Name: 精子形成細胞学的分析：ライブとの固定の準備ショウジョウバエ精巣 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-20T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 30 s
Description: 学ぶショウジョウバエ精巣の解剖・固定・抗体染色による精子形成の細胞学的観察法。ライブイメージングと免疫蛍光法を用いて、発生段階別の細胞形態とタンパク質局在を詳細に解析できます。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

著者らは、リー·ラボでカレンヘイルズから専門家の助言で精子形成を研究するため、これらの受け入れ方法を確立するために、マイケル·アンダーソンに感謝したいと思います。 H·小田とY秋山-ODAは、寛大に、γ-チューブリン-GFPは株式を飛ぶ提供。この作品は、LAL（GM074044）にNIHのR01の助成金によってサポートされていました。

1。精巣の解剖<ol><li> CO 2のストリームを使用して、ボトルまたはバイアル中のハエを麻酔し、フライパッドに移す。 </li><li>並べ小さな絵筆を使って解剖顕微鏡下で飛んで、目的の遺伝子型のショウジョウバエの雄の（実験に応じて）適切な数を収集します。 （2-5日齢）少し古い男性は、細胞を検査するための理想的であるのに対し（0-2日齢）の若い男性は、精子形成の初期段階を通じて細胞を検査するための理想的な（ 例えば 、精原細胞、精母細胞、早期減数分裂後の精子細胞）精子形成の最終段階にある（特に、成熟精子）。 </li><li>各（解剖時に液体中に浮遊するからハエを防ぐために）飛んでから翼を削除するために鉗子を使用してください。 </li><li>上のシリコーン被覆解剖皿に降下;〜リン酸緩衝生理食塩水（PBS 130mMのNaClを、7のNa 2 HPO 4、3mMののNaH 2 PO 4）を500mlの追加黒の背景。他の水溶液が正常精巣解剖3のために使用されている。 </li><li>ポイントは、その場の前の方に鉗子、胸部でそれを把握し、PBSドロップでそれを浸す。解剖顕微鏡を通して見ながら、それが腹部から外れるまで後方に外性器（腹側腹部の後端に位置ダークブラウン構造）を把握し、引っ張​​って鉗子の別のペアを使用しています。ほとんどの場合、精巣、精嚢、および付属腺は外性器と腹部に沿ってから削除される、そうでない場合には、腹部に鉗子の単一の対を挿入し、精巣を引き出す。 </li><li> PBS降下の二対の鉗子（ 図2）を用いて付属腺および外性器から分離睾丸。野生型の精巣は、簡単に自分の黄色い色で隣接白の組織とは区別される。 2すぐにステップ進みます。 </li><li> pharate男性（ 私から精巣を単離するために。。電子蛹のケース内に囲まれている）、追加のステップは、第蛹ケースからハエを除去することを含むことを行う必要があります。この手順は、以前に別の場所で31記載されている。ステップ1.2から始まる大人の精巣の場合と解剖を進める。 </li><li>幼虫男性から精巣を単離するために、 ショウジョウバエの幼虫の卵巣32を単離するためのプロトコルの変更を行う。簡単に言うと、オスの幼虫は脂肪体の後部3分の1に埋め込まれた大規模な、明確な、楕円形の構造（幼虫精巣）のペアが存在することによって、女性の幼虫と区別することができる。幼虫の精巣を単離するために、部分的にフレイ幼虫卵巣の単離のために説明したように腹部から精巣と周囲の脂肪体を分離するために男性の幼虫を開きます。本明細書に記載されたプロトコルのステップ2に直ちに進む。精巣は、後述する直前卵巣32について記載したように（2.3又は3.14〜ステップ）に取り付け脂肪体から除去することができる。 </li></ol><ol><li>優しく角のガラスカバースリップ上のPBSで4-5 mLの低下で精巣の2〜3ペアを配置するためにピンセットを使用してください。少なすぎる液体は時に押しつぶされ、細胞が破裂する原因となりますのに対し、あまりにも多くの液体が押しつぶされた場合に適切に広がるから細胞を防ぐことができます：PBSボリュームに精巣数の比を調整する必要があることに注意してください。オプション：使用シリコン処理カバーがステップ3.2でのスリップをカバーするために、組織の接着を最小限にするためにスリップ。 </li><li>押しつぶし中のスライド上に引き裂か領域からその精巣の内容が主になり、出力に注意（調製において所望の生殖系列細胞型の存在を最大にするように適切な位置に各精巣オープン引き裂くためにピンセットを使用しステップ）精原細胞および精母細胞を濃縮するため、その先端チップ（レベル1、 図2B）に隣接して精巣を開き涙。精母細胞および精子細胞を濃縮するため、涙は、POSでの精巣を開くレベル1（レベル2、 図2B）に少し基礎ition。より成熟した生殖細胞系細胞を濃縮するために、涙は曲率が（レベル3、 図2B）を開始する場所に近い精巣を開きます。 </li><li>優しく睾丸をつぶすためにカバースリップの上にガラス顕微鏡スライドを配置し、一人でカバースリップの重量が適切に押しつぶさ試料を得るために十分であるように手動で圧​​力を加えないでください。気泡をトラップ避けるようにしてください。オプション：使用したポリ-L-リジンコーティングした顕微鏡は、ステップ3.2にスライドする組織の付着を促進するためにスライドする。 </li><li>位相差顕微鏡による生きた細胞を観察するために（理想的には準備の15分以内）すぐに準備を使用してください。精巣内の蛍光タグ付きタンパク質の発現を有するトランスジェニックハエのために、生きている細胞は、この段階で、蛍光顕微鏡で検査することができる。代わりに、固定と抗体染色（プロトコル3）に進む。 </li><li>優しくクリーニングWを使用してカバーガラスの下から余分な液体を吸い上げる生殖細胞に焦点が明らかになるまでIPEは、調製物の平坦化を可能にする。 </li></ol> 3。ホルムアルデヒド固定および抗体染色<ol><li>スナップ（液体窒素バブリングを停止するまで）、液体窒素中で簡単にそれを浸漬金属トングのペアを使用して（プロトコル2）から押しつぶさ精巣を含む各スライドを凍結する。 </li><li>すぐにカミソリの刃を使用して、カバーガラスを取り外します。 </li><li>氷冷95％エタノール（分光光度グレード、メタノールを含まない）で満たされた予冷したガラススライドラックにスライドを転送するために、金属トングを使用する。 10分間-20℃で保存。 </li><li> PBS +0.1％トリトンX-100（PBS-T）中の4％ホルムアルデヒドを充填したガラススライドラックにスライドを転送するために、金属トングを使用する。 7分間室温で保管してください。 </li><li> PBSで満たしたガラススライドラックにスライドを転送するために金属製トングを使用してください。室温で5分間、PBSでスライドを洗浄する。 1Xを繰り返します。 （ガラススライドラックでソリューションを破棄することにより、すべての洗浄を行う<em&gt;つまり。それを注ぐ）と新鮮な溶液に置き換えて。 </li><li> PBSを捨て、細胞膜を透過性にするために、室温で30分間、PBS-Tでスライドを浸す。 </li><li>室温で5分間、PBSでスライドを洗浄する。 2Xを繰り返します。 </li><li>ステップ（オプション）ブロッキング：室温で45分間、PBS中のスライドプラス1％BSAを浸します。 </li><li> （ステップ3.9および3.11で追加）抗体溶液を閉じ込めるために（目で見えやすい）押しつぶされた組織の周囲にスライド上に円を描くように、疎水性のバリアペンを使用してください。免疫染色を行いながら組織を常に湿った保たれるべきである。 </li><li>円内の組織に（抗体によっては、1時50分にPBS-T、1:400で希釈）一次抗体の30〜40 mLを加え。ブロッキングを実行した場合、PBS-T +1％BSA中で一次抗体を希釈する。 （ 図4における中心体の染色のため）、抗-γ-チューブリン抗体を1:100に希釈した。 例えば （湿った、暗い室内でインキュベートする。閉じたプラスチックの箱室温または4℃で一晩2時間湿ったペーパータオル）と</li><li>洗浄は室温の3倍で5分間、PBS中でスライドする。ブロッキングを実行した場合、PBS-Tで二回洗浄し、PBSで一回（室温で各5分）。 </li><li>組織に蛍光団結合二次抗体（PBS中1:400希釈）の30〜40 mlを加え、室温で1〜2時間、暗所でインキュベートする。 </li><li>室温で5分間、PBSでスライドを洗浄する。 2Xを繰り返します。 </li><li>円内の組織にDAPI溶液（PBS中0.2 mg / ml）を30〜40 mLを加え。 </li><li>優しく、気泡を捕捉しないように注意しながら、組織の上のガラスカバースリップを配置。気泡が表示された場合は、気泡がカバースリップの側面から脱出するまで、スカッシュを破壊することなく、カバーガラスの周りに慎重に移動します。 </li><li>クリーニングに使用したスライドの端から余分なDAPI​​ブロットする拭き取ります。 </li><li>明確なマニキュアを使用してスライドにカバースリップをシール。 </li><li>この準備を使用する蛍光顕微鏡による免疫染色した細胞を表示するには、次の3〜4時間以内で。 （少なくとも数週間まで）スライドの長期的な保存のため、DAPIでメディアをマウントグリセロールベースの​​ハードを使用し、-20˚Cで店舗スライド</li><li>別の方法として、（抗原によって異なる）メタノールの代わりに、ホルムアルデヒドのサンプルを固定します。ステップ3.2を通してプロトコル全体を完了した後、-20℃で10分間メタノールに押しつぶさ精巣のスライドを浸す以降のステップ3.5に進みます。 </li></ol>

