Name: ギャップ結合審査のための機能アッセイ;インジウム - スズ酸化物に対する接着した細胞のエレクトロポレーション (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-18T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 2 s
Description: 学ぶインジウム・スズ酸化物被覆スライドを用いた接着細胞のエレクトロポレーション法で、ギャップ結合を介した細胞間通信を評価する技術です。蛍光色素を用いてギャップ結合機能を可視化し、細胞生物学研究に応用できます。

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専門家のビデオ撮影の支援を提供してくださったLowell Cochranに感謝します。 カナダ衛生研究所(CIHR)、カナダ乳がん財団(CBCF、オンタリオ支部)、カナダ自然科学工学研究評議会(NSERC)、カナダ乳がん研究同盟、オンタリオセンターオブエクセレンス、乳がんアクションキングストン、クレアネルソン遺贈基金からのLRへの助成金を通じた財政支援に感謝します。 SGはNSERCの学生資格の受領者でした。 MGは、米国陸軍乳がんプログラム、オンタリオ州研究イノベーション省、クイーンズ大学の諮問研究委員会からのポスドクフェローシップによって支援されました。

1エレクトロポレーションチャンバー内の細胞をプレーティング<ol><li>層流フード中で、いつものように、滅菌技術を用いて細胞をトリプシン処理。 注：これらは、したがって、ガラス上の細胞のアドヘレンとギャップ結合の形成を妨げる可能性が広がるので、それは、遠心分離によってトリプシンの痕跡をすべて排除することは非常に重要である。 </li><li> 37°Cの CO 2インキュベータ内で、その場でエレクトロ（ 図1）、および場所を提供無菌エレクトロポレーションチャンバー中の細胞懸濁液のピペット1ミリリットル。 注：細胞接着は、フィブロネクチン、コラーゲン、ポリリジン、ま​​たは細胞および組織接着剤（材料表を参照）上にプレーティングすることによって改善することができる。 </li><li>細胞がコンフルエント層を形成しているとき、彼らはGJIC試験の準備ができている。 </li></ol> 2エレクトロポレーション手順 GJIC検査用エレクトロポレーションは、層流フードの外側に行うことができるそれはほんの数分かかりますので、。より長いインキュベーション時間は、特定の実験に必要とされる場合、それは層流フード内で完全に実施することができる。全ての場合において、細胞が増殖されるチャンバは無菌でなければならない。 <ol><li> 5 mg / mlのルシファー黄色の溶液を準備します。2ミリリットルカルシウムを含まない増殖培地中で（エレクトロ付属）10mgのLY粉末を溶かす。より長いインキュベーション時間を必要とする実験のために、4℃。で溶液とストアをフィルター滅菌</li><li>増殖培地を吸引し、単層を傷つけたり、細胞を乾燥しないように注意して、カルシウムを含まない培地で細胞を洗浄。細胞が乾燥している場合は、彼らは通常より暗い核を持っているし、エレクトロポレーションすることなく、LYを拾う。効果はより多くの空気ドラフト（ 図4F）にさらされているスライドの途中でより顕著である。 </li><li>チャンバーの端にある細胞（全体のチャンバのための400μlの）へのエッペンドルフピペット、ピペット色素溶液において、a、bとの細胞層に触れないように注意しeing。 </li><li>エレクトロ付属のホルダーに室を置き、適度な強度（考察を参照）のパルスを適用します。 </li><li>慎重にLY液の一部を吸引。これは、それほど重要での実験のために二度目に再使用することができる。 </li><li> 10％透析血清を含むカルシウムを含まないDMEMを追加します。 </li><li>ギャップ結合を介して色素転写を可能にするためにインキュベーター内で3〜5分間、細胞をインキュベートします。 注：この時点での透析血清を含むことは、気孔の閉鎖を支援します。 </li><li>生細胞観察用のカルシウムを含まないDMEMで取り込まれていない色素を洗ってください。あるいは、細胞をPBS（リン酸緩衝生理食塩水）で洗浄し、その後、ウェルに4％ホルムアルデヒドの添加によって、この段階で固定することができる。すべての場合において、洗浄はすべてのバックグラウンドを削除する必要があります。 注：電圧が低すぎる場合に最適な条件を決定するための予備実験では、それは細胞がincubatoに回復させることが可能である数分間rとスライドのコスト節約するために、同じスライドをもう一度エレクトロポ。 </li></ol> 3顕微鏡検査<ol><li>使用されている染料のための適切なフィルターを装備した倒立顕微鏡を用いて、蛍光照明下で細胞を観察します。黄色ルシファーのために、励起が423nm、放射555nmの、ニコンIX70顕微鏡用WBVフィルタです。 </li><li>位相コントラスト下の細胞形態を調べるために、液体でトップにそれを充填した後、穴プラスチックの上にガラスカバースリップを配置することによって、メニスカス効果を排除します。より良い写真のために、ウェルをスライドから取り外すことができ、カバースリップは、フレーム上に置いた。生きた細胞については、増殖培地で充填されなければならないが、固定した細胞については、ウェルは、顕微鏡観察のためにグリセロールを充填することができる。 注：細胞が色素（上記のステップ2.7）の転送以下のホルムアルデヒドで固定している場合は洗浄して撮影が容易になります。細胞がある場合はありませんtは固定、蛍光はLYの細胞タイプ、電圧、および量に応じて約60分以内に細胞から除去される固定された細胞に蛍光を数時間保持している間に導入した。しかし、蛍光が消えたり、固定した細胞では、O / Nインキュベートした後に消散する。このため、写真は、エレクトロポレーション（ 図2）の後にすぐに注意する必要があります。 </li></ol>細胞間コミュニケーションの4。定量<ol><li>蛍光および位相差（ 図3）の下で20倍を目的とした細胞を撮影。 </li><li>非電気穿孔面積（ 図2、矢印、エレクトロポレーションエッジ）との国境でのエレクトロポレーションした細胞を同定し、スターとマークします。 </li><li>染料はギャップ結合を介して転送されている非電気穿孔側、上の蛍光細胞を特定し、ドットマーク（ 図3Aおよび3B）。 </li><li>の合計数で割り縁部（ 図3Aおよび図3B）に沿ってエレクトロポレーションした細胞の数で非エレクトロポレーション領域上の細胞を蛍光を発する。 注：少なくとも200個の連続電気穿孔境界セルからの転送を各実験について計算される。得られた数は、GJIC値です。 </li></ol>

