Name: 圧力筋運動記録法を用いた抵抗腸間膜動脈における筋原性応答および血管作用を評価します (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-07-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 48 s
Description: 学ぶ 圧力筋運動記録法による小抵抗腸間膜動脈の血管収縮応答評価法。ラットから血管を分離し、カニューレーションと加圧を行い、薬理学的刺激に対する可逆的応答を測定することで、血管緊張の生理学的機構を解明します。

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ここに示した例は、ジョージアリージェンツ大学IACUCによって承認された実験からのものである - プロトコル番号：＃2011から0408 試薬の調製<ol><li>ストック解剖液（5×）の500ミリリットルのために、21.18グラムのNaCl、0.875グラムのKCl、0.739グラムのMgSO 4、1.049グラムのMOPS、Milli-Q水450ミリリットル中0.019グラムのEDTAを溶解：解剖液ストックを準備します。 1 N NaOHを用いて7.3〜7.4にpHを調整します。ミリQ水で500ミリリットルにボリュームを構成しています。ストック溶液は、7〜10日まで保存することができます。化学物質とそのベンダーのリストについては、表1を参照してください。 mMの中の濃度については、表2を参照してください。 </li><li>作業解剖溶液を調製する：毎日新鮮なワーキング解剖溶液を調製します。ワーキング溶液を100ミリリットルのために、0.091グラムのグルコース、ミリQ水の79.8ミリリットル中0.016グラムのNaH 2 PO 4および0.022グラムのピルビン酸ナトリウムを溶解します。 voluをもたらすために0.2ミリリットル1MのCaCl 2と20ミリリットル解剖ソリューションの株式を追加100ミリリットルの私。 </li><li>生理食塩水（PSS）を準備：千ミリリットルPSSを製造するために、0.365グラムのKCl、6.545グラムのNaCl、0.296グラムのMgSO 4、0.163グラムのKH 2 PO 4、2.072グラムのグルコース、950ミリリットル中2.184グラムのNaHCO 3および2.383グラムのHEPESを溶解ミリQ水。 1 N NaOHを用いて7.3〜7.4にpHを調整します。ミリQ水で千ミリリットルにボリュームを構成しています。溶液2mlを削除し、1 M CaCl 2を2ミリリットルと交換してください。 （新鮮なPSSは毎日調製する必要があります） </li><li>のCa 2+なしで100ミリリットルPSSのために、0.036グラムのKCl、0.654グラムのNaCl、0.029グラムのMgSO 4、0.016グラムのKH 2 PO 4、0.207グラムのグルコース、0.218グラムのNaHCO 3、0.238を溶解：カルシウム（Ca 2+）を無料でPSSを準備G HEPES、ミリQ水95ミリリットル中0.015グラムのEGTAおよび0.0026グラムのニトロプルシドナトリウム（SNP）。 1 N NaOHを用いて7.3〜7.4にpHを調整します。ミリQ水で100mlにボリュームを構成しています。 </li></ol>ガラスカニューレの調製<ol><li>ガラスピペットを引っ張りますメーカーのガイドライン通りにピペットプラーを使用して、100〜150μmの先端がカニューレを生成します。 </li><li>ベベル微小電極bevellerを用いてガラスカニューレのヒントは、火はそれらを磨くとヒータプローブを使用して、〜45°のガラスカニューレ先端を曲げます。 </li><li>マイクロピペットホルダーにカニューレをロードし、灌流チャンバーへのマイクロピペットホルダーを取り付けます。 </li></ol>灌流チャンバーの調製<ol><li> 5分ごとに解剖溶液を添加したミリQ水で洗い流し灌流チャンバー。解剖溶液2mlでチャンバーをロードします。 </li><li> 10ミリリットル注射器を用いてカニューレを介して吸入解剖液と気泡なしで慎重に全体のカニューレおよび接続されているチューブを埋めます。気泡の発生を防止するため穏やかに吸引を適用します。 </li><li>それぞれが鈍鉗子を用いたハーフノットを持つ2つの縫合糸を準備します。眼科モノフィラメントナイロン縫合糸（10-0、0.2メートル法）があるだけで結び目を調製するために使用されているので直径1〜2ミリメートル、解剖顕微鏡を必要とすることができます。 </li><li>解剖顕微鏡下で可視化し、わずかに先端から部分的に閉じられた縫合糸の結び目の両方カニューレをロードするために解剖鉗子を使用しています。後、これらのノットはカニューレを挿入動脈末端に慎重にスライドされ、完全に閉じました。 </li></ol> SDラットから腸間膜動脈アーケードの4コレクション<ol><li>これらの実験を実施する前に、ローカル施設内動物管理使用委員会（IACUC）の承認を求めます。制御された温度と照明と水に自由にアクセスを許可し、商業齧歯動物食と動物施設におけるハウス動物。 </li><li>ケタミンの腹腔内注射（80mg / kg）およびキシラジン（10mg / kg）により、ラットを麻酔。つま先ピンチにより、必要に応じた管理者の追加の麻酔薬場合深麻酔を確認してください。 </li><li>手術用麻酔を確認した後、断頭により動物を安楽死させます。 UTIのためのAAALACガイドラインに従ってください殺処分のための適切な方法をlizing。 </li><li>胸骨に骨盤から中線開腹術を実行するために解剖はさみとピンセットを使用してください。これは、2つのステップで行われます。最初、皮膚を切開し、第二、下層の筋層を切開します。ケアは、腹腔内の臓器を傷つけないように注意しなければなりません。 </li><li>幽門に腸近く、回盲接合部に近い遠位端の近位端をカットします。両方が糜粥、従って、細胞外入浴液の汚染を回避便の漏れを防止するために、個別に終了接続します。給電血管系、すなわち 、上腸間膜動脈の近くに、そのベースで腸間膜を切開し、氷冷解剖溶液を含む50ミリリットルビーカーに全小腸腸間膜ベッドを転送します。 </li><li>採取した組織は、5分間氷冷解剖溶液中に滞在し、血液を取り除くために、新鮮な解剖溶液でリンスすることを可能にします。 </li></ol> 5.単離と4 番目のカニューレ挿入</SUP&gt;注文腸間膜動脈<ol><li>シルガードコートディッシュで右側の腸の近位端を突き止めます。 （ 図1）が腸間膜を広げダウンセグメントを固定し、血管を露出させ、反時計回りの経路の残りの腸の拡張。注：我々は、室温での動脈セグメントを分離します。それ以外の場合は、氷の上の皿を含む腸間膜アーケードを配置します。当院でのものを含むいくつかの研究室では、4℃で動脈を切開するためにチラーユニットを使用しています。 </li><li>ステレオズーム顕微鏡下で小さなハサミを使用して小腸にオーダー小さな腸間膜動脈番目 3 番目と4（〜260ミクロン）の平行を解剖。最初にすべてのカバーの脂肪を離れて解剖。その後静脈を解剖し、V字型の分岐点と動脈を分離します。選択したセグメントを穿刺しないように注意してください。 