Name: 造血前駆細胞の養子移入を使用して、パイエル板におけるマウス形質細胞様樹状細胞の開発を評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-17T16:30:00.000+00:00
Duration: 13 min 34 s
Description: 学ぶ造血前駆細胞の養子移入を用いたマウスパイエル板における形質細胞様樹状細胞の発生評価法。Flt3L刺激下でのin vivo発生解析と免疫学研究への応用。

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私たちは、博士に感謝します。流体力学の遺伝子導入に関するアドバイスをアレックスGelbardとウィレムOverwijk。この作品は、NIH（AI098099、SSW）、癌エピジェネティクスのためのMDアンダーソンセンター、炎症および癌のためのMDアンダーソンセンター（SSW）とREボブ·スミス教育基金（HSL）からの補助金によって支えられている。

制度上の承認は、マウスを含む、本明細書に記載されているすべての実験操作のために、事前に取得する必要があります。これらは、骨髄前駆細胞の単離のためのC57BL6マウスの使用を含む、IFNAR - / -養子造血前駆細胞の転写およびインビボでのサイトカインの過剰発現のためHGTの使用のためのレシピエントとしてマウス。適切な住宅や動物のケアにも研究者や機関が提供する必要があります。さらに、制度の承認は、流体力学的な遺伝子導入（ すなわち 、組換えDNAの承認）に使用されるプラスミドが必要な場合があります。ここに記載された研究は、UT MDアンダーソンがんセンターの施設内動物管理使用委員会によって承認された。 1。流体力学的遺伝子導入（HGT） このステップは、生体 5 の DC拡大のためのFlt3L循環誘導するためのCDPの養子移入に2日前までに行う必要があります。 PRepare少なくとも5レシピエントマウス/グループ。 <ol><li>効率的なHGTを達成するために、レシピエントIFNARの血管- / -マウス（CD45.2 +）を 5〜10分間の加熱ランプにマウスを曝露することによって拡張されるべきである。 </li><li>拘束装置内にマウスを置き、70％エタノールで尾を消毒する。 </li><li> 27 Gの針を用いて尾静脈に無菌PBS 2mlにコードするプラスミドのFlt3L5μgのを注入する。示されるように、対照コホートのために、尾静脈を介して、空のベクター（PORF）5μgのを注入する。 </li><li>尾静脈注射の有害な効果がないことを確認するために15〜30分間マウスを監視します。 2日間の住宅施設にマウスを返します。 </li></ol> 2。マウス骨髄から造血前駆細胞の分離このステップは、2日HGTから行ってください。受信者IFNARへの養子移入のための骨髄前駆細胞の供給源として、コンジェニックCD45.1 +マウスを使用- /- 動物（CD45.2 +）。このプロトコルでは、コンジェニック系統は、ドナーとレシピエント由来のDCを区別するために、ならびにによるMHCミスマッチに対する免疫媒介性枯渇を回避するために必要とされる。約10〜20マウスは、転移実験のために造血前駆細胞（10 5細胞/レシピエントマウス）の十分な数を提供するために必要とされるであろう。 <ol><li> CO 2窒息と頸椎脱臼により10ジェニックのCD45.1 +マウスを安楽死させる。 </li><li>解剖トレイ上の各枝肉を置き、70％エタノールで腹部と脚を殺菌。 </li><li>半ば腹部の切開を行い、脚の長さに沿って皮膚をカット、各脚に腹部から皮膚を通ってカット。 </li><li>静かにそれぞれの脚から皮膚を除去し、切断され、鋭利なハサミを使用して股関節の枝肉から足を外します。 </li><li>慎重に鋭い刃を使用して、それぞれの脚の大腿骨と脛骨から筋肉を取り外す。 </li><li>削除する両方の鋭いメスで大腿骨および脛骨の端部は、（10％の熱不活性化ウシ胎児血清、1％ペニシリン/ストレプトマイシン、1 mMピルビン酸ナトリウムおよび50μMのβ-メルカプトエタノールをRMPI）完全RPMIを含有する培養皿に骨を配置する。 </li><li> 27 Gの針に接続された完全RPMIの1ミリリットルを含む注射器を準備します。 </li><li>大腿骨や脛骨の一端に27 G針を挿入します。そっと骨に完全RPMIを注入することにより、大腿骨や脛骨から骨髄をフラッシュします。その骨髄細胞が骨から除去されていることを確認し、これは視覚的に濁っ追放媒体を検出することによって達成することができる。 </li><li>徹底的に骨髄細胞を除去するために、各大腿骨と脛骨3回洗い流す繰り返します。 </li><li>静かに培養皿の上下3-5Xを、細胞をピペッティングすることによって単一細胞懸濁液を準備します。 </li><li>新しいculturに滲出細胞を配置する、40μMの細胞ストレーナーを通して骨髄細胞を渡すことによって、破片を除去Eディッシュ。無菌注射器プランジャの端部と穏やかな圧力によってストレーナに表示されるすべての細胞塊を混乱させる。 </li><li>溶解製造者の指示に従って商業RBC溶解緩衝液で総骨髄細胞懸濁液中に存在する赤血球（RBC）。 2ミリリットルRBC溶解buffer/4-6×10 7個の細胞（1マウスから、一般的に細胞）と室温で5分間のインキュベーション時間を使用してください。 </li><li> （1×PBS + 2 mMのEDTA +1％FBS）、ペレット化細胞を遠心分離により穏やかに洗浄液を吸引する10ミリリットルFACS緩衝液に再懸濁し、穏やかに培地を吸引し、500×gで4分間の遠心分離によって細胞をペレット化することにより骨髄細胞を洗浄バッファ。 </li><li>ステップ2.13で説明したように2回の洗浄の合計のため、洗浄を繰り返します。 </li></ol> 3。蛍光活性化細胞のCDPを隔離するために選別（FACS） このステップは、初期の負の選択手順にMidiMACS電池セパレータとMacのLD列へのアクセスを必要とする蛍光標識抗体で染色した後、多色の前駆サブセットを浄化するために、少なくとも3レーザーでだけでなく、FACS装置。 <ol><li>ステップ2.14における2回目の洗浄の後、骨髄細胞を数える。ステップ2.13に記載のように遠心分離により細胞をペレット化し、FACS緩衝液30μlあたり4×10 7個の細胞の最終濃度を達成するために、FACS緩衝液に再懸濁する。 </li><li> FACSのための細胞を調製するために、系列陰性細胞を最初に磁気ビーズカラムクロマトグラフィーを用いて骨髄液から系統陽性細胞を除去するネガティブ選択技術によって濃縮される。 CD3、CD19、CD11cの、のCD11bおよびTER-119 ABS：負の選択手順については、造血系統マーカーを認識し、以下の市販のラット抗マウス抗体（ABS）の各1μgのを追加します。 Abは、FACS緩衝液中の30μlの細胞懸濁液に2μlの/抗体の量で添加されるべきである。 </li><li> 30 4℃で細胞懸濁液をインキュベート分。ステップ2.13で説明したようにインキュベートした後、FACS緩衝液10mlで細胞を2回洗浄します。 </li><li> FACS緩衝液中4×10 7 cells/40200μlの最終濃度を達成するために細胞を再懸濁。細胞懸濁液の各40μLあたりのヤギ抗ラットIgGを磁気マイクロビーズの20を添加する。穏やかに混合し、30分間、4℃でインキュベートする。ステップ2.13で説明したようにFACS緩衝液10mlで細胞を洗浄。 </li><li> FACS緩衝液500μl中に10 8の骨髄細胞まで再懸濁する。 </li><li>製造者の指示に従ってMidiMACS電池セパレータへのMACS LD列をロードし、2ミリリットルのFACS緩衝液でカラムを前すすぎ。 </li><li> FACS緩衝液2.5mlに5×10 8細胞まで装填カラムに骨髄細胞懸濁液を適用する。確保コレクションチューブ（15mlコニカルチューブ）をカラムの下に配置されている。コラムFACS緩衝/洗浄の2ミリリットルで3回洗浄し、について濃縮される列を通過した細胞を回収系統陰性細胞。カラムから溶出した物質で細胞を（洗浄スルー）カウントします。 </li><li> FACSにより造血前駆細胞サブセットの正の選択を実行するには、次の蛍光共役ABSで染色細胞：IL-7R（パシフィックブルー）のFlt3（PE）、SCA-1（PE.Cy7）、CD115（APC）、C-KIT （APC.Cy7）ABSに加え、CD3、CD19、CD11cの、のCD11b、F4/80及びTER119に対して向け系統マーカーのAbの混合物（すべてPerCP抗体のCy5.5で標識された）。総容量100μlで各抗体の0.5〜1μlを使用する。 20〜30分、4℃で細胞懸濁液をインキュベートする。 </li><li> FACS緩衝液中に再懸濁ステップ2.13に示されるように、×10 7細胞/ ml 2-3の濃度で細胞を洗浄する。細胞塊を除去するために、35μMセルストレーナーキャップチューブを介して細胞をフィルタリングします。この最後のステップは、FACS装置を詰まら避けることが重要です。 </li><li> FACSステージにFACSチューブに細胞懸濁液を置き、CDPが（LIN -のc-kit LO CD115 +のFlt3 +）を並べ替えるには指示されたマーカープロファイルに基づい。完全RPMIの5ミリリットルを含む15ミリリットルチューブに精製した細胞を収集する。 </li><li> FACSの実行終了時に選別された細胞の絶対数を記録します。養子移入実験のための無菌PBSにステップ2.13再懸濁に示されるように、遠心分離により細胞をペレット化。 </li></ol> 4。 CDPを養子移入このステップは、典型的には、レシピエントマウスが収容されている動物施設で行われる。 FACS機の位置に応じて、前の養子移入に動物施設に精製された前駆細胞集団の輸送を含み得る。前駆細胞の懸濁液は、無菌に維持し、氷上で輸送されるべきである。 <ol><li> 100μlの滅菌PBSの総容量で10 5、精製の​​CDPを希釈することにより、注射のための細胞懸濁液を準備します。 27のG針に取り付けられたシリンジ内の細胞懸濁液を置きます。 </li><li>受信者を公開IFNAR - / - </suのp&gt;尾静脈を介して効率的な注入を達成するために5〜10分間の加熱ランプマウス（CD45.2 +）。 </li><li>拘束装置内にマウスを置き、70％エタノールで尾を消毒する。 </li><li> 27 Gの針を用いて尾静脈に100μlのPBS中の10 5 FACS精製の​​CDPを注入する。 </li><li>尾静脈注射の有害な効果がないことを確認するために15〜30分間マウスを監視します。住宅施設にマウスを返します。 </li></ol> 5。 pDCの量のPPと測定物の単離<ol><li>養子移入次の7〜10日で、レシピエントマウスを安楽死させる。優しく切開により、マウスを開き、腸を公開します。 </li><li>腸全体を削除し、PBSに浸したペーパータオルの上に置きます。細かい鉗子やハサミを使用して、小腸の壁に沿って表示されているすべてのプロジェクト参加を収集します。 C57BL6およびIFNAR - / -マウスは、一般的に見られる孤立リンパ濾胞と異なる5月10日、PP /マウスを持っている小腸18に沿って。プロジェクト参加は非常に慎重にすべてのPPが特定され、解剖されていることを確認、単一のマウスの中に、多くの場合、構造的に異なることに注意してください。 </li><li> PBSを含むペトリ皿にのPPを置き、糞を削除するために鉗子を使用しています。プロジェクト参加の清掃に二回、この手順を繰り返します。 </li><li> 37℃で1時間激しく撹拌しながら50ミリリットルのフラスコ中の10ミリリットル1Xハンクス液（HBSS）中の1 mg / mlのコラゲナーゼIVとダイジェストのPP </li><li>無菌注射器プランジャとストレーナーを通して40μmのセルストレーナーと力セルの上の区画に消化されたPPを配置します。を15mlコニカルチューブ中のPPの細胞懸濁液を収集する。 </li><li> 37％パーコール液（RPMI培地中で37％パーコール）の6ミリリットルで5分間再懸濁用の500×gで遠心分離することにより、歪PP細胞をペレット化。穏やかパーコール段階勾配を形成するために、細胞懸濁液の下に（RPMI培地中で、70％パーコール）70％パーコール溶液6mlを置く。 </li><li> 20分Aの遠心細胞遠心機とT 800 XGが解消 。単核細胞を、70分の37％の界面に移動します。遠心分離後、単核細胞集団は、界面領域での慎重なピペット操作によって収集されるべきである。ペレットを遠心分離によって細胞を回収し、完全RPMI /洗浄、50mlの二回洗浄する。大容量は、完全なパーコール除去を確実にするために使用される。 </li><li> CD45.1（APC.Cy7）、CD45.2（PE：養子移入前駆細胞（CD45.1 +）またはレシピエントマウス（CD45.2 +）に由来するマウスのpDCを検出するために、以下の抗体を用いて収集されたPP細胞を染色。Cy7で）のCD11c（パシフィックブルー）のCD11b（PerCP抗体のCy5.5）、B220（APC）、シグレック-H（PE）およびPDCA-1（FITC）ABS。ステップ3.9および3.10に示すようにPP細胞のフローサイトメトリー解析を行う。 B220 +シグレックH + PDCA-1 +表現-そののCD11c +のCD11bでのpDCを識別します。 ％のpDC xに：絶対pDCの番号は以下の式によって決定することができるタルPP細胞数= PPのpDC。 </li></ol>