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責任著者は、Cell Projects Inc.にライセンス供与されているクイーンズ大学が保有する特許の発明者です。 会社や大学は論文の内容に影響を与えませんでした。

プロトコルの重要なステップ 電気穿孔材料 エレクトロポレーションされる材料の純度が非常に重要である。細胞は非常に平坦である場合には、追跡用色素のより高い濃度が使用されなければならない（LYための最大20 mg / ml）をそのような場合には、純度がより重要より球形1細胞よりなる。 LY以外に他の染料またはnonpermeant分子の多種多様なそのような異なるコネキシン25からなるチャネルのためのプローブとして使用するためのAlexa色素シリーズとして、使用されてきた。核は（ 図4D）色素転写の定量がより難しくなる、非常に強く蛍光を発するようにしたが、臭化エチジウムまたはヨウ化プロピジウムなどの染料は、DNAにインターカレートされている。カルシウム流入が接合通信を中断、ならびにセルを低減することができるので、トラッキング色素が調製されなければならず、洗浄は、カルシウムを含まない増殖培地中で実施lの生存率。すべての溶液は、細孔の閉鎖及び生存率1を...

セルへの電流の印加は、エレクトロポレーションと呼ばれるプロセスにより、細胞膜上の細孔の形成を引き起こす。細孔は膜を通してnonpermeant多様な分子の通過を可能にする。形成された細孔が非常に小さく、細胞生理に最小限の妨害で、急速に再閉鎖するように電場が、正確に制御することができる。興味深いことに、接着細胞は懸濁液中でエレクトロポレーションすることが切り離されることなく、それらが成長する表面上にある導電性および透明なインジウム-スズ酸化物（ITO）でコーティングし、 その場で電気穿孔し、スライドガラス上に成長させることができる。細胞は、この表面上に非常によく成長することができ、そしてそれらが結合拡張されると、詳細な顕微鏡観察が可能である。この技術を用いて、小nonpermeant分子は、コンプの活性化に関する研究のためのこの技術は特に適しており、瞬時に細胞の本質的に100％に導入することができる（1件）受容体のリガンド刺激後の経路のonents。 エレクトロポレーション（electrotransfectionも呼ばれる）DNAの導入のために主に使用されてきた。しかしながら、in situでエレクトロポレーションが転写因子の結合、またはsiRNA 3,5阻害するためにアンチセンスRNA、二本鎖DNAデコイオリゴヌクレオチドなどのようなペプチド2-4、オリゴヌクレオチド分子は、多種多様の導入のために有益であることができ、 6、放射性ヌクレオチド7-10、タンパク質11 12またはプロドラッグ13。エレクトロポレーション後、細胞を生化学的分析のために溶解または固定し、抗体で染色することができる。 細胞は、導電性コーティングの縁を横切って成長するように、細胞増殖は、2つの表面の高さの差によって乱されないように導電性ITOコーティングは、800-1,000Å非常に薄い。これは、非electrop利点を提供していますorated細胞を対照として使用するために、エレクトロポレーションのものと並行して成長させることができる。ビデオと同様のアプローチは、ギャップ結合細胞間コミュニケーション（GJIC）の検査のために使用することができる。 ギャップ結合は、隣接するセル14の内部を接続するチャネルである。そのようなsrcと癌遺伝子がGJIC 15,16を抑制しながら、ギャップ結合は、細胞間の通信は、腫瘍形成および転移に重要な役割を果たしている。 GJICを調べるために、イエロールシファー（LY）のような蛍光色素は、多くの場合、マイクロインジェクションを介して培養細胞に導入したりこすっロード17と隣接するセルへの色素の拡散を顕微鏡、蛍光照明下で観察されている。これらの技術は、しかしながら、常に、細胞損傷を引き起こす。現在、細胞が部分的にITO 18で被覆されたガラススライド上で増殖させる技術が記載されている。電気パルスは、CA LY（または他の色素）の存在下で適用した隣接する、非エレクトロポレーションした細胞への染料の移動を顕微鏡、蛍光照明で観察しながら、スライドの導電部に増殖している細胞への浸透を使用して。単層から剥離する傾向が妨害感受性細胞を避けるために、電極を必要としない設計されたアセンブリは、電流19を印加するセルの上に配置される。このアプローチは、多数のセルにGJICを定量する能力を提供し、細胞代謝に検出可能な妨害なしに、血清刺激12を次のG1期の長さに対する効果の欠如によって示されるように、fosのレベルの増加癌原遺伝子タンパク質（ラプティス、未発表）、または細胞ストレス、p38の豚やJNK / SAPKキナーゼ1に関連付けられた2つのキナーゼ。このアプローチは、癌遺伝子発現、形質転換及びGJのレベルの間のリンクの検査を可能にしたIC 18と同様に、肺腫瘍標本20〜23から新たに培養した細胞を含む多様な細胞型におけるGJICの際にはSrcおよびStat3の効果。また、基板への細胞付着はその段階19,24で減少しているが、成功した脂肪細胞分化の際にギャップ結合閉鎖のデモンストレーションのために使用されている上部電極を欠いて説明した設定と、その場でのエレクトロポレーション。

