Name: の蛹ケースを画像化キイロショウジョウバエ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-23T15:15:00.000+00:00
Duration: 6 min 50 s
Description: 学ぶキイロショウジョウバエの蛹ケースを損傷させずに画像化する共焦点顕微鏡法。高速共振スキャンにより光漂白を抑制し、細胞分裂や形態形成などの動的プロセスを長時間観察できます。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

著者は、知的支援、物質的な支援、および株式のために明千葉を認識したい。コメントのジュリアDallmanに感謝します。

1。作業を飛ばす<ol><li>室温10で、標準的なコーンミール寒天·糖蜜·酵母媒体上のハエを維持する。 </li><li>十字架は、羽化の6時間以内で処女を分離します。希望の遺伝子型の男性に横切った後、変更は3〜4日ごとに新しいバイアルに飛ぶ。 </li></ol>注：これらの実験では、Gal4の線A9がウィングに導入遺伝子の発現を駆動するために使用した。フライ株はブルーミントンストックセンターから入手することができます。これらの実験で使用した株はA9-GAL4（のBL＃8761）、His2Av-GFP（のBL＃5941）、SCO / CYO HsCre（のBL＃1092）、UAS-ChRFP-タブ（のBL＃25773）、lollibow 11が含まれています。 2。蛹の選択と取り付け<ol><li>ステージ蛹のどちらか白prepupae（WPP）としてそれらを収集し、それらが適切な年齢に達するまで、25℃でそれらを維持するか、形態学的基準12を使用します。 </li><li>細胞分裂、最近のヘッド外転を受けたセレクト蛹を観察する。この時点からわずか羽化直前まで（&gt; 96時間の時点で）、蛹は不動長時間タイムラプス観察を許可している。 </li><li>最初の水は絵筆にドラッグつついそっとして接着剤を緩めて、できるように分を待って、水で湿らせた絵筆でタッチしてバイアルから蛹を削除します。 </li><li>優しく唾液腺接着剤、食品粒子を除去し、水に絵筆でそれらをつついで選択された蛹を洗う。 </li><li>カバースリップ底（番号1.5カバーグラス）で25ミリメートルペトリ皿にきれいな蛹を転送します。 </li><li>目的の組織をカバーガラスに最も近くなるようサポートなどの粘土や歯科用ワックスのどちらかの薄いストリップを使用して、蛹をマウントします。 注意：ここに記載された研究では、蛹の翼、脚、腹部histoblastsまたは背側胸背板が観察されている。実際には、蛹のケースの表面の20ミクロン内の任意の組織が観察される。 </li><li>オリエント蛹慎重になるようTISSU関心のあるeは、カバーガラス表面に平行である。 </li><li>蛹がマウントされると、蛹とカバーガラスの間の空間にチオジエチレングリコール（TDG）の薄層を転送するために絵筆を使用しています。 </li></ol>注：TDGは、表面散乱を低減するオイルの屈折率と一致し、酸素が ​​組織13に浸透することを可能にする。それらが細胞の挙動を迅速に停止を引き起こし、酸素の組織を奪う傾向があるので、油の使用は、お勧めしません。 3。イメージング注：画像は、共焦点顕微鏡は、共焦点性が蛹ケースの強烈な照明によって生じる隠蔽の背景のほとんどが削除された必須である可能性が高い。 <ol><li>蛹の開発と生存率に照明の影響を最小限に抑えるために、共焦点の設定を調整します。そのためには、励起の強度と収集の感度のバランスを取る。イメージングWIの一般的な設定ライカSP5番目の120μmの共振スキャナ（8,000 Hz）で、2％（20％の電力の10％の透過率）に設定されたレーザパワー、ピンホールのセットを使用し、ラインが8に設定されアベレージ。設定は、実験条件に依存して変化する。 </li></ol>注：これらは、焦点深度を制限するのに細かいスケールを解決するには40Xと63X油浸レンズ（0.1ミリメートル作動距離）を備えています、また成功し、この方法で使用されてきた。 4。分析フレームを分析するために、Zスタックや映画は、見ての測定、およびプレゼンテーション14用のファイルを修正するための効果的なツールを持っているフィジー、にデータファイルをインポートします。例えば、有糸分裂を完了する時間は、前期から終期までの細胞を見ながらフレームをステップサンプリング間隔および多次元画像ブラウザを使用して測定した。 x軸、y軸、およびz寸法は、測定ツールを用いて測定することができる。ソフトウェアとその使用方法の詳細は、参照：http://fiji.sc/Fijiを。

