Name: 変更されたベルイストローム法を用いたヒト骨格筋生検手順 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 20 s
Description: 学ぶ 変更されたベルイストローム法によるヒト大腿四頭筋外側広筋からの骨格筋生検手順。皮膚・皮下組織の麻酔、切開、生検針による組織採取、創閉鎖の手法を解説。組織学的・生化学的解析に適したサンプル調達法を習得できます。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

宣言する資金調達はありません。

説明したように骨格筋の手順は、アパラチア州立大学施設内倫理委員会のガイドラインに従っています。 注：チームは、オペレータ（博士または生検技術において訓練されたMD）、及び少なくとも1つからなるが、理想的には、三つ以上の技術者。オペレータが実施し、骨格筋生検処置のあらゆる側面を監督する責任があります。ワン技術者（技術者＃1）は、すぐに筋肉抽出のすべての面でオペレータを支援する責任があります。これは、「非滅菌手」であると、滅菌シリンジで吸引を適用することを含む。第二技術者は（技術者＃2）被験者の不安を最小限にする処置中に被写体とマッサージを被検者の反対の足との会話を行っています。第三の技術者（技術者＃3）は、骨格筋サンプルを処理し、処理するための責任があります。ダウンストリーム分析対策はどのように多くのADDITを指示ional技術は、骨格筋試料を調製/処理するために必要とされる。 1件名の準備<ol><li>収集、準備、および筋生検の手順（ 表1）に指定された材料を整理します。除染とベルイストローム針（外側カニューレと内側トロカール）と、標準的な方法16に従って、プランジャーを殺菌。 </li><li>件名の同意書を確認します。アパラチア州立大学で使用されるフ​​ォームを参加の同意の骨格筋生検部分はオンラインサプリメント1に設けられている。 <ol><li>手順の可能性のあるリスク、皮膚の準備、麻酔剤の適用、典型的な感覚を中心とした筋生検手順の一般的な側面についての主題に相談してください。慎重にフォームを参加の同意を読み、研究デザインや手順が理解されていることを確認するために、それに署名するために対象を指示します。 </li></ol></li><li> sのことを確認してくださいubjectは「___カイン」タイプの薬（ 例えば 、リドカイン）にアレルギーではありません。 </li><li>露出した太ももで埋めテーブルの上に仰向けに位置するように、被写体を指示します。被験者の足の下にプラスチック製のバッキングを持つ2使い捨て吸収性アンダーパッドを配置します。このように短縮された位置に外側広筋を配置し、かかとの下に小さなタオルロール、膝が完全に引き出されていること（上昇〜1センチ）でゆったりと脚を配置します。 </li><li>オペレータは、生検部位を可視化することができるように、瞬間的に露出した大腿筋を収縮させる対象を指示しています。注：広だけ大腿筋膜（illiotibialバンド）、膝蓋骨の上部と大転子7との間の距離の約3分の1に前方れる生検部位をヘイケボタル。 </li><li>ちょうど下のオペレータマーク（〜0.5センチメートル）細かい点油性マジックで切開部位を持っている。 </li><li>オペレータは、PINCによるおおよその皮下脂肪の厚さを決定したことがあります皮下脂肪を興。 </li><li>演算子を持って、技術者は、石鹸とぬるま湯で手を洗い、使い捨て手袋を着用。 </li><li>オペレータは（バリカンを介して）生検部位の周囲の領域から〜15センチメートル×15センチの毛を取り除く必要があります。注：生検部位から髪をクリッピングすると、手順の間に開閉の際に切開部になってから髪を防ぎ、脱毛は（3.4参照）、テープ閉鎖や皮膚との間のより良好な接触を可能にします。 </li><li>オペレータが（ヨウ素/貝類にアレルギー被験者に対するポビドンヨードまたはグルコン酸クロルヘキシジンとして）、局所消毒薬で予備浸漬綿棒で領域を殺菌する必要があります。中央に開始し、クリップされた領域の外側の縁に向かって同心円状に働く。最低でも、新しい予備浸漬綿棒でさらに2回するたびに繰り返します。 </li></ol> 2生検手順<ol><li>オペレータは、使い捨ての手袋を外し、石鹸とぬるま湯で手を洗って、無菌の外科GLを着用したことがあり無菌技術を使用してoves。 </li><li>技術者＃1は、オペレータに、滅菌有窓ドレープを提示しています。無菌技術を使用して、演算子を持って、無菌領域を維持するために生検部位の上ドレープを置く。 </li><li>技術者＃1現在のオペレータ無菌技術を維持しながら、21G針を取り付けた5ミリリットルの注射器を持っている。アルコール綿でリドカインバイアルの上部を清掃してください。 <ol><li>オペレータはすぐにリドカイン5ミリリットルを撤回したことがあり。シリンジから21Gの針を外し、シャープコンテナに針を捨てる。 </li><li>無菌技術を維持しながら、技術者＃1現在1-½インチ25 G針を有するオペレータを持っている。注射器の上にオペレータの代わりに1 - ½インチの針を持って、シリンジから気泡を排出する。 </li></ol></li><li>切開部位での技術者＃1のスプレー塩化エチル（〜を皮膚上に消えないインクマーク0.5cm上）したことがあり、皮膚がに表示されるまで「湯通し」 <ol><li>ハオペレータは、真皮に皮膚にほぼ水平に針を挿入し、針を吸引した後、直径「ブレブ」2〜4ミリメートルを生成するためにリドカインの〜100μlで潜入VEの。 <ol><li>針が血管内に配置されていないことを確認する（わずかシリンジのプランジャーを撤回）オペレータが、針を吸引したことがあり。血液が注射器に表示された場合は、針を撤回シャープコンテナに廃棄して、2.3からやり直します。 </li><li> 、オペレータの事前の皮下組織に針を持っている針を吸引した後、ブレブを形成するために、リドカインの約1 mlの組織に浸潤。ブレブが収まった後、筋膜に表面的な停止、縦に切開部位にリドカイン仕掛け注射器の1½インチの針を挿入します。注：対象は、（ハチ刺されに類似）リドカインの最初の注射の際のわずかな瞬間的な刺すような感覚を感じることがあります。 </li></ol></li><li> operatていることを確認してくださいそれが筋毒性の17〜19であるためか、lidocoineで筋肉に浸透していません。 </li><li>オペレータ吸引の針を持ち、太ももから針を抜き出しながらゆっくりリドカインの残りの4ミリリットルを注入。注射部位の上に滅菌ガーゼを置き、局所麻酔が有効になるときに、被写体がリラックスすることができます。 </li></ol></li><li>無菌技術を維持しながら、2〜3分後、オペレータ用メス技師＃1に存在しています。 <ol><li>オペレータが軽く領域が麻酔されていることを確認するために外科用メスの先端で生検部位をプローブ持つ。必要な場合には、2.4.1.2を参照して、切開部位にリドカインの別の3〜4ミリリットルを注入。 </li></ol></li><li>オペレータは、大腿骨に皮膚や皮下組織（〜インクマーク上記2〜3ミリメートル）平行なストレート1cmの切開を作成してもらってください。 <ol><li>オペレータは筋肉への筋膜を通して切開を作るために、より深いメスを挿入しています。各方向に1回これを行います<html> 。注：対象は、筋肉への手術用メスの刃をカットした場合、より深いカットとズキズキする痛みや圧力を感じることがあります。 </li><li>技術者＃2が会話の中で、被写体を従事し、反対側の足をマッサージしています。 </li></ol></li><li>オペレータの場所に切開生検サイト上の滅菌ガーゼのリベラルな量を持っているし、出血を減らすために切開に直接圧力をかける。 <ol><li>技術者＃1は、使い捨ての60mLシリンジおよび30cmの延長チューブ（ 図1）への3ウェイ金属活栓に接続しています。 </li><li>技術者＃1は延長チューブの自由端へ先細プラスチックチューブコネクタの一端を接続し、しっかりとの〜15〜18ミリメートルと200μlのピペットチップの大端部にテーパー状のプラスチックチューブコネクタのもう一方の端を挿入したことがあり先端を切断。 </li></ol></li></ol>.jpgの &quot;幅=&quot; 500 &quot;/&gt; 図1。ベルイストローム針。 （A）バーグストロム針（5mm以下）は（a）の外側カニューレと、（b）内側のトロカールから構成され、関連する構成要素は、（c）は、プランジャー、（d）は15〜18ミリメートルカットオフ〜200μlのピペットチップを含む、（e）はプラスチックコネクター、（f）は、3ウェイ金属活栓、（g）の30cmの延長チューブ、および（h）の使い捨ての60mLシリンジをテーパ。（B）バーグストロム針（5mm以下）と関連する構成要素が組み立て。（ C）ベルイストローム針の内部トロカール（5mm）を撤回約1cmの外側カニューレのウィンドウが開きます。 <ol start="9"><li>出血がおさまった後、技術者は＃1は滅菌オートクレーブポーチを開いており、無菌技術を維持しながら、オペレータに5mmの生検針と内側トロカール（ 図1）を提示。 <ol><li>オペレータは、アライメントとスライド動作を確認して、針（外側カニューレと内側トロカール）を構築しました。 </li> &lt;/オール&gt; </li><li>オペレータがしっかりと回転し、内側トロカールを防ぐために、両手で針アセンブリ（外側カニューレと内側トロカール）を保持できます。技術者は＃1がしっかりと若干の下向きのねじり運動に生検針の内側トロカール部分の上部にカットピペットチップを挿入したことがあります。その技術者＃1は、オペレータまたは生検針だけピペット先端に接触しないことを確認してください。 </li><li>オペレータは、切開を通して組織内に生検針を導入しました。生検針の先端で筋膜（取得した「感触」）の切開の位置を確認します。針が筋肉内に前進するだけで筋膜を過ぎて針を進め、その後、床に向かって下向きの角度に針を。注：被験者は筋膜を通して切開生検針の先端で配置され、針が筋肉内に前進さのようないくつかの軽度の不快感（ 例えば 、「深い圧」、または軽度のけいれん感覚）を発生することがあります。 <ol> &lt;李&gt;は、技術者＃2オペレータは筋肉に針を進めている間に自分の太ももの筋肉を収縮させる「リラックス」に滞在していないために件名に指示を持っている。 </li></ol></li><li>生検針位置になると、使い捨ての60mL注射器を開くためにオペレータ信号技術＃1を有している。 <ol><li>技術者＃1を持って速やかに生検針内吸引を作成するために40〜50 ccのマークに開放使い捨て60ミリリットルの注射器を引っ張る。 </li><li>オペレータは、筋肉内、外側トロカールの位置を維持しながら、外側カニューレのウィンドウを開くために行わ約1cmの内側套管針を引き出している。オペレータが迅速に（クリップ）をカットし、筋肉のサンプルを収集するために、内側トロカールを閉じています。吸引を解放するために、オペレータ信号技術＃1を持っている。 </li><li>技術者は＃1は、吸引を解放するために部屋に活栓を開いたことがあります。 </li><li>オペレータは、生検針90°回転し、プロセスを繰り返してきた。必要な場合は、オペレーターrepeaを持っている（4クリップの合計）3倍の回転手順をトン。 </li></ol></li><li>太ももから生検針を除去しながら、オペレータは、筋膜や皮膚を挟まないように注意しながら、滅菌ガーゼで切開部位に直接対抗圧力を加えることがあります。かなりの抵抗が感じている場合は、内側トロカールにねじり動作を適用しながら、再カット。 </li><li>太ももから生検針を除去すると、オペレータが視覚的に組織の適切な量を採取した場合に推定するために、外側カニューレの内腔を検査に戻って1cmにインナートロカールを引っ張っている。 <ol><li>オペレータの手に＃1を技術者に生検針を持っている。無菌技術を維持するためには、その技術者＃1が唯一の針ではなく、オペレータに触れるようにします。技術者＃1手の＃3を技術者に生検針を持っている。 </li></ol></li><li>技術者＃3生検針から組織を除去する必要があります。 <ol><li>技術者＃3は、プランジャ（ 図1）と先端の細いピンセットを使用していすべての筋肉組織が内部トロカールおよび外側カニューレから除去されることを確実にする。 </li><li>技術者＃3を迅速に筋組織の十分な量が収集されたことを確認し、氷冷した解剖ブロック上にサンプルを配置するためにサンプルを秤量持つ。 </li></ol></li><li>技術者＃3をお持ち注意深く筋肉サンプルから見える結合組織および脂肪を解剖。技術者は第3位は、下流の分析によれば、ストレージのための筋肉のサンプルを調製しました。例えば、すぐにクリオバイアル内のサンプルを配置し、液体窒素中で凍結スナップ、RNaseインヒビターとクリオバイアルなどで組織学、または場所をマウントし、凍結</li><li>必要に応じて、無菌技術を維持しながら、第二の滅菌生検針を使用して手順を繰り返します。 </li></ol> 3閉鎖<ol><li>オペレータは、滅菌ガーゼ、10〜15分間アイスパックで生検部位に直接圧力をかけたことがあります。 </li><li>止血が達成されると、オペレータは、使用アルコール広報を持っている切開の周囲の領域からの乾燥血液を除去するために、EPパッド。 </li><li>技術者＃1は、オペレータへの局所外科用接着剤及びアプリケータのチューブを提示しています。オペレータがアプリケーターチップやチューブの上部に触れることなく外科用接着剤とアプリの管を組み立てています。 </li><li>オペレータは、もう一方の手で乾燥切開の上に外科用接着剤の単一層を適用しながら切開を片手で閉じている引っ張る。接着剤が硬化（〜90秒）した後、切開したテープclosuresperpendicularを適用します。あるいは、2つの滅菌4-0縫合糸で切開を閉じます。 </li><li>オペレータは、切開部位に3-4 2 &quot;×2&quot;非滅菌ガーゼパッドを配置することによって、直接圧力を適用し、自己接着性接着剤ラップで固定している。 </li><li>オペレータは、以下の1から4日間、適切な創傷ケア、正常と異常反応、および行動指針に被写体口頭や書面での指示を提供したことがあります（オンラインのsuを参照してくださいpplement 2）。 </li></ol>