<ol><li>Cella, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmacytoid+monocytes+migrate+to+inflamed+lymph+nodes+and+produce+large+amounts+of+type+I+interferon%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Plasmacytoid monocytes migrate to inflamed lymph nodes and produce large amounts of type I interferon.</a> Nat. Med. 5 (8), 919-923 Forthcoming.</li>
<li>Siegal, F. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+nature+of+the+principal+type+1+interferon-producing+cells+in+human+blood%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The nature of the principal type 1 interferon-producing cells in human blood.</a> Science. 284 (5421), 1835-1837 Forthcoming.</li>
<li>Asselin-Paturel, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+type+I+IFN-producing+cells+are+immature+APCs+with+plasmacytoid+morphology%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Mouse type I IFN-producing cells are immature APCs with plasmacytoid morphology.</a> Nat. Immunol. 2 (12), 1144-1150 Forthcoming.</li>
<li>Contractor, N., Louten, J., Kim, L., Biron, C. A., Kelsall, B. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cutting+edge%3A+Peyer%27s+patch+plasmacytoid+dendritic+cells+%28pDCs%29+produce+low+levels+of+type+I+interferons%3A+possible+role+for+IL-10%2C+TGFbeta%2C+and+prostaglandin+E2+in+conditioning+a+unique+mucosal+pDC+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Cutting edge: Peyer's patch plasmacytoid dendritic cells (pDCs) produce low levels of type I interferons: possible role for IL-10, TGFbeta, and prostaglandin E2 in conditioning a unique mucosal pDC phenotype.</a> J. Immunol. 179 (5), 2690-2694 (2007).</li>
<li>Li, H. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-intrinsic+role+for+IFN-alpha-STAT1+signals+in+regulating+murine+Peyer+patch+plasmacytoid+dendritic+cells+and+conditioning+an+inflammatory+response%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Cell-intrinsic role for IFN-alpha-STAT1 signals in regulating murine Peyer patch plasmacytoid dendritic cells and conditioning an inflammatory response.</a> Blood. 118 (14), 3879-3889 (2011).</li>
<li>D'Amico, A., Wu, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+early+progenitors+of+mouse+dendritic+cells+and+plasmacytoid+predendritic+cells+are+within+the+bone+marrow+hemopoietic+precursors+expressing+Flt3%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">The early progenitors of mouse dendritic cells and plasmacytoid predendritic cells are within the bone marrow hemopoietic precursors expressing Flt3.</a> J. Exp. Med. 198 (2), 293-303 Forthcoming.</li>
<li>Fogg, D. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+clonogenic+bone+marrow+progenitor+specific+for+macrophages+and+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A clonogenic bone marrow progenitor specific for macrophages and dendritic cells.</a> Science. 311 (5757), 83-87 Forthcoming.</li>
<li>Liu, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+analysis+of+dendritic+cell+development+and+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">In vivo analysis of dendritic cell development and homeostasis.</a> Science. 324 (5925), 392-397 (2009).</li>
<li>Naik, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+plasmacytoid+and+conventional+dendritic+cell+subtypes+from+single+precursor+cells+derived+in+vitro+and+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Development of plasmacytoid and conventional dendritic cell subtypes from single precursor cells derived in vitro and in vivo.</a> 8 (11), 1217-1226 Forthcoming.</li>
<li>Onai, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+clonogenic+common+Flt3%2BM-CSFR%2B+plasmacytoid+and+conventional+dendritic+cell+progenitors+in+mouse+bone+marrow%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Identification of clonogenic common Flt3+M-CSFR+ plasmacytoid and conventional dendritic cell progenitors in mouse bone marrow.</a> Nat. Immunol. 8 (11), 1207-1216 (2007).</li>
<li>Sathe, P., Vremec, D., Wu, L., Corcoran, L., Shortman, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Convergent+differentiation%3A+myeloid+and+lymphoid+pathways+to+murine+plasmacytoid+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Convergent differentiation: myeloid and lymphoid pathways to murine plasmacytoid dendritic cells.</a> Blood. 121 (1), 11-19 Forthcoming.</li>
<li>Hirai, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C%2FEBPbeta+is+required+for+%27emergency%27+granulopoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Immunol%22%5BJournal%5D)">C/EBPbeta is required for 'emergency' granulopoiesis.</a> Nat. Immunol. 7 (7), 732-739 (2006).</li>
<li>Overwijk, W. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunological+and+antitumor+effects+of+IL-23+as+a+cancer+vaccine+adjuvant%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immunological and antitumor effects of IL-23 as a cancer vaccine adjuvant.</a> J. Immunol. 176 (9), 5213-5222 (2006).</li>
<li>Cervantes-Barragan, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmacytoid+dendritic+cells+control+T-cell+response+to+chronic+viral+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Plasmacytoid dendritic cells control T-cell response to chronic viral infection.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109 (8), 3012-3017 (2012).</li>
<li>Goubier, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmacytoid+dendritic+cells+mediate+oral+tolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Plasmacytoid dendritic cells mediate oral tolerance.</a> Immunity. 29 (3), 464-475 (2008).</li>
<li>Lande, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophils+activate+plasmacytoid+dendritic+cells+by+releasing+self-DNA-peptide+complexes+in+systemic+lupus+erythematosus%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Transl.+Med%22%5BJournal%5D)">Neutrophils activate plasmacytoid dendritic cells by releasing self-DNA-peptide complexes in systemic lupus erythematosus.</a> Sci. Transl. Med. 3 (73), Forthcoming.</li>
<li>Liu, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmacytoid+dendritic+cells+induce+NK+cell-dependent%2C+tumor+antigen-specific+T+cell+cross-priming+and+tumor+regression+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Plasmacytoid dendritic cells induce NK cell-dependent, tumor antigen-specific T cell cross-priming and tumor regression in mice.</a> J. Clin. Invest. 118 (3), 1165-1175 (2008).</li>
<li>Fagarasan, S., Honjo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intestinal+IgA+synthesis%3A+regulation+of+front-line+body+defences%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Intestinal IgA synthesis: regulation of front-line body defences.</a> Nat. Rev. Immunol. 3 (1), 63-72 (2003).</li>
<li>Cisse, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcription+factor+E2-2+is+an+essential+and+specific+regulator+of+plasmacytoid+dendritic+cell+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Transcription factor E2-2 is an essential and specific regulator of plasmacytoid dendritic cell development.</a> Cell. 135 (1), 37-48 (2008).</li>
<li>Blasius, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+marrow+stromal+cell+antigen+2+is+a+specific+marker+of+type+I+IFN-producing+cells+in+the+naive+mouse%2C+but+a+promiscuous+cell+surface+antigen+following+IFN+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Bone marrow stromal cell antigen 2 is a specific marker of type I IFN-producing cells in the naive mouse, but a promiscuous cell surface antigen following IFN stimulation.</a> J. Immunol. 177 (5), 3260-3265 (2006).</li>
<li>Symons, A., Budelsky, A. L., Towne, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Are+Th17+cells+in+the+gut+pathogenic+or+protective%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Are Th17 cells in the gut pathogenic or protective.</a> Mucosal. Immunol. 5 (1), 4-6 (2012).</li>
</ol>

