Name: 細胞内小胞の追跡への応用：変形二光子顕微鏡での3d軌道の追跡 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-01T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 28 s
Description: 学ぶ 変形二光子顕微鏡を用いた軌道追跡法で、生細胞内のリソソームなどの高速移動する細胞内小胞を三次元で追跡する手法。この方法により、微小管に沿った小胞輸送の動態と他のオルガネラとの相互作用を詳細に解析できます。

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このプロジェクトは、NIH NIGMS 8P41 GM103540-28およびP50-GM076516の助成金によって支援されました。

1試料の調製<ol><li> 10％ウシ胎児血清およびペニシリンストレプトマイシン50μgの/ mlの100 IU / mlを補足したDMEMを用いて組織培養フラスコ中CHOK1細胞を維持する。 37℃で5％CO 2の加湿インキュベーターで細胞を培養する。 </li><li>収穫した後、0.16ミリメートルの表面厚さで直径14mmのマイクロウェルにCHOK1細胞をプレート。イメージング、周りの60〜70％の集密度に最適な密度のための種の細胞。 </li><li> 37°C、5％CO 2で一晩細胞をインキュベートする。 HBSS（ハンクス緩衝生理食塩液）中で細胞を3回洗浄し、リソトラッカーDND26の50 nMの緑とチューブリントラッカーグリーンの150 nMのを含む溶液で細胞を培養する。 37℃で1時間、細胞をインキュベートする。オプションの手順：インキュベーションに先立って、ミトコンドリアマトリックス染色色素（25 nM）を用いて付加的な染色を行う。 </li><li>未結合の色素を除去し、HBSSで細胞を3回洗浄する。虚部の前に新鮮なDMEM増殖培地を追加します。細胞をる。 </li></ol> 2顕微鏡の構成ビデオプロトコルに記載粒子追跡用顕微鏡は、市販の倒立顕微鏡（ 図4）のフレームに組み付けられている。しかし3D軌道粒子追跡のための商用モジュールが利用可能になりました。 <ol><li> 690 nmの1040 nmの波長可変出力波長範囲は、Saはフェムト秒レーザー励起光源：コヒーレントカメレオン-ウルトラIIチタンを使用してください。 </li><li>レーザ光は、IRコーティングされたミラーを用いて顕微鏡の背面ポートに揃っていることを確認します。レーザビームは、方解石直線偏光子に続いて回転半波長板を用いて減衰される。サンプルの平均電力は、0.5〜2 mWの間にあるようにビームを減衰させる。 注：レーザ光が試料面内の集束ビームの位置および軌道の制御を可能にするガルバノモータ作動一対のミラーによって反射される。中にショートパスダイクロイックミラーでの反射後の顕微鏡対物レンズの後方に入る前に、ビームエキスパンダを通過するガルバノミラーから出るコリメートされたレーザビームが拡大される典型的な構成（10X）。 </li><li>光路内に高開口数水目標（60X、NA 1.2）を配置することにより、試料からの蛍光発光を収集します。 1つまたは2つのチャネル構成で所望の発光波長に応じて蛍光フィルタキューブを選択する。さらに、放出された蛍光のスペクトル範囲を選択するために、発光帯域フィルタを採用している。 </li><li>電動ステージ上にサンプルを置き、客観的なピエゾコントローラを使用して顕微鏡対物レンズの微動を調整します。 </li><li>信号を判別し、デジタルI / Oデータ取得カードに送信される光電子増倍管にフィルターキューブからの光を導く。 注：コンピュータの波形は、I / Oカードのアナログ出力であり、提供します：ある生成されたスキャナ制御エレクトロニクス編。光電子増倍管やスキャナへの出力信号から光子計数入力を測定し、蛍光ダイナミクスSimFCSソフトウェアのための研究所のI / Oカードを介して制御される。 </li></ol> 3イメージング<ol><li>ステージ上のセルを置き、透過光照明を使用して焦点を合わせる。 </li><li>色素を取り込んだ細胞を同定する基礎となる微小管を可視化するために、ラスタースキャン画像に切り替える。小胞の動きが存在している初期領域を特定します。 </li><li>孤立した小胞が識別されると、軌道追跡のための次のパラメータを設定します。 <ol><li>追跡されている粒子の大きさに合わせて円形走査のサイズを定義する軌道の半径を選択します。ポイントエミッタでは、感度および応答を最大にする励起光の点広がり関数（PSF）の腰部に等しい軌道の半径を設定する。 </li><li>軸方向を設定します。軸方向に沿った粒子位置を局在化するために行わ二つの軌道との間の距離を定義する距離。 1.5-3倍のPSF腰までの軸方向の距離を設定します。 </li><li>また、光漂白速度を決定する軌道の各点に費やされた時間を設定するために、粒子の明るさに応じて滞留時間を定義する。 10〜100秒の間の滞留時間を使用してください。 </li><li> 4-32ミリ秒のオーダーで軌道周期が得られ、粒子の位置を決定するための高い時間分解能を提供するために、64または128にそれぞれ軌道の点の数を設定します。 </li></ol></li><li>ラスタースキャンされた画像のカーソル選択により、グラフィカル·ユーザー·インターフェースを介して粒子上にビームをセンタリングするために、ミラーに送信された信号を、DCオフセットを変更します。 </li><li>軌道スキャンラスタイメージングから顕微鏡モードを切り替えることで、追跡を開始します。 </li><li>フィードバックとデータ収集を有効にします。 </li></ol> 4。TrajectORY分析<ol><li>軌道に沿って「強度カーペット」の形式で、各時点での各ポイントで収集された蛍光を表示するには、ソフトウェアを使用してください。カーペットに沿って収集された強度は、他の明るい物体と粒子の相互作用に関する情報を提供します。同様に、時系列の形で時間の経過とともに光電子増倍管から採取し、蛍光強度の（x、yスキャナおよびz -piezoの時間にわたってDC変位すなわち ）軌跡情報の両方を表示するためにソフトウェアを使用する。 </li><li>軌道内の関心領域のみを選択するために、時系列表現と「強度カーペット」の情報を使用してください。 </li><li>粒子軌道の選択された部分の2次元投影を表示するには、ソフトウェアを使用してください。粒子の蛍光強度に応じて色分けする軌道を適切なコントロールを選択します。 </li><li>ページを表示するオプションを選択します蛍光強度に応じて3Dで記事軌道、および色分けそれ。微小管に沿ってリソソームの動きの特徴を視覚化するためにコントロールを使用して3Dで軌道を回転させます。 </li></ol>

