Name: 水からのウイルス濃度のため、小容量の手順 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 28 s
Description: 学ぶ小容量水試料からのウイルス濃縮最適化法。ガラスセルロースフィルターとシーライト二次濃縮技術を用いてヒトアデノウイルス回収率を向上させ、環境モニタリングの効率化に貢献します。

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原稿のレビューをしてくださったNicholas J. Ashbolt博士とDr. G. Shay Foutに感謝いたします。

ガラス製品とフィルターハウジングの調製<ol style="margin-left: 40px;"><li>特に断りのない限り、15分間121℃で、すべてのガラス製品、フィルターハウジングとソリューションを滅菌する。無菌性を確保するために、滅菌前にアルミ箔またはテープで保護された紙のいずれかですべての開口部または露出した表面を覆う。 </li><li> 1Lのサイドアームの三角フラスコに、フィルタハウジング（直径47mm）を取り付けることにより、ろ過装置を組み立てる。 47ミリメートル直径電気陰性/電気陽性ディスクフィルター：必要なフィルターを収集します。 </li><li> （凝集pHは3.5で集計しない;フロック溶液のpHを3.5に低下させ、粒子、または非凝集生成）1.5％牛肉エキス1リットル調製牛肉抽出物15gを溶解させて、0.05 Mグリシンを脱イオン水1 L及び3.75グラムのグリシンを添加する。 注：非凝集牛肉抽出物は、前三次濃度にセライトの追加が必要になります。 </li><li>溶出添加剤のナトリウムpolyphを追加0.1％の濃度で、牛肉エキスにosphate。 </li><li>牛肉エキス、所望のpHへのpHの溶液を混合し、滴下し、1 M塩酸溶液を加える。 121℃で15〜30分間のオートクレーブ牛肉エキス。 </li><li>細かい、中、または（非凝集牛肉エキスのみで使用するための）大粒子セライトの0.1グラムを測定します。 </li><li>エルレンサイドアームフラスコに、真空排気口に互換性のあるチューブを取り付けることにより、真空/吸引を準備します。 </li></ol>ソリューションおよびウイルスストックの調製<ol style="margin-left: 40px;"><li> 1MのHClの1 Lを準備します。 </li><li> 1 M NaOHを1リットルを準備します。 </li><li> 1×PBS溶液を調製する（137ミリモルのNaCl、2.7のKCl、1.47 mMのK 2 PO 4、及び4.3ミリモルのNaH 2 PO 4）。 <ol><li> 1 M NaOHを用いて9.0に1×PBSのpHを調整する。 </li></ol></li><li>準備し、9のPBS（pHのストックウイルスの1ミリリットルを混合することにより、10 4〜10 5最確数（MPN）ミリリットル-1にストックウイルスを希釈7）、以前に8,13に記載のように。 1ミリリットルのアリコートで-80℃で保存。 <ol><li>潜在的な汚染物質を除去するために、シリンジフィルター（0.22μmの孔径）によってウイルスストックを滅菌する。 </li></ol></li><li>脱塩素水道水<ol><li>メジャー滅菌を使用して滅菌水道水1Lメスシリンダーおよび磁気撹拌棒を含む2リットルのビーカーに注ぐ。 </li><li>チオ硫酸ナトリウムの0.7グラムを加え、顆粒が溶解するまで混合する。必要であれば、1 M HClまたは1MのNaOH溶液を用いて7-7.5に水道水のpHを調整する。 </li><li>融解ウイルススパイク​​（1ml）および脱塩素滅菌水道水1Lにスパイクの全体積を加える。 10分間混ぜる。 </li><li>スパイクされたサンプルと同じ方法で、各実験とプロセスとメソッドの空白（アデノウイルスのない脱塩素水道水）を準備します。 </li></ol></li></ol>ミリポアフィルタ装置の調製<ol style="margin-left: 40px;"><li>フィルターハウジングの上に無菌のカバーを外します。確保濾過中のサンプルの漏れを回避するために、フィルタハウジング上部ボウルと下部フィルタスクリーンとの間の適切なフィット。 </li><li> 1Lの三角フラスコから無菌のカバーを外します。フィルタユニットのコルクは、良好なシールを作成、三角フラスコの上部開口にぴったりとフィットしていることを確認してください。 </li><li>下部フィルタ画面からフィルターユニットの上部ボウルを外し、滅菌ピンセットで画面上で真正面から47ミリメートル電気陽性フィルタディスクを置く。下の画面にフィルターハウジングボウルを取り付け、反時計回りにねじることによって所定の位置にロック。 </li></ol> 4.水道水濾過（一次濃縮） <ol style="margin-left: 40px;"><li>ウイルスの100ミリリットルを測定し、滅菌メスシリンダーを使って水道水をスパイクした。 </li><li>ウイルスの100mlを47ミリメートルプリーツガラス/セルロースフィルタ又はナノアルミナ/グラスファイバーディスクフィルターのいずれかを含むフィルタハウジング内に水道水を混ぜ入れる。 </li><li>水がゆっくりとフィルターを通過することを許可する。 O残りの残差を除去するために穏やかな真空を適用しますフィルター表面からfの水道水。 </li><li>トリプシン処理を使用する場合は、表面をフィルタリングし、5分間インキュベートし、0.25％トリプシンの5ミリリットルを追加します。 </li><li>滅菌脱イオン水50mlを用いてフィルタ表面からトリプシンを洗う。 </li></ol>フィルターから5.ウイルス溶出<ol style="margin-left: 40px;"><li> 2 L三角フラスコからフィルターハウジングを外し、250ミリリットルサイドアームフラスコに配置します。 </li><li>メスシリンダーを使用して、牛肉エキスの100ミリリットルを測定します。ゆっくりとフィルターハウジングに牛肉エキスの100ミリリットルを注ぐ。 </li><li>小さな（250ミリリットル）の三角フラスコに牛肉エキスをキャプチャ、牛肉エキスがフィルターを注ぐようにします。フィルタからの残留牛肉エキスを通して引くために真空を適用します。 </li></ol> 6.セライト二次濃縮<ol style="margin-left: 40px;"><li>撹拌プレートに溶出したウイルスを含むトランスファーフラスコ。わずかな渦を作成するために混合、撹拌プレート上の滅菌磁気撹拌棒及び場所を追加する。 </li><li>セライトの0.1グラムを追加します。牛肉エキスの100ミリリットルに粉末、セライトを分散させることができます。牛肉エキスに無菌のpHプローブを配置します。 </li><li> pHが4.0を達成するために牛肉エキスに賢明1MのHClをドロップ追加します。 10分間かけて徐々に混在させることができます。 </li><li> 2Lの三角フラスコを用いて、（上述したように）フィルタハウジング上に47ミリメートルプレフィルタを配置する。 </li><li>プレフィルター上で100ミリリットル牛肉エキス/セライト混合物を注ぐ。牛肉エキスが通過注ぐできるようにします。フィルターから残留牛肉エキスを通じて引っ張ってわずかな真空を適用します。 </li><li>フィルターハウジング注ぎ口の端に金属チューブクリップを配置します。金属管クリップに滅菌15ミリリットルポリプロピレンコレクションチューブを取り付けます。バック三角フラスコにフィルターハウジングを置きます。 </li><li>プレフィルター上に回収し、セライト上で1×PBS緩衝液5ml、pHが9.0を加える。 </li><li> PBSは、プレフィルターを介してドリップすることを許可する。 15ミリリットルのコレクションチューブに残留PBSを引っ張ってわずかな真空を適用します。 </li></ol> 7.