<ol><li>McKim, K. S., Joyce, E. F., Jang, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytological+analysis+of+meiosis+in+fixed+Drosophila+ovaries%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cytological analysis of meiosis in fixed Drosophila ovaries.</a> Methods Mol. Biol. 558, 197-216 (2009).</li>
<li>Weil, T. T., Parton, R. M., Davis, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparing+individual+Drosophila+egg+chambers+for+live+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Preparing individual Drosophila egg chambers for live imaging.</a> J. Vis. Exp. , (2012).</li>
<li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBonaccorsi%2C+S+%22Drosophila+Protocols%22">Drosophila Protocols</a>. Sullivan, W., Ashburner, M., Hawley, R. S. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. 87-109 (2000).</li>
<li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunostaining+of+Drosophila+testes%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc.%22%5BJournal%5D)">Immunostaining of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2011, 1273-1275 (2011).</li>
<li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methanol-acetone+fixation+of+Drosophila+testes%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc.%22%5BJournal%5D)">Methanol-acetone fixation of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2011, 1270-1272 (2011).</li>
<li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+live+testis+squashes+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc.%22%5BJournal%5D)">Preparation of live testis squashes in Drosophila.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2011, (2011).</li>
<li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formaldehyde+fixation+of+Drosophila+testes%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc.%22%5BJournal%5D)">Formaldehyde fixation of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2012, (2012).</li>
<li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Paraformaldehyde+fixation+of+Drosophila+testes%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc.%22%5BJournal%5D)">Paraformaldehyde fixation of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2012, 102-104 (2012).</li>
<li>Bonaccorsi, S., Giansanti, M. G., Cenci, G., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((F-actin+staining+of+Drosophila+testes%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc.%22%5BJournal%5D)">F-actin staining of Drosophila testes.</a> Cold Spring Harb. Protoc.. 2012, 105-106 (2012).</li>
<li>Kibanov, M. V., Kotov, A. A., Olenina, L. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multicolor+fluorescence+imaging+of+whole-mount+Drosophila+testes+for+studying+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Biochem%22%5BJournal%5D)">Multicolor fluorescence imaging of whole-mount Drosophila testes for studying spermatogenesis.</a> Anal. Biochem. 436, 55-64 (2013).</li>
<li>Singh, S. R., Hou, S. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunohistological+techniques+for+studying+the+Drosophila+male+germline+stem+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Immunohistological techniques for studying the Drosophila male germline stem cell.</a> Methods Mol. Biol. 450, 45-59 (2008).</li>
<li>Zamore, P. D., Ma, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+Drosophila+melanogaster+Testes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Isolation of Drosophila melanogaster Testes.</a> J. Vis. Exp. (2641), (2011).</li>
<li>de Cuevas, M., Matunis, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+stem+cell+niche%3A+lessons+from+the+Drosophila+testis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The stem cell niche: lessons from the Drosophila testis.</a> Development. 138, 2861-2869 (2011).</li>
<li>Fabian, L., Brill, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+spermiogenesis%3A+Big+things+come+from+little+packages%5BTitle%5D)+AND+%22Spermatogenesis%22%5BJournal%5D)">Drosophila spermiogenesis: Big things come from little packages.</a> Spermatogenesis. 2, 197-212 (2012).</li>
<li>Giansanti, M. G., Sechi, S., Frappaolo, A., Belloni, G., Piergentili, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytokinesis+in+Drosophila+male+meiosis%5BTitle%5D)+AND+%22Spermatogenesis%22%5BJournal%5D)">Cytokinesis in Drosophila male meiosis.</a> Spermatogenesis. 2, 185-196 (2012).</li>
<li>Matunis, E. L., Stine, R. R., de Cuevas, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+Drosophila+male+germline+stem+cell+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Spermatogenesis%22%5BJournal%5D)">Recent advances in Drosophila male germline stem cell biology.</a> Spermatogenesis. 2, 137-144 (2012).</li>
<li>McKee, B. D., Yan, R., Tsai, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Meiosis+in+male+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Spermatogenesis%22%5BJournal%5D)">Meiosis in male Drosophila.</a> Spermatogenesis. 2, 167-184 (2012).</li>
<li>Zoller, R., Schulz, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+cyst+stem+cell+lineage%3A+Partners+behind+the+scenes%5BTitle%5D)+AND+%22Spermatogenesis%22%5BJournal%5D)">The Drosophila cyst stem cell lineage: Partners behind the scenes.</a> Spermatogenesis. 2, 145-157 (2012).</li>
<li>Cenci, G., Bonaccorsi, S., Pisano, C., Verni, F., Gatti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+and+microtubule+organization+during+premeiotic%2C+meiotic+and+early+postmeiotic+stages+of+Drosophila+melanogaster+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci.%22%5BJournal%5D)">Chromatin and microtubule organization during premeiotic, meiotic and early postmeiotic stages of Drosophila melanogaster spermatogenesis.</a> J. Cell Sci.. 107, 3521-3534 (1994).</li>
<li>Rebollo, E., Gonzalez, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+the+spindle+checkpoint+in+Drosophila+spermatocytes%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+Rep%22%5BJournal%5D)">Visualizing the spindle checkpoint in Drosophila spermatocytes.</a> EMBO Rep. 1, 65-70 (2000).</li>
<li>Castrillon, D. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toward+a+molecular+genetic+analysis+of+spermatogenesis+in+Drosophila+melanogaster%3A+characterization+of+male-sterile+mutants+generated+by+single+P+element+mutagenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Toward a molecular genetic analysis of spermatogenesis in Drosophila melanogaster: characterization of male-sterile mutants generated by single P element mutagenesis.</a> Genetics. 135, 489-505 (1993).</li>
<li>Giansanti, M. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+dissection+of+meiotic+cytokinesis+in+Drosophila+males%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Genetic dissection of meiotic cytokinesis in Drosophila males.</a> Mol. Biol. Cell. 15, 2509-2522 (2004).</li>
<li>Wakimoto, B. T., Lindsley, D. L., Herrera, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toward+a+comprehensive+genetic+analysis+of+male+fertility+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Toward a comprehensive genetic analysis of male fertility in Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 167, 207-216 (2004).</li>
