実環境を制御し、瞳孔追跡を行うためにサンプルソフトウェアを提供しています。これらの手順とリソースを使えば、マウスを行動する際に使用するため、従来の2光子顕微鏡を変換することが可能でなければなりません。

GECIで標識された細胞集団の二光子カルシウムイメージングの画質が大きく頭蓋窓インプラントの品質に依存する。ウイルス注射の頭蓋窓を次の二週間は、明確にするために点検してください。何肉芽組織や骨の再成長見えた（ 図1A）があってはならない。また、表在血管のパターンが変更されないままべきであり、血管系の境界がはっきりと定義されるべきである。同時に、GECIの発現も確認することができます。標識された細胞の丸薬は、エピ蛍光顕微鏡（ 図1B）の下ではっきりと見えるはずです。 理想的には、製剤は、十分なマウスの運動によって誘導される二光子画像の歪みは、フレームの登録（ 図2）後の画像で見えないように安定である。レゾナントスキャナの走査経路は非線形画像歪が生じる正弦波である。 TU中にデータが原因でスキャン経路のこの部分の延伸イメージに取得されていない点をrnaround。視覚的な刺激システム、プロジェクターの現在のLEDの光源は、正しくターンアラウンドポイントにタイムアウトした場合には、光漏...

ここでは、仮想現実環境での動作中のマウス皮質の2光子イメージングに関わる実験手順について説明します。

In recent years, two-photon imaging has become an invaluable tool in neuroscience, as it allows for chronic measurement of the activity of genetically ...

次の実験の全体的な目標は、マウスで慢性的な2光子イメージングの主要な側面を実行し、仮想現実環境を探索することです。これは、行動するマウスで高速かつ安定したイメージングのために2光子顕微鏡を改造することによって達成されます。次に、移動追跡が可能なエアサポートトレッドミルが設置されます。次に、光漏れを最小限に抑えるために、顕微鏡に同期したLEDプロジェクターを使用した仮想現実環境を準備します。その結果、動きのアーチファクトの減少、光漏れの減少、フォトダメージエッジの最小化により、良好で安定した画像記録が得られます。この方法は、仮想現実環境でのナビゲーション中の神経活動を測定するために使用できますが、視覚刺激を必要とするさまざまな行動パラダイムにも簡単に適応できます。すべての動物の手順は、カントンバジル駅の獣医学部のガイドラインに従って承認され、実施されました。これらの実験で使用した2光子顕微鏡は、8キロヘルツまたは12キロヘルツの共振スキャナーと標準的な検流計で構成されるスキャンヘッドで構成されています。これにより、400ピクセル×750で40ヘルツまたは60ヘルツのフレームレートが可能になり、脳の動きによる画像の歪み、光退色、光毒性が軽減されます。圧電高速Zステッパーを使用して、複数の深さで時間インターリーブ画像を逐次取得します。メカニカルブランカーは、スキャンパスのターンアラウンドポイントで組織へのレーザー曝露を減らすために使用され、ブランカーの幅を設定するために調整可能でなければなりません。レゾナントスキャナーの振幅にもよりますが、トレッドミルのボールホルダーに内径10mm以上のエア供給チューブを接続し、メインエア供給とボールホルダーの間にBLE量のチューブを配置してノイズを低減します。直径20cmの発泡スチロールボールを、カスタムデザインされた3Dプリントされたボールホルダーに入れます。行動パラダイムが前方と後方の移動のみを必要とする場合は、ボールの側面に19ゲージの皮下注射針などのピンを挿入します。水平軸でのボールの動きを制限するには、1つまたは2つの光学コンピュータマウスを使用して、それぞれ2つまたはすべての3つの軸を中心にボールの動きを追跡します。バーチャルリアリティ環境を準備するには、ディスプレイにLEDプロジェクターまたはLEDバックライト付きコンピューター画面を使用します。イメージング中にLEDがすばやく点滅するためのゲート回路を統合します。24キロヘルツのちらつき周波数は、ちらつき融合の閾値を桁上回っており、それを超えると動物はちらつきを知覚できなくなります。正確なちらつき周波数とデューティサイクルを調整して、プロジェクターの光出力を瞳孔追跡用の共振スキャナーのターンアラウンドポイントに同期させ、CMOベースのビデオカメラを使用します。カメラに赤外線遮断フィルターが含まれていないことを確認してください。遺伝的カルシウムインジケーターを注射し、頭蓋窓を埋め込んでから約2〜3週間後、落射蛍光照明を使用して、頭蓋窓インプラントの明瞭さと発現を確認します。.はっきりと見え、はっきりと定義されています。表在血管の境界は、ウィンドウインプラントが1〜2日後のイメージングに適していることを示す良い指標です。2光子実験を行うには、サンプルでレーザー出力を測定し、50ミリワット未満の値に調整します。次に、球形トレッドミルへのエアフローをオンにします。次に、動物を球形のトレッドミルに固定します。最初の数回はマウスが頭を固定しています。このプロセスは、動物をイソフッ素で短時間鎮静させることで緩和できます。動物が手順に慣れると、通常、鎮静剤なしで取り付けを行うことができます。この手順では、動物へのストレスを最小限に抑えることが重要です。次に、ビジュアルディスプレイシステムを動物にできるだけ近づけて配置し、動物にアクセスできるようにします。頭蓋窓インプラントに汚れがないことを確認し、必要に応じて水で洗浄し、頭蓋窓と水浸対物レンズの間に透明な超音波ジェルを浸漬媒体として塗布して光を遮蔽します。対物レンズとヘッドバーに黒いテープを巻き付けます。仮想環境アリーナを最終位置に移動し、瞳孔追跡用にビデオカメラを調整します。最後に、レーザーブランカーを実験中に使用したスキャン振幅と一致するように設定し、実験が完了したらデータの記録を開始します。あなたの機関のガイドラインに従って動物を安楽死させてください。遺伝的カルシウムインジケーターで標識された細胞集団の2光子カルシウムイメージングの画質は、ウイルス注射後の頭蓋窓の明瞭さを確認するときにここで示されるように、頭蓋窓インプラントの品質に大きく依存します。肉芽組織や骨の再成長は見えません。さらに、表在血管のパターンは変化せず、血管系の境界は明確に定義されるべきです。同時に、標識された細胞のBOIは、エピ蛍光顕微鏡ではっきりと見える必要があります。理想的には、マウスの移動によって誘発される2つの光子画像の歪みがフレームレジストレーション後の画像に見えないように、準備が十分に安定しています。視覚刺激システムからの光漏れは、プロジェクターの光出力を共振スキャナーのターンアラウンドポイントに正しくタイミングを合わせることで完全になくすことができます。データを取得しない場合、光源のちらつき周波数はスキャン周波数の2倍にする必要があります。この例では、視覚刺激中にオレンジ色のボックスに示されている光漏れの影響を示すために、ブランカーが取り外されています。このビデオを見た後、イメージング、マウスの行動、バーチャルリアリティ環境のナビゲートの2つの機能を実行する方法を十分に理解しているはずです。ここで説明したように、イメージングシステムとバーチャルリアリティシステムのセットアップに加えて、これらの実験で成功するための鍵は、頭蓋窓インプラント技術を習得することです。クリーンなインプラントは、高品質の画像と安定した録音の前提条件です。

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JoVE Journal

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行動

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仮想現実環境をナビゲートマウスにおける二光子カルシウムイメージング

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