オーガニック凝集二次濃縮<ol style="margin-left: 40px;"><li>撹拌プレートに溶出されたウイルスを含有するビーカーに移す。牛肉エキス100mlに無菌の磁気撹拌棒を追加して、わずかに渦を作成するために混ぜる。 </li><li>牛肉エキスに無菌のpHプローブを配置します。 </li><li> 1 M HClを牛肉エキスに滴下し、pHを3.5に調整追加します。 30分間混ぜる。 </li><li> 4ºCで15分間2500×gで250ミリリットル遠心コニカルチューブと遠心分離機に溶出液を注ぐ。 </li><li>上清をペレットを破壊しないようにしないように注意しながら捨てる。 1×PBS、pHが9 5mlにペレットを再懸濁する。 </li><li> 4ºCで10分間4000×gでサスペンションを遠心。上清を捨て、ペレットを捨てる。 </li><li> 7-7.5のpHを調整し、フィルターを-80℃で0.22μmのシリンジフィルターを通して滅菌し、凍結。 </li></ol> 8.ウイルス核酸抽出<ol style="margin-left: 40px;"><li>製造業者の説明書に従って、適切な市販のキットを用いてウイルス核酸を抽出する。 </li></ol> &lt;Pクラス= &quot;jove_title&quot;&gt; 9。のAdV 40/41定量PCR <ol style="margin-left: 40px;"><li> 8,13が公開されているプライマーおよびプローブ、ならびに反応混合物及び熱サイクルプロファイルを使用。 注：分析のための検出の推定限界は反応あたり約5 qPCRの単位である。 </li><li>以下のような濃度でPCR増幅混合物の成分を追加します。10 mMトリス（pHは8.3）、50mMのKCl、4.5のMgCl 2、10mMのdNTPを、10μMのプライマーおよび1μMのプローブおよびポリメラーゼ0.5μlの45の最終的なボリュームになるようμlを96ウェルPCR反応プレート内のウェルの適切な数に加えることができる。 </li><li> 96ウェル、速い反応PCRプレートの各ウェルに、適切なPCR増幅混合物の45μlの負荷。 </li><li> DNAの5μl加えPCRプレートの適切なウェルにサンプルを抽出した。 </li><li>耐熱カバーシールでプレートをカバーし、PCRプレートのウェルの底に任意の液滴を移動させるために、プレートをスピン。 </li><li> follとしてPCR増幅サイクルを設定するOWS：10分間95℃、1分15秒、60℃、95℃の40サイクル。 </li></ol> 10.データ分析<ol style="margin-left: 40px;"><li> 5：1：1に及ぶサンプルの連続5倍希釈の3回の測定を分析625希釈範囲のウイルス粒子の最確数（MPN）を決定するために、以前に8,13に記載のように。 </li><li> 5：1：1に及ぶウイルス実験スパイクの連続5倍希釈を分析15625希釈範囲のウイルス粒子の最確数（MPN）を決定するために。 </li><li> EPA MPN計算器（http://www.epa.gov/nerlcwww/online.html）を使用して、希釈液のタイプ（1：5または1:10）を説明するために計算機を調整し、実行さ希釈液の数、および数希釈系列でサンプルを複製する。 </li><li> などボリューム（ 例えば 、1ミリリットル、100ミリリットル、の単位に正規化することにより、その後、データの10変換をログ実行</EM&gt;）。試料中に存在するウイルス粒子の数を割った実験の回収率を計算し、実験スパイク中に存在するウイルス粒子の数に集中する。 </li><li>異なる実験変数の影響を評価する（ 例えば、別のセライト種類、pH範囲、別のフィルタタイプと異なる二次濃縮技術）（ 例えば 、t検定、1つまたは2つのパラメトリックまたはノンパラメトリック統計検定を行うことでのAdV回収にデータの分布と実験的な設計に依存）ANOVAを分割バグレー。 </li></ol>