<ol><li>So, P. T., Dong, C. Y., Masters, B. R., Berland, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+photon+excitation+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Two photon excitation fluorescence microscopy.</a> Annu Rev Biomed Eng. 2, 399-429 (2000).</li>
<li>Dupont, A., Lamb, D. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanoscale+three+dimensional+single+particle+tracking%5BTitle%5D)+AND+%22Nanoscale%22%5BJournal%5D)">Nanoscale three dimensional single particle tracking.</a> Nanoscale. 3, 4532-4541 (2011).</li>
<li>Estrada, L. C., Gratton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+nanometer+images+of+biological+fibers+by+directed+motion+of+gold+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Nano+Lett%22%5BJournal%5D)">3D nanometer images of biological fibers by directed motion of gold nanoparticles.</a> Nano Lett. 11, 4656-4660 (2011).</li>
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<li>Balint, S., Vilanova, I. V., Alvarez, A. S., Lakadamyali, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Correlative+live+cell+and+superresolution+microscopy+reveals+cargo+transport+dynamics+at+microtubule+intersections%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Correlative live cell and superresolution microscopy reveals cargo transport dynamics at microtubule intersections.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 3375-3380 (2013).</li>
<li>Huotari, J., Helenius, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endosome+maturation%5BTitle%5D)+AND+%22Embo+Journal%22%5BJournal%5D)">Endosome maturation.</a> Embo Journal. 30, 3481-3500 (2011).</li>
<li>Ragan, T., So, P. T., Kwon, H. S., Gratton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+particle+tracking+on+the+two+photon+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22Multiphoton+Microscopy+in+the+Biomedical+Sciences%22%5BJournal%5D)">3D particle tracking on the two photon microscope.</a> Multiphoton Microscopy in the Biomedical Sciences. 2, 247-258 (2001).</li>
<li>Konig, K., So, P. T. C., Mantulin, W. W., Gratton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+response+to+near-infrared+femtosecond+laser+pulses+in+two+photon+microscopes%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Letters%22%5BJournal%5D)">Cellular response to near-infrared femtosecond laser pulses in two photon microscopes.</a> Optics Letters. 22, 135-136 (1997).</li>
<li>Caviston, J. P., Holzbaur, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microtubule+motors+at+the+intersection+of+trafficking+and+transport%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Microtubule motors at the intersection of trafficking and transport.</a> Trends Cell Biol. 16, 530-537 (2006).</li>
<li>Cardarelli, F., Lanzano, L., Gratton, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Capturing+directed+molecular+motion+in+the+nuclear+pore+complex+of+live+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Capturing directed molecular motion in the nuclear pore complex of live cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109, 9863-9868 (2012).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

