-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

JA

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ja

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Basic Biology
ゼブラフィッシュのメンテナンスと飼育
ゼブラフィッシュのメンテナンスと飼育
JoVE Science Education
Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick
Zebrafish Maintenance and Husbandry

4.6: ゼブラフィッシュのメンテナンスと飼育

25,334 Views
07:58 min
April 30, 2023
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

ゼブラフィッシュ(Danio rerio)は、発生の研究や疾患モデルとして、さらに新薬開発のために利用される強力なモデル生物です。体が小さいため、研究室では大量のゼブラフィッシュを低コストで飼育することができます。メンテナンスは比較的簡単ですが、魚の健康を維持し効率的に繁殖させるためには、食事と水の管理への特別な配慮が必要となります。

このビデオは、研究室でのゼブラフィッシュの飼育とメンテナンス方法をトピックにしています。自然界のゼブラフィッシュの生態について簡単に触れ、その環境を研究室でどのように再現していくのか、例えば、水の再循環を用いた飼育システムやゼブラフィッシュのエサとなるブラインシュリンプの準備方法などの重要なコツを説明しています。さらに、ゼブラフィッシュの系統を確認するために、尾びれサンプルからDNAを抽出し遺伝子型を決定する方法や、ゼブラフィッシュの飼育環境を操作することで私達自身の生態解明につながる研究が実施されていることなどを紹介しています。

Procedure

ゼブラフィッシュを用いた研究を成功させるためには適切な飼育が鍵となります。最適な水質管理が、魚の健康を維持し実験の再現性を向上させます。また、ゼブラフィッシュの産卵時には栄養状態がとても重要になります。このビデオでは、研究室でのゼブラフィッシュの飼育方法、取り扱いや管理の仕方、生物学研究のための環境条件について紹介していきます。

まずは、魚の生育環境の基本を学びましょう。

自然界のゼブラフィッシュは元々ヒマラヤ地方の淡水に生育していました。多くの時間をゆったりとした新鮮な水の中で過ごします。

この環境を研究室で再現するための鍵は水です。淡水を手に入れることは簡単だと思われるかもしれませんが、水道水は塩素を含み汚染の可能性もあるためゼブラフィッシュにとっては有毒です。そのため水槽には逆浸透装置のような浄化装置を設置します。そして精製水に塩と緩衝液を加えて塩分とpH条件を最適にします。

たくさんの魚を限られた量の水で飼育することで、実験効率がアップします。魚が泳ぎ回るとすぐに汚れが蓄積するため、水の交換が必須となります。その結果、多量の水が必要となるため、循環系を備えた飼育システムを利用し水の使用を最小限に抑えます。汚れた水はフィルターを通って紫外線殺菌されてから水槽に戻されます。

ゼブラフィッシュの飼育には様々なサイズの専用の水槽を利用します。水の蒸発や魚が逃げるのを防ぐために水槽には蓋をします。その蓋にはきれいな水が流入するための穴が必要です。水槽の背面には排水機構があり、水かさが一定に保たれます。排水機構には小さな穴があいたバッフルが取り付けられており、汚れた水は通しますが、魚は吸い込まれないようになっています。

水を換えても、藻類や汚物は蓄積してしまうため、定期的に掃除を行うようにします。

また、飼育環境を整えることもとても大切になります。温度は摂氏28℃、華氏80℉付近に設定します。また、魚のサーカディアンリズムを維持するために、明暗サイクルの明期を14時間、暗期を10時間に設定します。

次にゼブラフィッシュの食事について見ていきましょう。

自然界のゼブラフィッシュは、動物プランクトンや昆虫を食べて生育しています。研究室では、ドライフードと小さな生き物を組み合わせてエサにします。幼生や稚魚にはゾウリムシなどの生きた微生物を、成魚には市販のパウダーとブラインシュリンプという小型の甲殻類を与えます。