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</ol>

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この記事で表明された見解は著者の見解であり、必ずしも米国環境保護庁の見解や方針を反映するものではありません。商品名または市販製品について言及することは、使用の推奨または推奨を構成するものではありません。

陽性のフィルタは、水からのウイルスを濃縮するのに有用である。しかし、これらのフィルタは、順番にそれらの有効性を変えることができ、その構造と組成が異なることができる。この問題を配合、カプシド構造と料金は、最適な回復15を確保するように調整することが濃縮技術を必要とするウイルス株の間で変動する。既存の濃縮技術（ 例えば、電気陽性フィルタ、牛肉エキス溶出）の簡単な変更を介して、標的ウイルスのより効果的な濃度は、16,17を達成することができる。 これまでの研究は、通常、プライマリ濃度（フィルター）の手順を変更することにより、ウイルスの回収に焦点を当ててきたが、少し注意がまたウイルスの回収18に影響を与える可能性があり、その後の濃度の手続きに与えられている。これは、異なる二次濃縮技術は、ウイルス回収6,13,19,20に影響を与えることができることが実証されている。チェリ迅速かつ簡単なサンプル処理手順を使用しながらテ濃度は、マトリックスの種々...

人間の腸内ウイルスは、水系感染症1-3の重要な原因物質であるが、濃度のないそれらの検出を困難にし、一般的に汚染された環境水中の低い数で存在する。ウイルスを濃縮するために使用される手順は、典型的には濾過フィルター溶出したステップ、およびフィルタ溶出液の二次濃縮を含む。一般的な濾過手順は、そのような電気陽性フィルター（最近4,5にレビュー）のような荷電膜の使用に依存している。これらのフィルタは、フィルタ表面との間の静電相互作用（正に荷電）、および標的ウイルス粒子（負に帯電した）を使用して水に懸濁させたウイルスを捕捉するに依存する。市販されている二つの陽性のフィルタは、この技術は、ガラス/セルロース、ナノアルミナ/ガラス繊維フィルターに依存している。ガラス/セルロースフィルターのコストは、ガラス/ CEの使用を制限するナノアルミナ/ガラス繊維の最大10倍であるルーチンウイルス監視のためのフィルタをllulose。最近の研究では、違いが安く、フィルタの代替の使用を正当化する、周囲の水の6,7からのエンテロウイルスの回復にこれら二つのフィルタの間に、公称である結論に達した。そのような電気陰性及びグラスウールフィルタのような他のフィルタオプションが、それらはいずれかの源水（電気陰性フィルタ）の前処理を必要とするか、または（グラスウールフィルタ）市販されていない、研究されている。ウイルス濃縮手順の開発は、主に水からのウイルス回収率を向上させるために一次濃縮技術（フィルタ）を最適化することに焦点を当ててきた。しかし、ボリュームミリリットルため、典型的には1 Lから溶離剤の量を減少させる二次濃縮手順は、また、ウイルスの回収8に重大な影響を与えることができる。 腸内ウイルスの二次濃度は、典型的には、牛肉エキス、いくつかのタイプとして凝集剤（有機floccuに依存しています設置と）またはスキムミルク凝集9-12フィルタ表面からウイルス粒子を除去する。最近、セライト（微粒子）を添加して結合された牛肉エキスを使用して別の二次濃縮手順は、アデノウイルス、エンテロウイルス、およびノロウイルス8,13,14を回収するための有望性を示している。セライト濃度に付着し、懸濁液のpHを変化させることによって、粒子（フロックまたはセライト）から放出されるウイルス粒子中の有機凝集法と同様の原理で動作します。これら二つの二次濃縮技術との比較は、スパイクアデノウイルス（のAdV）タイプ40及び41 8の回復に評価されてきた。本研究では、2つの二次濃縮技術は、アデノウイルスの回復の統計学的に類似していたと結論付けた。しかし、有機凝集法は、30分を要する。 pH3.5でのインキュベーション、セライト技術はpH4.0で短いインキュベーション（10分）を必要とする。有機flocculatイオンはまた、コントラストセライト技術が懸濁液からセライト粒子を分離するために、基本的な実験装置（減圧濾過）を使用して、第三級濃縮中フロック粒子を収集するために、高価な実験装置（遠心分離機）の使用を必要とする。 フィルタおよび二溶出技術の特定の組み合わせはまた、ウイルス回収率に影響を与えることができる。ある研究では、プライマリ（電気陽性フィルタ）の特定の組み合わせと二次濃縮技術（セライトまたは有機凝集）はアデノウイルス13の回復の重要な影響を与えたと結論付けた。これらの知見は、最適化は、これらの技術を使用する場合に最適に与えられた水マトリックスから標的ウイルスを回収するために必要とされることを示唆している。最適化は、非常に多くの変数が（フィルタータイプ/ブランド、pH溶出液、セライト/有機凝集）が評価されるため、多くの研究者が積極的に避ける時間のかかる、骨の折れるプロセスです。 これはsのtudy、手順は、スパイク、ヒトアデノウイルスを用いて水からのウイルス濃度の最適条件を同定するために開発されたおそらく40,41菌株、各ウイルスタイプはユニークなカプシド形態および特定のキャプシド電荷を表示するので、濃度プロトコルは、すべてのウイルスのために最適化する必要があるかもしれない最適なウイルスの回復を達成するために、標的とする。 ）二次濃縮、および3としての評価1）2、続いて陽性フィルターディスクを用いて水道水にウイルス回収率を評価する）、セライト技術に対する確立された有機凝集法の評価：この研究は、バイのAdV 40,41濃度ためのアプローチを提供三次濃度の溶出バッファー。

