Name: へのガイドインビボシングル単位記録 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: 学ぶマウス大脳皮質の抑制性インターニューロンからの安定した単一単位記録手法。ChR2を用いた光遺伝学的同定により、標準的な細胞外記録装置で遺伝的に特定された細胞型を標的とする費用対効果の高いアプローチを提供します。

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この作業は、ホワイトホール財団とNIHによって資金提供されました。Clifford Dax 氏 (オレゴン大学テクニカル サポート アドミニストレーション) の支援と、光伝送用の回路の設計に関する専門知識に感謝します。

注：オレゴン大学の動物実験委員会によって承認され、次のプロトコルが健康ガイドラインの国立研究所によるものである。 1.急性手術<ol><li>腹腔内（ip）注射した（ 表1）を介して、ケタミン-メデトミジンカクテルで動物を麻酔。 注：これらの実験で使用したマウスは、ドライバ·ライン（; SST-iCre12、SOMの+; CrをiCre12、CR + Pvalb-iCre11、PV +）を介在するCRE依存ChR2を-のeYFPトランスジェニックline10を交配することによって生成されます。 ChR2をまたは関連オプシンのウイルス送達は、同様の発現レベルが得られると仮定して、同様にうまく動作するはずです。 </li><li>手術を開始する前に、確実に、動物の展示穏やかつま先のピンチに応答がないという。麻酔のこの深さを維持するために必要に応じて、実験を通して麻酔薬を再投与する。注射用麻酔薬を使用する場合は、必要に応じてメンテナンス注射用のIPカテーテルを埋め込む。 </li><li>メンテナンス注射（ 表1）のために適切に希釈した麻酔薬のカクテルを使用することにより、たとえば、（約3ミリリットル/ kg /時間）、実験を通して生理食塩水または乳酸加リンゲル液で水和動物を保管してください。 </li><li>定位や他のヘッド保持装置における動物を置きます。頭蓋骨はよく固定されていることを確認してください。これにより、安定した単一細胞記録を維持するために不可欠である。 </li><li>乾燥を防ぐために、目にopthalamic軟膏を適用します。 36.5から37℃の体温を維持する。 </li><li>追記安定性のための脳槽ドレーンを実行します。手術用メスの刃を使用して、大槽マグナを露出するために頭蓋骨の後部面から組織を除去する。脳脊髄液を排出する硬膜に小さなニックを作る。刃のごく先端を使用し、小脳や脳幹に接触することは避けてください。 </li><li>メスを使用して、聴覚のために（対象の皮質領域の上に小さな開頭術（1~2 mm 2で） を行うブレグマの皮質、おおよそ-2.3 mmの後方、正中線の横4.5ミリメートル）。 </li><li>硬膜を取り出し、暖かいアガロースの層で0.5さらさ皮質をカバー - 1mm厚を（1.5％アガロース生理食塩水に、0.9％のNaCl;〜37℃で適用されます）。定期的に生理食塩水を数滴を適用することにより、実験を通して湿ったアガロースを保管してください。 </li></ol> 2.録画セットアップ<ol><li>タングステン電極（7〜14MΩ、127ミクロンの直径、12°テーパーチップ、エポキシコーティングされた）を準備します。ガラス毛細管に電極を瞬間接着剤と、グリップ（ 図1）のための熱収縮チューブを追加する。 </li><li>皮質表面に直交する移動するように設定電動（または油圧）マイクロマニピュレーター上に電極を、マウントします。頭蓋骨に対して、皮膚の下にワイヤー地面をスライドさせます。彼らは筋電図の成果物を生成することができますように頭部の側面と首の後ろに筋肉との接触を避ける。 </li><li>細胞外のアンプを用いて電気信号を増幅シングルユニット記録に適したLi FiのERが、好ましくは、インピーダンスチェックモードを装備。 2オシロスコープやパワードスピーカーのセット - 進行中のスパイク活動（5000 Hzのバンドパス300）を監視します。ここで、記録されたデータは、10kHzのサンプリングレートで連続的にデジタル化される。スパイクは、オフラインで抽出される。 </li><li>先端が皮質の表面に到達するまで、アガロースを介して電極を進める。顕微鏡でこの手順を守ってください。マイクロマニピュレータ上の &quot;ゼロ&quot;はこの位置。 </li><li>最高の記録の深さに近づけるために、視覚的に浸透の終わりに電極を引き出す際に電極先端がゼロの深さで皮質表面を出ることを確認します。 注：マニピュレータの読み取りと観測された電極位置の間に不一致は、それが組織に比べてドリフトしたことを示しています。これは、脳または動物、またはマニピュレータドリフトの不安定性によって引き起こされ得る。 <ol><li>ことを確実にするための追加のチェックとしてこのゼロ設定点は皮質の表面に対応する、組織の最初の数百メートルを進行しながら、刺激誘発電場電位を監視します。電場電位を監視する場合、10 Hzに細胞外アンプの低い帯域通過フィルタのカットオフを下げます。局所電場電位の極性は層I / IIの国境付近で13、〜100μmの深さを中心に反転させることを確認します。これは聴覚皮質のための信頼性の基準点であるが、それは他の皮質領域のために異なる場合があります。 </li></ol></li><li>手動マイクロマニピュレーター上に青色光源（ 図2）に結合された光ファイバをマウントします。顕微鏡を用いて、可能な限り、アガロースの表面に近いファイバの先端を位置決めする。電極が組織に入るビームをセンター。 </li><li>指定された幅とduratioのTTL（トランジスタ - トランジスタ論理）パルス列を送達することができる制御ユニットと、光源の出力を調整するn型、例えば、アルドゥイーノ（ 図3）、コンピュータI / Oカード（図示のように）、または市販のパルス発生器。 <ol><li>両方のオシロスコープ上の信号を監視します。 </li></ol></li><li>パワーメータを用いた光ファイバの先端に全光パワー出力（mW）を測定する。ファイバコアの断面積で割ることによって放射照度（ミリワット/ mm 2で） を計算するためにこの値を使用します。 10の範囲内の強度値で始まる- 15ミリワット/ mm 2であり、必要に応じて、アーチファクトが除去されるまで、下方向に調整する。 </li><li>組織に入るために態勢を整えて、アガロース内の電極、光のアーティファクトを確認してください。検索パルス列を起動します（ 例えば、30ミリ秒光パルス、500ミリ秒刺激間間隔（ISI））。 <ol><li>入射光の角度を変更するために、電極に対する光ファイバを再配置することにより、過渡光アーチファクト（ 図4）を除去する。アーティファクトが解決しない場合は、光パワーを減らしてみてください。目の中アーチファクトは、完全に排除することができない電子稀なケース（のみ最小化）、探索パルスの持続時間を延長する。これが本当のニューロンのスパイクを識別するのを助けることができる。 </li></ol></li></ol> 3.ストレートPINPイン」 <ol><li>約1μm/秒の速度で脳をゆっくり電極を進める。継続的な活動を監視するために、1つのオシロスコープを使用してください。他方では、レーザパルスをオフトリガー。 </li><li>電極は、ChR2を+細胞に近づいていることが多い電気信号がオシロスコープ上明らかであるだけでなく前に知覚できることを示しオーディオモニター上に光誘発スパイクのかすかな「ハッシュ」、音を聞きます。前進速度を遅くする。 注：セルは、電極の経路内に直接にある場合、光誘発活動は大きな（そして大声で）成長します。電極は、単一の介在ニューロンに近づくと、ハッシュは、均一なサイズおよび形状の小さいが明確に定義されたスパイクに解決される。 </li><li>とすぐにLiなどGHT誘発スパイクは、そうすることを開始、オシロスコープ上で個別のオフを引き起こすのに十分な大きさである。スパイク波形の正確な形状を観察するために横軸にスケーリングを調整します。 </li><li>停止し、組織が安定するのを待つ。近いセルに電極を移動する誘惑に抵抗する。このステップでは、安定した記録のために重要である。数分後に、信号対雑音比が改善されない場合 - それは、組織が定着しているが、それは任意に近い電極の先端に細胞を持っていない - 事前さらに5ミクロンおよび再び待つ。 <ol><li>ピークまたは活動電位の谷のいずれかが確実に良くノイズフロア（ 例えば、+/- 300μV以上）の上に設定された電圧閾値と捉えることができるまで、このプロセスを繰り返します。 注：抑制性介在ニューロンをPINPingとき偽陽性または曖昧さの少ないリスクがあります。ほとんどの細胞は、容易に30ミリ秒の持続時間と間PULとのパルス列に従うことができます2-5ミリ秒（ 図5）の信頼性のある最初のスパイクレイテンシを持つSE間隔500ミリ秒、またはより速く、。 PV +細胞の大部分は、特に、完全な1秒（ 図6）のための焼成に耐えることができます。これらは抑制性ニューロンであるため、disynaptic（間接）活性化は主要な関心事ではありません。 </li></ol></li><li>記録しながら、最初のオシロスコープで継続的な活動を監視する。第二オシロスコープを使用したスパイクの大きさや形状に近い目を離さない。スピーカー上の彼らのサウンドの品質に注意してください。 <ol><li>セルは（それが刺しや損傷危険性がある）は、電極に接近しすぎて描画されるか、または離れて漂流していることを示す急激な変化のために聞き入る。スパイクが大きく歪む場合は、バックアウト。彼らは小さく成長する場合には、電極を進める。 2μmのステップでゆっくりと移動します。 </li><li>ピークまたは谷に揃え、すべてのスパイク波形を、重ね合わせることにより記録事後の品質を確認してください。電圧THRESを変えるホールド。しきい値の幅広い、しか均一な高さ（ 図5a）のいずれかの一貫性のあるスパイク形状があるはずです。 </li></ol></li><li>いずれかの時点で信号が隣接ニューロンからのスパイクで汚れた場合は、上に移動します。電極は、隣接セルの範囲外に渡すが、標的ニューロンの範囲内に残ることをオフのチャンスに、ゆっくりと進める。 （これは通常、成功しません。） </li><li>各浸透皮質の深さ全体（900 +μm）を介して電極を移動します。何光応答性ニューロンは逆に、記録は日常の隣接ChR2-細胞からのスパイクで汚染されている多くの侵入や、後に遭遇されていない場合は、新しい電極を試してみてください。 注：でも、単一のバッチ内で、個別電極のインピーダンスと先端形状がかなり変化することができます。両方の要因は、WH-光誘発スパイクを検出するのに十分な大きさでなければならない電極の有効」を聞い半径」に貢献Ileの検索は、まだ単独での単一ニューロン記録を可能にするために十分な制限された。 </li><li>必要に応じて、電極のインピーダンスをテストします。組織の損傷を避けるため、よく脳の外側に、アガロース層の上部に電極の先端でこれを行う。 7-14MΩの範囲内で、正確なインピーダンスは、このアプリケーションの性能、歩留まりの予測を確認し、ない。とは言う、それは半径を聴くための合理的なプロキシです：低インピーダンス電極は、より多くのユニットを拾う。高インピーダンス、少ない。 </li><li>実験の最後に、そのような麻酔薬の過剰投与、または麻酔の深い面下に頸椎脱臼などの制度的認定の手段により動物を安楽死させる。 </li></ol>