著者らは、競合する経済的利益を宣言していません。

（ - / -マウスなどIFNAR）について説明養子転写技術は、ここにPPのpDCが不足しているレシピエントマウスにおけるPPのpDCの人口のCDPの寄与を評価した。将来の実験では、それは、PPのpDCはのFlt3 +のCLPから派生するかどうか、特に、PPたpDCを生成する際に、他の前駆細胞サブセットの可能性を評価することが重要になります。この質問は、PPのpDCがPP積算5 IFNAR-STAT1シグナルに一意に敏感であり、なぜそれが不明なままであることから重要であり、PPのpDCは、他の器官におけるpDCに同様の発達手がかりに従ってください。 理論的には、この方法はまた、全ての器官におけるpDCの集団を欠くマウスにおいて実行されてもよい。例えば、転写因子E2-2、pDCの「マスター調節因子」（ すなわちTCF4 - / -マウス）の欠乏によるマウスは、印象的なのpDC枯渇19を示しています。しかし、TCF...

ここでは、一般的な樹状細胞前駆体（のCDP）はパイエル板（PP）の中の形質細胞様樹状細胞（PDC）の人口を生じさせることができるかどうかを評価するためのプロトコルを示しています。この方法を使用しての全体的な目標は、パイエル板（PPたpDC）中のpDCの発生調節を評価することであった。これが重要である理由は、PPのpDCは骨髄、血液および脾臓を含む他の組織に見出さのpDCは異なるので、それはPPのpDCに及び他のpDCの集団が発達および/または機能的に関連しているかどうかは不明であるということである。具体的には、pDCは広く、私はToll様受容体7と迅速なIFNの分泌1-3による9（TLR-7/9）の刺激に応答して、造血系内（IFN）生産インターフェロンプリンシパルタイプであることで知られています。しかし、PPのpDCは、私がTLRアゴニスト刺激4,5に応じて型IFNの産生が不足している。また、PPたpDCはまた、骨髄および脾臓で発見さたpDCと異なる型からの信号を必要とする私は（IFN）受容体（IFNAR1）をインターフェロンまたはIFNは彼らの開発および/ ​​または蓄積5用の分子STAT1シグナル伝達。これらのデータは、個別の調節機構がPPの他の器官のpDCに対するpDCに（ 例えば 、骨髄、脾臓）5を制御する可能性を示唆している。 この方法の開発につながった理論的根拠は、樹状細胞（DC）生物学の理解における最近の進歩に基づいていた。ほとんどは、全てではない、DCサブセットがFMS様チロシンキナーゼ3受容体（のFlt3）6-10を発現する造血前駆細胞から派生したが、DCの開発は古典的な骨髄およびリンパ経路に限定されるものではない。たとえば、のFlt3 +は骨髄系共通前駆細胞（CMPの、LIN - IL-7R - SCA-1 -のc-kit + CD34 +FcγRのLO / - ）のCDP（LIN -のc-kit LO CD115 +のFlt3 +）を生じさせる、whicHは、さらにPDCと従来のDC（のCDC）9,10に分化する。これとは対照的に、のFlt3 +リンパ球系共通前駆細胞（CLPの、LIN - IL-7R + SCA-1 LOのc-Kit LO）は pDCに11に、主に開発しています。したがって、従来の研究では、典型的な分析は、骨髄、脾臓および/または血液のpDCサブセットに制限されているがpDCには、のFlt3Lの調節下に少なくとも2つの異なる造血前駆細胞集団から生じる示す。このように、PPのpDCを生成前駆細胞集団（S）は、調査を必要とした。 PPのpDCの起源を理解することは、彼らが他のpDC集団と共通の発生経路を共有しているかどうかに光を当てる、または、PPでの生成中に別個の機構を利用します。 ここに記載されたアプローチのユニークな利点は、造血前駆細胞の養子移入の受容体としてのPPのpDCの深刻な不足を示しているマウスを使用することである。遺伝子を持つマウスまたはSTAT1（ のStat1 - / - ）をコードする遺伝子IFNAR1（ - / -マウスIFNAR）中チック欠失はPPのpDC 5の著しい減少を明らかにした。したがって、これらの株は、養子免疫伝達試験は、例えば、致死的照射のような強力な細胞アブレーションレジームの非存在下で行うことができるように、PP用のpDCが低減された環境を提供する。ここで紹介する方法のさらなる強さのFlt3Lの上昇循環量を刺激する流体力学的な遺伝子導入（HGT）を使用することである。これは、組換えタンパク質の注入に対して、 生体内でのFlt3Lを誘導するためのコスト効果的なアプローチを提供します。私たちの研究室にあるものを含む多数の研究は、実験条件5,12,13様々なサイトカイン量を誘導するためにHGTを採用しています。 DCの労働力と正確な免疫機能の分割は、免疫学の主要な関心事である。特に、pDCは、経口寛容および全身抗ウイルスの重要なメディエーターである応答は、まだ彼らはまた、自己免疫および癌14〜17の発展と持続性に貢献すると思われる。ここに記載されているプロトコルは、PPのpDCを規制発達のメカニズムをより十分に検討できるようになります。また、このアプローチは、研究がPP pDCの機能を評価することを可能にし、PPの内の他の集団の免疫調節および機能の理解に拡張することができる。