<table><tbody><tr><td>アデノウイルス40株</td><td>ATCC</td><td>VR-931</td><td></td></tr><tr><td>アデノウイルス41株</td><td>ATCC</td><td>VR-930</td><td></td></tr><tr><td>チオ硫酸ナトリウム</td><td>フルカケミカル社</td><td>72051</td><td></td></tr><tr><td>セリテス #577</td><td>フルーカケミカル(株)</td><td>22142</td><td></td></tr><tr><td>NanoCeram 47 mm</td><td>アルゴニド</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>1MDS 47 mm</td><td>3M</td><td>6408502</td><td></td></tr><tr><td>AP-20 プレフィルター 47 mm</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td></td>AP2004700</tr><tr><td>グリシン&nbsp;</td><td>シグマ</td><td>50046-1KG</td><td></td></tr><tr><td>ポリリン酸ナトリウム</td><td>アクロス有機物390930010</td><td></td><td></td></tr><tr><td>トリプシン</td><td>Gibco</td><td>25200</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>シグマ</td><td>P5368</td><td></td></tr><tr><td>塩酸</td><td>フィ</td><td>ッシャーA481-212</td><td></td></tr><tr><td>BBL牛肉エキス</td><td>BDバイオサイエンス</td><td>212303</td><td></td></tr><tr><td>ディフコ牛肉エキス</td><td>BDBiosciences</td><td>211520</td><td></td></tr><tr><td>ABI 7900 リアルタイム PCR システム</td><td>ABI</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>ステンレス フィルター ハウジング</td><td>Millipore Corp.</td><td></td><td></td>XX2004720</tr><tr><td>血液DNA抽出キット</td><td>キアゲン&nbsp;</td><td>51104</td><td></td></tr><tr><td>EPA MPN電卓</td><td></td><td></td><td>http://www.epa.gov/nerlcwww/online.html</td></tr></tbody></table>