<ol><li>Duchene, G. B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recherches+sur+la+paralysie+musculaire+pseudohypertrophique+ou+paralysie+myo-sclerosique%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Gen+Med%22%5BJournal%5D)">Recherches sur la paralysie musculaire pseudohypertrophique ou paralysie myo-sclerosique.</a> Arch Gen Med. 11 (30), (1868).</li>
<li>Bergstrom, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+electrolytes+in+man.+Determined+by+neutron+activation+analysis+on+needle+biopsy+specimens%5BTitle%5D)+AND+%22Scand+J+Clin+Lab+Invest+%28England%29%22%5BJournal%5D)">Muscle electrolytes in man. Determined by neutron activation analysis on needle biopsy specimens.</a> Scand J Clin Lab Invest (England). 14, (1962).</li>
<li>Bergstrom, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Percutaneous+needle+biopsy+of+skeletal+muscle+in+physiological+and+clinical+research%29%5BTitle%5D)+AND+%22Scand+J+Clin+Lab+Invest%22%5BJournal%5D)">Percutaneous needle biopsy of skeletal muscle in physiological and clinical research).</a> Scand J Clin Lab Invest. 35, 609-616 (1975).</li>
<li>Bergstrom, J., Hultman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+study+of+the+glycogen+metabolism+during+exercise+in+man%5BTitle%5D)+AND+%22Scand+J+Clin+Lab+Invest%22%5BJournal%5D)">A study of the glycogen metabolism during exercise in man.</a> Scand J Clin Lab Invest. 19, 218-228 (1967).</li>
<li>Evans, W. J., Phinney, S. D., Young, V. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suction+applied+to+a+muscle+biopsy+maximizes+sample+size%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Sci+Sports+Exerc%22%5BJournal%5D)">Suction applied to a muscle biopsy maximizes sample size.</a> Med Sci Sports Exerc. 14, 101-102 (1982).</li>
<li>Hennessey, J. V., Chromiak, J. A., Della Ventura, S., Guertin, J., MacLean, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increase+in+percutaneous+muscle+biopsy+yield+with+a+suction-enhancement+technique%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Phys%22%5BJournal%5D)">Increase in percutaneous muscle biopsy yield with a suction-enhancement technique.</a> J Appl Phys. 82, 1739-1742 (1997).</li>
<li>Tarnopolsky, M. A., Pearce, E., Smith, K., Lach, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Suction-modified+Bergstrom+muscle+biopsy+technique%3A+experience+with+13%2C500+procedures%5BTitle%5D)+AND+%22Muscl.%2C+%26+Nerve%22%5BJournal%5D)">Suction-modified Bergstrom muscle biopsy technique: experience with 13,500 procedures.</a> Muscl., & Nerve. 43, 717-725 (2011).</li>
<li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carbohydrate+ingestion+influences+skeletal+muscle+cytokine+mRNA+and+plasma+cytokine+levels+after+a+3-h+run%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Carbohydrate ingestion influences skeletal muscle cytokine mRNA and plasma cytokine levels after a 3-h run.</a> J Appl Physiol. 94, 1917-1925 (2003).</li>
<li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+carbohydrate+ingestion+on+immune+changes+after+2+h+of+intensive+resistance+training%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Influence of carbohydrate ingestion on immune changes after 2 h of intensive resistance training.</a> J Appl Physiol. 96, 1292-1298 (2004).</li>
<li>Utter, A. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Carbohydrate+supplementation+and+perceived+exertion+during+prolonged+running%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Sci+Sports+Exerc%22%5BJournal%5D)">Carbohydrate supplementation and perceived exertion during prolonged running.</a> Med Sci Sports Exerc. 36, 1036-1041 (2004).</li>
<li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+cytokine+mRNA+changes+after+2.5+h+of+cycling%3A+influence+of+carbohydrate%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Sci+Sports+Exerc%22%5BJournal%5D)">Muscle cytokine mRNA changes after 2.5 h of cycling: influence of carbohydrate.</a> Med Sci Sports Exerc. 37, 1283-1290 (2005).</li>
<li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+quercetin+and+EGCG+on+mitochondrial+biogenesis+and+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Sci+Sports+Exerc%22%5BJournal%5D)">Effects of quercetin and EGCG on mitochondrial biogenesis and immunity.</a> Med Sci Sports Exerc. 41, 1467-1475 (2009).</li>
<li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quercetin%27s+Influence+on+Exercise+Performance+and+Muscle+Mitochondrial+Biogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Med+Sci+Sports+Exerc%22%5BJournal%5D)">Quercetin's Influence on Exercise Performance and Muscle Mitochondrial Biogenesis.</a> Med Sci Sports Exerc. 42, 338-345 (2010).</li>