<ol><li>Lima, S. Q., Hromadka, T., Znamenskiy, P., Zador, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PINP%3A+a+new+method+of+tagging+neuronal+populations+for+identification+during+in+vivo+electrophysiological+recording%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">PINP: a new method of tagging neuronal populations for identification during in vivo electrophysiological recording.</a> PLoS One. 4, (2009).</li>
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</ol>

著者には競合する金銭的利益はありません。

PINPは、概念的には簡単であるが、それは実際に挑戦することができます。成功の主要な決定は、電極の選択である。電気リスニング半径は重要なパラメータである。それは1つがそれに応じて前進速度を調整できるように、先端が、少し離れChR2を+細胞からまだあるときに光誘発スパイクを検出するのに十分な大きさでなければならない。同時に、それは優れた単体分離を可能にするために十分に制限されなければならない。つまり、電極も隣接ChR2-ユニットからのスパイクを拾うしてはならない、である。リスニング半径の点で適切なバランスを打つことは、任意の標的細胞型のために挑戦することができるが、それは比較的大きな外を有し、疎小さく、多くの場合、細胞をピラミッドのすぐ近くで発見され、阻害介在ニューロン、のために特に当てはまるであろうスパイク。ここでも示唆戦略を用いて、予想される収率は高くない。私たちの典型的な収量は、私たちのcriter与えられ、0-2のPV +ニューロン/動物だった優れた単一ユニットの分離時間半にわたり持続録音のIA。 抑制性ニューロンをPINPingとき抑制性神経細胞は、間接的にシナプス後細胞...