<ol><li>Raff, J. W., Jeffers, K., Huang, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+roles+of+Fzy%2FCdc20+and+Fzr%2FCdh1+in+regulating+the+destruction+of+cyclin+B+in+space+and+time%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The roles of Fzy/Cdc20 and Fzr/Cdh1 in regulating the destruction of cyclin B in space and time.</a> J. Cell Biol. 157, 1139-1149 (2002).</li>
<li>Stramer, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+wound+inflammation+in+Drosophila+embryos+reveals+key+roles+for+small+GTPases+during+in+vivo+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Live imaging of wound inflammation in Drosophila embryos reveals key roles for small GTPases during in vivo cell migration.</a> J. Cell Biol. 168, 567-573 (2005).</li>
<li>Clark, I. B., Jarman, A. P., Finnegan, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+Drosophila+gonad+formation+reveals+roles+for+Six4+in+regulating+germline+and+somatic+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Live imaging of Drosophila gonad formation reveals roles for Six4 in regulating germline and somatic cell migration.</a> BMC Dev. Biol. 7, 52 (2007).</li>
<li>Fuger, P., Behrends, L. B., Mertel, S., Sigrist, S. J., Rasse, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+synapse+development+and+measuring+protein+dynamics+using+two-color+fluorescence+recovery+after+photo-bleaching+at+Drosophila+synapses%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Live imaging of synapse development and measuring protein dynamics using two-color fluorescence recovery after photo-bleaching at Drosophila synapses.</a> Nat. Protoc. 2, 3285-3298 (2007).</li>
<li>Siller, K. H., Serr, M., Steward, R., Hays, T. S., Doe, C. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+Drosophila+brain+neuroblasts+reveals+a+role+for+Lis1%2Fdynactin+in+spindle+assembly+and+mitotic+checkpoint+control%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Live imaging of Drosophila brain neuroblasts reveals a role for Lis1/dynactin in spindle assembly and mitotic checkpoint control.</a> Mol. Biol. Cell. 16, 5127-5140 (2005).</li>
<li>Roy, S., Hsiung, F., Kornberg, T. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specificity+of+Drosophila+cytonemes+for+distinct+signaling+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Specificity of Drosophila cytonemes for distinct signaling pathways.</a> Science. 332, 354-358 (2011).</li>
<li>Gho, M., Bellaiche, Y., Schweisguth, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Revisiting+the+Drosophila+microchaete+lineage%3A+a+novel+intrinsically+asymmetric+cell+division+generates+a+glial+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Revisiting the Drosophila microchaete lineage: a novel intrinsically asymmetric cell division generates a glial cell.</a> Development. 126, 3573-3584 (1999).</li>
<li>Ninov, N., Martin-Blanco, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+epidermal+morphogenesis+during+the+development+of+the+adult+abdominal+epidermis+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Live imaging of epidermal morphogenesis during the development of the adult abdominal epidermis of Drosophila.</a> Nat. Protoc. 2, 3074-3080 (2007).</li>
<li>Edgar, B. A., Lehner, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+control+of+cell+cycle+regulators%3A+a+fly%27s+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Developmental control of cell cycle regulators: a fly's perspective.</a> Science. 274, 1646-1652 (1996).</li>
<li>Wirtz, R. A., Semey, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+kitchen%3A+equipment%2C+media+preparation%2C+and+supplies%5BTitle%5D)+AND+%22Drosophila+Information+Service%22%5BJournal%5D)">The Drosophila kitchen: equipment, media preparation, and supplies.</a> Drosophila Information Service. 58, 176-180 (1982).</li>
<li>Boulina, M., Samarajeewa, H., Baker, J. D., Kim, M. D., Chiba, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+multicolor-labeled+cells+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Live imaging of multicolor-labeled cells in Drosophila.</a> Development. 140, 1605-1613 (2013).</li>
<li>Bainbridge, S. P., Bownes, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Staging+the+metamorphosis+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Embryol.+Exp.+Morphol%22%5BJournal%5D)">Staging the metamorphosis of Drosophila melanogaster.</a> J. Embryol. Exp. Morphol. 66, 57-80 (1981).</li>
<li>Staudt, T., Lang, M. C., Medda, R., Engelhardt, J., Hell, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2%2C2%27-thiodiethanol%3A+a+new+water+soluble+mounting+medium+for+high+resolution+optical+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Res.+Tech%22%5BJournal%5D)">2,2'-thiodiethanol: a new water soluble mounting medium for high resolution optical microscopy.</a> Microsc. Res. Tech. 70, 1-9 (2007).</li>
<li>Schindelin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fiji%3A+an+open-source+platform+for+biological-image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Fiji: an open-source platform for biological-image analysis.</a> Nat. Methods. 9, 676-682 (2012).</li>
<li>Meyer, E. J., Ikmi, A., Gibson, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interkinetic+nuclear+migration+is+a+broadly+conserved+feature+of+cell+division+in+pseudostratified+epithelia%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Interkinetic nuclear migration is a broadly conserved feature of cell division in pseudostratified epithelia.</a> Curr. Biol. 21, 485-491 (2011).</li>
<li>Sauer, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitosis+in+the+neural+tube%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Mitosis in the neural tube.</a> J. Comp. Neurol. 62, 377-405 (1935).</li>
<li>Livet, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+strategies+for+combinatorial+expression+of+fluorescent+proteins+in+the+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Transgenic strategies for combinatorial expression of fluorescent proteins in the nervous system.</a> Nature. 450, 56-62 (2007).</li>
</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