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Cellgro http://www.cellgro.com/</td> <td>50-013-PB</td><td></td></tr><tr>ハイクロン<td>カルシウムを含まないDMEM</td><td>(Thermo scientific:http://www.thermoscientific.com)</td><td>SH30319-01</td><td></td></tr><tr><td>ドナー子牛血清&nbsp;</td><td>PAA: http://www.paa.com/</td> <td>Cat.# B15-008</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>PAA: http://www.paa.com/</td> <td>Cat.# A15-751</td><td></td></tr><tr><td>エレクトロポレーション装置</td><td>Cell Projects Ltd UK: http://www.cellprojects.com/</td> <td>ACE-100</td><td></td></tr><tr><td>Chambers</td><td>Cell Projects Ltd</td><td>UK ACE-04-CC</td><td>4-wells</td></tr><tr><td>Chambers</td><td>Cell Projects Ltd UK</td><td>ACE-08-CC</td><td>8-wells</td></tr><tr><td>Lucifer Yellow Cell</td><td>Projects Ltd UK</td><td>ACE-25-LY</td><td>高純度</td></tr><tr><td>CelTak</td><td>BD Biosciences</td><td>354240</td><td>細胞および組織接着剤</td></tr><tr><td>フィブロネクチン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>F1141</td><td></td></tr><tr><td>コラーゲン</td><td>BD Biosciences</td><td>354236</td><td></td></tr><tr><td>Poly-Lysine</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P8920</td><td></td></tr></tbody></table>

ギャップ結合審査のための機能アッセイ;インジウム - スズ酸化物に対する接着した細胞のエレクトロポレーション

A Functional Assay for Gap Junctional Examination; Electroporation of Adherent Cells on Indium-Tin Oxide

この技術では、透明で導電性のある材料であるインジウムスズ酸化物(ITO)で部分的にコーティングされたスライドガラス上で細胞を培養します。 ペプチドやオリゴヌクレオチドなどのさまざまな分子を、非外傷性の方法で細胞の基本的に100%に導入できます。ここでは、細胞間ギャップ結合コミュニケーションの研究にどのように使用できるかを説明します。 ルシファーイエローは、細胞が成長している導電性表面に電気パルスが印加され、細胞膜を介して細孔が形成されると、細胞内に浸透します。 これがエレクトロポレーションです。 エレクトロポレーション領域に隣接する非導電性ガラス表面で増殖する細胞は、エレクトロポレーションによってルシファーイエローを取り込まず、エレクトロポレーション細胞に結合するギャップ結合を介して蛍光色素を獲得します。細胞から細胞への色素の移動の結果は、蛍光照明下で顕微鏡で観察できます。 この技術により、ギャップ接合部通信の正確な定量が可能になります。 さらに、ペプチドまたは他の非透過性分子の導入に使用することができ、ギャップ結合を介して小さなエレクトロポレーションペプチドを移動させて隣接する非エレクトロポレーション細胞のシグナルを阻害することは、シグナル阻害の強力なデモンストレーションです。

図2は、固定および洗浄後、ラット肝臓上皮T51Bセル22、LYで電気穿孔し、蛍光（パネルAおよびB）下で撮影、または位相差（C）は、照明を示している。パネルAには、エレクトロポレーション領域のエッジは赤でマークされています。赤線の右側にある蛍光の勾配はギャップ結合を介して転送を示している。染料が転送された細胞は、ドットでマークしながら、エレクトロポレーション領域の端にある細胞は、星で識別し、マークした。図3Aと図3Bは、ギャップ結合コミュニケーションの定量を示している。比率は、染料がエレクトロポレーション境界セルあたりに移した細胞の平均数を示しています。この例では57ドットと10つ、 すなわち 、GJIC = 5.7があります。 CおよびD、転写-3のシグナルトランスデューサーおよびアクチベーター（Stat3の）にT51B細胞tの中でダウンレギュレートされているレンチウイルスベクターによる安定したsiRNA発現hrough、及びトランスフ...