<table><tbody><tr><td>C57BL/6J</td><td>ジャックス</td><td>664</td><td></td></tr><tr><td>B6.SJL</td><td>JAX</td><td>2014</td><td></td></tr><tr><td>RPMI</td><td>Invitrogen</td><td>11875-093</td><td></td></tr><tr><td>15 ml コニカルチューブ</td><td>BD Biosciences 352095</td><td></td><td></td></tr><tr><td>50 ml コニカルチューブ</td><td>BD Biosciences</td><td>352070</td><td></td></tr><tr><td>滅菌外科用ピンセット</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>滅菌済み小型ペアハサミ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>滅菌済み大型ペアハサミ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>40 &mu;m細胞ストレーナーBD</td><td>Biosciences</td><td>352340</td><td></td></tr><tr><td>35 &mu;m細胞ストレーナーキャップチューブ</td><td>BD Biosciences</td><td>352235</td><td></td></tr><tr><td>RBC溶解バッファー</td><td>Sigma</td><td>R7757</td><td></td></tr><tr><td>FACSバッファー</td><td></td><td></td><td>PBS、2 mM EDTA、1% FCS、フィルター滅菌</td></tr><tr><td>Percoll</td><td>GE Healthcare</td><td>17089102</td><td></td></tr><tr><td>10x HBSS</td><td>Sigma</td><td>H4641</td><td></td></tr><tr><td>Collagenase IV</td><td>Worthington</td><td>LS004188</td><td></td></tr><tr><td>ヤギ抗ラットIgGマイクロビーズ</td><td>Milteyni Biotec</td><td>130-048-501</td><td></td></tr><tr><td>LDカラム</td><td>Milteyni Biotec</td><td>130-042-901</td><td></td></tr><tr><td>ラット抗D3</td><td>BDバイオサイエンス</td><td>555273</td><td></td></tr><tr><td>ラット抗CD19</td><td>BDバイオサイエンス553783</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ラット抗CD11b</td><td>BDバイオサイエンス553308</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ラット抗CD11c</td><td>BDバイオサイエンス</td><td></td><td></td>553799</tr><tr><td>ラット 抗Ter119</td><td>BD Biosciences</td><td>553671</td><td></td></tr><tr><td>抗CD3 (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-0031</td><td></td></tr><tr><td>抗CD19 (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-0193</td><td></td></tr><tr><td>抗CD11b (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-0112</td><td></td></tr><tr><td>抗CD11c (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-0114</td><td></td></tr><tr><td>抗F4/80 (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-4801</td><td></td></tr><tr><td>抗Ter119 (PerCP)</td><td>eBiosciences</td><td>45-5921</td><td></td></tr><tr><td>抗SCA-1 (PE.Cy7)</td><td>eBiosciences</td><td>25-5981</td><td></td></tr><tr><td>抗CD115 (APC)</td><td>eBiosciences</td><td>17-1152</td><td></td></tr><tr><td>Anti-c-kit (APC.Cy7)&nbsp;</td><td>eBiosciences</td><td>47-1171</td><td></td></tr><tr><td>抗IL-7R (パシフィックブルー)</td><td>eBiosciences</td><td>48-1271</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Flt3 (PE)</td><td>eBiosciences</td><td>12-1351</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD45.1 (APC.Cy7)</td><td>BDバイオサイエンス</td><td>560579</td><td></td></tr><tr><td>抗CD45.2(PE.Cy7)</td><td>Biolegend</td><td>109830</td><td></td></tr><tr><td>抗CD11c (Pacific Blue)</td><td>eBiosciences</td><td>48-0114</td><td></td></tr><tr><td>Anti-B220 (APC)</td><td>eBiosciences</td><td>25-0452</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Siglec-H (PE)</td><td>eBiosciences</td><td>12-0333</td><td></td></tr><tr><td>Anti-PDCA-1 (FITC)</td><td>eBiosciences</td><td>Nov-72</td><td></td></tr><tr><td>Cell Sorter</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td>e.g. BDフォルテッサ</td></tr><tr><td>ヒートランプ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>マウス拘束</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>具1mlシリンジ</td><td>ベクトンディキンソン</td><td>309602</td><td></td></tr><tr><td>27&frac12;G針(滅菌)</td><td>ベクトン・ディキンソン</td><td>305109</td><td></td></tr></tbody></table>

造血前駆細胞の養子移入を使用して、パイエル板におけるマウス形質細胞様樹状細胞の開発を評価

Assessing the Development of Murine Plasmacytoid Dendritic Cells in Peyer's Patches Using Adoptive Transfer of Hematopoietic Progenitors

このプロトコルは、腸のパイエル板（PP）に形質細胞様樹状細胞（PDC）を生成するために、精製された造血前駆細胞の能力を分析する方法について詳しく説明します。一般的な樹状細胞前駆体（のCDP、LIN -のc-kit LO CD115 +のFlt3 +）は 、FACSによりC57BL6マウスの骨髄から精製し、PPの大幅のpDCの人口が不足しているレシピエントマウスに移し、この場合、IFNAR - / -マウスは、転写レシピエントとして使用した。一部のマウスでは、樹状細胞増殖因子Flt3リガンド（Flt3Lを）の過剰発現は、Flt3Lをコードするプラスミドの流体力学的遺伝子導入（HGT）を用いて、従来のCDPの養子移入に施行された。のFlt3Lの過剰発現は、転送（または内因性）造血前駆細胞から発生するDC集団を拡張します。前駆転送後7〜10日で、養子移入前駆細胞から発生するのpDCは、上の受容細胞と区別された転送のCDPが+ CD45.1いると受信者がCD45.2 +のあることからpDCを持つCD45マーカー発現に基づい。 PP中のpDC集団に寄与するとのFlt3Lに応答する転写のCDPの能力は、レシピエントマウスからのPPの単一細胞懸濁液のフローサイトメトリーにより評価した。この方法は、他の前駆細胞集団は、PPのpDCを生成することができるかどうかを試験するために使用することができる。さらに、このアプローチは、HGTを介して循環するサイトカインを操作することによって、推定発達因子および/または適切なノックダウン、ノックアウトまたは過剰発現に前駆細胞サブセットを転送することにより、PP中のpDC発達に影響を与えると予測される因子の役割を調べるために使用することができる。この方法はまた、PPとのpDCはPP内の他の免疫サブセットの頻度または機能にどのように影響するかの分析を可能にすることができる。 - / -マウス、深刻な枯渇PP pDCを野生型マウスと比較して、このようにallowiを示し、この方法のユニークな特徴はIFNARの使用で致死照射からの交絡の影響がない状態でのPPのpDCのNG再構成。