2 番目の注文支店近く脂肪を解剖起動して、3 番目または4 番目の ORDへの道を見つけますER船。 <ol><li>注：動脈と静脈は、それらの壁の厚さに基づいて区別することができる - 動脈壁は、静脈のより厚いです。隣接する結合組織を穏やかに血管に対して垂直に引かれたときに動脈がいない間また、静脈が容易に崩壊します。管腔直径&lt;400μmでは、全身血管抵抗の主要な部位であると動脈ので、このプロトコルのために、我々は（直径&lt;300μmのルーメン）注文ラット腸間膜動脈番目の 4を使用していました。 </li></ol></li><li>小腸に動脈平行4-5ミリのセクションを分離します。小腸への埋め込 ​​み、すべての5 番目の順序の枝を可視化し、少し離れた枝の原点から、それらをカットした部分を保持します。枝のこれらの保存された部分は、その後、それらのカニューレ挿入をガイドする、灌流チャンバーに動脈セグメントを転送する（解剖鉗子で）部位を保持し、として機能します。 </li><li>その後に遠位の2切開を行うことで、動脈セグメントをカット動脈の両側のため枝番 5と灌流チャンバーに転送し（ 図1Cおよび凡例を参照してください）。 </li><li> （：100〜150μmの直径）解剖鉗子で動脈セグメントの先端を保持することによって解剖鉗子を用いてガラスマイクロピペットのいずれかの容器の一方の端部にカニューレを挿入。カニューレを挿入端に前にロードされた部分的に閉じた縫合糸をスライドさせて固定します。注：動脈の近位端は、 その場の環境で模倣するサーボ制御圧力調整装置に接続されているガラスカニューレにカニューレを挿入することができます。 </li><li>解剖ソリューションを取り付けカニューレとコックを接続するチューブ内の解剖液が注射器のそれと合流するように、このカニューレに接続されたコックに10ミリリットルの注射器をロードしました。ゆっくりシリンジを上げます。ソリューションの重力は、容器の開口端部から血管内の血液を除去します。動脈内の血液を除去した後、コックを閉じます。 、また、圧力コントローラに活栓を取り付け、電源を入れ、ゆっくりと同じ結果を得る5〜10 mmHgまで圧力を高める：注意してください。 </li><li>慎重に動脈セグメントのアンタイド端にできるだけ近い他のカニューレをもたらすことによって、第二のガラスカニューレ上に容器の先端を接続します。カニューレを挿入端に前にロードされた部分的に閉じた縫合糸をスライドさせて固定します。ケアは、引っ張るまたは動脈セグメントを引っ張らないように注意する必要があります。両方のカニューレに取り付けられたコックが閉じていることを確認します。 </li><li>ライブビデオ録画を備えた倒立顕微鏡のステージ上に灌流チャンバーを転送します。 </li><li>サーボ制御圧力調整装置への動脈セグメントの近位端に接続されたカニューレのコックを接続し、安定した管腔内の圧力を維持するために閉じたままコックが他のカニューレに取り付けられていることを確認してください。 </li><li>次に、吸引ポートAに真空管を取り付けチャンバーの灌流ポートに灌流チューブをND。 注：ベベル針ポートを吸引および灌流のためのブラント針ポートに使用されます。 </li><li>使用して2ml /分で（5％CO 2、5％O 2及び90％Nは、中性pHおよび適切な酸素17を維持するためのガス混合物で平衡化し、37°C、）1つのインライン液加熱器を介して暖かいPSSと血管の灌流を開始します蠕動ポンプ。同様に上の真空をオンにします。継続的に温度を監視するために、チャンバー内にサーミスタを配置します。 </li><li>チャンバー内のP​​SSの温度は〜37℃（通常は5分以内）に近づくと、ゆっくりと漏れを20〜100 mmHgで、チェック血管から管腔内の圧力を増加させます。これは、圧力調整器の自動圧力設定を使用して行われます。リークして血管を捨て、別のセグメントと交換します。漏れのある容器は圧力を保持することができません。 </li><li> 100 mmHgの圧力を維持しながら曲がるための動脈セグメントを評価します。スクリューレバーを使用して、動脈セグメントをまっすぐにカニューレを移動します。以上の動脈セグメントをストレッチしないでください。目的は、 生体内 、動脈セグメント長に模倣することです。 </li><li> 70 mmHgでの圧力を低下させる（腸間膜アーケード18 in vivoでの圧力に模倣する）および動脈セグメントが安定化し、筋原性緊張を開発することができます。動脈は、（40〜70 mmHgの）実験戦略と血管床に応じて可変に加圧することができます。以前に公開されたレビューは、異なる血管床8から動脈セグメントにおけるMTの変動の優れたレビューを提供しています。 </li></ol>動脈直径の6測定<ol><li>モノクロビデオ電荷結合素子カメラを備えた顕微鏡で10×対物レンズで表示動脈。ビデオフレームグラバーとリアルタイムのエッジ検出システムを使用して管腔直径を測定します。使用される機器のリストを表3に提供されます。 </li><li>モニタとレコード容器D連続iameter。 </li><li> MTの開発のために確認します。注：我々は、ラット腸間膜抵抗動脈で、70 mmHgので、MTの開発は、直径〜20％減少することを特徴とすることを観察しました。 MTは血管床と動物種に応じて変化します。 </li><li> 1μMのフェニレフリン（Pheで）および1μMのアセチルコリン（AChの）に血管収縮剤および血管拡張性応答を評価することにより血管の生存率を確認してください。 </li><li>各実験の最後に、20分間のCa 2+を含まないPSSで動脈をインキュベートすることによって受動的直径（PD）を決定します。 </li></ol> 7.筋原レスポンス<ol><li> 20ミリメートルHgのに圧力を低下させ、直径が安定します。増分ステップ（20、40、60、80および100）内の管腔内の圧力を増加させ、各圧力段階で動脈が（通常は5分以内）安定した直径を達成することを可能にします。 </li><li> 20 mmHgでの管腔内の圧力を軽減し、2+を含まないPSS 0.39ミリモルを含むカリフォルニア州の動脈セグメントをインキュベートEGTAおよび0.1mM SNP。動脈直径（通常15分）を安定化することができます。 </li><li> 0.39 mMのEGTAおよび0.1mMのSNPを含むのCa 2+を含まないPSSの圧力-ステップ応答を繰り返します。 </li></ol>データの結果と計算の8解釈<ol><li> CAの観察直径のパーセント差としてMTを計算2+以下の計算に従って各圧力でのCa 2+を含まないPSS対含有： <img alt="式（1）" fo:src="/files/ftp_upload/50997/50997eq1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/50997/50997eq1.jpg" /></li><li>直径血管運動経動脈について1分間プラトー相を平均することによって計算することができます。関係に従って最大弛緩率（％PD）の割合として収集されたデータを表現します。％PD = 100×[ΔD/ PD]; ΔDは任意の治験化合物（ 例えば Pheで）を添加する前と後の直径との差です。 PDはまた、受動的直径（あります最大直径）。 </li></ol>

