2014年9月11日
基本的な技術および透過型電子顕微鏡による検査のための生体試料とナノ材料のフリーズフラクチャー処理の改良が記載されている。この技術は、生体膜の超微細構造の特徴と専門性を明らかにするため、材料科学、ナノテクノロジー製品の超微細構造レベル次元の空間データを取得するための好ましい方法である。
以下の実験の目的は、透過型電子顕微鏡による検査のために、生体材料やその他の物質のカーボンプラチナ試料レプリカを生成することです。これを達成するために、ダブルレプリカとシングルレプリカとして調製された標本は、氷の結晶形成を制限するために超高速凍結速度にさらされます。次に、凍結した標本を高真空温度と呼ばれる液体窒素での遠隔操作によって破砕し、脂質二重層を介して膜を分割し、細胞外面と細胞質面に近接する面を生成します。
オプションの追加手順として。破砕した試料の表面から水をエッチングすると、冷却ミクロトームアームを試料ステージ上に配置して温度差を生じさせ、表面から水が昇華させることで、根本的な特徴を明らかにすることができます。次に、破砕面に炭素と白金が蒸発することによりレプリカが生成されます。
レプリカから元の試料を消化し、透過型電子顕微鏡試料グリッドに取り出します。最終的に凍結破壊凍結エッチングは、透過型電子顕微鏡による検査により、細胞膜、分子アレイ、およびナノ材料の3次元構造の詳細を示すために使用されます。この手法が、超薄切片の検査などの既存の方法よりも優れている点は、対象物を電子顕微鏡の分解能で3次元で見ることができることです。
この方法は、細胞膜の寸法および構造特性、分子およびナノ材料アレイの構成など、細胞生物学および分子生物学およびナノテクノロジー分野の重要な質問に答えるのに役立ちます。私が最初にこの方法のアイデアを思いついたのは、真核生物の抗議行動について同様の研究が行われ、重要な発見があったが、人間の健康に関連するテーマにはあまり注目が払われていなかったことを認識したときでした。この手順は、テキストプロトコルで説明されているように、凍結破壊凍結エッジの生物学的試料の準備から始めます。
細かいグレードの鉗子や小さなゲージのシリンジ針を使用して処理される試料に適したサイズと形状の金または銅の試料スタブを選択します。金属試料スタブの上部に試料の小さな破片を配置します。単一のレプリカの場合は、濾紙でスタブの端から液体を引き抜くことにより、標本の液体含有量を粘着性のあるわずかに接着剤のような粘稠度に減
らします。小さなゲージのシリンジ針を使用して、ダブルレプリカのスタブに組織の山を作成します。別のスタブを反転させ、スタブの真上に正確に配置して、試料表面に軽く置きます。サンドイッチを作る。
2つのスタブの間から標本を押し出さないでください。次に、2つの断熱デュオ容器に液体窒素を入れます。最初の容器には、市販のシリンダーから少量のプロパンガスを液化するために使用される小さな井戸を含む金属製のポストが収容されています。
第2の容器は、凍結した試料を液体窒素下で短時間保持するための仕切り貯蔵保持容器です。プロパンは、そのような使用が認定された化学フードでのみ使用してください。外来の発火源を避け、低温から保護する衣服を使用し、プロパンは爆発性があるため、適切な換気を維持するように注意してください。
接触すると凍結傷害を引き起こす可能性があり、窒息薬です。プロパンに配置されたシリンダーノズルを使用して、シリンダーバルブを十分に開き、ガスが最初の容器のウェルに流れ込むのを待って、できるだけ早く液化します。ファイングレードの鉗子で試料マウントを持ち上げ、最初の容器内の液化ガスに数秒間突
っ込みます。その後、液体窒素の2番目の保持容器にすばやく移します。試料が凍結したら、凍結破壊プラントに移す準備ができるまで液体窒素下で保存します。金の試料片を小冊子タイプ、ダブルレプリカの試料ホルダー、または液体窒素下のクランプ装置にロードし、試料チャンバーに配置する準備ができるまでそこに保持します。
チャンバーが高真空に達し、ステージが液体窒素温度になったら、ポンプをオフにし、チャンバーを曲げて、取り付けられた試料スタブをできるだけ早く試料テーブルに配置します。その後、ポンプの電源を入れ、高真空を再確立し、電子ステージとアームの温度制御を使用して、試料テーブルの温度を摂氏マイナス100度に調整します。また、液体窒素をミクロトームアームに向け、液体窒素温度にします。
高真空を達成すると、ステージ温度がマイナス100°Cになり、液体窒素温度のミクロトームアームがダブルレプリカ試料ホルダーを遠隔操作で開き、それによって試料マウント上の試料を破砕するオプションの追加ステップとして。試料をエッチングして、骨折後の根本的な特徴を明らかにすることができます エッチングを達成するためには、ミクロトームアームのクランプに保持されたかみそりの刃を使用して、試料の表面を剃ります。冷却ミクロトームアームを破砕面に1〜数分間置き、水を昇華させて、真の細胞表面、細胞外マトリックス、および/または分子集合体を明らかにします。