ここ数年、蛍光顕微鏡技術とインストルメンテーションの驚異的な進歩にもかかわらず、高い時間分解能で三次元での蛍光粒子の軌跡を達成することは、フィールドでの課題となってきた。高い時間分解能は、二次元でトラッキング粒子が達成された場合には、軸方向への拡張は、典型的には、システム10の周波数応答の劇的な減少をもたらす。 このビデオプロトコルでは、二光子顕微鏡を用いて高時間分解能（この実験では32ミリ秒）で生きている細胞内で三次元的に個別の粒子を追跡実証応用に焦点を当てた。このような実験を行うために必要なセットアップは、通常、レーザー走査顕微鏡を実施する研究室が利用できます。 3D軌道追跡のための両方の楽器のアドオンだけでなく、制御ソフトウェアはcommerciaのために、市販されているそのようなオリンパス製のものとしてlのレーザー走査型顕微鏡。それが放出される蛍光の脱スキャンを必要としないので、利用可能なパルス状の高出力赤外線レーザ源の使用は、実験の設計に有利である。さらにそれは、赤外線照射が焦点蛍光及び光退色切れの減少を考えると、特定の条件の下で11、</...

アプローチは、多数の顕微鏡を用いて三次元で蛍光粒子を追跡するためにこれまでに開発されてきた。ほとんどのアプローチは、理想的には、典型的には、軸方向にトラッキングを達成するために、顕微鏡の発光光学系のカスタマイズされた修飾と組み合わせた二次元的に追跡するために適した、高速カメラの使用に依存する。このプロセスは、典型的には、時間がかかり、かつ粒子が追跡されている場合にのみ、妥当な時間分解能（10 Hz）をされ得たが、レーザ走査型顕微鏡（共焦点またはつの光子のいずれか）は従来のz-スタックの時間シーケンスを実行することにより、蛍光粒子を追跡することができ能動的フィードバック機構2により小さなラスタ撮像領域の中心に保った。 ロックイン粒子にするという考えは、軌道追跡法の拠点となっています。代わりに、ラスタの円軌道を蛍光粒子の周囲に実行されるスキャンします。に沿って蛍光の強度軌道は正確に粒子位置4を局在する。 粒子の局所的な位置は、顕微鏡スキャナおよび再中央粒子位置の軌道を作動させるために使用することができる。顕微鏡のガルバノスキャナはアナログ電圧によって駆動される。この電圧の交流成分、 すなわち正弦波、集束レーザビームを軌道を行うことができ、XとYスキャンミラーに適用される余弦波を円軌道を実行可能にする。信号のDCオフセットは、軌道中心の位置を変化させることを容易にする。軌道周期が決定され、AC信号の波形が設定されると、フィードバックシステムは、信号のDC成分のみを更新する必要がある。 検出器から収集した蛍光シグナルを読み取ることができるソフトウェアは、スキャナおよび検出器を制御するために、粒子の位置を計算し、DC電源をオフに更新が要求されるセット。軌道パラメータ（サイズ及びタイミング）の注意深い選択を撮像成功したフィードバックに必要なこれらのパラメータは、追跡する必要がある蛍光粒子の特性に基づいて調整されなければならないれる。 技術の物理的および数学的な基礎は、2Dと3D両方のアプリケーションのために、過去4,5で説明した。このプロトコルでは、簡単にセットアップの主要なハードウェアコンポーネントを記述し、より詳細にパラメータの選択と私たちは、生細胞内で高い時間分解能でのリソソームの変位を可能にする以下の典型的な実験に必要なサンプル調製。