哺乳類の脳を構成する無数の細胞タイプを特徴づけることは、神経生理学の中心的な、しかし長い間とらえどころのない目標でした。例えば、大脳皮質におけるさまざまな抑制性細胞タイプの特性と機能は、非常に興味深いトピックですが、まだ比較的知られていません。これは、従来のブラインドin vivo記録技術では、異なる細胞タイプを区別する能力が限られていることが一因です。細胞外スパイク幅は、興奮性錐体細胞から推定されるパルブアルブミン陽性抑制性ニューロンを分離するために使用できるが、この方法はI型とII型の両方のエラーの影響を受けやすい2,3。あるいは、記録されたニューロンを充填、回収、染色して、後でその形態学的および分子的同一性を確認することもできますが、これは骨の折れる時間のかかるプロセスです。最近、遺伝的に同定された抑制性介在ニューロンの集団は、カルシウムイメージングまたは視覚誘導パッチ記録によってアクセス可能になりました。これらのアプローチでは、カルシウムレポーター(GCaMPなど)または蛍光タンパク質(GFPなど)のウイルスまたはトランスジェニック発現により、プロモーター発現によって定義される細胞タイプの同定と特性評価が可能になります。これらのアプローチは、高価な機器を必要とする2光子顕微鏡法を使用し、また、脳組織の光散乱特性のために表在皮質層に限定されます。
最近、リマと同僚1は、生体内で遺伝的に同定されたニューロンタイプを電気生理学的記録に標的とする光遺伝学の新たな応用を開発しました。これは「PINP」または「光刺激支援ニューロン集団の同定」と名付けられました。記録は、特定のニューロン亜集団でチャネルロドプシン-2(ChR2)を発現するマウスで行われます。人口のメンバーは、青い光の短い閃光に対する反応によって識別されます。他の多くの光遺伝学アプリケーションとは異なり、目標は回路機能を操作することではなく、単に遺伝的に定義されたクラスに属するニューロンを特定することであり、それは正常な脳機能の間に特徴付けることができます。この技術は、標準的な細胞外記録装置で実装できるため、カルシウムイメージングや視覚誘導パッチングに代わる、アクセス可能で安価な代替手段として役立つことができます。ここでは、麻酔をかけた聴覚皮質の特定の細胞タイプをPINPするアプローチについて説明し、より一般的なポイントを他の準備や脳領域に有用に適用できることを期待しています。
皮質では、PINPは抑制性介在ニューロンの生体内応答特性を調査するために特に有望です。GABA作動性介在ニューロンは、皮質ニューロンの小さな不均一なサブセットを構成する4。特定の分子マーカーの発現によって特徴付けられるさまざまなサブタイプが、最近、皮質回路5〜9で異なる計算役割を果たすことが示されています。遺伝学的ツールが進歩するにつれて、これらの広範なクラスに分類される形態学的および生理学的に分離可能なタイプを区別することが最終的に可能になるかもしれません。ここでは、麻酔をかけたマウス皮質の同定された抑制性介在ニューロンから安定した、十分に分離された単一ユニットの記録を取得するための戦略を共有します。この戦略は、パルブアルブミン陽性(PV+)細胞を標的とするために特別に開発されましたが、ソマトスタチン発現(SOM+)やカルレチニン発現(CR+)介在ニューロンなど、他のタイプの介在ニューロンにも有効であることを発見しました。PINPingは概念的には簡単ですが、実際には驚くほど揺るぎないものです。試行錯誤を通じて、この方法を試している他の人に役立つかもしれないいくつかのヒントやコツを学びました。

