Name: 総合蝸牛プロテオームを識別するために、ボトムアップとショットガンプロテオミクス (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-07T14:30:00.000+00:00
Duration: 14 min 23 s
Description: 学ぶ マウス蝸牛感覚上皮のプロテオーム解析法。ボトムアップとショットガンプロテオミクスを組み合わせ、膜タンパク質と可溶性タンパク質を多数同定する手法を解説します。

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著者は、博士ケントシーリー、この機能を使用するための南フロリダ大学の創薬イノベーションセンター（CDDI）プロテオミクス基盤施設のディレクターに感謝します。この作品は、BHASにNIH / NIDCD助成R01 DC004295によってサポートされていました

倫理に関する声明国立衛生研究所のガイドラインの下で記載されたマウスの組織を用いた実験は、南フロリダ大学施設内動物管理使用委員会（プロトコル3931R、3482R）により承認された。 1。タンパク質抽出<ol><li> -80℃で16〜30日齢（P30）CBA / Jマウスとストアから蝸牛感覚上皮を分離</li><li>実験の日に、1×リン酸緩衝生理食塩水（PBS）500μlで組織を洗浄する。千×gで3分間遠心し、上清を除去します。合計3回の洗浄のために繰り返します。 </li><li> 50mMのトリス-HCl、pH8.0、120mMのNaClを、50mMのNaFを、5mMのEDTA、500μg/ mlのAEBSF、10μg/ mlのロイペプチン、100μgのを/含有する溶解緩衝液100μlで、氷上で30秒間超音波処理した組織ソニックディスメン（;サーモフィッシャーモデル100）を使用してペプスタチンミリリットル、2μg/ mlのアプロチニン、および0.5μg/ mlのミクロシスチン。氷の上でクールな溶解液各超音波処理との間に1分間。 3Xの合計を超音波処理。 </li><li> 2分間、4℃で750×gでの抽出物を遠心分離し、新しいマイクロチューブに上清を除去します。氷上で30秒間超音波処理することによって、溶解緩衝液50μlにペレットを抽出します。 2分間、4℃で750×gでの抽出物を遠心分離する。 60分間、4℃で28,600×gで溶解物および遠心分離機の両方を兼ね備えています。新しいマイクロチューブに上清を除去し、ペレットに0.1％ASB-14を含む20μlの溶解バッファーを追加します。ボルテックスで1分間、4℃で60分間インキュベートする</li><li> 60分間4℃でクール、次いで、5分間、95℃で試料を加熱する。 10分間、25℃で16,000×gで遠心分離して従ってください。上清を回収し、新しいチューブに移す。 </li><li> 5分間、4℃で16,000×gで懸濁物を遠心分離し、消化のために、上清を保持します。 </li></ol> 2。 FASPを使用して全溶解液の二重トリプシンタンパク質消化<ol><li> 30μを追加4％ドデシル硫酸ナトリウム（SDS）を含む蝸牛のタンパク質抽出物（400μgの≤）リットルのアリコートを、100mMのトリス-HCl、pHが7.6および0.1 Mジチオスレイトール（DTT）を直接30Kスピンフィルター及び8200μlの混合トリス-HCl中のM尿素。 15分間14,000×gで遠心分離する。 </li><li> 15分間14,000×gで8 M尿素水溶液遠心200μLの濃縮物を希釈する。 </li><li> 1分間のフィルターと渦に集中する8 M尿素溶液中で10倍ヨードアセトアミド（IAA）の10を添加する。 10分間、14,000×gの遠心分離に続いて暗所で室温（RT）で20分間スピンフィルターをインキュベートする。 </li><li> 15分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に集中する8 M尿素溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。 50 mM重炭酸アンモニウム（ABC）10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。 </li><li> 1:100トリプシン0.4μgの/μLを追加します（w / w）の酵素へタンパク質比は、37℃で一晩（O / N）をインキュベートする</li><li>インキュベーションに続いて、10分間14,000×gで遠心分離器をフィルタするために50 mMのABC溶液40μlを加える。このステップ1Xを繰り返します。 </li><li> 10分間14,000×gでスピンフィルターと遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを追加します。