<table><tbody><tr><td>Lysotracker DND 26</td><td>Life Technologies</td><td>L-7526</td><td></td></tr><tr><td>Tubuline トラッカー Green</td><td>Life Technologies</td><td>T34075</td><td></td></tr><tr><td>Mitotracker RED</td><td>Life Technologies</td><td>M7512</td><td></td></tr><tr><td>Coherent Chamelon- ultra II TI</td><td>Coherent</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glan Taylor 方解石偏光子</td><td>Melles Griot</td><td>03PTA001</td><td></td></tr><tr><td>ガルバノメーターモーターミラー</td><td>ケンブリッジテクノロジー</td><td>ズ M 6350</td><td></td></tr>ダイ<tr><td>クロイックミラー</td><td>クロマテクノロジー</td><td>ズ 700 DCSPXR</td><td></td></tr><tr><td>電動ステージ</td><td>ASI</td><td>MS2000</td><td></td></tr><tr><td>ピエゾ&nbsp;</td><td>PI</td><td>P721-LLQ</td><td></td></tr><tr><td>光電子増倍管</td><td>浜松</td><td>H7422P-40</td><td></td></tr><tr><td>データ収集カード</td><td>IO tech</td><td>PCI 1128-4000</td><td></td></tr><tr><td>画像用画像ソフト</td><td>LFD</td><td>Global - SimFCS</td><td></td></tr></tbody></table>

細胞内小胞の追跡への応用：変形二光子顕微鏡での3d軌道の追跡

3D Orbital Tracking in a Modified Two-photon Microscope: An Application to the Tracking of Intracellular Vesicles

このビデオプロトコルの目的は、改変された二光子顕微鏡1を用いた三次元蛍光軌道粒子追跡実験を行い、分析する方法を議論することである。従来のアプローチ（ラスタスキャンまたは広視野フレームのスタックに基づく）とは対照的に、3D軌道追跡は、3次元変位を局所化し、高い空間（10nmの精度）と時間分解能（50 Hzの周波数応答）で追従させるミクロン2、数百の長さスケールに移る蛍光粒子。方法は、追跡される物体の周りの円軌道を実行するために二光子レーザー走査顕微鏡のハードウェアを制御フィードバックアルゴリズムに基づいている：フィードバック機構は、変位を制御することにより、中央に蛍光被写体を維持する走査ビーム3-5。この技術の利点を実証するために、私たちはアル中で動きの速い細胞小器官、リソソームを、続いてivingセル6,7。細胞は、標準的なプロトコルに従って播種し、商業的にリソソーム色素を用いて染色した。私たちは、生きた細胞内の3D軌道追跡実験を行うために、短時間のハードウェア構成をより詳細に制御ソフトウェアを議論する。私たちは、詳細に走査顕微鏡を制御し、粒子の周りに周回軌道でビームの運動を可能にするために必要なパラメータを議論する。私たちは、この方法が効果的に生きた細胞内の3Dでの微小管に沿っラベルリソソームの速い動きを追跡するために使用することができる方法を示すことで結論付けている。リソソームは、典型的には、微小管ネットワーク8に沿って向けられた動きを表示し、0.4ミクロン/秒の範囲の速度で移動することができる。

このプロトコルによれば、高速3D単一粒子追跡は、蛍光標識されたリソソームの変位を追跡するために修飾された二光子顕微鏡を用いて生細胞の内部で行うことができる。行った実験は、エンドソーム成熟過程9後の細胞内を移動する孤立したリソソームの追跡で構成されています。リソソームは、蛍光緑の色素を用いて染色し、2光子励起を利用し930 nmで励起した。本発明者らのデータは、32ミリ秒（ 図1a）の時間分解能でのx、y、zの変位軌道を得ることが可能であることを示している。カーペット分析は時間（ 図1b）を介してそれぞれの軌道に沿って記録された強度が表示されます。放出された蛍光の積分強度を記録することができるトラッキング（ 図2a）中に。微小管ネットワーク上を移動する小胞から予想されるように再構成された3D軌道は、指向運動を表示する。 Additionally、それは周辺領域（ 図2b）のラスタ走査画像の3D軌道を相関させることが可能である。これは、微小管の束の方向に沿った粒子の動...

このビデオプロトコルでは、改良された2光子顕微鏡の軌道追跡法を使用して、生細胞内の蛍光標識されたリソソームを高速かつ3次元で追跡します。

The objective of this video protocol is to discuss how to perform and analyze a three-dimensional fluorescent orbital particle tracking experiment using a ...