<li>Dumke, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quercetin%27s+effect+on+cycling+efficiency+and+substrate+utilization%5BTitle%5D)+AND+%22Appl+Physiol+Nut+Metab%22%5BJournal%5D)">Quercetin's effect on cycling efficiency and substrate utilization.</a> Appl Physiol Nut Metab. 34, 993-1000 (2009).</li>
<li>Nieman, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quercetin%27s+influence+on+exercise-induced+changes+in+plasma+cytokines+and+muscle+and+leukocyte+cytokine+mRNA%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Quercetin's influence on exercise-induced changes in plasma cytokines and muscle and leukocyte cytokine mRNA.</a> J Appl Physiol. 103, 1728-1735 (2007).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guideline+for+Disinfection+and+Sterilization+in+Healthcare+Facilities%5BTitle%5D)+AND+%22http%3A%2F%2Fwww.cdc.gov%2Fhicpac%2FDisinfection_Sterilization%2Ftoc.html%22%5BJournal%5D)">Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities.</a> http://www.cdc.gov/hicpac/Disinfection_Sterilization/toc.html. , Centers for Disease Control and Prevention. (2008).</li>
<li>Faria, F. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+onset+and+duration+of+mobilization+affect+the+regeneration+in+the+rat+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22Histol+Histopath%22%5BJournal%5D)">The onset and duration of mobilization affect the regeneration in the rat muscle.</a> Histol Histopath. 23, 565-571 (2008).</li>
<li>Carlson, B. M., Shepard, B., Komorowski, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+histological+study+of+local+anesthetic-induced+muscle+degeneration+and+regeneration+in+the+monkey%5BTitle%5D)+AND+%22J+Ortho+Res%22%5BJournal%5D)">A histological study of local anesthetic-induced muscle degeneration and regeneration in the monkey.</a> J Ortho Res. 8, 485-494 (1990).</li>
<li>Yagiela, J. A., Benoit, P. W., Buoncristiani, R. D., Peters, M. P., Fort, N. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+myotoxic+effects+of+lidocaine+with+epinephrine+in+rats+and+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Anesth+Analg%22%5BJournal%5D)">Comparison of myotoxic effects of lidocaine with epinephrine in rats and humans.</a> Anesth Analg. 60, 471-480 (1981).</li>
<li>Coyle, E. F., Coggan, A. R., Hemmert, M. K., Ivy, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+glycogen+utilization+during+prolonged+strenuous+exercise+when+fed+carbohydrate%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Muscle glycogen utilization during prolonged strenuous exercise when fed carbohydrate.</a> J Appl Physiol. 61, 165-172 (1986).</li>
<li>Gibala, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brief+intense+interval+exercise+activates+AMPK+and+p38+MAPK+signaling+and+increases+the+expression+of+PGC-1alpha+in+human+skeletal+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Brief intense interval exercise activates AMPK and p38 MAPK signaling and increases the expression of PGC-1alpha in human skeletal muscle.</a> J Appl Physiol. 106, 929-934 (1985).</li>
<li>Phillips, S. M., Tipton, K. D., Ferrando, A. A., Wolfe, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resistance+training+reduces+the+acute+exercise-induced+increase+in+muscle+protein+turnover%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Resistance training reduces the acute exercise-induced increase in muscle protein turnover.</a> Am J Physiol. 276, 118-124 (1999).</li>
<li>Davis, J. M., Murphy, E. A., Carmichael, M. D., Davis, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quercetin+increases+brain+and+muscle+mitochondrial+biogenesis+and+exercise+tolerance%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Regul+Integr+Comp+Physiol%22%5BJournal%5D)">Quercetin increases brain and muscle mitochondrial biogenesis and exercise tolerance.</a> Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 296, 1071-1077 (2009).</li>
<li>Vissing, K., Andersen, J. L., Schjerling, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Are+exercise-induced+genes+induced+by+exercise%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Are exercise-induced genes induced by exercise.</a> FASEB J. 19, 94-96 (2005).</li>
<li>Lundby, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+in+human+skeletal+muscle%3A+alternative+normalization+method+and+effect+of+repeated+biopsies%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Gene expression in human skeletal muscle: alternative normalization method and effect of repeated biopsies.</a> Eur J Appl Physiol. 95, 351-360 (2005).</li>
<li>Coyle, E. F., Coggan, A. R., Hemmert, M. K., Ivy, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Muscle+glycogen+utilization+during+prolonged+strenuous+exercise+when+fed+carbohydrate%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol%22%5BJournal%5D)">Muscle glycogen utilization during prolonged strenuous exercise when fed carbohydrate.</a> J Appl Physiol. 61, 165-172 (1985).</li>
</ol>