新鮮なマイクロチューブにトリプシンペプチドを含む濾液を転送し、消化を停止するために1.0％ギ酸（FA）で酸性化する。 </li><li> 8 M尿素40μlのフィルターユニットを洗浄し、次に40μlの18MΩ水で2回洗う。 </li><li> 50 mMのABC溶液100μlをフィルタユニット3回洗浄します。最後の洗浄は、1:100（w / w）の酵素対タンパク質比でトリプシン0.4μgの/μLを加え、37℃でO / Nインキュベートした後に</li><li>第10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に50 mMのABC溶液40μlを添加することにより、消化物からのトリプシンペプチドを溶出させる。このステップ1Xを繰り返します。 </li><li>に0.5MのNaCl溶液50μlを追加10分間14,000×gで、フィルタ部と遠心。新鮮なマイクロチューブにトリプシンペプチドを含む濾液を転送し、1.0％のFAで酸性化する。 </li><li>試料は、標準としてBSAを用いてマイクロプレート比色アッセイを用いて定量することができる。 </li></ol> 3。 FASPを使用して全溶解液のエンドプロテアーゼのLysCとトリプシンタンパク質消化<ol><li>直接30Kスピンフィルターに4％のSDS、100mMのトリス-HCl、pHが7.6および0.1M DTTを含む蝸牛タンパク質抽出物30μlのアリコート（400μgの≤）を追加し、トリス塩酸8 M尿素を200μlと混合。 15分間14,000×gで遠心分離する。 </li><li> 15分間14,000×gで8 M尿素水溶液遠心200μLの濃縮物を希釈する。 </li><li> 1分間のフィルターと渦に集中する8 M尿素溶液中で10倍IAAの10μlを加える。暗闇の中で室温で20分間スピンフィルターをインキュベートし、10分間14,000×gで遠心する。 </li><li> 8 M尿素ゾルの100μLを追加15分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に集中するution。このステップの2倍を繰り返します。 10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に100 mMの、ABC溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。 </li><li> 1時50分（w / w）の酵素対タンパク質比でエンドプロテアーゼのLysC0.1μgの/μLを加え、30℃でO / Nインキュベート</li><li>インキュベーションに続いて、10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に100 mMの、ABC溶液40μlを加える。このステップ1Xを繰り返します。 </li><li> 10分間14,000×gでスピンフィルターと遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを追加します。新鮮なマイクロチューブにするlysCペプチドを含むろ液を移し、消化を停止するために1.0％のFAで酸性化する。 </li><li> 8 M尿素40μlのフィルターユニットを洗浄し、次に40μlの18MΩ水で2回洗う。 </li><li> 50 mMのABC溶液100μlをフィルタユニット3回洗浄します。最後の洗浄の後1:100酵素·ツー·プロトリプシン0.4μgの/μLを追加テイン比と37​​℃でO / Nインキュベート</li><li> 10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に50 mMのABC溶液40μlを添加することにより、トリプシンペプチドを溶出。このステップ1Xを繰り返します。 </li><li> 10分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを追加します。新鮮なマイクロチューブにトリプシンペプチドを含む濾液を転送し、1.0％のFAで酸性化する。 </li><li>試料は、標準としてBSAを有するマイクロプレート比色アッセイを用いて定量することができる。 </li></ol> 4。スピンカラムを用いて脱塩ペプチド<ol><li> 1分間1100×gでアセトニトリル（ACN）と遠心分離機を500μlを加えることにより、C 18 MacroSpin欄をアクティブにします。遠心分離後、フロースルーを捨てる。 </li><li> 1分間1100×gで0.1％のFA遠心500μlでカラムを平衡化。フロースルーを捨て、このステップ1Xを繰り返します。 </li><li>ペプチドを500μlまで追加の列ANにダイジェスト1分間1100×gで遠心分離dは。サンプル量が500μL以上である場合は、この手順を繰り返します。 </li><li> 1分間1100×gで0.1％のFA遠心500μlでカラムを洗浄。