<li>Fuller, M. T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFuller%2C+MT+%22The+Development+of+Drosophila+melanogaster%22">The Development of Drosophila melanogaster</a>. Bate, M., Martinez-Arias, A. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. 71-147 (1993).</li>
<li>Wolfner, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tokens+of+love%3A+functions+and+regulation+of+Drosophila+male+accessory+gland+products%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Biochem.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Tokens of love: functions and regulation of Drosophila male accessory gland products.</a> Insect Biochem. Mol. Biol. 27, 179-192 (1997).</li>
<li>Tram, U., Wolfner, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Male+seminal+fluid+proteins+are+essential+for+sperm+storage+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Male seminal fluid proteins are essential for sperm storage in Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 153, 837-844 (1999).</li>
<li>Kemphues, K. J., Raff, E. C., Raff, R. A., Kaufman, T. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutation+in+a+testis-specific+beta-tubulin+in+Drosophila%3A+analysis+of+its+effects+on+meiosis+and+map+location+of+the+gene%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Mutation in a testis-specific beta-tubulin in Drosophila: analysis of its effects on meiosis and map location of the gene.</a> Cell. 21, 445-451 (1980).</li>
<li>Gunsalus, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+twinstar%2C+a+Drosophila+gene+encoding+a+cofilin%2FADF+homologue%2C+result+in+defects+in+centrosome+migration+and+cytokinesis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Mutations in twinstar, a Drosophila gene encoding a cofilin/ADF homologue, result in defects in centrosome migration and cytokinesis.</a> J. Cell Biol. 131, 1243-1259 (1995).</li>
<li>Anderson, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Asunder+is+a+critical+regulator+of+dynein-dynactin+localization+during+Drosophila+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Asunder is a critical regulator of dynein-dynactin localization during Drosophila spermatogenesis.</a> Mol. Biol. Cell. 20, 2709-2721 (2009).</li>
<li>Sitaram, P., Anderson, M. A., Jodoin, J. N., Lee, E., Lee, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+dynein+localization+and+centrosome+positioning+by+Lis-1+and+asunder+during+Drosophila+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Regulation of dynein localization and centrosome positioning by Lis-1 and asunder during Drosophila spermatogenesis.</a> Development. 139, 2945-2954 (2012).</li>
<li>Martins, A. R., Machado, P., Callaini, G., Bettencourt-Dias, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopy+methods+for+the+study+of+centriole+biogenesis+and+function+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Microscopy methods for the study of centriole biogenesis and function in Drosophila.</a> Methods in cell biology. 97, 223-242 (2010).</li>
<li>Maimon, I., Gilboa, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+and+staining+of+Drosophila+larval+ovaries%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Dissection and staining of Drosophila larval ovaries.</a> J. Vis. Exp. (10), (2011).</li>
<li>Gonzalez, C., Casal, J., Ripoll, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+chromosome+content+and+nuclear+diameter+in+early+spermatids+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Genet.+Res%22%5BJournal%5D)">Relationship between chromosome content and nuclear diameter in early spermatids of Drosophila melanogaster.</a> Genet. Res. 54, 205-212 (1989).</li>
<li>Liebrich, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+cytochalasin+B+and+colchicine+on+the+morphogenesis+of+mitochondria+in+Drosophila+hydei+during+meiosis+and+early+spermiogenesis.+An+in+vitro+study%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue.+Res%22%5BJournal%5D)">The effects of cytochalasin B and colchicine on the morphogenesis of mitochondria in Drosophila hydei during meiosis and early spermiogenesis. An in vitro study.</a> Cell Tissue. Res. 224, 161-168 (1982).</li>
<li>Wong, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PIP2+hydrolysis+and+calcium+release+are+required+for+cytokinesis+in+Drosophila+spermatocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">PIP2 hydrolysis and calcium release are required for cytokinesis in Drosophila spermatocytes.</a> Curr. Biol. 15, 1401-1406 (2005).</li>
<li>Brand, A. H., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+gene+expression+as+a+means+of+altering+cell+fates+and+generating+dominant+phenotypes%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes.</a> Development. 118, 401-415 (1993).</li>
<li>White-Cooper, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+cell+type+and+stage-specific+ectopic+gene+expression+and+RNAi+induction+in+the+Drosophila+testis%5BTitle%5D)+AND+%22Spermatogenesis%22%5BJournal%5D)">Tissue cell type and stage-specific ectopic gene expression and RNAi induction in the Drosophila testis.</a> Spermatogenesis. 2, 11-22 (2012).</li>
<li>Rebollo, E., Llamazares, S., Reina, J., Gonzalez, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+noncentrosomal+microtubules+to+spindle+assembly+in+Drosophila+spermatocytes%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Contribution of noncentrosomal microtubules to spindle assembly in Drosophila spermatocytes.</a> PLoS Biol. 2, (2004).</li>
<li>Cheng, J., Hunt, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Time-lapse+live+imaging+of+stem+cells+in+Drosophila+testis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Stem+Cell.+Biol.%22%5BJournal%5D)">Time-lapse live imaging of stem cells in Drosophila testis.</a> Curr. Protoc. Stem Cell. Biol.. 2, 10-1002 (2009).</li>
<li>Sheng, X. R., Matunis, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+the+Drosophila+spermatogonial+stem+cell+niche+reveals+novel+mechanisms+regulating+germline+stem+cell+output%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Live imaging of the Drosophila spermatogonial stem cell niche reveals novel mechanisms regulating germline stem cell output.</a> Development. 138, 3367-3376 (2011).</li>
<li>Belloni, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mutations+in+Cog7+affect+Golgi+structure%2C+meiotic+cytokinesis+and+sperm+development+during+Drosophila+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Mutations in Cog7 affect Golgi structure, meiotic cytokinesis and sperm development during Drosophila spermatogenesis.</a> J. Cell Sci. 125, 5441-5452 (2012).</li>
<li>Moon, S., Cho, B., Min, S. H., Lee, D., Chung, Y. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+THO+complex+is+required+for+nucleolar+integrity+in+Drosophila+spermatocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">The THO complex is required for nucleolar integrity in Drosophila spermatocytes.</a> Development. 138, 3835-3845 (2011).</li>
<li>Wang, Z., Mann, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Requirement+for+two+nearly+identical+TGIF-related+homeobox+genes+in+Drosophila+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Requirement for two nearly identical TGIF-related homeobox genes in Drosophila spermatogenesis.</a> Development. 130, 2853-2865 (2003).</li>
</ol>