<ol><li>Christensen, K. L., Mulvany, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Location+of+resistance+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vasc+Res%22%5BJournal%5D)">Location of resistance arteries.</a> J Vasc Res. 38, 1-12 (2001).</li>
<li>Rietzschel, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxidized+low-density+lipoprotein+cholesterol+is+associated+with+decreases+in+cardiac+function+independent+of+vascular+alterations%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Oxidized low-density lipoprotein cholesterol is associated with decreases in cardiac function independent of vascular alterations.</a> Hypertension. 52, 535-541 (2008).</li>
<li>Hill, M. A., Ege, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Active+and+passive+mechanical+properties+of+isolated+arterioles+from+STZ-induced+diabetic+rats.+Effect+of+aminoguanidine+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Active and passive mechanical properties of isolated arterioles from STZ-induced diabetic rats. Effect of aminoguanidine treatment.</a> Diabetes. 43, 1450-1456 (1994).</li>
<li>Osol, G., Cipolla, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+myogenic+and+adrenergic+mechanisms+in+isolated%2C+pressurized+uterine+radial+arteries+from+late-pregnant+and+nonpregnant+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Obstet+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Interaction of myogenic and adrenergic mechanisms in isolated, pressurized uterine radial arteries from late-pregnant and nonpregnant rats.</a> Am J Obstet Gynecol. 168, 697-705 (1993).</li>
<li>Cipolla, M. J., McCall, A. L., Lessov, N., Porter, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reperfusion+decreases+myogenic+reactivity+and+alters+middle+cerebral+artery+function+after+focal+cerebral+ischemia+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Stroke%22%5BJournal%5D)">Reperfusion decreases myogenic reactivity and alters middle cerebral artery function after focal cerebral ischemia in rats.</a> Stroke. 28, 176-180 (1997).</li>
<li>Ren, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhanced+myogenic+response+in+the+afferent+arteriole+of+spontaneously+hypertensive+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Enhanced myogenic response in the afferent arteriole of spontaneously hypertensive rats.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 298, H1769-H1775 (2010).</li>
<li>Hayashi, K., Epstein, M., Saruta, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Altered+myogenic+responsiveness+of+the+renal+microvasculature+in+experimental+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22J+Hypertens%22%5BJournal%5D)">Altered myogenic responsiveness of the renal microvasculature in experimental hypertension.</a> J Hypertens. 14, 1387-1401 (1996).</li>
<li>Schubert, R., Mulvany, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+myogenic+response%3A+established+facts+and+attractive+hypotheses%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Sci+%28Lond%29%22%5BJournal%5D)">The myogenic response: established facts and attractive hypotheses.</a> Clin Sci (Lond). 96, 313-326 (1999).</li>
<li>Bridges, L. E., Williams, C. L., Pointer, M. A., Awumey, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenteric+artery+contraction+and+relaxation+studies+using+automated+wire+myography%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Mesenteric artery contraction and relaxation studies using automated wire myography.</a> J Vis Exp. , (2011).</li>
<li>Buus, N. H., Vanbavel, E., Mulvany, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+in+Sensitivity+of+Rat+Mesenteric+Small+Arteries+to+Agonists+When+Studied+as+Ring+Preparations+or+as+Cannulated+Preparations%5BTitle%5D)+AND+%22British+Journal+of+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Differences in Sensitivity of Rat Mesenteric Small Arteries to Agonists When Studied as Ring Preparations or as Cannulated Preparations.</a> British Journal of Pharmacology. 112, 579-587 (1994).</li>
<li>Falloon, B. J., Stephens, N., Tulip, J. R., Heagerty, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+small+artery+sensitivity+and+morphology+in+pressurized+and+wire-mounted+preparations%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Comparison of small artery sensitivity and morphology in pressurized and wire-mounted preparations.</a> Am J Physiol. 268, H670-H678 (1995).</li>
<li>Schubert, R., Wesselman, J. P. M., Nilsson, H., Mulvany, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noradrenaline-induced+depolarization+is+smaller+in+isobaric+compared+to+isometric+preparations+of+rat+mesenteric+small+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Pflugers+Archiv-European+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">Noradrenaline-induced depolarization is smaller in isobaric compared to isometric preparations of rat mesenteric small arteries.</a> Pflugers Archiv-European Journal of Physiology. 431, 794-796 (1996).</li>
<li>Khurana, S., Raina, H., Pappas, V., Raufman, J. P., Pallone, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+deoxycholylglycine%2C+a+conjugated+secondary+bile+acid%2C+on+myogenic+tone+and+agonist-induced+contraction+in+rat+resistance+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Effects of deoxycholylglycine, a conjugated secondary bile acid, on myogenic tone and agonist-induced contraction in rat resistance arteries.</a> PLoS One. 7, e32006(2012).</li>
<li>Bayliss, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+the+local+reactions+of+the+arterial+wall+to+changes+of+internal+pressure%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">On the local reactions of the arterial wall to changes of internal pressure.</a> J Physiol. 28, 220-231 (1902).</li>
<li>Hughes, J. M., Bund, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arterial+myogenic+properties+of+the+spontaneously+hypertensive+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Physiol%22%5BJournal%5D)">Arterial myogenic properties of the spontaneously hypertensive rat.</a> Exp Physiol. 87, 527-534 (2002).</li>
<li>Mulvany, M. J., Halpern, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+properties+of+vascular+smooth+muscle+cells+in+situ%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mechanical properties of vascular smooth muscle cells in situ.</a> Nature. 260, 617-619 (1976).</li>
<li>Raina, H., Zacharia, J., Li, M., Wier, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+by+Ca2%2B%2Fcalmodulin+of+an+exogenous+myosin+light+chain+kinase+in+mouse+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Activation by Ca2+/calmodulin of an exogenous myosin light chain kinase in mouse arteries.</a> J Physiol. 587, 2599-2612 (2009).</li>
<li>Fenger-Gron, J., Mulvany, M. J., Christensen, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mesenteric+blood+pressure+profile+of+conscious%2C+freely+moving+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Mesenteric blood pressure profile of conscious, freely moving rats.</a> J Physiol. 488 (Pt 3), 753-760 (1995).</li>
<li>Davis, M. J., Hill, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Signaling+mechanisms+underlying+the+vascular+myogenic+response%29%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Signaling mechanisms underlying the vascular myogenic response).</a> Physiol Rev. 79, 387-423 (1999).</li>
<li>Osmond, J. M., Mintz, J. D., Dalton, B., Stepp, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Obesity+increases+blood+pressure%2C+cerebral+vascular+remodeling%2C+and+severity+of+stroke+in+the+Zucker+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Obesity increases blood pressure, cerebral vascular remodeling, and severity of stroke in the Zucker rat.</a> Hypertension. 53, 381-386 (2009).</li>
<li>Ge, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endogenously+produced+20-HETE+modulates+myogenic+and+TGF+response+in+microperfused+afferent+arterioles%5BTitle%5D)+AND+%22Prostaglandins+Other+Lipid+Mediat%22%5BJournal%5D)">Endogenously produced 20-HETE modulates myogenic and TGF response in microperfused afferent arterioles.</a> Prostaglandins Other Lipid Mediat. 102-103, 42-48 (2013).</li>
<li>Ryan, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Placental+ischemia+impairs+middle+cerebral+artery+myogenic+responses+in+the+pregnant+rat%5BTitle%5D)+AND+%22Hypertension%22%5BJournal%5D)">Placental ischemia impairs middle cerebral artery myogenic responses in the pregnant rat.</a> Hypertension. 58, 1126-1131 (2011).</li>
<li>Bagi, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Type+2+diabetic+mice+have+increased+arteriolar+tone+and+blood+pressure%3A+enhanced+release+of+COX-2-derived+constrictor+prostaglandins%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler+Thromb+Vasc+Biol%22%5BJournal%5D)">Type 2 diabetic mice have increased arteriolar tone and blood pressure: enhanced release of COX-2-derived constrictor prostaglandins.</a> Arterioscler Thromb Vasc Biol. 25, 1610-1616 (2005).</li>
</ol>