著者には利益相反はありません。

このビデオでは、ASUヒューマンパフォーマンス研究所で使用され、骨格筋生検手順のステップバイステップの概要を示します。この手順は、小さな変更を加えて、過去13年の間に約1,600筋肉生​​検を採取するために使用されている。筋生検サンプルは、重要な研究の発見につながる、スポーツ栄養ベースの調査では、重要なデータを提供してきた。 修正されたベルイストローム、骨格筋生検法を行う場合に注意が必要な多くの重要な技術がある。何よりもまず、生検チームは手順のすべての段階で厳格な無菌操作を維持しなければならない。切開部位[1.4]を配置するとき、それは外側広筋は、収縮した時に、生検時にリラックスした状態であろうよりも前方と近位であることに留意することが重要である。研究手順は同じ太ももから追加の生検が必要な場合は、最初の切開部位は、わずかにdisですでなければなりません三分の一ポイント[1.4]のTAL;後続の各生検は、前の1 2-3センチの近位である。ゲージおおよその皮下脂肪の厚さ[1.6]は筋膜への表面的な組織の量、ステップ2.3.2、2.4.1、2.6、2.6.1のための重要な決定を推定するた...

経皮もしくは「セミオープン」生検技術は、ヒトの患者および研究対象から骨格筋組織試料を得るために使用される。デュシェンヌ型（1806-1875）は、経皮的生検1を通して生きている被験者からの骨格筋を得るために、トロカールで針を構築することが第一としてクレジットされている。 1960年代、ベルイストロームはデュシェンヌ2-4によって説明したのと同様の経皮的生検針を導入しました。 20年後、Evans ら 5はベルイストローム針の切削トロカールを通して吸引を適用することによって、技術を修正した。この修飾は、5倍6,7に組織3-の収率を高めることができ、臨床および生物医学的研究の設定に用いられる。この技術は持ち、筋疾患の診断と骨格筋の構造と機能の理解を促進していきます。 経皮的筋生検技術はstraightfoです順方向。無菌操作を厳守して、正しく実行すると、関連するリスクは最小限に抑えられています。筋生検手順は、研究プロジェクトのための治験ツールとしてみなされている。いくつかの学術機関が技術を実行するために、ボード認定医師を必要とする筋肉生検などを取得するために、直接医師の監督で、博士で訓練学部の研究者を可能にします。 ASU生検チームが成功し、過去13年間8-15中に1,600以上の筋肉生検を行った。このビデオの目的は、ヒト対象の外側広筋から骨格筋組織試料を得るために変更されたストローム針経皮筋生検技術5を記述することである。