このプレゼンテーションでは、接着性のある培養細胞のエレクトロポレーションを細胞間接合部のコミュニケーションの研究に使用し、細胞が導電性で透明な酸化インジウム-スズでコーティングされたスライド上で成長する方法を示します。

In this technique, cells are cultured on a glass slide that is partly coated with indium-tin oxide (ITO), a transparent, electrically conductive material. ...

エレクトロポレーションは、生存細胞に電流を印加して細胞膜に一時的な孔（ポア）を開ける手法です。これらの孔を通じて、通常は細胞膜を通過できない染料やその他の分子を細胞内に導入することができ、孔は細胞に損傷を与えることなく速やかに閉鎖します。本稿では、導電性かつ透明な材料が部分的にコーティングされたスライド上で増殖している付着細胞を、どのようにエレクトロポレーションさせるかについて説明します。材料には酸化インジウムスズが使用されており、これが電流を導くことで、染料が細胞内に進入するための孔を開けます。これにより、細胞にギャップ結合が存在するかどうか、また、隣接する細胞の内部を接続し低分子の通過を可能にする小さなチャネルであるギャップ結合がいくつあるかを調べることが可能になります。ギャップ結合を介した細胞間通信は、腫瘍化や転移を含む、細胞におけるさまざまな重要な機能を担っていることが古くから認識されています。Insituを用いた接着細胞のエレクトロポレーション方法に関する、この細胞プロジェクトのプレゼンテーションへようこそ。この画像は、透明導電ガラス上で培養された細胞に蛍光染料のCalcein AM（黄色）を導入した結果を示しています。この線までが、位相差顕微鏡下でより明確に確認できる範囲です。こちらをご覧ください。左側の細胞にエレクトロポレーションで導入された染料が、ギャップ結合を介して右側の細胞へと拡散しているのが分かります。その結果、細胞に蛍光の勾配が生じています。その後、遠心分離機用チューブに移します。細胞がチャンバー内で増殖する際、十分に分散していることが非常に重要です。そのため、遠心分離を行ってトリプシンの痕跡を完全に取り除くことが最適です。トリプシンの痕跡を含む培地を吸引して除去し、細胞を約1 mLの増殖培地で再懸濁させてから、チャンバーに播種します。ピペットに細胞懸濁液を入れ、チャンバーの蓋を取り外し、運搬しやすくするために細胞をチャンバー内に滴下します。その後、チャンバーを6 cmのペトリ皿に配置します。チャンバーをインキュベーターに戻し、細胞を増殖させます。播種された細胞は十分に広がり、互いに接触してギャップ結合を形成します。細胞が電極操作（エレクトロパレード）に適した状態になったら、in situパルスジェネレーターを希望の条件に設定します。簡単なセットアップ手順の詳細については、マニュアルを参照してください。in situの電圧が設定されると、キーパッドの赤色灯が点灯します。加温したカルシウム不含DMEMのボトル2本をウォーターバスから取り出します。1本は透析血清を含むカルシウム不含DMEMで、もう1本はDMEMです。カルシウムを含まない溶液を用いて、黄色いチップをピペッターに装着して準備します。その後、細胞をインキュベーターから取り出します。まず、洗浄ビーカー内で転倒させることで培地を除去します。次に、カルシウムを含まないDMEMを用いて組織を1回洗浄し、ティッシュで軽く吸い取ります。細胞が乾燥する可能性があるため、DMEMを完全に除去しようとはしないでください。細胞を乱さないよう注意しながら、しかし細胞が乾燥しないよう迅速に、BarrierにLucifer yellowを添加します。チャンバーの各半分に200 µLずつ使用してください。in situチャンバーに蓋をし、スライダーにセットします。スライダーを押し込み、チャンバーの両端のタブがスライダーのスロットに確実に収まっていることを確認してください。その後、チャンバーをチャンバーホルダーに挿入します。パルスジェネレーターのキーパッドにあるパルスボタンを押します。電送（エレクトロポレーション）プロセス中は、パルスジェネレーターとチャンバーホルダーのLEDが赤色に点滅し、その後、初期サイクルが完了したことを示すために緑色に点滅します。チャンバーホルダーの下にあるスライダーを戻し、チャンバーを取り出します。Lucifer yellowの大部分を回収して再利用しますが、細胞を乾燥させないように注意してください。カルシウムを含まないDMEMを添加します。透析血清を用いることで、血清が孔を閉じるのを助け、チャンバーをインキュベーターに戻した後、ギャップ結合を介したLucifer yellowの転移が起こるようになります。