この手順の全体的な目標は、生細胞内で 3D で移動するリソソームなどの動きの速い細胞小器官を追跡する方法を説明することです。これは、まず、培養生細胞内で特定の市販の色素を使用してリソソームと微小管を染色することによって達成されます。2番目のステップは、レーザー走査型顕微鏡を使用し、軌道追跡法を使用して高速でリソソームの動きを追跡し、軌道のサイズとシステムの周波数応答などの他のパラメータを選択して追跡実験を行うことです。最終的に、結果は、高速で移動するリソソームを3次元で追跡し、追跡中にレーザー軌道に沿って遭遇する他の蛍光染色オルガネラとの相互作用を検出することが可能であることを示しています。3Dトラッキング法が他の既存の方法(例えば乱視に基づく方法)と比較した場合の主な利点は、3Dのウィザルトラッキング法により、非常に広い範囲の認知症を追跡できることです。この方法は、小胞がマイクロチューブに沿ってどのように移動するかなど、小胞輸送分野で重要な質問をするのに役立ちます。ただし、この方法はエンドソームダイナミクスの研究に使用できます。それはまた、テキストプロトコルに記載されているように、goナノ粒子膜受容体、凝集体核ポート複合体または遺伝的遺伝子座維持チャイニーズハムスター卵巣細胞またはCH K 1細胞のような単離された粒子を蛍光標識することが可能である他のシステムで採用することができる。細胞を採取した後、直径14ミリメートルに置きます。表面厚さ0.16ミリメートルの種子細胞をイメージングに最適な密度で約60〜70%Coの密度でマイクロウェル 流暢にインキュベート細胞を摂氏37度で一晩インキュベート 5%CO2 翌日、ハンクの緩衝生理食塩水またはH-B-S-S-H-B-S-Sで細胞を3回洗浄し、培養プレートから死んだ細胞や破片を除去し、染色ステップのために細胞を準備します。次に、最終濃度50 ano mol lyo tracker と 150 ano mol の tubulin tracker green を含む HBSS 溶液で、インキュベーション後 37 °C で 1 時間インキュベートします。HBSSで細胞を3回洗浄し、結合していない色素をすべて取り除きます。細胞をイメージングする前に、新鮮なDMEM増殖培地を添加してください。ビデオプロトコルに記載されている粒子追跡用の顕微鏡は、市販の倒立顕微鏡のフレームに組み立てられます。コヒーレントカメレオンウルトラ2チタンサファイアフェムト秒レーザー励起光源は、690ナノメートルから1040ナノメートルの間の調整可能な出力波長範囲で使用されています。レーザービームが顕微鏡の背面ポートに位置合わせされていることを確認してください。赤外線コーティングされたミラーを使用して、方解石偏光子の前に配置された回転半波長板を使用してレーザービームを減衰させ、サンプルの平均出力が0.5〜2ミリワットになるようにビームを減衰させます。高開口数水対物レンズを光路に配置して、サンプルから蛍光光を収集します。次に、サンプルを電動ステージに置き、顕微鏡対物レンズの細かい動きを調整します。対物レンズのピゾコントローラーを使用する。蛍光フィルターキューブは、1チャンネルまたは2チャンネル構成で目的の発光波長に応じて選択してください。発光帯通過フィルターを採用。放出される蛍光のスペクトル範囲をさらに選択するには、フィルターキューブからの光を光増倍管に向け、信号が増幅および識別され、デジタル入力出力データ収集カードに送られて細胞をイメージングし、ステージ上に配置して透過光照明を使用して焦点を合わせます。ラスタースキャンイメージングに切り替えて、色素を取り込んだ細胞を特定し、その下にある微小管を視覚化して、小胞の動きが存在する最初の領域を特定します。孤立した小胞が特定されたら、軌道追跡のパラメータを設定します。まず、軌道の半径を選択して、追跡される粒子のサイズに応じて円形スキャンのサイズを定義します。ポイントエミッターの場合、軌道の半径を点像分布関数のウエストまたは励起ビームのPSFと等しくなるように設定します。感度と応答性を最大限に高めます。軸方向に沿って粒子の位置を特定するために実行される 2 つの軌道間の距離を定義するには、軸距離を設定します。軸方向の距離をPSF廃棄物の1.5倍から3倍に設定します。粒子の明るさに応じて滞留時間を定義し、軌道の各点で費やされる時間を設定します。これにより、写真の退色率も決定されます。10 〜 100 マイクロ秒の滞留時間を使用します。各軌道のポイント数を 64 または 128 に設定すると、軌道周期が 4 ミリ秒から 32 ミリ秒のオーダーになり、粒子の位置を決定するための高い時間分解能が得られます。ミラーに送信されるDCオフセット信号を変更して、ラスタースキャン画像内のカーソル選択を介してグラフィカルユーザーインターフェースを介してビームをパーティクルの中心に配置。追跡を開始するには、顕微鏡モードをラスターイメージングから軌道スキャンに切り替えます。軌道解析のためのフィードバックとデータ収集をアクティブにします。このソフトウェアを使用して、軌道上の各点および各点で収集された蛍光を強度カーペットの形で表示します。カーペットに沿って収集された強度は、粒子と他の明るい物体との相互作用に関する情報を提供します。軌跡情報と、光電子増倍管から経時的に収集された蛍光強度の両方を時系列形式で表示します。時系列表現と強度カーペット情報を使用して、軌跡内の関心領域のみを選択します。次に、粒子の軌跡の選択した部分の 2D 投影を表示します。適切なコントロールを選択して、粒子の蛍光強度に応じて軌道を色分けします。粒子の軌跡を3Dで表示し、蛍光強度に応じて色分けするオプションを選択します。コントロールを使用して軌道を3Dで回転させ、微小管に沿ったリソソームの動きの特徴を視覚化します。リソソームと微小管の蛍光緑色色素染色を使用して、2光子レーザー走査型顕微鏡で微小管に沿った小胞の高速運動をイメージングすることができます。ただし、ラスタースキャンイメージングには、軌道追跡を使用する場合、高速エンドソームの動きを正確に追跡するために必要な時間分解能がありません。それどころか、データは、32ミリ秒の時間分解能でx、y、Z変位軌跡を取得できることを示しています。これらの変位対時間軌跡では、カーペット解析では、各軌道に沿って記録された強度が表示されます。時間の経過とともに、強度の軌跡は粒子の蛍光周囲に関する情報を提供します。ボックス化された領域は、2 つのジャンプの間の軌道の部分に対応します。ボックス化された領域の外側の明るいスポットは、粒子と他の明るい物体との相互作用に対応し、軌道が最も明るい蛍光源に再中心するときの軌道のジャンプに関連しています。追跡中に、放出された蛍光の積分強度を記録できます。再構築された3D軌道は、微小管ネットワーク上を移動する小胞から予想されるように、指向性運動を示します。さらに、3D軌道をRAや周辺領域のスキャン画像に関連付けることができます。これにより、微小管束の方向に沿った粒子の移動が確認されます。一度習得すると、このテクニックは、試みながら適切に実行すれば、数時間で実行できます。この手順は、このプロトコルで示されているようにフォトニックサイテーションを使用しながら、サンプルに害のないレーザー出力レベルを使用することを覚えておくことが重要です。ただし、対物レンズの後の約2ミリボルトの電力レベルを維持する必要があります。このビデオを見れば、非常に大きなZ範囲の物体を追跡できる3D軌道追跡法を使用して実験を設定する方法について、非常によく理解できるはずです。