著者らは、金銭の競合を持っていません。

重要なステップ、トラブルシューティングおよび修正典型的な等圧容器の準備では、動脈が温かい（37℃）、PSSで灌流二枚のガラスの間にカニューレ70 mmHgで加圧されています。 30〜45分後、動脈は20〜30分で安定する直径の自然減少によって特徴づけられる、MTを開発します。様々な血管床からの抵抗動脈は変数MTを開発します。 cremastric動脈がPDのMT〜40％を達成し得るが、例えばラット腸間膜動脈抵抗の場合は、〜PDの25％MTを開発します。 60分以内にMTを発症しない動脈が破棄されるべきです。この期間は、血管床や種類に応じて異なる場合があります。 Pheおよびアセチルコリンが不十分な動脈も破棄されるべきです。 PSSのpHおよび温度は、MTの開発に大きな影響を与えます。曝気なしで長時間座っているPSSのpHは、増加し得ます。さらに、室温での動脈がdにはほとんどありませんevelop MT。したがって、PSSを連続的にモニターし、フローヒーターを用い〜37℃に維持されるべきで灌流チャンバーのプロトコル部分と温度で示され...

小さ ​​な抵抗動脈はSVRの主要な決定であり、多くの疾患1,2の病態生理に重要な役割を果たしています。例えば糖尿病3、妊娠4、虚血再灌流5、肥満や高血圧の6,7等の条件は頻繁に変更された微小血管機能に関連しています。血管筋運動記録法は、種々の疾患における微小血管機能の変化に重要な洞察を提供するだけでなく、治療標的を同定し、血管作用性化合物の有効性を評価するのに役立つことができるだけでなく。血管機能は、等角または同重体血管条件8の下で分離された小動脈を用いて研究されています。等尺性筋運動記録法の詳細な説明は、他の箇所9が設けられています。しかし同重体準備10-12対アイソメトリックから得られたデータに違いがあります。加圧された動脈の製剤は、近生理学的条件下で微小血管機能の研究を可能にするので、得られた知見は、血管床8,13 の in vivoでの挙動とのより良い相関させることができます。 1902年にベイリスは、最初の血管の直径14に経壁圧の効果を説明しました。彼は圧力の減少は血管拡張が続いたウサギ、犬や猫の様々な血管床からの小さな抵抗動脈で観察され、圧力の増加は、血管収縮が続きました。この現象は、筋原性反応として知られています。ベイリスとその後の研究者は、等圧条件で小さな抵抗動脈がMT 15,16として知られている持続的な収縮を開発することを観察しました。筋原性応答及びMTの両方が、圧力筋運動記録法（PM）技術を用いて評価することができます。 PMは小動脈、静脈および他の血管の血管作用を決定するために主に使用されています。名前が示すように - - 血管径、PMに血管作用化合物の効果を評価することに加えて、血管内の圧力媒介CHを評価するために使用され血管径にザンジュ。過去数十年にわたりビデオ顕微鏡やガラスピペット引いを強化コンピュータソフトウェア、に進み、PM実行しやすくなりました。しかし、小血管の生存可能な、完全なセグメントの解剖は、退屈な、時には困難なままです。ここでは、ラットから単離された小腸間膜抵抗動脈における筋原性応答を研究するための詳細なプロトコルの概要を説明します。