<table><tbody><tr><td>Bergstr&ouml;m 生検針、5 x 100 mm</td><td>Stille Surgical Inc.</td><td>119-29187-50</td><td>1 個</td></tr><tr><td>Durasorb ブルーパッド</td><td>フィッシャー</td><td>22-031-340</td><td>ケース 300</td></tr><tr><td>プレップカミソリ 使い捨て</td><td>ムーアメディカル</td><td>89760</td><td>1 個</td></tr><tr><td>シェービングクリーム</td><td>ムーアメディカル</td><td>92869</td><td>1 缶</td></tr><tr><td>アルコール綿棒</td><td>ムーアメディカル</td><td>98721</td><td>ボックス/200</td></tr><tr><td>ポビドンヨードスワブスティック (3 パック)</td><td>ムーアメディカル</td><td>90691</td><td></td></tr><tr><td>50 フェイスマスク</td>のパック <td>Fisher</td><td>19-039-690</td><td>50 滅菌</td></tr><tr><td>手袋のケース; sz 6.5</td><td>Moore Medical</td><td>68128</td><td>50 ペアの箱</td></tr><tr><td>滅菌手袋; sz 7.0</td><td>Moore Medical</td><td>68129</td><td>50 ペアの箱</td></tr><tr><td>滅菌手袋; sz 8.5</td><td>Moore Medical</td><td>68132</td><td>50 ペアのボックス</td></tr><tr><td>Fenestrated towel drape</td><td>Moore Medical</td><td>92712</td><td>50</td></tr>リ<tr><td>ドカイン(1%HCl、W / O Epi)</td><td>のケースDealmed</td><td>427902</td><td>30 ccバイアル</td></tr><tr><td>エチル塩化物</td><td>スプレーDealmed</td><td>386020</td><td>3.5 fl. Oz.ボトル</td></tr><tr><td>5ミリリットルシリンジW / 21 G針</td><td>フィ</td><td>ッシャー14-827-48</td>ケース<td>100</td></tr><tr><td>25 G 5/8 "針</td><td>フィ</td><td>ッシャー14-826AA</td><td>ケース100</td></tr><tr><td>25 G 1 1/2 "針</td>フィ<td>ッシャー14-826-49</td><td></td><td>ケース100</td></tr><tr><td>使い捨てメス w/ #11 ブレード</td><td>フィッシャー</td><td>0-8927-5B</td><td>ボックス 20</td></tr><tr><td>60 ml シリンジ</td><td>フィッシャー</td><td>13-689-8</td><td>ケース 40</td></tr><tr><td>~30 インチ エクステンション チューブ</td><td>フィッシャー</td><td>14-169-7A</td><td>ロール 50 フィート</td></tr><tr><td>金属製ストップコック</td><td>フィッシャー</td><td>01-290-38</td><td>各</td></tr><tr><td>ポリプロピレン チューブ コネクタ (テーパー エンド付き)、3.2 から 5.5 mm</td><td>フィッシャー</td><td>15-315-28A</td><td>100</td></tr><tr><td>イエローピペットチップのケース(1-200&マイクロ;l)</td><td>フィッシャー</td><td>02-681-2</td><td>先端の ~15-18 mm を切り取り</td></tr>ます <tr><td>局所外科用接着剤</td><td>Medline</td><td>MSC091076</td><td>36 チューブのケース</td></tr><tr><td>局所外科用接着剤</td><td>Medline</td><td>MSC091076Z</td><td>6 チューブの箱</td></tr><tr><td>バタフライ ステッチ (粘着ストリップ) 1/2" x 4" (パックあたり 6)</td> <td>Moore Medical</td><td>93050</td><td>box/300</td></tr><tr><td>Bandadge、ストリップ、3/4 x 3 in.</td><td>フィッシャー</td><td>19-027-202</td><td>100</td></tr><tr><td>絆創膏パック (5 m ロール)</td><td>フィッシャー</td><td>19-027-768</td><td>ケース 36</td></tr><tr><td>1 インチ ペーパー外科用テープ</td><td>フィッシャー</td><td>19-027-761</td><td>ケース 12</td></tr><tr><td>縫合糸 (4-0 逆切断、FS2)</td><td>ムーアメディカル</td><td>82926</td><td>ボックス 36</td></tr><tr><td>4 x 4 滅菌ガーゼパッド</td><td>ムーアメディカル</td><td>66949</td><td>pkg/50</td></tr><tr><td>2 x 2非滅菌ガーゼパッド</td><td>ムーアメディカル</td><td>37336</td><td>pkg/200</td></tr><tr><td>3 x 4 非粘着性パッド</td><td>ムーアメディカル</td><td>74389</td><td>bx/100</td></tr><tr><td>オートクレーブバッグ 3.5 x 9</td><td>ムーアメディカル</td><td>40390</td><td>200</td></tr><tr><td>オートクレーブバッグ 5.25 x 10</td><td>ムーアメディカル</td><td>40391</td><td>200</td></tr><tr><td>オートクレーブインジケーターテープ</td><td>ムーアメディカル</td><td>31608</td><td>250 ラボの箱</td></tr><tr><td>コート&mdash;小型</td><td>フィッシャー</td><td>23-900-520A&nbsp;</td><td>10/パック</td></tr><tr><td>白衣&mdash;ミディア</td><td>ムフィ</td><td>ッシャー23-900-520B&nbsp;</td><td>10/パック</td></tr><tr><td>白衣&mdash;大型</td><td>フィ</td><td>ッシャー23-900-520C&nbsp;</td><td>10/パック</td></tr><tr><td>殺菌使い捨て布ワイプムー</td><td>アメディカル</td><td>62879</td><td>缶/ 160</td></tr></tbody></table>