3d-orbital-tracking-modified-two-photon-microscope-an-application-to

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JoVE Journal

Bioengineering

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イメージングによる二乗平均変位(iMSD)解析をマクロピノソームに適用し、構造的および動的特性の観点から、マクロピノソームの固有の時間進化的性質を強調します。次いで、マクロピノソームは、時間不変の平均構造的/動的特性を有する細胞下構造の基準として、インスリン分泌顆粒(ISG)と比較される。...

時空間変動分光法による細胞内ナノ構造のトラッキングの構造と動特性のプロービング

初期のショウジョウバエの胚では、多くの細胞小器官は運動性である。原則として、それらは特定の蛍光プローブを介して生きたまま画像化することができるが、卵殻は胚への直接適用を妨げる。このプロトコルは、マイクロインジェクションを介してそのようなプローブを導入し、次いで粒子画像速度測定を介してバルクオルガネラ運動を分析する方法を記述している。...

ショウジョウバエ胚における脂質含有細胞小器官の細胞骨格依存性トラフィッキングの可視化

本記事では、固体支持脂質二重層における単一タンパク質追跡用のサンプル作成方法を詳しく説明します。また、単一分子感度と高速フレームレートを持つシンプルな蛍光顕微鏡の説明もします。最後に、単一タンパク質の軌跡抽出手順を概説します。...

蛍光顕微鏡を用いた脂質二重層中の単一タンパク質の追跡

学ぶ 変形二光子顕微鏡を用いた軌道追跡法で、生細胞内のリソソームなどの高速移動する細胞内小胞を三次元で追跡する手法。この方法により、微小管に沿った小胞輸送の動態と他のオルガネラとの相互作用を詳細に解析できます。

細胞内小胞の追跡への応用：変形二光子顕微鏡での3d軌道の追跡

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