<table><tbody><tr><td colspan="4">Chemical</td></tr><tr><td>アセチルコリン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A6625</td><td></td></tr><tr><td>塩化カルシウム (CaCl2)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>223506</td><td></td></tr><tr><td>D-(+)-Glucose</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G5767</td><td></td></tr><tr><td>エチレングリコール-ビス(2-アミノエチルエーテル)-N,N,N',N'-テトラ酢酸 (EGTA)</td><td>SigmaAldrich</td><td>E3889</td><td></td></tr><tr><td>エチレンジアミン四酢酸(EDTA)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>E9884</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H3784</td><td></td></tr><tr><td>硫酸マグネシウム(MgSO4)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M7506</td><td></td></tr><tr><td>MOPS</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M5162</td><td></td></tr><tr><td>フェニレフリン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P6126</td><td></td></tr><tr><td>塩化カリウム (KCl)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P3911</td><td></td></tr><tr><td>リン酸カリウム (KH2PO4)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P5655</td><td></td></tr><tr><td>重曹 (NaHCO3 )</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S6014</td><td></td></tr><tr><td>塩化ナトリウム (NaCl)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S7653</td><td></td></tr><tr><td>水酸化ナトリウム (NaOH)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S5881</td><td></td></tr><tr><td>ナトリウム nitroprusside</td><td>Sigma Aldrich</td><td>13451</td><td></td></tr><tr><td>リン酸ナトリウム 1塩基性一水和物 (NaH2PO4)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S9638</td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P8574<</td><td></td></tr><tr>td colspan="4">Table 1.</td></tr><tr><td colspan="4"><table border="1"> <tbody> <tr> <td>生理食塩水(1,000ml)</td> <td> mM</td> <td></td> </tr> <tr> <td>KCl</td> <td>4.9</td> <td>0.365 g</td> </tr> <tr> <td>NaCl</td> <td>112</td> <td>6.545 g</td> </tr> <tr> <td>MgSO4.7H2O</td> <td>1.2</td> <td>0.296 g</td> </tr> <tr> <td>KH2PO4</td> <td>1.2</td> <td>0.163 g</td> </tr> <tr> <td>グルコース</td> <td>11.5</td> <td>2.072 g</td> </tr> <tr> <td>NaHCO3</td> <td>26</td> <td>2.184 g</td> </tr> <tr> <td>HEPES</td> <td>10</td> <td>2.383 g</td> </tr> <tr> <td>CaCl2</td> <td>2</td> <td>2 ml (1M ストック)</td> </tr> <tr> <td>脱イオン水</td> <td></td> <td>998 ml</td> </tr> <tr> <td>Ca2+ 遊離生理食塩溶液 (100 ml)</強い></td> <td><強い> mM</強い></td> <td></td> </tr> <tr> <td>KCl</td> <td>4.9</td> <td>0.036 g</td> </tr> <td> <td>NaCl</td> <td>112</td> <td>0.645 g</td> </tr> <tr> <td>MgSO4.7H2O</td> <td>1.2</td> <td>0.029 g</td> <tr> <> <td>KH2PO4</td> <td>1.2</td> <td>0.016 g</td> </tr> <tr> <td>Glucose</td> <td>11.5</td> <td>0.207 g</td> </tr> <tr> <td>NaHCO3</td> <td>26</td> <td>0.218 g</td> </tr> <tr> <td>HEPES</td> <td>10</td> <td>0.238 g</td> </tr> <tr> <td>EGTA </td> <td>0.39</td> <td>0.015 g</td> </tr> <tr> <td>ニトロプルシドナトリウム</td><td>0.1</td> <td>0.0026 g</td> </tr> <tr> <td>脱イオン水</td> <td></td> <td>100ml</td> </> <tr> <td>解剖液、 ストック(500ml)</ストロング></td> <td><ストロング> mM</ストロング></td> <td></td> </tr> <tr> <td>NaCl</td> <td>145</td> <td>21.18 g</td> </tr> <tr> <td>KCl</td> <td>4.7</td> <td>0.875 g</td> </tr> <tr> <td>MgSO4</td> <td>1.2</td> <td>0.739 g</td> </tr> <tr> <td>MOPS</td> <td>2</td> <td>1.049 g</td> </tr><tr> <td>EDTA</td> <td>0.02</td> <td>0.019 g</td> </tr> <tr> <td>脱イオン水</td> <td></td> <td>500ml</td> </tr> <tr> <td>ワーキング解剖液(100ml)</td> <td> mM</td> <td></td> </tr> <tr> <td>解剖液 stock</td> <td>20 ml</td> </tr> <tr> <td>グルコース</td> <td>1.2</td> <td>0.091 g</td> </tr> <tr> <td>NaH2PO4</td> <td>5</td> <td>0.016 g</td> </tr> <tr> <td>ピルビン酸ナトリウム</td> <td>2</td> <td>0.022 g</td> </tr> <tr> <td>CaCl2</td> <td>2</td> <td>0.2ml(1Mストック)</td> </tr> <tr> <td>脱イオン水</td> <td></td> <td>79.8ml</td> <tr> </tbody> </table></td></tr><tr><td colspan="4">Table 2.実験ソリューション</td></tr><tr>の構成<td colspan="4">Equipment</td></tr><tr><td>CCD モノクロカメラ</td><td>イメージングソース</td><td>DMK 21AU04</td><td></td></tr><tr><td>シングルインライン溶液ヒーター</td><td>ワーナーインスツルメンツ</td><td>64-0102</td><td></td></tr><tr><td>サーミスタ</td><td>ワーナーインスツルメンツ</td><td>64-0108</td><td></td></tr><tr><td>デュアル自動温度コントローラー</td><td>ワーナーインスツルメンツ</td><td>TC-344B</td><td></td></tr><tr><td>フレーミング/ブラウンマイクロピペットプーラー</td><td>サッターインスツルメンツ</td><td>P-97</td><td></td></tr><tr><td>蛍光システムインターフェース</td><td>IonOptix</td><td>モデル FSI-700</td><td></td></tr><tr><td>鉗子とハサミ </td><td>ワールドプレシジョン インシューティングインスツルメン</td><td></td><td></td></tr>ツ <tr><td>イオンウィザード-コアと分析</td><td>IonOptix</td><td>イオンウィザード6.0</td><td></td></tr><tr><td>ラボ用チューブ</td><td>シラスティック</td><td>508-005</td><td></td></tr><tr><td>男性 Sprague Dawley ラット</td><td>ハーラン研究所</td><td></td><td></td></tr><tr><td>マスターフレックスコンソールドライブ</td><td>コールパーマー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Milli-Q Plus 超純水システム</td><td>ミリポア</td><td>ZD5211584</td><td></td></tr><tr><td>眼科用モノフィラメント ナイロン縫合</td>糸 <td>Ethicon</td><td>9007G</td><td></td></tr><tr><td>測光および寸法顕微鏡</td><td>動機</td><td>AE31</td><td></td></tr><tr><td>蠕動ポンプと圧力変換器付き圧力サーボコントローラ</td><td>リビングシステム計装</td><td>PS-200</td><td></td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>ニコンインスツルメンツ</td><td>SMZ660</td><td></td></tr><tr><td>ベッセルチャンバー</td><td>リビングシステム計装</td><td>CH-1</td><td></td></tr><tr><td>解剖皿</td><td>リビングシステム計装</td><td>DD-90-S</td><td></td></tr><tr><td>薄肉ガラス毛細管世界</td><td>精密機器</td><td>TW120-6</td><td></td></tr><tr><td>マイクロフォージ</td><td>ストールティング</td><td>51550</td><td></td></tr><tr><td colspan =" 4">表3.</td></tr></tbody></table>

圧力筋運動記録法を用いた抵抗腸間膜動脈における筋原性応答および血管作用を評価します

Assessing Myogenic Response and Vasoactivity In Resistance Mesenteric Arteries Using Pressure Myography