フロースルーを捨てる。このステップ1Xを繰り返します。 </li><li> 1分間1100×gで列遠心90:10 ACN対水の比率を250μlを加える。脱塩したペプチドを含む溶離液を収集し、新鮮なマイクロチューブに移す。このステップ1Xを繰り返します。 </li><li>真空遠心分離機で脱塩ペプチド試料を乾燥させ、完全にサンプルの乾燥をさせることは避けてください。 </li></ol> 5。イオン交換クロマトグラフィー<ol><li>ペプチドを分離するために200×2.1ミリメートル、5ミクロンのSCXカラム（ポリスルホエチルA）に消化されたタンパク質試料の50〜100μgのを注入する。 </li><li>を250μl/分の流速で50分間にわたって2〜40％Bの勾配を使用する。溶媒Aは5 mMのギ酸アンモニウム、25％アセトニトリル中のpHが3.0と75％のddH 2 Oである。溶媒Bは、500 mMのギ酸アンモニウム、pHは25％ACNおよび75％のddH 2 O中に6.0 </li><li> 280nmでのペプチド画分を監視し、フラクションコレクターを使用して、2分間隔での画分を収集します。 </li><li>塩除去を支 ​​援するために、5％のFAを含むのddH 2 O中の50％アセトニトリル500μlの真空濃縮器および再懸濁の乾燥画分。 </li><li>ナノLC-MS/MS分析のために使用する準備まで-80℃でRedry画分と店舗。 </li></ol> 6。アセトン沈殿前にGELFrEE分離に蝸牛タンパク質上清を脱塩しなければなりません。アセトン沈殿、タンパク質を脱塩し、濃縮するために用いることができる。 <ol><li>蝸牛上清に氷冷アセトンの3ボリュームを追加します。優しくボルテックスし、-20°、CO / Nでインキュベート</li><li>遠心4℃で15分間15,000 xgでのサンプル混合物および上清を除去する。 </li><li> 4で5分間14,000×gで冷やしたアセトンと遠心分離機を用いたタンパク質ペレット3回洗う℃、 </li><li>ペレットを空気乾燥させ、18MΩの水を112μlに溶解する。 </li><li>マイクロプレート比色アッセイを用いてタンパク質濃度を決定します。 </li></ol> 7。蝸牛感覚上皮のGELFrEE分別<ol><li> 5×試料緩衝液30μlを追加し（0.25 Mトリス-HCl、pH6.8、10％（w / v）のSDS、50％グリセロール、0.5％（w / v）のブロモフェノールブルー）18MΩの112μlに懸濁し、脱塩したタンパク質に水。 </li><li>タンパク質ジスルフィド結合を還元するために95℃で5分間、1M DTTおよび熱の8μlを加える。加熱後、室温まで冷却可能にします。 </li><li>アノードリザーバーにランニングバッファーを8mlの、収集チャンバをサンプリングするためにランニング緩衝液を150μl、及びカソードリザーバーにランニング緩衝液を6mlを加える。 </li><li>ピペットを用いてサンプルローディングチャンバ内に流入した可能性のあるバッファを削除します。 </li><li>蝸牛タンパク質混合物の負荷150μL（≤1 mg）を、サンプルローディング室に8％Trのを使用して3.5から150 kDaの質量範囲を有するカートリッジアセテートである。 </li><li>実行を開始するために下部電極と近い楽器蓋。 </li><li>最初は陰極リザーバにランニング緩衝液2 mlを追加し、ファイル名を指定して実行を再開し、機器に時間を一時停止しました。 </li><li>計器上の各一時停止間隔で、ピペットを用いて、サンプル収集チャンバーからサンプルを収集し、新たにラベルされたマイクロチューブに加える。ランニング緩衝液150μlで収集チャンバ2Xを洗って捨てる。 </li><li>サンプル収集室に新鮮なランニングバッファーを150μlを追加し、ファイル名を指定して実行を再開します。を150μl/画分の総体積の2.6時間の時間をかけてタンパク質画分を集める。 </li></ol> 8。 GELFrEE分画の1Dゲル電気泳動 1Dゲル電気泳動は、従来の酵素消化およびMS分析にGELFrEE分画からの結果を可視化するために使用することができる。 GELFrEEタンパク質画分は、4〜15％トリス-HClゲル上で分離することができる。 </p&gt; <ol><li> （試料緩衝液中で350のDTT）サンプル希釈バッファー5μlの各GELFrEE画分の5μlのアリコートを混ぜる。 </li><li> 3分間95℃で試料を加熱する。 </li><li>室温に冷却サンプル。 </li><li>個々のゲルのレーン内GELFrEE分、最後の未使用レーンの分子量標準の負荷5μLの負荷10μL。 </li><li>色素の先端がゲルの底に到達するまで1.5時間、125Vでゲルを実行するか。 </li><li>慎重にゲルを除去し、タンパク質の分離を視覚化するために銀染色プラスで染色。 </li></ol> 9。 FASPを使用しGELFrEE画分のタンパク質消化修飾FASP手順はGELFrEE画分の界面活性剤の除去、消化のために使用される。 <ol><li> 8 Mトリス - 塩酸中の尿素および25分間14,000×gで遠心分離器を200μlと混合、直接30Kフィルタユニットに個々​​の部分を追加します。 </li><li>尿素溶液200μlで濃縮液を希釈そして12分、14,000×gで遠心分離します。このステップ1Xを繰り返します。 </li><li>各フィルタ·ユニット、1分間ボルテックスに集中する尿素溶液中で10倍IAAの10μl加え、暗所で室温で30分間インキュベートする。 </li><li> 15分間14,000×gでフィルタユニットや遠心分離機に集中する尿素溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。フィルタユニット10分間14,000 xgで遠心分離器に100 mMの、ABC溶液100μlを加える。このステップの2倍を繰り返します。 </li><li>フィルターユニット1:50（w / w）の酵素対タンパク質比のためのLysC0.1μgの/μLを加え、30℃でO / Nインキュベート</li><li>インキュベーションに続いて、10分間14,000×gでスピンフィルターと遠心分離機に100 mMの、ABC溶液40μlを加える。このステップ1Xを繰り返します。 </li><li> 10分間14,000×gでスピンフィルターと遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを追加します。新鮮なマイクロチューブに各スピンフィルターからのlysCペプチドを含むろ液を移し、trifluoroacで酸性ポナルレスタット酢酸（TFA）。 </li><li> 40μlの18MΩ水で2回洗った後、8 M尿素40μlのスピンフィルターを洗ってください。 </li><li>スピンフィルターを50mMのABC溶液100μlで3回洗浄します。最後の洗浄の後1:100（w / w）の酵素対タンパク質比でトリプシン0.4μgの/μLを加え、37℃でO / Nインキュベート</li><li> 10分間14,000×gで50 mMのABCソリューションや遠心分離機の40μLを追加することにより、各フィルタユニットからトリプシンペプチドを溶出させる。このステップ1Xを繰り返します。 </li><li>フィルタユニット10分間14,000×gで遠心分離機に0.5MのNaCl溶液50μlを加える。新鮮なマイクロチューブに各フィルタ·ユニットからのトリプシンペプチドを含む濾液を転送し、TFAで酸性化する。 </li><li>真空濃縮器内のすべてのダイジェストを乾燥させます。 </li></ol> 10。 LC-MS/MS用サンプルの調製<ol><li>乾燥したのLysCおよびトリプシンペプチドを再構成すると、0.1％のFAと渦の20μlの画分を消化。 </li><li> 10 20,000×gで遠心分離サンプル分とは、新しいサンプルバイアルにサンプルの上部95％を削除します。 </li><li>塩および汚染物質を除去し、75ミクロン×10cmのC 18カラムクロマトグラフ分離を実行するためには100μmのX 25ミリメートルのサンプル·トラップ上に各々のペプチド画分の5μLを注入する。 </li><li> 200リットル/分の流量で100分かけて2〜40％Bの勾配を使用する。溶媒Aは95％のddH 2 Oおよび0.1％FAを含む5％のアセトニトリルである。溶媒Bは80％ACNおよび0.1％FAを含有する20％のddH 2 Oである。 </li><li>各MSは、高分解能質量分析計で走査するための10のタンデム質量スペクトルを収集する。 LTQオービトラップ質量分析計は、この実験で使用した。 </li></ol> 11。タンパク質同定<ol><li>フォワードおよびタンパク質配列と共通の汚染物質を逆の両方を含むUniProtのマウスデータベースを使用してタンパク質を同定する。 MASCOT検索エンジンとMaxQuantソフトウェアは、タンパク質データベースを検索するために使用される。 </li><li>使用可能な検索パラメータには、固定modificシステインのカルバミドメチルのATION、メチオニンの酸化の変数の変更は、タンパク質のN末端アセチル化、2の最大値は切断を逃した。識別のために考慮すべき最小のペプチドの長さが6アミノ酸である。 ±8 ppmおよび1.2 DA（質量誤差は、質量分析計を使用しているに依存します）のフラグメント質量許容のペプチド質量濃度誤差を入力してください。 </li><li> MaxQuantソフトウェアでは、ペプチドおよびタンパク質同定のために1％の偽発見率（FDR）を使用する。タンパク質同定は、一致したペプチドの数、パーセントタンパク質配列カバー率、およびペプチド配列でリストアップされている。 </li></ol>