実験間でのタイミングを一定にする必要があります。標準は3分間です。培地を廃棄ビーカーに注いで捨ててください。ペーストまたはピペットを用いて4% formaldehyde固定液を加えます。室温で少なくとも2分間待ちます。formaldehydeを捨て、PBSで数回洗浄します。これにより細胞がガラスに固定されるため、洗浄中に細胞が剥離する危険性はほとんどありません。位相差顕微鏡で細胞を観察するためには、チャンバーの上にカバーガラスを設置することが重要です。チャンバーにPBSを満たし、盛り上がったメニスカスを形成させます。気泡が入らないように注意しながら、カバーガラスを設置してください。PBSが溢れても問題ありません。余分なPBSはティッシュで吸収してください。倒立蛍光顕微鏡が必要であり、位相差機能およびLucifer yellow用フィルターブロックを備えていることが望ましいです。位相差観察下で、エレクトロポレーションを施した領域の端を確認してください。蛍光下で2本の細胞のラインが見えます。スライドの半分は強く蛍光を発しています。光っている細胞に最も近いラインが、エレクトロポレーション領域の端に当たります。それ以上の蛍光は、ギャップ結合を介したLucifer yellowの移行によるものです。例えば、この上皮細胞の画像では、画像の左側でエレクトロポレーションされた細胞が、隣接する非エレクトロポレーション細胞にLucifer yellowを移行させており、導電性コーティングの端から右方向に向かって発光細胞の勾配が形成されていることがわかります。この画像は、同じ細胞視野を位相差顕微鏡で観察したものです。X線が非常にはっきりと確認できることに注目してください。ギャップ接合を介した転送がどの程度行われたかという定量的測定は、エレクトロポレーション後の細胞の蛍光像および位相差像を用いて手動で行うことができます。導電領域の端に沿って星印が付いている細胞をドナー細胞とみなします。それらはエレクトロポレーションされ、黄色蛍光タンパク質を取り込んでいます。黄色蛍光タンパク質を右側の隣接細胞へと転送し、それがさらに次へと転送されます。この過程は、量は徐々に減少しながらさらに先に進みます。この場合、ドットと星印の比率が41対8となり、この数値を用いることで、本例におけるギャップ結合を介した転移の広がりを比較することができます。5.1がギャップ結合指数（gap junction index）となります。細胞を手動でマーキングしてカウントする代替法として、画像解析ソフトウェアを使用し、エレクトロポレーションを施した細胞境界の非電極側における発光の相対量を測定する方法があります。これらの細胞にはギャップ結合が存在しません。ここが電気穿孔領域の右端です。蛍光のグラデーションが見られないことから、位相差顕微鏡下でギャップ結合がないことがわかります。すべての細胞がはっきりと確認できます。この例では、X線もはっきりと見えていることに注目してください。チャンバー内のすべての細胞を上皮成長因子（EGF）で刺激し、10分後に固定してリン酸化arcをプローブしました。右側の染色された細胞はエレクトロポレーションを行っておらず、この線より左側の細胞はエレクトロポレーションが行われていることに注意してください。エレクトロポレーションされていない細胞では、リン酸化irk抗体と免疫ペルオキシダーゼによる茶色の染色が見られます。エレクトロポレーションされた細胞には染まりが見られません。これは、エレクトロポレーションされたリン酸化ペプチドがGrb2のSH2ドメインをブロックし、EGFによるIrkのリン酸化を抑制したためです。線の右側にある、まだエレクトロポレーションされていない細胞が3〜4個分存在する領域においても、染まりが見られないことに注目してください。これらの細胞は、ギャップ結合を介して、エレクトロポレーションされた隣接細胞からブロッキングペプチドを取り込んだ細胞です。これは、シグナルの抑制がペプチドによるものであること、およびエレクトロポレーションのアーティファクトではないことを示す、最大限に強力な実証です。これらの細胞はエレクトロポレーションされていないため、これは位相差顕微鏡下で示されているものと同じ視野になります。エレクトロポレーション後、形態に全く変化がないことに注目してください。一部の患者では、多種多様な培養細胞において、ギャップ結合による細胞間通信を正確に定量化することが可能です。特定のシグナリング経路を遮断するペプチドを導入することは、精製タンパク質を用いて同定されたタンパク質間相互作用が、生細胞においてどのような関連性を持つかを評価するための強力な手法となります。これは、ペプチド医薬品の開発における極めて重要な第一歩となり得ます。