小さな抵抗動脈が収縮し、増減腔内圧力に応じてそれぞれ拡張します。筋原性応答として知られるこの現象は、局所の血流の重要な調節因子です。等圧の条件では、小さな抵抗動脈は全身血管抵抗（SVR）の主要な決定要因である筋原トーン（MT）として知られている持続的な収縮を、開発しています。そのため、小さな抵抗動脈のex vivoで加圧された製剤は、近生理学的状態で微小血管の機能を研究するための主要なツールです。これを達成するために、小さな抵抗動脈（直径〜260ミクロン）の新たに単離された無傷のセグメントは、二つの小さなガラスカニューレに取り付けられ、加圧されます。これらの動脈の製剤は、 生体内の特性とリアルタイムで血管緊張の許可評価にほとんどを保持しています。ここでは、ラットからの加小さな抵抗腸間膜動脈における血管作用を評価するための詳細なプロトコルを提供します。これらの動脈を開発します持続的な血管収縮 - 最大直径の約25％ - 70 mmHgで加圧さ。これらの調製物は、動脈内、動脈圧および血管作用との関係について治験化合物の効果を研究し、種々の疾患の動物モデルにおける微小血管機能の変化を決定することができます。

典型的な圧力ミオグラフセットアップの概略図を図1に示されている。容器の両端をガラスマイクロピペットを用いてカニューレを挿入し、両側の縫合糸で固定されています。チューブとオープン活栓を介して、1カニューレはサーボ制御された圧力調整器に接続されています。他のカニューレは閉鎖コックに接続されています。チャンバーは、PSSで灌流し、血管径の変化はCCDカメラに接続された倒立顕微鏡で観察します。 70 mmHgで加圧し、動脈セグメント2-4 ml /分での動脈チャンバを通って流れ、外吸引新たに調製した暖かいPSSでインキュベートします。動脈直径をビデオ顕微鏡およびエッジ検出ソフトウェアを使用して監視し、記録します。 〜40分後、動脈セグメントは、その出発直径（ 図2A）の20〜40％によって自然に収縮します。私たちの手で小さなラット抵抗動脈は25〜30％（平均バリによって収縮しますES設定に応じて、オペレータ、および動脈ベッド）。そして、機能的生存率はアセチルコリン（1μM）およびPhe（1μM）、それぞれ（ <stron...

圧力筋運動記録法は、加圧されたときに、持続収縮を開発する小動脈の血管作用を評価するために使用されます。この原稿は、ラット、血管作用と血管径の管腔内圧力の影響から小腸間膜動脈の単離されたセグメントに評価するための詳細なプロトコルを提供します。

Small resistance arteries constrict and dilate respectively in response to increased or decreased intraluminal pressure; this phenomenon known as myogenic ...