、指標を可視化し、分裂細胞の特徴を定量化するために、His2AvGFP発現している細胞の共焦点解析により、ショウジョウバエの生活蛹の翼で有糸分裂を観察するための簡単な準備の開発を必要とした。このメソッドは、蛹の翅における細胞周期は、彼らが有糸分裂に入る上皮の頂端面への核の移行に多列上皮で細胞周期に強い類似性を有することを文書化するために使用された。終期に続いて、核が上皮層に戻ってドロップします。したがって、この単層の細胞、どうやら無成層の上皮は、限られたinterkinetic核移行を示している。 ショウジョウバエ 11にbrainbow 17型ライブイメージング用に作成した公的に利用可能な株式やラインの画像化は、この技術が他の生物学的現象の研究に一般化であることを実証した。ここで説明する技術は、見よの製造に使用した分〜10時間の範囲の時間の上のOS。ある程度、顕微鏡のパラメータは、実験によって異なります。例えば、タイムラプスイメージングのサンプリングレートは、観察中の生物学的現象の性質に準拠する必...

<html>酢のフライ、 キイロショウジョウバエは 、生物学の多くの側面を研究するための十分に確立されたモデルである。 ショウジョウバエの研究は表情、ノックダウン突然変異を含む遺伝子操作の洗練されたフォームを可能にする遺伝的な実験の豊かな歴史を持っています。蛍光タンパク質標識の出現により、このレパートリーは動物生体内の細胞およびタンパク質の研究を含むように拡大している。ハエ胚は、 生体内で 1-3 の深い、高分解能イメージングを可能に小さく、光学的に透明であるように、このような研究のための優れたシステムです。ハエの発達の他の段階はanaesthetization 4、切開および短期培養5,6、又は7,8イメージングのためのクチクラにおけるウィンドウの作成 ​​を必要とする、より少なく扱いやすいことが証明されている。これらの操作は、通常、長期的には、動物の発達を損なうか、短時間に画像を制限する方法で動物に影響を与える。 ほとんどの胚細胞サイクルが切り捨てられているので、細胞周期調節因子に似ている遺伝子における新規の変異を研究するENT &quot;&gt;、それが細胞周期のタイミングと忠実度を研究するための適切な準備を見つけることが不可欠であった（SMまたはS-G2-M）と研究対象の変異体は後の段階までの欠陥を示していない、それは蛹組織における細胞周期を観察することが重要だった。蛹の上皮細胞は、この段階でのより一般的なG1-S-G2-M細胞周期や蛹を持っている筋肉の動き9できない。操作のための最初の出発点はHistone2AV-GFPを発現する完全な全体蛹が含まれていました。蛹ケースの見かけの不透明度にもかかわらず、この完全な準備がin vivoイメージングの長期のための優秀なことが証明された。この手法は単純である学部の研究者が日常的にショウジョウバエの細胞と発生生物学の側面を研究するためにそれを使用して、まだ解決は、マイクロメートルスケールの特徴の識別を可能にするために十分な罰金であることを十分に。この方法では、時間、分、秒を超える事象の観察は、単に時系列パラメータを調整することによって可能である。青色、緑色、黄色、橙色、および赤色蛍光タンパク質、又はこれらの組み合わせを用いて動画を、なされている。重要なことに、もし注意があっても、長期的画像化は、動物の発症または生存率には影響がなく、レーザ強度​​を最小化するために取られる。