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Research

JoVE Journal

Biology

生物学

我々は、イオンチャンネルの機能上の単一の点変異の効果を研究する方法を説明します。...

異種哺乳動物細胞で発現したイオンチャネルの変異導入と機能解析

発現とHEK - 293T細胞における組換え電位依存性イオンチャネルの電気生理学的記録用に最適化されたトランスフェクション戦略

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私たちは、生きた細胞内のギャップジャンクションを介しセルラー通信を可視化し、いくつかの有用なヒントを提供するために、ルシファーイエローの単一細胞マイクロインジェクションを実行する方法をここで説明します。我々は、この論文は誰もが機能的ギャップ結合による細胞結合の程度を評価するために役立つことを期待しています。ここで説明するすべてのものは、原理的には、1,000ダルトン未満の分子量を有する他の蛍光色素に適合させることができます。...

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内皮増殖、バリアー機能、運動性の定量のための電気細胞 - 基質インピーダンスセンシング

このプロトコルは、ギャップ結合チャネルを介して細胞間通信を測定メスローディング蛍光色素転写技術が記載されています。ギャップジャンクション間の通信は、組織の恒常性を維持し、この細胞シグナル伝達の破壊は健康への悪影響がありますされる主要な細胞プロセスです。...

ギャップ結合細胞間コミュニケーション：毒物および毒素の有害効果を評価するための機能バイオマーカー、および天然物の健康上の利点

私たちは、腫瘍微小環境（TME）を模倣するために透過性の微多孔質膜インサートを適応させました。このモデルは混合細胞培養で構成されており、蛍光標識や細胞選別を使用せずに、高度に濃縮された個々の細胞集団の簡易な生成を可能にし、正常またはストレス条件下でTME内の細胞間コミュニケーションを研究することができます。...

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ここでは、ギャップ ジャンクション変調化学薬品、薬剤の発見および毒性評価の高スループット スクリーニング用に設計された新しいギャップ接合細胞間コミュニケーション試金のためのプロトコルを提案する.

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多孔質基質エレクトロポレーション(PSEP)は、一貫したハイスループットデリバリーと高い細胞生存率を兼ね備えています。経上皮電気インピーダンス(TEEI)測定の導入により、PSEPの中間プロセスに関する洞察が得られ、ラベルフリーの送達が可能になります。この記事では、PSEP送達実験とTEEI測定解析を同時に行う方法について説明します。...

経上皮電気インピーダンスモニタリングによる多孔質基板ベースのエレクトロポレーション

学ぶインジウム・スズ酸化物被覆スライドを用いた接着細胞のエレクトロポレーション法で、ギャップ結合を介した細胞間通信を評価する技術です。蛍光色素を用いてギャップ結合機能を可視化し、細胞生物学研究に応用できます。

ギャップ結合審査のための機能アッセイ;インジウム - スズ酸化物に対する接着した細胞のエレクトロポレーション

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