水からのウイルス濃度のため、小容量の手順

A Small Volume Procedure for Viral Concentration from Water

ウイルスの小規模濃度(サンプル量1-10 L、ここではスパイクした100 mlの水サンプルでシミュレート)は、ウイルス濃度の最適なパラメータを特定するための効率的で費用対効果の高い方法です。ウイルスは、ろ過(電陽性、電陰性、グラスウール、またはサイズ排除)を使用して水から濃縮し、続いて牛肉抽出物で二次濃縮してフィルター表面からウイルスを放出し、最後に三次濃縮して5〜30mlの容量のウイルス濃縮物を得ることができます。最適な濃縮手順を特定するために、2つの異なる電気陽性フィルター(ガラス/セルロースフィルター[1MDS]とナノアルミナ/ガラスフィルター[NanoCeram])と、異なる二次濃縮技術を評価しました。3つの異なるCeliite粒子サイズ(Fine、Medium、Large)が評価されたCelite技術に続いて、この技術を確立された有機凝集法のそれと比較しました。また、さまざまな溶出添加剤がフィルター表面からのアデノウイルス(AdV)粒子の放出を促進する能力についても評価されました。微粒子セライトは、二次濃縮中にウイルススパイクを添加した場合、確立された有機凝集法と同レベルのAdV40および41を回復しました。ガラス/セルロースフィルターは、ナノアルミナ/ガラス繊維フィルターと比較して、AdV40と41の両方を高いレベルで回収しました。統計的に有意ではありませんが、0.1% ポリリン酸ナトリウム修正牛肉抽出物溶離液を添加すると、未修正牛肉抽出物と比較して AdV 粒子が 10% 多く回復しました。

<html>セライトの選択セライトの3つの異なるタイプの前最高のパフォーマンス変異体の選択に試験した。中サイズの粒子に罰金セライトは、最高のアデノウイルスの回収を生産した。大きなセライトの使用はAdV40 41（範囲32％-100％）（ 図1）の両方の回収率の低下をもたらした。アデノウイルス40の平均回収率は115％±28％の（中）と82％±53％で（大）粒子セライトとAdV41ために、132パーセント±39％（ファイン）、83％±144％±52％で（ファイン）であった25％（培地）および50％±11％（大）。一方向ANOVAは、最適化されたセライト技術は、それぞれ19％および109％±16％、±75％、回収した有機凝集法、のそれにAdV40（P = 0.7920）と41（P = 0.1439）の統計的に同じようなレベルを回復示さ。 図1は 、二次濃縮技術の中とのADVタイプの違いを示している。 _content &quot;&gt;フィルタタイプ評価<p cla...

ヒトアデノウイルスのスパイクを使用して、少量の水サンプルの最適なウイルス濃度条件を特定するためのアプローチが開発されました。ここで説明する手法は、他のウイルスターゲットの濃度パラメータを特定するために使用され、大規模なウイルス濃度実験に適用されます。

Small-scale concentration of viruses (sample volumes 1-10 L, here simulated with spiked 100 ml water samples) is an efficient, cost-effective way to ...