本手順の全体的な目的は、小抵抗腸間膜動脈における圧力誘発性血管緊張に対する薬理学的薬剤または疾患状態の影響を明らかにすることである。まず、マウスモデルから腸間膜アーケードを単離し、次に第4次分岐の小抵抗動脈を解剖することでこれを達成する。次のステップは、動脈標本のカニュレーション、加圧、およびインキュベーションです。PSSでは、最終ステップとして動脈標本の生理学的完全性を評価します。これは、血管緊張の自発的な発生と、血管収縮薬および血管拡張薬に対する適切な可逆的反応によって実証されます。最終的に、圧力誘発性収縮を測定することが可能です。本手法の意義は、高血圧、低血圧、または血管機能不全の治療や診断にまで及びます。なぜなら、本手法は血管抵抗、灌流、および血圧の主要な決定要因である血管緊張の圧力誘発性変化の根底にある主要なメカニズムを特定できるためです。本手順は、当研究室のポストドクター研究員であるDr.Jjaによって実演されます。まず、ガラスカニューレをマイクロピペットホルダーに装着し、それを灌流チャンバーに取り付けて灌流チャンバーの準備を行います。Milli Q水で洗浄した後、解剖液でそれぞれ5分間ずつ洗浄します。その後、チャンバーに解剖液2 mLを満たします。次に、気泡が入らないように注意しながら、カニューレ全体と接続されたチューブに溶液を満たします。解剖顕微鏡下で鈍的ピンセットを用い、半結びにした縫合糸を2本準備します。解剖ピンセットを使用して、両方のカニューレの先端から少し離れた位置に、半分結ばれた状態の縫合糸を装填します。次に、麻酔をかけたラットに対し、骨盤から胸骨にかけて正中切開を行います。まず皮膚を切開し、続いてその下の筋肉層を切開してください。この際、腹腔内臓器を損傷しないよう十分注意してください。細胞外灌流液の汚染を防ぐため、食糜や糞便の漏出がないよう、両端を個別に結紮してください。その後、腸管の近位端を孔付近で、遠位端を回盲接合部付近で切断します。次に、栄養血管に近い腸間膜の基部を切開します。続いて、小腸腸間膜床全体を、氷冷した解剖液が入った50 milliliterのビーカーに移し、5分間インキュベートします。次に、新鮮な解剖液で洗浄し、血液を取り除きます。続いて、腸の近位端をシャーレの右側に固定し、残りの腸を反時計回りに伸ばします。実体顕微鏡下で、腸間膜を広げ、血管を露出させるように各セグメントをピンで固定します。まず、2次分枝付近の被覆脂肪をすべて取り除き、小腸に並行する3次および4次の小腸間膜動脈を剥離します。次に、静脈を剥離して、V字型の分枝点を持つ動脈を単離します。選択したセグメントを穿刺しないように注意してください。次に、小腸に平行な動脈の4〜5 mmの区間を単離します。小腸に埋入しているすべての第5次分枝を、分枝の起点からわずかに離れた位置で切断し、その一部を保持しておきます。これらの部分は、動脈セグメントを灌流チャンバーへ移送する際の保持部位として機能し、その後のカニュレーションのガイドとなります。次に、動脈の両側にある5次分岐の末梢側で2箇所切開して動脈セグメントを切り出し、灌流チャンバーへ移します。解剖用ピンセットで動脈セグメントの先端を保持し、血管の一端をガラスマイクロピペットにカニュレーションします。あらかじめ装着しておいた半結びの縫合糸をカニュレーションした端にスライドさせ、固定します。続いて、解剖溶液を満たした10 milliliterシリンジを、このカニューレに接続されたストップコックに取り付けます。シリンジをゆっくりと持ち上げてください。溶液にかかる重力によって、血管の開口部から血管内の血液が除去されます。動脈内の血液を除去した後、ストップコックを閉じます。次に、もう一方のガラスカニューレを動脈セグメントの結んでいない端にできるだけ近づけ、血管の遠位端を2本目のガラスカニューレに結びつけます。あらかじめ準備しておいた部分的に結ばれた縫合糸をカニューレ挿入端にスライドさせ、固定します。動脈セグメントを引っ張ったり、強く引いたりしないよう注意し、両方のカニューレに取り付けられたストップコックが閉じていることを確認してください。灌流チャンバーを、ライブビデオ録画装置を備えた倒立顕微鏡のステージに移動させます。次に、動脈セグメントの近位端に結ばれたカニューレのストップコックを、サーボ制御式圧力調節装置に接続します。管腔内圧を安定させるため、もう一方のカニューレに取り付けられたストップコックが閉じたままであることを確認します。次に、真空チューブを灌流チューブに、吸引ポートをチャンバーの灌流ポートにそれぞれ接続します。シングルインライン溶液ヒーターを介して、温めたPSSを用いて2 mL/minの速度で血管の灌流を開始します。