著者は、彼らが競合する経済的利益を持っていないことを宣言します。

野生型のハエの精巣は、容易に、それらの黄色（これとは対照的に、隣接する白の組織）に識別することができますが、 白の変異型ハエの精巣は白であり、従って、時折、腸と混同することができます。 P-エレメントで見つかったミニ白遺伝子が精巣内の色素蓄積を促進しないので、 白の背景に、典型的には、ほとんどのトランスジェニック株は、、また白い精巣を持っています。 ショウジョウバエの精巣は、色で区別できない場合には、他の容易に認識可能な特徴は、対12での螺旋パターンと出現が含まれています。一部の労働者はそれが簡単に精巣12を隔離するために代わりに鉗子の解剖針を使用することを見つけることに注意してください。 このプロトコルの重要なステップは、潰れ精巣の調製である。一つの有用なアプローチは、数ミリように精巣を含むカバースリップの上にスライドを置くことで、表面TEカバースリップ上のPBS nsionは、スライドに向けた組織を含むカバースリップを持ち上げる。この方法は、嚢胞...

ショウジョウバエの精巣は、幹細胞の調節、減数分裂および精子の開発13-18を含む多くの生物学的プロセスの研究のための理想的なモデル系である。精母細胞とその減数分裂のスピンドルは精子形成の間に大規模なので、細胞学的分析のための便利な、リラックスした細胞周期チェックポイントである細胞周期遺伝子の変異の研究を促進する。異なる細胞型は、精巣の長さに沿って順序付けられた進行において観察することができ、精子形成を中断させるが、この全体的な配置に変化をもたらすことができる。 ショウジョウバエの遺伝学的ツールと組み合わせ、これらの機能は、精子形成21〜23の変異解析を容易にした。 ショウジョウバエの精子形成の段階は明確に定義されています。嚢胞内で同期開発の生殖系列細胞は精巣の長さに沿って精子形成の段階を経て順次進行する。 BOの間に雄の生殖細胞の有糸分裂と減数分裂番目、細胞質分裂が娘細胞がリング運河（ 図1）として知られている細胞質の橋で接続されたままである不完全な発生します。精巣の先端チップは、一次精母細胞の16細胞嚢胞を生成するために、不完全な細胞質分裂で4糸分裂を経る精原細胞に生じる生殖細胞系列幹細胞の集団が含まれています。減数分裂前S期の後、一次精母細胞はG2、〜25倍〜90時間の間に細胞容積の増加に長期の成長期に入る。二次精母細胞とそれぞれ半数体精子細胞の64細胞嚢胞の32細胞嚢胞の形成における減数分裂Iおよび減数分裂IIの結果を通じて進行。未熟、円形精子が成熟精子を形成するために、広範な細胞リモデリングを受ける。減数分裂後の細胞は、伸長のバンドルと成熟した精子細胞、特に、精巣の容積の大部分を占める。 T女性のハエに対する機能精子の彼の成功の輸送は、いくつかの対になった構造（精巣、精嚢、および付属腺）および単一射精管で構成されている男性生殖器系、（ 図2）の異なる部分間の調整が必要になります。精子は、精巣内で生産され、交尾24まで精嚢内に格納されます。付属腺は、精液を生産分泌細胞が含まれています。精嚢からの移行精子精嚢および付属腺の両方に接続されて射精管、内の精液と混合される。精子と精液のこの混合物は、最終的には雄雌の腹部25の後方端部に配置射精バルブを介してフライの膣内に雄から排出される。精液中のタンパク質は、REPにspermathecaの複数形と呼ばれる特殊な器官内で精子の長期保管のために必須であるショウジョウバエのメス26のroductiveトラクト。 ショウジョウバエの精巣の単離および精子形成の様々な段階での細胞の可視化のための優れた方法は、科学文献3月12日で利用できます。私たちは、ここに添付のビデオデモで、これらのプロトコルの例を提示することによって、知識のボディに追加します。位相差顕微鏡のための生精巣試料の調製のためのプロトコールは、以前に記載された方法27に基づいている。ホルムアルデヒド固定および精巣の免疫染色のためのプロトコルは、先に説明した方法28に基づいています。本明細書に記載されるアプローチは、 ショウジョウバエの精子形成（例えば、ダイニンの役割を評価するために、 ショウジョウバエの精子形成中のマイナス端指向性微小管モーター）の多くの研究で使用されてきた。 基本的なプロトコルに加え、提案がvaryinために提供されG解剖精原細胞、精母細胞、または成熟精子を濃縮するようになっている。嚢胞がそのまま残るか、必要に応じて破壊さどちらように精巣を処理するための異なる方法が記載されている。モデル系としてショウジョウバエ精巣を使用する利点は、 ショウジョウバエの卵母細胞および胚と比較して、抗体および色素が容易に精巣からの分散次の細胞に浸透することができ、より少ない洗浄ステップが必要とされる、ということであるため、プロトコルは、比較的に行うことができる短い時間。