<table><tbody><tr><td>フライスタッフフライパッド</td><td>ジェネシーサイエンティフィック</td><td>59-114</td><td>フライ麻酔用</td></tr><tr><td>CO2ガス</td><td>エアガスサウス</td><td>CD50</td><td>フライ麻酔用</td></tr><tr><td>レギュレーター</td><td>エアガスサウス</td><td></td><td>CO<サブ>2</サブ>レギュレータ</td></tr>ー <tr><td>フライバイアル</td><td>ジェネシーサイエンティフィック</td><td>32-113RLBF</td><td>フライ培養</td></tr><tr><td>ショウジョウバエライン:A9-Gal4 (Bl#8761), His2Av-GFP (Bl#5941), Sco/CyO HsCre (Bl#1092), UAS-ChRFP-Tub (Bl#25773)</td><td>ブルーミントンストックセンター</td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>ガラス底皿 #1 1/2</td><td>WillCo Wells BV</td><td></td><td>顕微鏡用</td></tr><tr><td>チオジエチレングリコール</td><td>フルーカ</td><td>88559</td><td>マウンタント</td></tr><tr><td>モデリング 粘土</td><td>画材店</td><td></td> 絵筆<td>画材</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td>店に対して蛹を配置するためのサポート ハ<td>エを操作するには</td></tr><tr><td>ファイン フォーセプス、イノックス #5</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>11252-20</td><td>デュモン #5</td></tr><tr><td></td><td>コンピュータ 画像/動画分析用の任意の</td><td></td><td></td>8 Gb RAM</tr><tr><td>フィジーソフトウェア</td><td></td><td>フリーウェア http://fiji.sc/Fiji</td><td>画像解析ソフトウェア</td></tr><tr><td>共焦点顕微鏡</td><td></td><td></td><td>任意の高速走査型共焦点は十分であるべきです</td></tr><tr><td>20倍ドライ、40倍または63倍の油浸レンズ</td><td>任意の</td><td></td><td>イメージング組織、細胞、および細胞内機能用</td></tr><tr><td>浸漬油(非蛍光性)</td><td></td><td></td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>any</td><td></td><td>フライ操作用</td></tr></tbody></table>

の蛹ケースを画像化<em&gt;キイロショウジョウバエ</em

Imaging Through the Pupal Case of Drosophila melanogaster

細胞および発生生物学のモデルとしてショウジョウバエの長年の使用によりツールの配列が得られている。一緒に、これらの技術は、方法論的な様々な角度からの細胞と発生生物学の分析を可能にした。ライブイメージングは​​、細胞分裂または細胞運動性などの動的な細胞プロセスを観察するための新たな方法である。特徴付けられていない推定上の細胞周期タンパク質に変異を有する単離された、ライブイメージングを用いてその場で有糸分裂を観察することが必須となった。 ショウジョウバエで最もライブイメージング研究は、それらのサイズが小さく、光学的透明性の操作や観察にアクセス可能な胚の段階に焦点を当てている。それはギャップ相の一方または両方を欠くという点でしかし、これらの段階において細胞周期は珍しい。対照的に、 ショウジョウバエの蛹の翼の細胞は、典型的な細胞周期を有し、蛹開発の約20時間に及ぶ急速な有糸分裂の周期を経る。それは私には簡単ですdentifyとその場で有糸分裂をキャッチし、適切なステージの蛹を分離します。そのまま蛹をマウントする実験は、細胞や動物の生存能力への影響を最小限に抑えながら、数時間のために実行できるように、撮像中に扱いやすと耐久性の最適な組み合わせを提供した。この方法は、小さな、あるいはより小さな、染色体を飛ぶような特徴を観察することができます。顕微鏡の設定や隣接するセルや、チューブリンなどの蛍光標識されたタンパク質の膜動態を可視化するための準備の設置、許可された拡張機能の詳細を調整する。この方法は、すべてのテストされた蛍光タンパク質のために働くと時間スケールの様々な経由でサブミクロンスケールの特徴を捉えることができます。従来の共焦点顕微鏡で蛹の外側を20μmに限定しながら、 生体内での蛹の組織で、タンパク質や細胞動態を観察するためのこのアプローチは、これらの組織中の細胞および発生生物学の研究に一般的に有用である可能性がある。