ブラインシュリンプの卵は、シストと呼ばれる休眠卵であるため室温で保存でき非常に便利です。ブラインシュリンプの硬い外殻は漂白剤を使って取り除きエサとします。卵はしっかりと洗浄し、エアレーション装置にセットし、約1日塩水につけておきます。孵化したブラインシュリンプを収集し濾し器を使って水洗いしたら容器に入れます。通常ゼブラフィッシュのエサやりは1日2、3回行い、生きたエサとドライフードを交代で与えます。エサを与える間は水流を止めて、魚が食べる前にエサが流れてしまうのを防いでください。

飼育環境とエサの後は、魚の取り扱い方や系統の維持について見てきましょう。

研究室の飼育施設では様々な種類のゼブラフィッシュ、例えばワイルドタイプ、変異体、そしてトランスジェニックなどが飼育されています。これら全ての魚を把握するために、水槽にラベルを付け、遺伝的に類似したバックグラウンドを持つ魚は一緒にしておきます。ラベルには、遺伝子型や出生日など識別するための情報を記載しておきましょう。

ゼブラフィッシュの生殖能は、最初の1サイクルが終了すると低下し始めるため、年に1度系統を新たに補充します。ゼブラフィッシュは近交系では生き残れないため、 遺伝的多様性を維持するために異系交配により子孫を誕生させます。

トランスジェニックや突然変異体を異系交配させる場合は、蛍光標識や目的の遺伝子型解析を行い確認します。遺伝子型を決定するために、トリカインを用いて麻酔をかけ、尾びれを細かくカットしDNA解析を行います。

尾びれのサンプルからDNAを単離し、PCR法により特定配列を決定します。結果を待つ間、魚を個別に小さな水槽に入れ識別用のラベルを付けておきます。

ここまで標準的な飼育条件を学んできました。そこで、生物学研究のためにこの条件をどう操作するのか考えてみましょう。

飼育システムの水温は、ゼブラフィッシュの健康に大きく影響します。ここでは、糖尿病モデル作製のために、膵臓に損傷を与えるストレプトゾシンを投与し、水温を下げた水槽で飼育しています。糖尿病の魚では腎臓や目の損傷、ひれ再生能力の低下などが起こるため、糖尿病の生物学的解明に役立ちます。

また、特別な実験を行うときには水槽システムを操作することもできます。魚の遊泳行動の実験は、不安、攻撃性、社会的行動などの研究に利用されます。ここでは、普通の魚と神経刺激薬を処置した魚の泳ぎ方の違いをビデオ撮影し解析しています。このような実験は、神経科学的メカニズムの解明とそれを利用した新薬開発のためのツールとなります。

ゼブラフィッシュは光の条件にも影響を受けます。強い光を処置することにより網膜の光受容細胞を失った魚は、損傷した網膜組織を修復するために細胞増殖能力が亢進します。このことは、ヒトの網膜変性疾患の治療に光をもたらすかもしれません。

ここまでJoVEゼブラフィッシュのメンテナンスと飼育編をご覧いただきました。飼育環境、エサ、管理方法に関する必須事項をお伝えしました。ご覧頂きありがとうございました。

Transcript

ゼブラフィッシュで行われた実験を成功させるには、適切な飼育が不可欠です。最適な水質は、魚の健康と実験の再現性を促進します。さらに、ゼブラフィッシュの卵の生産は、適切な栄養に大きく依存しています。このビデオでは、研究室での魚の飼育方法と給餌方法、資源の取り扱いと管理に関するヒント、およびゼブラフィッシュの環境が生物学実験でどのように操作されているかを垣間見ることができます。

まず、魚の生息地の基本を説明しましょう。

野生のゼブラフィッシュは、ヒマラヤの新鮮な海域が原産地です。この気候では、魚は一日のほとんどをゆっくりと動く淡水域で日光浴をします。

この楽園は、研究室でどのように再現されているのでしょうか?最も重要な部分である水から始めましょう。淡水は簡単に手に入るように思えるかもしれませんが、水道水は塩素や潜在的な汚染物質のためにゼブラフィッシュにとって有毒です。したがって、水槽の水は逆浸透装置などの浄化システムを通過する必要があります。その後、塩とpH緩衝液を精製水に戻して、塩分濃度とpHを最適化します。