<table><tbody><tr><td>シルガード</td><td>ワールド精密機器</td><td>SYLG184</td><td>Kimaxペトリ皿からシリコーンコーティング解剖皿を作るための2液型シリコンエラストマー</td></tr><tr><td>PAPペン</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>NC9888126</td><td>テッドペラ #22309</td></tr><tr><td>クリアネイルプロテクター</td><td>ウェットアンドワイルド</td><td>7780235001</td><td></td></tr><tr><td>プロロングゴールド 退色防止剤 DAPI</td><td>Life Technologies</td><td>P36931</td><td></td></tr><tr><td>マウス抗γ-tubulin抗体(クローンGTU-88)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6557</td><td></td></tr><tr><td>Cy3-AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG&nbsp;</td><td>ジャクソン・イムノリサーチ</td><td>115-165-003</td><td></td></tr><tr><td>トリトン X-100</td><td>フィッシャー・サイエンティフィ</td>ック <td>BP151-100</td><td></td></tr><tr><td>エタノール</td><td>フィッシャー・サイエンティフィ</td>ック <td>AC61511-0040</td><td></td></tr><tr><td>メタノール</td><td>フィッシャー・サイエンティフィ</td>ック <td>A412-4</td><td></td></tr><tr><td>16% ホルムアルデヒド</td><td>サーモ・フィッシャー・サイエンティフィック</td><td>28908</td><td></td></tr><tr><td>シグマコート</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>SL2</td><td>メーカーの指示に従って、カバースリップ</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D-9542</td><td>0.5 mg/ml in 75% ethanol; -20 > 保存してください。C</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>リサーチプロダクツインターナショナル株式会社</td><td>S23020</td><td></td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9763</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S0751</td><td></td></tr><tr><td>Kimwipes 繊細なタスクワイパー</td><td>Fisher Scientific</td><td>S47299</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Research Products International Corp.</td><td>A30075</td><td>分子生物学グレードの</td></tr><tr><td>ガラスCoplin染色ジャー、スクリューキャップ</td><td>電子顕微鏡科学</td><td>70315</td><td></td></tr><tr><td>単一のつや消し顕微鏡スライドコー</td><td>ニング</td><td>2948-75X25</td><td></td></tr><tr><td>ポリ-L-リジンコーティング顕微鏡スライド</td><td>Polysciences、Inc.</td><td>22247-1</td><td>オプション (未処理の顕微鏡スライドを交換するため)</td></tr> <tr><td>角型カバーガラス</td><td>コーニング</td><td>2865-22</td><td></td></tr><tr><td>カミソリの刃</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>12-640</td><td></td></tr><tr><td>キマックス ペトリ皿</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>S31473</td><td>キンブル #23060 10015 EMD</td></tr><tr><td>鉗子</td><td>デュモン</td><td>52100-51S</td><td>パターン 5 INOX</td></tr><tr><td>ステミ 2000-CS ステレオスコープ</td><td>カールツァイス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>エクリプス 80i</td><td>ニコン</td><td></td><td></td></tr><tr><td>プラン-フルーア 40X 対物レンズ</td><td>ニコン</td><td></td><td></td></tr><tr><td>アクシオフォット</td><td>カールツァイス</td><td></td><td></td></tr><tr><td>プラン-ネオフルアー Ph2 40X 対物レンズ</td><td>カールツァイス</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