変更されたベルイストローム法を用いたヒト骨格筋生検手順

Human Skeletal Muscle Biopsy Procedures Using the Modified Bergstr&#246;m Technique

経皮的生検技術は、骨格筋組織サンプルを収集するために、研究者や臨床医が可能になる。技術は安全で非常に効果的である。このビデオは、ヒト対象の外側広筋から骨格筋組織試料を得るために変更されたストローム針を用いて、経皮的生検技術が記載されている。ベルイストローム針は、先端側の小さな開口部（ &#39;窓&#39;）を有する外側カニューレと遠位端の切断刃を有する内側トロカールで構成されています。局所麻酔および無菌条件下では、針は、皮膚、皮下組織、および筋膜の切開部を通って骨格筋に進められる。次に、吸引力が内トロカールに適用され、外側のトロカールは、骨格筋組織を吸引外側カニューレの窓内に引き込まれ、内部トロカールが急速に閉鎖され、したがって、骨格筋組織試料を切断またはクリッピングされ、引き戻され。針を90°回転さ60;別のカットが行われた。このプロセスを3回以上繰り返してもよい。この複数の切断技術は、一般的に健康な被験者に100〜200 mg以上のサンプルを生成し、中に、運動やその他の介入の試合後に、直前に行うことができます。切開部位の生検後のドレッシング後、被験者は通常、すぐに日常生活の活動を再開し、完全に48〜72時間以内に活発な身体活動に参加することができます。対象は、筋膜の切開部を通って筋肉のヘルニアのリスクを減らすために48時間激しい抵抗運動を避ける必要があります。

筋生検手順上記のように、研究者は、迅速かつ一貫して骨格筋組織サンプルを収集することができる。健康的、思いやりがある被験者での典型的な収量は、3〜4つのクリップが付いているシングルパスで200 mg以上である。手順は、切開の準備のために費やされているそのほとんどが15〜20分を要する。運動系の研究では、筋肉サンプルは、多くの場合、回復中に収集された1つまたは2つのサンプルを用いて、前後運動をとっている。運動前の太ももが手続きのために準備されている間、この設計では、運動後（対側）太ももの毛がクリップされ、切開部位は、細かい点油性マジックで事前にマークされています。そうすることで筋生検は20時、または長時間の運動の試合後に8〜10分で撮影することができます。運動の短い期間（ 例えば 、30分以下）を調査する際に別の方法として、切開（複数可）は、運動前に作ら滅菌包帯で覆って固定しますことができます生検サンプルは、運動の試合が終了した後（10秒21から4分22）を迅速に取り出すことができるように、このようにして、サージカルテープで編。手順の相対的な速さは時に、運動...

このビデオの目的は、人間の被験者に対する改良されたBergström骨格筋生検技術を紹介することです。

The percutaneous biopsy technique enables researchers and clinicians to collect skeletal muscle tissue samples. The technique is safe and highly ...

この手順の全体的な目標は、修正されたバーグストロム技術を使用して、人間のボランティアの広筋外側から骨格筋生検サンプルを作成することです。これは、最初に生検部位の皮膚と皮下組織に麻酔をかけることによって達成されます。第2ステップでは、皮膚の皮下組織を切開し、骨格筋を覆う筋膜を切開します。次に、生検針を切開部から骨格筋に進め、最終ステップで生検サンプルを採取します。生検針を慎重に取り外し、切開部を外科用接着剤で閉じます。最終的には、骨格筋生検サンプルを組織学的分析用に調製し、さまざまな運動条件下での生化学的変化や特定のタンパク質や遺伝子の発現を分析することができます。この方法は、激しい運動に対する生化学的、分子的、細胞的な反応は何かなど、骨格筋生理学の分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。その手順を実演するのは、当院の医師であるジェラルド・フェリス博士と、当研究室の技師である田中マスキです。インフォームドコンセントを得た後、被験者にパッド入りのテーブルに仰向けになるように指示し、太ももを露出させた状態で脚をリラックスさせ、かかとの下に小さなタオルロールを巻き、膝が完全に伸びて約1センチメートル上昇します。次に、被験者に露出した大腿筋を瞬間的に収縮させて、筋膜のすぐ前方にある広大な外側生検部位を視覚化できるようにします。ラタは、膝蓋骨の上部とより大きなトロカンターとの間の距離の約3分の1です。次に、バリカンを使用して生検部位の周りの約15 x 15センチメートルの領域から毛を取り除き、局所消毒剤にあらかじめ浸した綿棒でその領域を滅菌して、適切なPPEと浄化槽技術を使用して生検を採取します。まず、皮膚が白くなっているように見えるまで、切開部位に塩化エチルをスプレーします。次に、25ゲージの針を真皮に水平に挿入し、針を吸引して約100マイクロリットルのリドカインを分注して、皮膚表面の下に直径2〜4ミリメートルのブブレを生成します。次に、針を皮下組織に進め、再度吸引し、約1ミリリットルのリドカインを分注して別のブレブを形成します。2番目のブレブが治まったら、針を切開部位に挿入し、筋膜の表面で停止し、最後にもう一度針を吸引し、残りの4ミリリットルのリドカインをゆっくりと注入します。2〜3分後、滅菌メスの先端で生検部位を軽く調べて、麻酔を確認します。部位の準備ができたら、大腿骨に対して45度の角度で皮膚と皮下組織をまっすぐに1センチ切り開きます。次に、各方向に1回ずつ、筋膜を筋肉に切開するのに十分な深さまでメスを挿入します。一般に、この方法に不慣れな個人は、局所麻酔薬を投与するとき、および皮膚皮下組織と筋膜を切断するときに、皮下組織と筋膜の間の抵抗の変化を感じることを学ぶため、忍耐強くなければなりません。次に、先端が筋膜に入るまで、切開と同じ角度で生検針を組織に導入