我々の結果は、プロトコル2および3に詳述されるように、マウス骨髄細胞からのCDPの単離（ 図1）のためのゲート戦略を示している。 CDPは、全骨髄細胞の約0.1％を含み、およそ4-6×10 4のCDPは、一匹のマウスから単離することができる。養子移入すると、CDPははPDCとCDCは10に分化する。 <img alt="図1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51189/51189fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51189/51189fig1.jpg" /> のCDPのFACS精製の ​​ための図1のゲーティング戦略は。骨髄細胞は、C57BL6マウスから採取した。リネージュ陽性細胞は、MACSのマイクロビーズ媒介選択を用いて系統マーカー（CD3、CD19、CD11bの、CD...

このプロトコルは、FACSを介した細胞の分離、流体力学的遺伝子導入、およびパイエル板の免疫サブセットのフロー分析を含む技術を使用して、一般的な樹状細胞前駆体からのパイエル板での形質細胞様樹状細胞の分化を評価するための実験手順について説明します。

This protocol details a method to analyze the ability of purified hematopoietic progenitors to generate plasmacytoid dendritic cells (pDC) in intestinal ...

本手順の全体的な目的は、精製された造血前駆細胞を養子転移させた際、腸管のパイエル板において形質細胞様樹状細胞へと分化する能力を調べることです。これは、まず、樹状細胞増殖因子であるFLT3リガンドをコードするプラスミドを、形質細胞様樹状細胞欠損マウスのパイエル板へハイドロダイナミック遺伝子導入することによって達成されます。第2ステップでは、磁気ビーズ分離およびフローソートにより、野生型骨髄から共通樹状細胞前駆細胞を単離します。最終ステップでは、前駆細胞を、ハイドロダイナミック遺伝子導入法で処理したpyresパッチ形質細胞様樹状細胞欠損マウスに静脈内注射によって養子移植します。最終的に、ドナー造血前駆細胞由来のPI'sパッチ形質細胞様樹状細胞集団をフローサイトメトリーで評価することができます。この手法は、pyrene patch内に局在するプラズマサイトイド樹状細胞（pDC）の発達上の起源は何かといった、免疫学分野における重要な疑問の解明に役立ちます。この手法は、pyrene patchにおけるプラズマサイトイド樹状細胞の起源に関する知見を提供できるだけでなく、これらの組織内のリンパ球集団にプラズマサイトイド樹状細胞がどのように影響するかを理解するためにも応用可能です。養子移殖の2日前、ヒートランプの下で5〜10分間、CD 45 2陽性インターフェロンα受容体ノックアウトレシピエントマウス5匹の血管を拡張させます。次に、マウスをそれぞれ拘束具に入れ、尾部を70%エタノールで消毒します。続いて、27ゲージの針を用いて、5 µgの血漿およびコーティング済みのflit 3リガンドと2 mLの滅菌PBSを各個体の尾静脈に注入します。対照群には、5 µgの空ベクトルを注入します。マウスを15～30分間観察した後、飼育施設に戻します。実験当日、10匹の同系CD 45 1陽性C 57 black sixマウスから摘出した大腿骨と脛骨を、完全培地を含む培養皿に入れます。次に、各骨の片端に27ゲージの針を挿入し、完全培地を用いて骨髄をディッシュ内に3回ずつ洗浄し出します。排出された培地が混濁していることを確認し、骨髄細胞が確実に回収されているか確かめてください。培養ディッシュ内で培地をゆっくりと3〜5回ピペッティングし、単一細胞懸濁液を作成します。次に、骨髄細胞を40 µmのセルストレーナーに通してデブリを除去し、滅菌済みシリンジプランジャーの先端で軽く押し、細胞の凝集を解消します。ストレーナー上で細胞を遠心分離して回収し、上清を除去した後、4〜6 × 10⁷個の細胞に対し2 mLの溶血バッファーを加え、室温で5分間赤血球を溶血させます。その後、骨髄細胞に10 mLのFACSバッファーを加え、室温にて500 ×gで4分間遠心分離します。上清をそっと吸引した後、ペレットを10 mLのFACSバッファーで洗浄します。次に、抗体染色および洗浄の手順に従い、造血系リネージマーカー認識抗体で細胞を染色します。その後、細胞をヤギ抗ラット磁気ビーズと共にインキュベートします。マイクロビーズのインキュベーション中に、max LDカラムをMIDI max cell separatorにセットし、2 mLのfax bufferでカラムをプリリンスします。次に、カラムの下に15 mLコニカルチューブを配置し、2.5 mLのfax bufferに懸濁した最大5 × 10⁸個の細胞をカラムにロードします。1回あたり2 mLのfax bufferを用いてカラムを3回洗浄し、カラムを通過したリネージ陰性細胞を15 mLチューブに回収します。排除された細胞数をカウントします。次に、適切な蛍光標識抗体で細胞を染色した後、サンプルを FACS チューブに移し、目的のマーカープロファイルに基づいて共通樹状細胞前駆細胞をソーティングします。