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</ol>

著者らは、競合する利害を宣言していません。

<html>蝸牛感覚上皮からタンパク質同定を最大化するための鍵な手順は次のとおりです。消化、複数の分離技術の2）を使用し、高分解能質量分析計の3）利用のために複数のエンドプロテイナーゼの1）を使用します。複数の酵素の適用は、ペプチドの数を増加させ、タンパク質配列カバー率を向上させ、ひいては蝸牛組織から同定されたタンパク質の数を向上させることができる。トリプシン、最も一般的に使用されるプロテアーゼは、MSのイオン化及び断片化するのに適していたペプチドを生成し、タンパク質の効率的かつ特異的な切断を提供しています。しかし、このような、より効率的なペプチド切断を提供リジン残基でも切断する、のLysC、のように、従来のトリプシンに別の酵素を使用した。これは、のLysC /トリプシン消化から生成されたタンパク質の配列カバレッジがトリプシン/トリプシン消化物からのタンパク質配列カバー率に対するタンパク質配列カバー率の相対的な増加を示したことが観察された。 前のMSへの多次元分離のove_content &quot;&gt;インプリこれは、典型的には識別するのが困難である膜タンパク質を含む、複数のタンパク質の同定を可能にした。ショットガンプロテ...

プロテオミクスは、タンパク質の発現、機能、変更、および1の相互作用を解析することにより、複雑な生物系の研究である。いくつかの方法は、抗体マイクロアレイ2、二次元ゲル電気泳動3-5、およびDIGE 6を含む内耳のプロテオーム解析のために利用されてきた。しかし、タンパク質の限られた数が同定されており、内耳11,12において同定10,000以上の遺伝子および発現配列タグ（EST）と比較して、2,7-10を特徴とする、MSは、最も一般的に使用され、包括的技術であるタンパク質特性のためのプロテオミクス。このような蝸牛のような複雑なプロテオミクスサンプルの分析は、挑戦することができます。しかしながら、MSを有する複数の分離技術の組み合わせは、増大したダイナミックな濃度範囲およびピーク容量13に、ペプチドおよびタンパク質のより多くの同定を可能にする。多次元chromatogra物理ポートは、異なる吸着機構の使用を可能にすることによって、非常に複雑なタンパク質混合物を減少させる。 2一般的に使用されるMSのプロテオーム解析アプローチ、ショットガンとボトムアッププロテオミクスがあります。ショットガンプロテオミクスでは、インタクトなタンパク質の混合物を酵素的に消化し ​​、逆相液体クロマトグラフィー（RPLC）14,15、続いて強力な陽イオン交換クロマトグラフィー（SCX）を用いて、多次元クロマトグラフィーを用いて分離される。分離されたペプチドは、タンデムMSとデータベース15を検索にかける。この技術の主な利点は、何千ものタンパク質が単一の分析で同定することができ、技術は膜タン​​パク質に適していることである。 ボトムアップアプローチにおいて、タンパク質混合物は、通常、1次元または2次元電気泳動によって分離し、個々のタンパク質バンドまたはスポットを切り出し、トリプシンなどの酵素で消化し、通常は複数のペプチドが得られる。しかし、別のより最近のLYは、ボトムアッププロテオミクスで使用、電気泳動の手法を開発し、GELFrEEです。この技術は、液相中のタンパク質サンプルを分別し、分析前にそれらをあまり複雑にする。この手法は、再現性が高いタンパク質回収を提供し、複雑なタンパク質サンプル16内の高濃度タンパク質の分布を低減します。分離されたタンパク質から生じるペプチドを、データベース17〜19を検索するための配列タグを作成するために、ペプチドマスフィンガープリンティングまたはタンデムMS（MS / MS）を用いて、MSによって分析される。ボトムアップアプローチを使用する主な利点のいくつかは、高分解能の分離と包括的なタンパク質カバレッジを得る能力である。ボトムアッププロテオミクスプロテオミクス20で最も広く使用される技術である、したがって、いくつかのバイオインフォマティクス·ツールの提供。加えて、タンパク質消化の前に複雑な混合物中で分離することができるので、識別のより大きな可能性がある。 大きな課題の一つプロテオーム解析のための内耳を使用してその小さなサイズ、制限されたアクセス可能性、および細胞型の多様性21である。また、このようなイオンチャネル、輸送体および受容体としての機能を区別する重要なタンパク質は、22を単離することが困難であることができる膜タンパク質である。従って、フィルタ支援試料調製（FASP）をタンパク質抽出のために制限されている組織のプロテオーム解析のために有利で ​​あり、膜23を可溶化するために界面活性剤を必要とする。このフィルタリングは、膜および可溶性タンパク質のMS分析のために、低分子量混入物23,24からペプチドを単離する能力を可能にする。 本プロトコルは、合わせて、両方の可溶性タンパク質および膜タンパク質を分析し、蝸牛感覚上皮からのタンパク質IDの数を最大化するために修正される一般的に使用されるプロテオミクスのアプローチを記載する。私たちは、FASPマルチダイジェストでショットガンプロテオミクスを使用して説明しますイオンは、イオン交換クロマトグラフィー、高分解能MS、およびデータ分析。加えて、我々はGELFrEE、FASPマルチ消化、高分解能MS、およびデータ分析とボトムアッププロテオミクスについて説明する。