このような現像ショウジョウバエの眼、又は現像脊椎動物の中枢神経系の心室層として多列上皮における細胞は、核の運動を起こす、細胞周期に合わせて、interkinetic核移行と呼ばれる。核が基底面またはその近くで、核は頂端面15,16に達したとき、細胞が有糸分裂を入力すると、DNAの複製が発生します。蛹の翼細胞は頭部外転後の最初の数時間の間に急速に分裂する単層上皮を形成している。データは、1分間隔で切片ごとに2ミクロンを考慮して、初期の蛹サイドからxyztモードで収集した。結果の3D映画の有糸分裂にのみ頂端面（ 図1A）で見られた。より多くの基底の場所で撮影されたセクションでは、（ 図1B）は、有糸分裂の兆候を示さなかったが、新たに分割核を頂端面から返された核の動きが発生しました。 <p class="jove_content" fo:keep-together.ページ内= &quot;常に&quot;&gt; <img alt="図1" fo:content-width="6in" fo:src="/files/ftp_up...

本論文では、直接蛹殻を介して画像細胞挙動への高速走査型共焦点顕微鏡を使用する方法を示します。そのまま蛹ケースを残すことによって、このメソッドを直接学ぶことは困難であるショウジョウバエの発生段階で動的な細胞プロセスの観察と測定を可能にします。

The longstanding use of Drosophila as a model for cell and developmental biology has yielded an array of tools. Together, these techniques have enabled ...

このビデオでは、蛹の構造的完全性を損なうことなく、キイロショウジョウバエ（Drosophila melanogaster）の蛹をイメージングすることを可能にする新しい手法を実演します。蛹のケースをそのまま維持することで、イメージングが蛹の発育や生存率に与える影響を最小限に抑えます。イメージングには、8,000 Hzの共焦点共鳴走査顕微鏡を使用します。重要な点として、本顕微鏡の非常に高速な走査速度と高感度により、退色が大幅に抑制され、長時間の観察が可能になります。この手法を用いることで、挙動、fop、podia、形態形成、食作用、有糸分裂など、さまざまな細胞生物学的プロセスを可視化することができました。本技術により、生物体に損傷を与えることなく、in situでの現象を長時間にわたって観察することが可能です。これらの手法から得られた観察結果を利用することで、ショウジョウバエの発生における比較的アクセスが困難な段階である、適切なステージ（Cheese people）におけるさまざまな生物学的現象を理解することができます。細胞分裂を研究するための発生段階の主要な指標を確認するため、バイアルに入れたままの状態での観察を行います。具体的には、頭部を反転させているが、まだ緑色のパケットや背側腹部に胎便が見られない蛹（pipa）を探します。湿らせた絵筆で蛹のケースに触れ、水を移して唾液腺の接着剤を溶解させることで、個体を切り離します。その後、蛹をそっと押し出して自由にし、絵筆で拾い上げて水を入れたペトリ皿に移します。食物残渣やゴミを除去するため、個体を水で十分に洗浄します。次に、正しいステージであるかを確認するため、背側を上にして並べます。取り扱いには十分注意してください。パイプにわずかな穴が開いただけでも、容易に死に至る可能性があります。選別した個体をガラスボトムのペトリ皿に慎重に配置し、関心のある部位がカバーガラスに最も近く、かつ表面に対して可能な限り平行になるように向きを調整します。蛹の翅を観察する場合、細い棒やモデリングクレイ、デンタルワックスなどの支持材に蛹を固定し、向きを調整した後に動かないようにします。次に、目的の部位が視認でき、適切に向いているかを確認するためにディッシュを観察します。通常、蛍光タンパク質を発現していない個体や、目的のステージに達していない個体がある可能性に備え、一度に複数のpipaをマウントします。pipaをすべて適切にマウントし、向きを調整した後、屈折率がオイルや希釈水に一致する非毒性の封入剤であるdiod dilin glycolを湿らせた筆で、各pipaの基部に触れさせます。これは、瞳孔ケースによる回折を抑え、浸漬レンズの屈折を低減するという二つの目的があります。瞳孔を適切に取り付け、配置した後、レーザー走査型共焦点顕微鏡に移ります