実験効率を最大化するために、多くの魚は限られた量の水で維持されます。魚が泳ぎ回っていると、廃棄物はすぐに溜まり、水の交換が不可欠になります。このニーズにより水需要が高まるため、魚類施設では水の使用量を最小限に抑えるために再循環システムを使用しています。汚れた水は、UV処理によってろ過および滅菌されてから、システムに戻されます。

ゼブラフィッシュは、複数のサイズで利用できる専用の水槽で飼育されています。タンクは、蒸発を減らし、魚の逃げを防ぐために覆われています。タンクをシステムに組み込むために、蓋には穴が開いており、そこからきれいな水が常に流れています。タンクの背面にあるオーバーフローポートのおかげで、水位は安定しており、小さな穴が開いたバッフルで覆われているため、汚れた水は魚ではなく流出できます。

水の交換にもかかわらず、藻類や固形廃棄物はタンクに蓄積する可能性があるため、定期的に清掃する必要があります。

また、魚類施設の環境制御も非常に重要です。温度は28°C付近に保たれています。C、または80 ?F。動物を飼うため?概日リズム、光は14時間の光と10時間の暗闇のサイクルで制御されます。

さて、ゼブラフィッシュの飼育状況について説明したので、彼らの食事について話しましょう。

ゼブラフィッシュは自然の生息地で、主に動物プランクトンや昆虫を消費します。この食事は、ドライフードと小さな生物の組み合わせによって実験室で再現されます。幼魚や稚魚はゾウリムシのような生きた微生物で繁殖しますが、成魚には市販の粉末やブラインシュリンプと呼ばれる小さな甲殻類が与えられることがよくあります。

これらの生き物は、卵子を休眠中の嚢胞として室温で保存できるため、実験室での準備に特に適しています。エビを食べる準備をするために、漂白剤で処理することにより、エビの硬い外殻を取り除きます。次に、カプセル化を解除した卵を徹底的に洗浄します。その後、卵を通気塔に移し、塩水で約1日間成長させます。最後に、孵化したエビをメッシュストレーナーで集めてすすぎ、ボトルに入れて給餌します。魚は通常、生きた餌と乾いた餌を交互に1日2〜3回給餌し、この期間中は水の流れを止めて、餌が浮いてから食べられないようにします。

魚を飼い、餌をやる方法がわかったので、次は魚の資源をどのように扱い、追跡するかを学びましょう。

実験用の魚類施設には、野生型株から、破壊的な点突然変異や挿入された導入遺伝子によってゲノムが改変された魚まで、さまざまな種類のゼブラフィッシュが収容されています。これらすべての魚を追跡するために、同様の遺伝的背景を持つ動物は、ラベル付きの水槽にまとめられています。水槽のラベルには、魚の遺伝子型や生年月日など、完全な識別情報が含まれている必要があります。

ゼブラフィッシュの繁殖力は生後1年を過ぎると低下し始めるため、在庫は毎年補充する必要があります。ゼブラフィッシュは完全近交系のようには生き残れないため、遺伝的多様性は、血縁関係のない魚の交配、つまり「アウトクロス」から子孫を集めることによって維持されなければなりません。

トランスジェニック系統または変異株を交配する場合、目的の遺伝子改変を有する子孫は、蛍光色素の発現またはジェノタイピングによって同定されなければならない。遺伝子型を定型するには、まず魚をトリカインで麻酔します。次に、DNAの供給源である尾びれの小片を切り取ります。

最後に、テールサンプルからDNAを単離し、PCR分析に使用して特定の配列を同定します。結果を待つ間、各魚は識別子でラベル付けされた独自の小さな水槽に保管してください。