<table><tbody><tr><td>ChR2-EYFP ライン</td><td>ジャクソンコロニー</td><td>12569</td><td></td></tr><tr><td>Pvalb-iCre (PV) ライン</td><td>ジャクソンコロニー</td><td>8069</td><td></td></tr><tr><td>SST-iCre (SOM) ライン</td><td>ジャクソンコロニー</td><td>13044</td><td></td></tr><tr><td>Cr-iCre (CR) ライン</td><td>ジャクソンコロニー</td><td>10774</td><td></td></tr><tr><td>アガロース</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9793</td><td>タイプ III-A 、高 EEO</td></tr><tr><td>マイクロポイント (硬膜)フック)</td><td>FST</td><td>10066-15</td><td></td></tr><tr><td>外科用ハサミ</td><td>FST</td><td>14084-09</td><td></td></tr><tr><td>メス</td><td>FST</td><td>10003-12 (ハンドル)、10011-00 (ブレード)</td><td></td></tr><tr><td>Puralube 眼科用軟膏</td><td>フォスター &スミス</td><td>9N-76855ホ</td><td></td></tr><tr><td>メオサームブランケット</td><td>ハーバード装置</td><td><a name="RANGE!C11">507220F</A></td><td></td></tr><tr><td>タングステン微小電極</td><td>AMシステム</td><td>577200</td><td>12 M&Omega;AC抵抗、127 &mu;m直径、12°C;テーパーチップ、エポキシコーティング</td></tr><tr><td>されたキャピラリーガラスチューブ</td><td>ワーナーインスツルメンツ</td><td>G150TF-3</td><td></td></tr><tr><td>熱収縮チューブ</td><td>DigiKey</td><td>A332B-4-ND</td><td></td></tr><tr><td>Zapit Accelerator</td><td>DVA</td><td>SKU ZA/ZAA</td><td>標準の瞬間接着剤で使用。&nbsp;</td></tr><tr><td>微小電極 ACアンプ 1800</td><td>AMシステム</td><td>700000</td><td></td></tr><tr><td>MP-285 電動マイクロマニピュレーター</td><td>サッター</td><td>MP-285</td><td></td></tr><tr><td>4チャンネル デジタルオシロスコープ</td><td>テクトロニクス</td><td>TDS2000C</td><td></td></tr><tr><td>パワードスピーカー</td><td>ハーマン</td><td>モデル JBL&nbsp;デュエット</td><td></td></tr><tr><td>手動マニピュ</td><td>レーターScientifica</td><td>LBM-7</td><td></td></tr><tr><td>800 &micro;m 光ファイバーパッチケーブル</td><td>ThorLabs</td><td>FC/PC BFL37-800</td><td></td></tr><tr><td>パワーメーター</td><td>ThorLabs</td><td>PM100D(パワーメーター)、S121C(標準パワーセンサー)</td><td></td></tr><tr><td>475nm Cree XLamp XP-E</td><td>DigiKey</td><td>XPEBLU-L1-R250-00Y01DKR-ND</td><td>LEDの電力と効率は日々増加していますので、最新の製品(www.cree.com)を確認することをお勧めします。</td></tr><tr><td>Arduino UNO</td><td>DigiKey</td><td>1050-1024-ND</td><td></td></tr></tbody></table>

へのガイドインビボシングル単位記録

A Guide to In vivo Single-unit Recording from Optogenetically Identified Cortical Inhibitory Interneurons

神経生理学における主要な課題は、大脳皮質に多数の阻害性の細胞型の応答特性および機能を特徴づけることであった。 ここで私たちは、リマと同僚1によって開発された方法を使用して麻酔をかけたマウスの大脳皮質内で識別抑制性介在ニューロンから安定し、十分に単離され、単一ユニット記録を取得するための戦略を共有しています。記録は、特定のニューロンの亜集団にチャネルロドプシン-2（ChR2を）を発現するマウスで行われる。集団のメンバーは、青色光の短いフラッシュに対する反応により同定される。 「PINP」と呼ば、またはニューロン集団の光刺激アシスト識別 - - この技術は、標準的な細胞外記録装置で実現することができる。これは、遺伝的に同定された細胞に細胞外記録を標的とする目的のために、カルシウムイメージングまたは視覚誘導パッチに安価でアクセス可能な代替物として機能することができる。 HERE私たちは毎日の練習方法を最適化するための一連のガイドラインを提供する。我々は、具体的にはパルブアルブミン陽性（PV +）細胞を標的化するための戦略を洗練が、それはそのようなソマトスタチン発現（SOM +）とカルレチニン発現（CR +）介在ニューロンとして、同様に他の介在ニューロンタイプのために働くことを見出した。

ここでは、「リマら 1。 表1の詳細を示唆麻酔カクテル、ケタミン-メデトミジン-アセプロマジンを（によって開発された光遺伝学的方法を使用して、麻酔したマウス皮質で遺伝的に分類された抑制性介在からシングルユニット記録を取得するための我々の戦略を共有するKMA」）。 図1は、4図3は、Arduinoのマイクロコントローラと光出力をゲーティングするための構成およびコードが含まれている。図2は、単純なLED制御ユニットの回路図を含んでいる図 。記録のために調製したタングステン微小電極を示している例を示している議定書で論じ光誘起電気アーティファクト。アーティファクトは時折（左パネル）に遭遇するが、容易に補正（右パネル）。 図5は、光学的に同定された介在ニューロン（太陽光発電+、CR +、およびSOM +）の3つのタイプから例の記録を示している。左PAネルは、この戦略では得ることが期待できる生の電圧トレースと整列波形、信号対雑音比の1の種類の...