精子形成細胞学的分析：ライブとの固定の準備<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;精巣

Cytological Analysis of Spermatogenesis: Live and Fixed Preparations of Drosophila Testes

キイロショウジョウバエは、広く様々な生物学的プロセスを解明するために使用されている強力なモデル系である。例えば、 ショウジョウバエの雌雄生殖系の両方の研究は、現在の減数分裂の理解だけでなく、幹細胞生物学に大きく貢献しています。優れたプロトコルは、 ショウジョウバエの卵巣と精巣3月12日の単離およびイメージングのための文献で ​​利用可能です。ここでは、顕微鏡分析のための切開およびショウジョウバエ精巣の調製方法は、添付のデモビデオで説明されています。成人男性の腹部から精巣を単離し、蛍光顕微鏡による分析のために精巣を固定し、免疫染色のために位相差顕微鏡ならびにプロトコルによる分析のために生きている組織のスライドを調製するためのプロトコルが提示される。これらの技術は、dは示すショウジョウバエの変異体の特徴付けにも適用することができる精子形成においてだけでなく、タンパク質の細胞内局在を可視化する中efects。

ショウジョウバエの雄性生殖器官の解剖正しくペアの例は、 図2Aに示されている。成人男性のハエの腹部から削除精巣は通常、射精管（茶色、 図2A &#39;）と付属腺（緑、 図2Aのペア&#39;精嚢（青、 図2A &#39;）の対を介して）に接続されている。添付体細胞組織のほとんどから精巣を分離するために、射精管および付属腺は切り離され、このような唯一の精巣対および精嚢ことを破棄しなければならない（ 図2Bおよび2B &#39;）のまま。精嚢は、さらに処理されるだけ精巣対を残して、除去することができる。 精巣郭清のために選択された成人男性の年齢は重要な検討事項である。若い男性（羽化​​後0-2日間）で、精嚢は小さいとほぼ空、および精巣（ 図2のように）その最大直径である。若い男性を使用すると、生殖...

単離および位相コントラストおよび蛍光顕微鏡によって撮像するためのショウジョウバエ精巣サンプル（ライブおよび固定）の製造方法は、本明細書に記載されている。

Drosophila melanogaster is a powerful model system that has been widely used to elucidate a variety of biological processes. For example, studies of both ...

本手順の全体的な目的は、顕微鏡観察のためにショウジョウバエの精巣を解剖し、作製することです。まず、雄のハエの腹部から精巣対を解剖して取り出します。次に、適切な発達段階で精巣を裂き、精巣を押し潰して内部の細胞を放出させます。次に、圧砕した精巣を固定し、一次抗体および二次抗体でインキュベートします。最終ステップとして、組織をスライドガラスに封入し、イメージングを行います。最終的に、位相差顕微鏡または免疫蛍光顕微鏡を用いて、精子形成のさまざまな段階にある細胞の欠損や形態を観察し、さらにさまざまなタンパク質の細胞内局在を観察します。この手法は、精子形成の進行過程におけるタンパク質の重要な役割の特定など、発生生物学分野における主要な疑問への回答に役立ちます。ショウジョウバエの精巣の解剖を視覚的に提示することは極めて重要です。なぜなら、この操作に不慣れな人は、最初はハエの腹部内で精巣の位置を特定することに苦労する場合があるためです。さらに、組織の押し潰し（スクワッシング）を最も効率的に行う方法は、言葉で説明するよりも実演して示す方が容易です。解剖を開始するために、二酸化炭素気流を用いてボトルまたはバイアル内でハエを麻酔します。次に、麻酔したハエをフライパッドに移します。解剖顕微鏡下で小さな絵筆を用いてハエを仕分けし、目的の遺伝子型のophオスを約6〜8匹回収します。次に、ピンセットを使用して各ショウジョウバエの翅を取り除きます。これにより、ハエが液体中で浮き上がるのを防ぎます。解剖の際、黒色の背景を持つシリコンコーティング済みの解剖皿に、500 µLのリン酸緩衝生理食塩水（PBS）を1滴加えます。次に、除翼したハエの1匹の前端にピンセットを向けます。胸部をつまんで保持し、PBSの液滴に浸します。腹部腹端の後方に位置する暗褐色の構造を確認し、もう1本のピンセットを使用して、外部生殖器が腹部から脱落するまで後方に引っ張って摘出します。ほとんどの場合、精巣、精嚢、および副生殖腺は外生殖器と共に腹部から除去されます。しかし、除去されていない場合は、ピンセットを腹部に挿入して精巣を慎重に掻き出してください。2組のピンセットを用いて、精巣を副生殖腺および外生殖器から分離します。野生型の精巣は、周囲の白い組織とは異なる黄色い色で判別します。ライブイメージング用の試料を準備するため、ピンセットを用いて2～3対の精巣を、正方形のガラスカバースリップ上の4～5 µLのPBS液滴の中にそっと配置します。次に、引き裂きます。各精巣をピンセットで、作製物中に目的の生殖細胞系細胞タイプを最大限に含めることができる適切な高さの位置で開きます。精巣の内容物は、裂開した部位からスライド上に流出します。精原細胞および精母細胞を濃縮させるための圧砕ステップでは、濃縮効率を高めるために精巣の先端付近を裂開して