さて、標準的な魚の飼育条件について説明したので、これらの基準が生物学的プロセスを研究するために操作されるいくつかの方法を見てみましょう。

システムの水温は、ゼブラフィッシュの健康に大きく影響します。糖尿病のモデルを作成するために、これらの研究者は魚を膵臓毒素であるストレプトゾシンで処理し、水温を下げた水槽に魚を収容します。糖尿病の魚は、腎臓や目の損傷、尾びれの再生の減少など、予想される表現型を示し、糖尿病の生物学を調べるために使用できます。

タンクシステムは、特定の実験目的のために変更することもできます。魚の遊泳行動の研究は、不安、攻撃性、または社会的行動の読み出しとして使用できます。ここでは、ビデオトラッキングを使用して、未処理の魚と神経活性薬で処理された魚の遊泳行動の違いを分析します。このような研究は、神経科学の理解を深めるのに役立ち、創薬のツールとなり得ます。

光の状態の変化もゼブラフィッシュに影響を与える可能性があります。強力な光治療は、網膜の光感知細胞を切除するためにも使用できます。これらの魚は、細胞増殖によって損傷した網膜組織を修復する能力を持っており、これは人間の網膜変性を研究する科学者にとって非常に興味深いものです。

JoVEのゼブラフィッシュのメンテナンスと飼育に関するビデオをご覧になりました。私たちは、実験室で魚がどのように飼育され、餌を与え、管理されるかの本質を見てきました。ご覧いただきありがとうございます!

Explore More Videos

ゼブラフィッシュのメンテナンス ゼブラフィッシュの飼育 水質 魚の健康 実験再現性 ゼブラフィッシュの栄養 魚の生息地 水道水毒性 浄化システム 逆浸透装置 塩分 PH最適化 水換え 再循環システム UV処理

Related Videos

実験用マウス入門: Mus musculus (ハツカネズミ)

09:12

実験用マウス入門: Mus musculus (ハツカネズミ)

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

96.5K 閲覧数

ニワトリ: Gallus gallus domesticus入門

07:26

ニワトリ: Gallus gallus domesticus入門

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

63.6K 閲覧数

ゼブラフィッシュ入門: Danio rerio

08:31

ゼブラフィッシュ入門: Danio rerio

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

81.8K 閲覧数

マウスのケアとメンテナンスの基本

08:29

マウスのケアとメンテナンスの基本

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

47.0K 閲覧数

ニワトリのケアとメンテナンスの基本

06:42

ニワトリのケアとメンテナンスの基本

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

14.5K 閲覧数

ゼブラフィッシュのメンテナンスと飼育

07:58

ゼブラフィッシュのメンテナンスと飼育

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

25.3K 閲覧数

実験用マウスの発生と繁殖

09:04

実験用マウスの発生と繁殖

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

59.1K 閲覧数

ニワトリの発生

07:24

ニワトリの発生

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

87.6K 閲覧数

ゼブラフィッシュの生殖と発生

08:07

ゼブラフィッシュの生殖と発生

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

103.1K 閲覧数

マウスのジェノタイピング

08:27

マウスのジェノタイピング

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

90.7K 閲覧数

ニワトリ胚へのIn ovoエレクトロポレーション法

06:57

ニワトリ胚へのIn ovoエレクトロポレーション法

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

25.6K 閲覧数

ゼブラフィッシュの繁殖と胚の取り扱い方

07:48

ゼブラフィッシュの繁殖と胚の取り扱い方

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

58.9K 閲覧数

マウスへの薬物投与の方法

07:40

マウスへの薬物投与の方法

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

42.5K 閲覧数

ニワトリ胚のex ovo 培養

06:48

ニワトリ胚のex ovo 培養

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

19.1K 閲覧数

ゼブラフィッシュへのマイクロインジェクション法

08:12

ゼブラフィッシュへのマイクロインジェクション法

Biology II: Mouse, Zebrafish, and Chick

55.6K 閲覧数

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code