ここでは、麻酔をかけたマウス皮質の特定された抑制性介在ニューロンから安定した、十分に分離された単一ユニットの記録を得るための私たちの戦略について説明します。ChR2を発現するニューロンは、青色光に対する応答によって識別されます。この方法は、標準的な細胞外記録装置を使用し、カルシウムイメージングや視覚ガイドによるパッチ適用に代わる安価な方法として機能します。

A major challenge in neurophysiology has been to characterize the response properties and function of the numerous inhibitory cell types in the cerebral ...

次の実験の全体的な目標は、チャネルルートイン2を発現するマウスの皮質間ニューロンから高品質の細胞外単一ユニット記録を取得することです。これは、高インピーダンスの記録電極を組織全体に送り込み、青色光パルスに対するスパイク応答からニューロン間を同定することによって達成されます。電気信号は、適切な進行速度と安定した十分に分離された記録を得る可能性を示す変化について監視されます。良好な単一ユニットの分離が達成できない場合、または逆に光応答性ニューロンにほとんど遭遇しない場合は、記録電極を交換してください。結果は、光がニューロンに光学的に識別された応答を誘発する信頼性と、この戦略で得られる典型的な信号対雑音比を示しています。光刺激アプローチは、標準的な細胞外増幅器と青色光を使用して、遺伝的に同定された細胞タイプを標的とする、アクセス可能で安価な方法です。これは、聴覚皮質を麻酔する中で特定の内部ニューロンをポン引きするための我々の戦略であるが、より一般的な点は、スパース細胞型よりも他の皮質領域に適用されるこの手順を開始する。動物を腹腔内注射によるケタミンマイネカクテルで麻酔した後、脳定位固定装置または他の頭部保持装置に入れ、頭蓋骨がしっかりと固定されていることを確認します。これは、安定したシングルセル記録を維持するために不可欠です。次に、眼に眼軟膏を塗布して乾燥を防ぎ、動物の体温を摂氏37度に維持してCI胸骨ドレーンを行い、記録の安定性を高め、メスの刃で後頭蓋骨から組織を取り除き、CI胸骨を露出させます。次に、ブレードの先端でドラに小さな切り込みを入れて、脳脊髄液を排出します。次に、メスを使用して、関心のある皮質領域に対して小さな開頭術を行います。その後、硬膜を取り除き、露出した皮質を温かいアロの層で覆います。アグロスを生理食塩水で湿らせておきます。舌スタンド電極を用意します。電極をガラスキャピラリーチューブに瞬間接着剤と加速器で接着します。次に、グリップ用の熱収縮チューブを追加します。その後、電極を電動または油圧のマイクロミクロンマニピュレーターに取り付け、皮質表面に直交して移動するように設定します。アース線を皮膚の下に滑り込ませ、頭蓋骨に当てます。頭の側面や首の後ろの筋肉との接触は、筋グラフのアーチファクトを生成する可能性があるため、避けてください。電気信号は、単一ユニット記録に適した細胞外増幅器を使用して増幅され、好ましくはインピーダンスチェックモードが装備されています。進行中のスパイク活動は、2つのオシロスコープとパワードスピーカーのセットで監視されます。次に、電極をアグロスに通し、そのインピーダンスをテストして、7〜14メガオーム以内にあることを確認します。先端が皮質の表面を破ると、マイクロマニピュレータ上のこの位置をゼロにします。記録の深さを最適に推定するには、電極の先端がゼロの深さで皮質表面から出ていることを視覚的に確認します。聴覚皮質への浸透の終わりに電極を引き抜くとき、このゼロ設定値が皮質のレベルに対応することを確認するために、刺激誘発電界電位を監視します。電極を最初の数百マイクロメートルの組織に通しながら、局所電位の極性が100マイクロメートルの深さで逆転することを確認します。次に、青色光源に結合した光ファイバーを手動のマイクロマニピュレータに実装します。指定された幅と持続時間のTTLパルス列を供給できる制御ユニットを使用して、光源の出力を調整します。次に、両方のオシロスコープで信号をモニタします。光ファイバーの先端での総光量をパワーメーターで測定します。この値を使用して、放射照度をファイバー コアの断面積で割って日射照度を計算します。10 から 15 ミリワット/平方ミリメートルの範囲の値から開始します。