本実験の全体的な目的は、元来ウイルス濃縮の最適化のために設計された小規模手法を用いて、水からのウイルス回収を最適化することです。水中のアデノウイルスを濃縮するための正電荷フィルターとしては、ガラスセルロースフィルターが最適であることが分かりました。また、二次溶出においては、フィルター表面からアデノウイルスを溶出させるために、セライトを用いた二次濃縮法が最適であることが証明されました。得られたこの手法は、テストしたすべてのフィルターと溶出の組み合わせの中で最高の回収率を示し、水道水から最も多くのアデノウイルスを回収することができます。 大容量濃縮などの既存の手法に対する本手法の主な利点は、より少量のサンプル量を利用するため、多くの濃縮変数を迅速かつ容易に評価できる点にある。 本プロトコルの準備として、1 mLあたり10～100,000 MPNの0.22 µmフィルター滅菌済みウイルス溶液を含む、必要なすべての溶液を用意してください。まず、滅菌した水道水 1 L を量り取ります。これを磁気撹拌子を入れた 2 L ビーカーに移します。水を撹拌しながらチオ硫酸ナトリウム 0.7 g を加え、完全に溶解させます。次に、1 M の酸または塩基のストック溶液を滴下して、pH を 7 から 7.5 の間に調整します。続いて、水にウイルスをスパイクします。調製したウイルス溶液 1 mL を全量加えます。フラスコを滅菌ラップで覆い、ウイルスが水に混ざり合うまで 10 分間静置します。その間に、Milliporeフィルターを準備します。まず、パッケージから取り出し、上部ボウルと下部スクリーンの間がしっかりと密着していることを確認します。次に、フィルターのコルク材が1リットルのサイドアームフラスコの縁にぴったりとはまるか確認してください。続いて、フィルターの上部ボウルを取り外し、ピンセットを用いて47 millimeterの正電荷フィルターディスクをフィルタースクリーンの中央に正しく配置します。その後、ボウルを再度取り付け、反時計回りに回して固定します。滅菌シリンダーを用いて、スパイクした水道水を100 milliliters量り取ります。次に、その水を2 literフラスコに取り付けられた調製済みフィルターハウジングに transferred します。フィルター内の正電荷ディスクは、プリーツ状のガラスセルロースまたはナノアルミナガラスファイバーを使用してください。フィルターに残った水を通すために、緩やかな真空を用いることができます。次に、フィルターハウジングを250 milliliterのサイドアーム付きフラスコに移します。100 millilitersのビーフエキスを量り取り、フィルター上にゆっくりと注ぎます。エキスをゆっくりと通過させ、緩やかな真空吸引を用いて残渣をろ過します。その後、2つの二次濃縮オプションのいずれかを実施してください。Celiteを用いてウイルスを濃縮するため、ウイルスを含む250 milliliterフラスコの内容物をスターラープレートに移します。撹拌子を用いて、小さな渦を作ります。次に、0.1 gramsのCelite粉末を100 millilitersのビーフエキスに加えます。Celiteを分散させ、溶液のpH調整の準備をします。0.1 molar塩酸を滴下し、pHを4.0まで下げます。その後、溶液を10分間混合させます。混合している間に、47 milliliterのプリフィルターを2 literフラスコに取り付けます。次に、100 millilitersのビーフエキス-celite混合液をプリフィルターに通します。ろ過を完了させるために、弱い真空（吸引）を用いても構いません。次に、フィルターハウジングのスパウトの端に金属製チューブクリップを取り付けます。このクリップに滅菌済みの15 milliliterポリプロピレン採取チューブを取り付け、その後、フィルターをフラスコに再度組み立てます。次に、pH 9の1X PBS 5 mLを用いて、Celite粒子からウイルスを溶出させます。PBSの大部分が重力によって15 mLチューブに滴下するのを待ち、残りの液を弱真空で吸引します。有機凝集法を用いてウイルスを濃縮するため、ウイルスを含む250 mLフラスコの内容物をスターラープレートに移します。撹拌子を用いて、小さな渦を作ります。1 M 塩酸を滴下し、溶液のpHを3.5に調整します。その後、混合液を30分間撹拌します。その後、溶液を滅菌済みの250 mLコニカル遠心チューブに移します。4°C、2,500 gで15分間遠心分離します。遠心後、チューブを扱う際はペレットを崩さないように注意してください。上清を慎重にデカンテーションし、pH 9のPBS 5 mLでペレットを再懸濁します。ペレットが完全に溶解していることを確認してください。次に、再懸濁液を4°C、4,000 gで10分間遠心分離します。濃縮されたウイルスを含む上清を回収します。ペレットは廃棄して構いません。本プロトコルの最適化において、3種類のセライトを比較した。粒径の大きいセライトを使用すると、ADV 40およびADV 41の両方の回収率が低下した。フィルターからの溶出をpH 7.5から12の間で試験し、フィルターからADV粒子を回収するのに最も効果的な条件を検討しました。その結果、pH 10のビーフエキスおよびセライトを併用したガラスセルロースフィルターにおいて、最高の回収率が得られました。この結果は、ADV 40とADV 41で同様でした。pH 10における牛肉抽出物は、有機凝集よりも優れていることが証明された。最適化された手法を、25%のトリプシン添加、およびビーフエキスへの0.1%ポリリン酸ナトリウムの補充と比較しました。いずれの処理においても、ADVの回収率は有意に向上しませんでした。この手法を習得すれば、適切に実施することで45分で完了させることができます。

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Research

JoVE Journal

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水からのウイルス濃度のため、小容量の手順

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