ペリスタルティックポンプを使用し、チャンバー内のPSSの温度が37 °Cに近づいたところで真空ポンプをオンにします。管腔内圧を20から100 mmHgまでゆっくりと上昇させます。圧力レギュレーターの自動圧力設定を使用して、血管にリークがないか確認してください。その後、圧力を100 mmHgに維持しながら、動脈セグメントに屈曲がないか確認します。スクリューレバーを使用してカニューレを移動させ、動脈セグメントを直線状に伸ばします。この際、動脈セグメントを伸ばしすぎないように注意してください。次に、腸間膜アーケード内のin vivo圧力を模倣するために圧力を70 mmHgまで下げ、動脈セグメントを安定させ、筋原性トーンを発現させます。本手順では、モノクロビデオ電荷結合デバイス（CCD）カメラを備えた顕微鏡を用い、10倍の対物レンズで動脈を観察します。ビデオフレームグラバーとリアルタイムエッジ検出システムを使用して、内腔径を測定します。次に血管径を記録し、筋原性緊張の発現をモニタリングします。その後、圧力を20 mmHgまで下げ、血管径が安定するまで待ちます。続いて、内腔圧を20、40、60、80、100といった段階的なステップで上昇させ、各圧力において動脈径が安定した状態になるまで待ちます。次のステップとして、トレースに示されているように、0.39 millimolar EGTAおよび0.1 millimolar sodium nitropressを含むカルシウムフリーPSSを用いて、圧力ステップ応答を繰り返します。ラットの小腸間膜動脈の直径は、70 millimeters of mercuryで加圧すると自発的に減少しますが、1 micromolar acetylcholineを添加すると、直径は開始時の直径近くまで増加しました。組織バスに1 micromolar phenylephrineを添加すると動脈径が減少し、本図は小腸間膜動脈をカルシウムフリーPSSでインキュベートすると動脈径が増加することを示しています。さまざまな灌流圧における単一の加圧動脈セグメントの直径を本表に示します。ここでは、PSS存在下およびカルシウムフリーPSS存在下で、管腔内圧を段階的に上昇させながら、動脈径を連続的に記録します。各圧力段階で得られた動脈径の曲線と、各圧力段階で得られた筋原性緊張の棒グラフがここに示されています。このビデオを視聴することで、小型抵抗動脈の筋原性挙動を評価する方法について十分に理解できるはずです。この手法に続いて、内皮破壊や動脈透過性などの追加の手順を行うことができます。これらの手順により、小型抵抗動脈の血管緊張調節における内皮およびカルシウムの役割に関するさらなる疑問を明らかにすることができます。

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収縮/拡張器応答の測定と並行して孤立した動脈筋細胞（電気生理学的手法をクランプするパッチを使用）（圧力筋運動記録法を用いて）でKV7（KCNQ）カリウムチャネル活性の測定は、血管平滑筋生理学でKV7チャネルの役割に関する重要な情報を明らかにすることができますし、薬理学。...

パッチクランプ電気生理学および圧力筋運動記録法を用いた動脈平滑筋KV7カリウムチャネル機能を探る

圧力筋運動記録法では、容器の無傷の小セグメントは、2つの小さなカニューレに取り付けられて、適切な内腔の圧力に加圧した。ここでは、マウス3の血管弛緩応答を測定する方法を説明...

圧力筋運動記録法を用いたマウス抵抗動脈機能を評価

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ワイヤー図法を使用してマウスの腸間膜動脈の等尺性収縮力測定

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テンソメトリック小容量チャンバーミオグラフィを用いたマウス胸部大動脈の内皮依存性血管弛緩の測定

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光ファイバ圧力トランスデューサを使用したラットの硬膜外頭蓋内圧測定

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バイオアッセイとしてウシ腸間膜動脈と静脈の切片を分離して使用すると、小腸で血管作用をテストするために

学ぶ 圧力筋運動記録法による小抵抗腸間膜動脈の血管収縮応答評価法。ラットから血管を分離し、カニューレーションと加圧を行い、薬理学的刺激に対する可逆的応答を測定することで、血管緊張の生理学的機構を解明します。

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