imaging-through-the-pupal-case-of-drosophila-melanogaster

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

メゾスコピック蛍光トモグラフィは、組織切片の蛍光顕微鏡の浸透の制限を越えて動作します。技術は、マルチプロジェクション照明と光子輸送記述に基づいています。我々は、生体内でのGFP発現翼成虫ディスクの形態形成の全身3次元可視化を実証...

のためのメゾスコピック蛍光トモグラフィー生体内</em開発の>イメージングショウジョウバエ</em

このプロトコルは、次の3つについて説明します...

開発と大人の準備ショウジョウバエ</emライブイメージングのための>脳と網膜

このビデオでは、我々は非対称的に無傷で感覚器官の前駆細胞と表皮細胞を割っての生細胞イメージングのための方法を説明します。...

無傷の感覚器官の前駆細胞の生細胞イメージングショウジョウバエ蛹

ソース: Hellerman, M. B., et al. Live-imaging of the Drosophila Pupal Eye. J. Vis. Exp.

蛍光顕微鏡法を用いたショウジョウバエの蛹眼のライブイメージング

このプロトコルは、生きたショウジョウバエの蛹の眼神経上皮をイメージングするための効率的な方法を提供します。この方法は、組織の動きと不均一なトポロジーを補正し、複数のGFPタグ付き接合タンパク質を使用して細胞境界の視覚化を強化し、簡単に組み立てられるイメージングリグを使用します。...

のライブイメージングショウジョウバエ蛹アイ

ここでは、さまざまな発生段階でショウジョウバエを準備し、カスタム光干渉顕微鏡(OCM)システムを使用してショウジョウバエの心拍の縦方向の光学イメージングを実行するための実験プロトコルが説明されています。心臓の形態学的および動的変化は、OCM画像から心臓の構造的および機能的パラメータを分析することにより、定量的に特徴付けることができます。...

ショウジョウバエの調製と光コヒーレンス顕微鏡を用いてin vivoで心機能の縦イメージング（OCM）

生体内でショウジョウバエの蛹の筋腱の形態形成の観察

このプロトコルは、ショウジョウバエが変態を受ける中、ショウジョウバエ腹部上皮の細胞配向および組織成長のダイナミクスのイメージングと分析のために設計されています。ここで説明する方法論は、ショウジョウバエまたは他のモデル生物における異なる発達段階、組織、および細胞下構造の研究に適用することができる。...

プパル期のショウジョウバエ上皮の組織オリエンテーションと成長ダイナミクスのイメージングと解析

本稿では,ショウ ジョウバエ・メラノガスター 第3齢幼虫から生きた外植片脳を作製,解剖,マウント,画像化し,生理条件下での細胞内・細胞内動態を観察するワークフローについて述べる.

ショウジョウバエメラノガスター第3齢幼虫脳の生細胞イメージング

ここでは、蛹の完全除去を含む、蛹期の ショウジョウバエ...

蛹摘出後の ショウジョウバエ の蛹の脚の発達の長期ライブイメージング

ショウジョウバエは、筋形成の基本的なメカニズムを理解するための強力なモデルです。胸部半切片の解剖と調製のためのこのプロトコルは、蛹と成虫の両方の段階からの間接飛行筋の顕微鏡分析を可能にします。このプロトコルは、細胞形態、タンパク質局在化、筋肉構造、および筋形成の他の複数の側面の共焦点イメージングを可能にします。...

顕微鏡アプローチのための ショウジョウバエ の間接飛行筋の解剖

学ぶキイロショウジョウバエの蛹ケースを損傷させずに画像化する共焦点顕微鏡法。高速共振スキャンにより光漂白を抑制し、細胞分裂や形態形成などの動的プロセスを長時間観察できます。

の蛹ケースを画像化

さらに動画を探す