<table><tbody><tr><td>8%トリスアセテートカートリッジ&nbsp;</td><td>タンパク質の発見</td><td>42103</td><td></td></tr><tr><td>アセトン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>179124</td><td></td></tr><tr><td>アセトニトリル</td><td>ハネウェル</td><td>015-1L</td><td></td></tr><tr><td>AEBSF</td><td>カルバイオケム</td><td>101500</td><td></td></tr><tr><td>ギ酸アンモニウム</td><td>フィッシャー サイエンティフィ</td>ック <td>AC16861</td><td></td></tr><tr><td>アプロチニン</td><td>カルバイオケム</td><td>616370</td><td></td></tr><tr><td>ASB-14&nbsp;</td><td>Calbiochem</td><td>182750-5GM</td><td></td></tr><tr><td>ウシ血清アルブミン</td><td>BioRad</td><td>500-0112</td><td></td></tr><tr><td>C18 column&nbsp;</td><td>新対物レンズ</td><td>A25112</td><td>75 &mu;メートル×10センチメートル&nbsp;</td></tr><tr><td>DC Protein Assay</td><td>BioRad</td><td>500-0116</td><td>Microplate Assay Protocol</td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E9884</td><td></td></tr><tr><td>エンドプロテイナーゼ Lys-C</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3428</td><td></td></tr><tr><td>FASP Protein Digestion Kit</td><td>Protein Discovery</td><td>44250</td><td></td></tr><tr><td>ギ酸&nbsp;</td><td>Fluka</td><td>94318</td><td></td></tr><tr><td>GELFrEE 分画システム</td><td>タンパク質発見</td><td>42001</td><td>GELFrEE 8100</td></tr><tr><td>ロイペプチン</td><td>Calbiochem</td><td>108975</td><td></td></tr><tr><td>MacroSpin カラム</td><td>The Nest Group</td><td>SMM SS18V</td><td>Silica C18</td></tr><tr><td>Microcystin</td><td>Calbiochem</td><td>475815</td><td></td></tr><tr><td>Pepstatin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P5318</td><td></td></tr><tr><td>ポリスルホエチルAカラム</td><td>The Nest Group</td><td>202SE0503</td><td></td></tr><tr><td>ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>L3771</td><td></td></tr><tr><td>Sonic Dismembrator&nbsp;</td><td>サーモフィッシャー</td><td>15-338-53</td><td>モデル 100</td></tr><tr><td>トリプシン</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T6567</td><td>プロテオミクス グレード</td></tr></tbody></table>

総合蝸牛プロテオームを識別するために、ボトムアップとショットガンプロテオミクス

Bottom-up and Shotgun Proteomics to Identify a Comprehensive Cochlear Proteome

プロテオミクスは、複雑な生物システムへの洞察を提供することができ、一般的に使用されるアプローチである。蝸牛感覚上皮は、末梢神経系および中枢神経系で処理された電気化学的エネルギーに音の機械的エネルギーを伝達する受容体が含まれています。いくつかのプロテオミクス技術は、二次元の差ゲル電気泳動（2D-DIGE）、抗体マイクロアレイ、および質量分析（MS）などの内耳蝸牛を研究するために開発されてきた。 MSは、プロテオミクスにおける最も包括的かつ汎用性の高いツールであり、分離方法と組み合わせて、生物学的サンプルの詳細なプロテオームを提供することができます。 MSと組み合わせた分離方法は、タンパク質サンプルを濃縮する低分子量および疎水性タンパク質を検出し、プロテオームダイナミックレンジを低減することにより、低濃度タンパク質を同定する能力を有する。異なる消化戦略は、ペプチドおよびタンパク質を向上させ、全体溶解物または分画タンパク質溶解物に適用することができる配列カバー。強カチオン交換（SCX）、逆相（RP）、およびゲル溶出液画分の閉じ込め電気泳動（GELFrEE）を含む様々な分離技術の利用は、タンパク質同定のためのMS分析前に試料の複雑さを低減するために適用することができる。