顕微鏡を使用して、ファイバーの先端をアロスの表面にできるだけ近づけます。電極が組織に入るビームの中心にビームを置きます。次に、arosの電極で光のアーティファクトを確認します。パルスひずみを配信します。電極に対して光ファイバーを再配置し、入射光の角度を変更することにより、過渡光のアーチファクトを排除します。アーティファクトが続く場合は、光の電力を下げてみてください。次に、電極を脳内を毎秒約1マイクロメートルの速度でゆっくりと進めます。1つのオシロスコープを使用して、電極の進行中の活動を監視します。レーザーパルスをトリガーオフするためにもう一方を使用します。オーディオモニターで誘発された光のかすかなハッシュを聞きます。これは、電極がチャネルオプシン陽性セルに近づいていることを示しています。次に、光が呼び起こされたらすぐに進行速度を遅くします。スパイクは、オシロスコープで個別にトリガーするのに十分な大きさです。それを始めてください。横軸のスケールを調整して、スパイク波形の正確な形状を観察します。この時点で、電極の前進を停止し、電極が組織に定着するのを待ちます。これは、安定した録音のために重要です。数分経ってもS/N比が改善しない場合は、さらに5マイクロメートル進めて待ちます。繰り返しになりますが、活動電位のピークまたはトラフが電圧しきい値で確実に捕捉できるようになるまで、このプロセスを繰り返します。録音中はノイズフロアよりかなり上に設置してください。1台目のオシロスコープで進行中のアクティビティを監視します。同時に、2番目のオシロスコープを使用してスパイクのサイズと形状に注意を払い、スピーカーでの音の品質に注意してください。セルが電極に近づきすぎているか、離れて漂っていることを示す急激な変化に注意深く耳を傾けてください。スパイクが大きくなり、歪んだ場合は、電極を引き出します。小さくなったら電極を進めます。2マイクロメートルステップでゆっくりと動かし、スパイクの品質を確認します。すべてのスパイク波形を広範囲のしきい値に重ね合わせます。均一な高さの一貫したスパイク形状が 1 つだけ表示されます。ほとんどのPV陽性細胞は、1秒間発火を維持できます。信号が隣接するニューロンからのスパイクで汚染された場合は、電極を進めて侵入ごとに新しい細胞を探し、皮質の深さ全体を通して電極を下げます。多くの貫通後に光応答性ニューロンが検出されない場合、または逆に、記録が隣接するチャネルからのスパイクで日常的に汚染されている場合、オプシン陰性細胞は、新しい電極を試してください。この図は、光学的に同定された3種類のニューロン間からの記録例を示しています。細胞は、スパイクの信頼性の高いバーストで検索パルス列に応答します。ここに示されているのは、100 tr ラインのスパイクと平均補間波形です。これらの名簿プロットは、光によって誘発されるスパイクの一貫したタイミングを示しています。電力のサンプルの最初のスパイク待機時間。ここでは、Volin陽性のインターニューロンを紹介します。光刺激アプローチは概念的には非常にシンプルですが、驚くほど難しく、収率も低い場合があります。実際に。ガラスパッチ電極はパラメタルニューロンに強く偏っているため、内部ニューロンを取得することはあまりありません。一方、テトロスでは、光に応答するニューロン間ニューロンがたくさん得られるのですが、スパイクが小さく、重なり合う波形が多いため、確実に1つのユニットに分類するのが非常に困難です。私たちはこれをさまざまな方法で達成しようと試みており、内部ニューロンについては、これらの鋭い10〜14メガ電極が、遠くからのオークスパイクの光を検出するのに十分な大きさである必要があるリスニング半径の点で適切なバランスをとっていることがわかりましたが、これは良好な単一ユニットの分離を達成するのに十分な制限が必要です。しかし、それにはいくつかのブードゥー教があります。それができない場合は、その電極を捨てて、機能する電極が見つかるまで次の電極に進むだけで、多くの時間を節約できます。

a-guide-to-vivo-single-unit-recording-from-optogenetically-identified

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へのガイドインビボシングル単位記録

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