FACS で精製した細胞を 5 mL の完全培地を含む 15 mL チューブに回収し、FACS 運転の終了時に、ソーティングされた細胞の絶対数を記録します。遠心分離後、マウス1匹あたり合計100 µLの滅菌PBSに対し、精製した共通樹状細胞前駆細胞を1×10⁵個の濃度で希釈し、27G針を装着したシリンジに細胞懸濁液を吸引します。次に、実演した通り、CD45.1陽性前駆細胞を、レシピエントとなるCD45.2陽性インターフェロンα受容体ノックアウトマウスの尾静脈に注入します。養子移殖から7〜10日後、共通樹状細胞前駆細胞を注入したマウスから腸管を摘出し、PBSを浸したペーパータオルの上に組織を置きます。次に、精細鑷子と剪刀を用いて、小腸壁に沿って視認できるすべてのパイエル板を回収します。パイエル板は同一個体内であっても構造的な差異があることが多いため、すべてのパイエル板を確実に同定し、摘出するように注意してください。単離したパイエル板を、PBSを入れたシャーレの中で鑷子を用いて3回洗浄し、糞便を除去します。次に、50 mLフラスコ内で、10 mLのHBSSに溶解した1 mg/mLのcollagenase fourを用いて、37 °Cで激しく攪拌しながらP'Sパッチを消化します。1時間後、消化したPIパッチを40 µmのセルストレーナーに注ぎ、滅菌済みのシリンジプランジャーを使用して細胞を15 mLコニカルチューブに押し出します。ろ過した細胞懸濁液を遠心分離した後、ペレットを6 mLの37% per call solutionに再懸濁し、15 mLチューブに移します。次に、70% Percoll溶液 6 mLを慎重に下に加えて、Percoll密度勾配を形成します。その後、ブレーキをオフにした状態で、室温にて800 ×gで20分間遠心分離し、細胞を分離させます。最後に、界面に形成された単核細胞層を回収します。回収した細胞をペレット化した後、50 millilitersの完全培地で2回洗浄します。次に、CD 45 1陽性のPYSパッチを検出するために、適切な抗体で染色します。これらは、養子移殖されたCD 41陽性前駆細胞に由来する形質細胞様樹状細胞です。フローサイトメトリーで細胞を解析します。プラズマサイトイド樹状細胞は、CD11c陽性、CLEC4C陽性、PDCA-1陽性、B220陽性、CD11b陰性の表現型によって同定できます。最後に、この計算式を用いてプラズマサイトイド樹状細胞の絶対数を決定します。これらのドットプロットは、共通樹状細胞前駆細胞を単離するためのゲーティング戦略を示しています。先ほど実演したマウス骨髄細胞の場合、共通樹状細胞前駆細胞は全骨髄細胞の約0.1%を占めており、マウス1匹から約4〜6×10⁴個の細胞を単離して、フローサイトメトリーによりpDC（形質細胞様樹状細胞）を同定することが可能です。まず前方散乱光および側方散乱光によるゲーティングを行い、続いてCD11c陽性かつclec H陽性細胞のゲーティングを行います。インターフェロンα受容体ノックアウトマウスでは、野生型マウスと比較してpys patch plasmacytoid dendritic cellsが有意に減少しています。共通樹状細胞前駆細胞は、通常樹状細胞へと分化します。プラズマサイトイド樹状細胞とは対照的に、CD11c陽性clec H陰性の慣習的樹状細胞は、野生型マウスとノックアウトマウスの両方で同程度の量で観察されます。したがって、インターフェロンα受容体ノックアウトマウスを用いることで、致死的な放射線照射の影響を受けることなく、PSパッチプラズマサイトイド樹状細胞の再構築を検討することが可能になります。たった今実演したように、野生型の共通樹状細胞前駆細胞をインターフェロンα受容体ノックアウトマウスに養子移入すると、PIsパッチプラズマサイトイド樹状細胞の増加が誘導されます。さらに、FL3リガンドのハイドロダイナミック遺伝子導入による前処理は、PIsパッチにおけるプラズマサイトイド樹状細胞の拡大をさらに促進させます。これは、導入された共通樹状細胞前駆細胞、およびおそらく内因性のFL3陽性前駆細胞が、FL3リガンドに反応してpyrusパッチプラズマサイトイド樹状細胞を誘導することを示唆しています。また、どちらの条件においても、CD11c陽性clecH陰性の古典的樹状細胞の産生が刺激されており、これは古典的樹状細胞の発達起源と一致しています。PYSパッチプラズマサイトイド樹状細胞は、clecH、PDCA-1、B220を含む従来のプラズマサイトイド樹状細胞マーカーを発現し、LAC CD11bも発現していました。加えて、FL3リガンドのハイドロダイナミック遺伝子導入と共通樹状細胞前駆細胞の導入の両方を受けたインターフェロンアルファ受容体ノックアウトマウスのPYSパッチを解析したところ、プラズマサイトイド樹状細胞の約70%がドナー由来のCD45.1陽性共通樹状細胞前駆細胞に由来することが示されました。以上のデータは、共通樹状細胞前駆細胞の養子移植により、生体内でFL3リガンド介在性シグナルに応答してPIsパッチ形形質細胞様樹状細胞集団が誘導されることを共同で示しています。このビデオを視聴することで、PIsパッチ形形質細胞様樹状細胞の分離および同定方法について十分に理解できるはずです。

assessing-development-murine-plasmacytoid-dendritic-cells-peyer-s

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