蝸牛感覚上皮の最も包括的なプロテオームを得るためには、迅速な組織切開前タンパク質抽出およびサンプル調製に必要とされている。二つのプロテオミクス技術は、ショットガンとボトムアッププロテオミクスを使用することができる。 図1に示すように、ショットガンプロテオミクスのための試料を調製し、FASP消化手順を使用した。 FASP法は、タンパク質の濃度、界面活性剤の除去、および複数の酵素を用いたタンパク質の消化を可能にします。最初は、プールされた18分画にSCXカラム上で分画し、ナノLC-MS/MSにより分析したトリプシンでの第二の消化、続いてトリプシン消化した使用2重消化手順がありました。この実験的なアプローチを使用して単一LC-MS/MS実行を行うときに1485のタンパク質の総量を、1％FDRで同定された。同定されたタンパク質のうち、329及び258のタンパク質（ 図それぞれ、ミトコンドリアおよび原形質膜に分類された2A）。二重消化手順は、トリプシン消化に続いてのlysC消化で構成されていた。各消化物は、個々にロードされ、SCXカラム上で分離し...

人工内耳感覚上皮のプロテオーム解析は、その小さなサイズのために、膜タンパク質が単離および同定することが困難であるため、挑戦的であることができる。膜および可溶性タンパク質の両方は、高分解能質量分析と一緒に複数の調製方法及び分離技術を組み合わせることによって同定することができる。

Proteomics is a commonly used approach that can provide insights into complex biological systems. The cochlear sensory epithelium contains receptors that ...

本実験の全体的な目的は、さまざまなプロテオミクス技術を用いて、蝸牛感覚上皮から最大数のタンパク質同定を行うことです。これは、まず成マウスから蝸牛および感覚上皮を単離し、次いで溶解バッファー中で超音波処理を行うことでタンパク質を回収することにより達成されます。その後、ペプチドおよびタンパク質の配列カバレッジを向上させるため、全溶解液または分画したタンパク質溶解液に対して異なる消化戦略を適用します。次に、質量分析による解析の前にサンプルの複雑性を低減させるため、強陽イオン交換および逆相クロマトグラフィーを含む異なる分離手法が用いられます。その結果、複数のプロテオミクスアプローチと高分解能質量分析計を用いることで、マウス耳蝸管感覚上皮における多数の膜タンパク質および可溶性タンパク質が同定されました。抗体マイクロアレイや二次元ゲル電気泳動などの既存の手法に対する本手法の主な利点は、可溶性タンパク質と膜タンパク質の両方を大量に同定でき、それによって耳蝸管プロテオームのデータを拡充できる点にあります。この手法は、聴覚および涙液分泌不全に関連するバイオマーカーへの知見を提供できるだけでなく、加齢や乳がん、肺がんに関連するバイオマーカーの同定など、他の系にも適用可能です。また、血液などの他の生物学的試料の研究にも応用できます。私たちがこの手法を考案したのは、哺乳類の内耳から得られるプロテオミクスデータセットが限定的であること、特に本手順を開始するまでに同定されていた膜タンパク質の数が極めて少なかったことに着目したときでした。生後30日のマウスから蝸牛感覚上皮を単離します。組織を1xリン酸緩衝液で洗浄した後、組織に100 µLの溶解バッファーを加え、超音波破砕機を用いて氷上で30秒間超音波処理します。超音波処理の合間に溶解物を氷上で1分間冷却し、計3回超音波処理を行います。懸濁液を4°C、16,000 ×gで5分間遠心分離しました。終了後、消化用の超上清を回収します。次に、30 µLの蝸牛蛋白抽出液分注量を30 Kスピンフィルターに直接加え、Riss HCl遠心分離機を用いて8 M尿素200 µLと混合しました。混合物を14,000 ×gで15分間遠心分離します。終了後、濃縮液を200 µLの8 M尿素溶液で希釈し、先ほどと同じ条件で再度遠心分離を行います。次に、フィルター内の濃縮液に10 µLの10× oto acetamideと90 µLの8 M尿素溶液を加え、1分間ボルテックスします。スピンフィルターをマイクロ遠心機用ラックに設置し、14,000 ×gで10分間遠心分離した後、Endoproteinase Lys-Cを酵素：タンパク質比1:50（最終濃度0.1 µg/µL）で加え、室温・暗所で20分間インキュベートし、その後、混合物を30 °Cで一晩インキュベートします