cytological-analysis-spermatogenesis-live-fixed-preparations

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

ショウジョウバエの精子形成時に中心体タンパク質のイメージングは、中心体生物学のための重要な新しいタンパク質を同定するだけでなく、このプロセスにおける既知の選手の特定の機能を解明するために強力な方法である。...

フライ精巣における撮像中心体

免疫染色は、組織内の特定の細胞タイプやタンパク質を可視化するための効果的な技術です。超音波処理を利用することにより、ここに記載されているプロトコルは、免疫染色の前に後期胚および幼虫からショウジョウバエ・メラノガスター組織を解剖する必要性を軽減する。私たちは、ホルムアルデヒド固定全マウント幼虫の免疫染色のための効率的な方法を提供します。...

後期胚および幼虫の超音波処理により促進免疫蛍光染色<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;組織<em&gt;その場で</em

このプロトコルは、Drosophila melanogasterの蛹からの無傷の精巣と生殖細胞系の嚢胞の解剖と栽培を説明しています。この方法により、ex...

解剖、イメージング、および薬理学的治療： ショウジョウバエ蛹精巣や独身男性生殖ライン嚢胞のex vivo培養

成熟したショウジョウバエ卵子の収集、調製、イメージングのためのプロトコールを提示します。これらの方法により、減数分裂中の染色体の挙動と紡錘体の組み立てと機能の視覚化が可能になります。...

固定における減数分裂Iのイメージング前中期および中期のための技術<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;卵母細胞

この尿細管スカッシュ手法の目的は、急速に細胞の完全性を維持しながらマウス精母細胞の開発の細胞機能を評価するためです。このメソッドにより、精子形成のすべての段階の調査のため、マウスの減数分裂の研究のため他の生化学的な分子の生物学的アプローチと一緒に簡単に実装することができます。...

精細管スカッシュ マウス モデルを用いた精子の細胞学的解析法

このプロトコルの目的は、ショウジョウバエの精細細胞を用いた細胞顕微鏡と固定細胞顕微鏡法により、無傷組織における細胞分裂を解析することである。このプロトコルは、ショウジョウバエ幼虫と初期の子犬から全体の無傷の精巣を分離する方法と、顕微鏡検査のためにそれらを処理し、マウントする方法を示しています。...

生きた無傷組織における細胞分裂解析のためのショウジョウバエ・ラーバルとプパル精巣の調製

我々は、同焦点顕微鏡に適し、また再現可能で信頼性の高い標識を可能にする 、ショウジョウバエ...

大精子細胞の3D共焦点解析のための全山 ショウジョウバエ 精巣の免疫染色

ここで提示されるプロトコルは、プレートベースの高含有画像を使用して胚発生時に複数 のショウジョウバエ...

ショウジョウバエ胚の調製と、自動高コンテンツアナライザを用いた生細胞顕微鏡のための微小注入

ここでは、成人マウス精巣から生の大腸および後の大動脈芽細胞を分離する簡単で効率的な方法を提示する。低細胞毒性、バイオレット励起DNA結合色素および蛍光活性化細胞選別を使用して、多くの下流用途に対して非常に富んだ精子細胞集団を単離することができる。...

バイオレット励起細胞透過性DNA結合色素を用いたマウス精子細胞の分離

ここでは、ショウ ジョウバエ...

後期胚 性ショウジョウバエ生殖腺 の解剖とライブイメージング

これは、 C.エレガンス 生殖腺解離とそれに続く凍結亀裂に一般的に使用される方法であり、抗体染色 による...

C.エレガンス 免疫蛍光およびDAPI染色のための生殖腺解離および凍結亀裂

学ぶショウジョウバエ精巣の解剖・固定・抗体染色による精子形成の細胞学的観察法。ライブイメージングと免疫蛍光法を用いて、発生段階別の細胞形態とタンパク質局在を詳細に解析できます。

精子形成細胞学的分析：ライブとの固定の準備

さらに動画を探す