次に、白金炭素電子または抵抗銃を活性化し、破面上の白金炭素の薄層を30度から45度の角度で蒸発させます。これには通常、約15〜20秒かかり、同じ方法でカーボン電子または抵抗銃を活性化し、真上から90度で破砕された試料表面に炭素の薄い層を蒸発させてレプリカを支えます。これも通常、レプリケーション、シャドウイング、およびカーボン安定化の完了までに約15秒から20秒かかります。
真空ポンプとチャンバーの電源を切り、試料マウントを装置から取り外します 一対の細かいグレードの鉗子を使用して、ダブルレプリカ小冊子クランプから各金試料スタブを取り外し、数秒間解凍してから、スタブをスポットプレートの水面に静かに下げます。細いワイヤーループまたは細いグレードの鉗子で保持された従来の銅電子顕微鏡グリッドを使用してレプリカを操作し、50%硫酸に5%重クロム酸ナトリウムを含む別のスポットプレートに1〜数時間移します。レプリカから実物の生体試料材料を消化する浴槽です。
分解が完了したら、レプリカをきれいな水面に戻し、標準的な銅電子顕微鏡グリッドに取り出します。レプリカの支持グリッドは、市販のグリッドボックスに保管し、何年も安定して保管します。凍結破壊の穏やかな取り扱いまたは超構造検査により、エッチングレプリカは、通常50〜80キロボルトの加速電圧で透過型電子顕微鏡でレプリカを表示します。
関連する画像を標準のTEMフィルムに記録するか、各真核生物の基部にある細胞膜に存在する高解像度デジタルカメラで記録します。繊毛と鞭毛は、繊毛のシャフトを囲むストランドENCに組織化された膜関連粒子の配列であり、繊毛ネックレスとして知られています。特殊な膜粒子アレイは、Clio Genesisを受けている上皮細胞の管腔境界に現れます。
これらの粒子配列は、創発的で成熟したセリアの基礎に存在する初期の毛様体ネックレスを表しています。さまざまな上皮凍結骨折の研究で、基底外側境界の頂端面を囲む吻合鎖と溝構造の洗練された組織化が明らかになりました。上皮細胞膜を貫通した骨折は、鎖として現れるタイトジャンクションの血漿骨折面を明らかにし、細胞外骨折面は相補的な溝を示します。
ギャップ結合は、さまざまな組織の凍結骨折調製物に現れ、血漿骨折面上の粒子の密集した配列と細胞外骨折上の相補的なピットで表されます。ここに示されている面は、ディープエッチングとロータリーシャドウイングによる急速凍結の例として示されています。上皮細胞は細胞質を介して骨折しており、矢じりの背後に血漿骨折面がはっきりと見えます。
その後のエッチングで明らかになる真の細胞表面を一度マスター。この手法は、約3時間のサイクルで実施でき、適切に実施すれば1〜3個の検体が得られます。この手順を試みる際には、個々のステップが非常に相互依存しており、1つのステップでミスをすると、開発後の検査や評価に結果が不十分になる可能性があることを覚えておくことが重要です。
この技術は、細胞生物学および分子生物学の分野の研究者が、遺伝子変異が細胞に構造異常をどのようにもたらし、病的状態や疾患を引き起こす方法を調査する道を開きました。
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この記事では、生物学的試料およびナノ材料の凍結破砕処理技術について説明します。この技術は透過型電子顕微鏡に不可欠です。この方法は特に、生物膜の超微細構造を明らかにし、材料科学で詳細な空間データを得るのに効果的です。
Freeze-fracture/freeze-etch enables high-resolution three-dimensional visualization of membrane ultrastructure, supporting target validation in early discovery by revealing molecular organization critical for mechanistic de-risking. The technique provides predictive confidence in assessing structural consequences of genetic perturbations, informing portfolio triage for therapeutic candidates. Its applicability to nanomaterials extends utility to nanotechnology-enabled drug delivery systems and diagnostic platforms.
Positioned within early discovery, freeze-fracture supports hypothesis testing and pathway clarification before lead identification, with outputs feeding into preclinical continuity assessments.