bottom-up-shotgun-proteomics-to-identify-comprehensive-cochlear

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

一次繊毛は、さまざまなシグナル伝達経路に影響を与えます。哺乳類の蝸牛は、平面細胞極性(PCP)シグナル伝達を調べるのに理想的です。繊毛の機能障害は、蝸牛の成長、細胞パターン化、有毛細胞の配向、PCPの読み取りに影響を与えます。私たちの目標は、表現型解析、免疫組織化学、走査型電子顕微鏡法を通じて、マウス蝸牛のPCPシグナル伝達を分析することです。...

繊毛病マウス変異蝸牛における平面セル・-極性表現型の評価

シナプスの可塑性と記憶を制御する分子と経路の同定は、神経科学における依然として大きな課題です。ここでは、聴覚学習パラダイムにおける学習および記憶の固定化中にシナプスの分子再編成に関与すると思われるシナプスタンパク質の相対定量化に対処するワークフローについて説明します。...

聴覚弁別学習した後、マウス脳領域の高分解能定量的シナプスプロテオームプロファイリング

正確に高分解能質量分析計を接続した液体クロマトグラフィーによる定圧ラベリング、広範な分別、バイオインフォマティクス...

定圧ラベリング、豊富な液体クロマトグラフィー、質量分析法、およびソフトウェアによる定量化して深いプロテオームをプロファイリング

詳細なプロトコルは、分離、同定、キャピラリー ゾーン電気泳動-エレクトロ スプレー イオン化タンデム質量分析法 (CZE-ESI MS/ミリ秒) を使用して蛋白質のサンプルの proteoforms の特性に記述されています。単純な蛋白質のサンプルの proteoforms の高分解能特性と複雑なプロテオーム サンプルで proteoforms...

キャピラリー ゾーン電気泳動タンデム質量分析法による大規模なトップダウン プロテオミクス

本原稿は、正常マウスにおけるリボンシナプスの形態学的特徴および機能状態を評価するための実験プロトコルについて説明する。本モデルは、騒音誘発および加齢性共生性シナプトパシー制限モデルにも適している。以前のマウス研究の相関結果についても議論する。...

マウスコクレアの特定周波数領域におけるリボンシナプスの形態学的および機能的評価

本稿では、大人のマウス人工内耳における免疫組織化学のための人工内皮の10mmラウンドカバースリップに人工内皮の断片を付着させるために、細胞および組織接着剤の脱塩および使用を必要とする修飾人工内皮調製方法を提示する。...

大人のマウスにおける人工内耳表面製剤

記載されたプロトコルは、ラベルベースとラベルフリー定量の2つのアプローチを用いて、組織サンプルの最適化された定量プロテオミクス分析を提供します。ラベルベースのアプローチは、より正確なタンパク質定量の利点を有する一方で、ラベルフリーアプローチはより費用対効果が高く、コホートの何百ものサンプルを分析するために使用されます。...

組織サンプルの質量分析ベースのショットガンプロテオミクスの包括的ワークフロー

オープンソースのロボット液体処理システムを操作して、半自動タンパク質サンプル調製を行い、洗剤の除去、タンパク質消化、ペプチド脱塩のステップをカバーするための詳細なプロトコルと3つのPythonスクリプトが提供されています。...

オープンソースのラボロボットによるショットガンプロテオミクスサンプル処理

ここでは、脊椎動物 アフリカツメガエル...

発生中の(カエル)胚における細胞系譜ガイド質量分析プロテオミクス

我々は、開発中の主要な造血器官として胎盤を同定した。我々はその造血幹細胞（HSC）が生成され、ユニークな微環境のニッチの胎盤で展開されている両方とも発見。ここで、我々はマウス胎盤における造血幹細胞の分離と可視化に必要な実験手法を説明します。...

プラセンタから造血幹細胞の単離と解析

学ぶ マウス蝸牛感覚上皮のプロテオーム解析法。ボトムアップとショットガンプロテオミクスを組み合わせ、膜タンパク質と可溶性タンパク質を多数同定する手法を解説します。

総合蝸牛プロテオームを識別するために、ボトムアップとショットガンプロテオミクス

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