human-skeletal-muscle-biopsy-procedures-using-modified-bergstrm

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

単離骨格筋のミオ - 機械的分析

骨格筋組織の構造的、機能的、生化学的特性を決定するための分析は、適切な準備によって大幅に促進されます。...

組織トリアージや骨格筋疾患のモデルのために凍結

ヒトの筋肉に由来する主な接着細胞タイプは、筋原性細胞と線維芽細胞です。ここでは、CD56抗原に基づく磁気活性化細胞ソーティングを用いて細胞集団を濃縮します。その後、特異的抗体による免疫標識と画像解析技術の使用により、個々の細胞の細胞質および核特性を定量化できます。...

ヒト骨格筋からの一次筋原細胞および線維芽細胞の単離および定量的免疫組織化学的特性評価

広筋のヘイケボタルの生検、精製されたミトコンドリアの準備、および呼吸計測プロファイリングのための方法が記載されている。小さな筋肉量の使用は、臨床研究用途のためにこの技術に適しています。...

経皮針生検によって得られた骨格筋組織から単離されたミトコンドリアの調製と呼吸計測評価

このビデオは、Weil-Blakesleyコンコトームを使用して、ヒトの外側広筋の経皮的筋生検の技術を示しています。...

人間<em&gt;外側広筋</emワイル・ブレークスリーConchotomeを使用&gt;骨格筋生検

マウスの骨格筋を用いて小角X線回折実験を行うための詳細なプロトコルを提示する。ヒト疾患のトランスジェニックマウスモデルの広い可用性により、この実験プラットフォームは、遺伝的筋肉疾患の構造的基盤を解明するための有用な試験ベッドを形成することができます...

筋肉疾患の構造的基礎を研究するためのツールとしての無傷のマウス骨格筋のX線回折

骨格筋生検組織から得られたヒト原発性筋前駆細胞(hMpAc)を分離、培養、特徴付け、分化する技術を提示する。これらの方法によって得られ、特徴付けられたhMpPCは、その後、ヒトの筋形成および骨格筋再生に関連する研究の質問に対処するために使用することができる。...

骨格筋生検手順からのヒト筋前駆細胞の単離、培養、特徴付け、分化

ここで説明するプロトコルは、筋凍結切片における壊死性筋線維の直接免疫標識のためのプロトコルである。壊死細胞は、免疫グロブリンG(IgG)を含む血清タンパク質に透過性である。ミオファイバーによるIgGの取り込みを明らかにすることで、筋肉の状態に関係なく壊死を起こす筋線維の同定と定量を可能にする。...

筋生検における免疫標識筋線維変性

この技術報告書は、繊維損傷を制限する筋液脛節前部の生検のための修正されたベルクストローム技術のバリエーションを説明している。...

機械評価のためのヒト筋学の上室から骨格筋生検の収集

修正された固定後手順は、組織中のグリコーゲン粒子のコントラストを増加させる。この論文は、組織を処理し、イメージングを行い、立体学的方法を使用して骨格筋における繊維型特異的な細胞内グリコーゲン分布に関する偏りのない定量的データを得る方法を説明するステップバイステップのプロトコルを提供する。...

透過型電子顕微鏡による骨格筋線維の細胞内グリコーゲン分布の定量化

このプロトコルは、ドットブロッティング技術を使用して、ミオシン重鎖(MHC)アイソフォームに従って、凍結乾燥したヒト骨格筋および繊維タイプの分類からの単一繊維の分離を示しています。同定されたMHC...

ヒト骨格筋の線維型同定

学ぶ 変更されたベルイストローム法によるヒト大腿四頭筋外側広筋からの骨格筋生検手順。皮膚・皮下組織の麻酔、切開、生検針による組織採取、創閉鎖の手法を解説。組織学的・生化学的解析に適したサンプル調達法を習得できます。

変更されたベルイストローム法を用いたヒト骨格筋生検手順

さらに動画を探す