Name: CのDauer固有の神経リモデリングのin vivoイメージングエレガンス (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 39 s
Description: 学ぶ、C. elegansのダウアー期における感覚ニューロンのリモデリングをin vivoイメージングする方法。フェロモン誘導とGFP標識IL2ニューロンを用いて、樹状突起の樹枝分かれを観察し、環境ストレスに対する神経可塑性のメカニズムを解明する。

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私は、彼の監督の下でダウアーIL2リモデリングの表現型が最初に特徴づけられたモーリーン・バー博士に感謝します。原稿を批判的に読んでくれたC.ブリット・カールソン博士に感謝します。バー研究室の資金は、NIH(5R01DK59418)とUSDA(2010-65106-20587)およびニュージャージー脊髄研究委員会(CSCR12FEL004)からのポスドクフェローシップから行われました。この研究に対する現在の資金は、イリノイ大学アーバナ・シャンペーン・カレッジ・オブ・ACES FIRE助成金から提供されています。

1原油Dauerフェロモン生産<ol><li> OP50 E.を育てる200rpmでLBブロス100mLに振とうしながら37℃でシングルコロニーO / Nから大腸菌 。注：このO / N培養物を、事前に作製し、4℃で保存することができる。 </li><li> N2 C.を育てる虫について15から20 OP50 E.を50μlを接種したNGM寒天（表1のレシピを参照してください）と6センチメートルペトリ皿大腸菌は菌までほとんど19を空乏化される。 </li><li> 1リットルのエルレンマイヤー中のS·メディアの5倍250ミリリットルを（表1のレシピを参照してください）makeは19フラスコ。注記：この溶液は、事前に行うことができる。 </li><li> OP50 Eの文化を育てるE.におけるOP50 1mlで接種することによりLBブロスOの4のL / Nが大腸菌大腸菌および16時間37℃で振とう。 </li><li> 4-（ステップ1.3で調製したSメディアとの4 1Lの三角フラスコのそれぞれに4-5プレートから1 S基底溶液（表1のレシピを参照）、転送線虫でプレート（ステップ1.2）から線虫を洗う5プレート各フラスコのための）19。 </li><li> 10分間650×gでステップ1.4からOP50を遠心し、上清を除去します。 S基底溶液10mlに各細菌ペレットを再懸濁。線虫の各フラスコに再懸濁した細菌の同量を転送します。 </li><li>解決策は、食品の枯渇を示す、クリアし始めるまで5日間 - （ - 25°Cの20）および100 - 4 150 rpmで室温でオービタルシェーカーフラスコを置きます。 </li><li>食料が枯渇したら、OP50 Eの別のO / N培養を育てるLBブロスの4倍1L中大腸菌 。 10分間650×gで、細菌を遠心分離し、線虫とSメディアフラスコのそれぞれに1フラスコからのペレットを追加します。食べ物が再びなくなるまでさらに3〜4日間、ステップ1.7のように、オービタルシェーカーにSメディアフラスコを返します。 </li><li>各フラスコからの溶液〜1ミリリットルのアリコートを取り、サブサンプリング、各1ミリリットルアリコートから1μLをし、線虫の数をカウントすることによって、線虫の濃度を推定。注：75,000線虫/ mlの - 線虫の人口50,000にする必要があります。この濃度での線虫の大部分はdauersある。 </li><li>いずれの汚染されたフラスコを捨てる。注：汚染が頻繁にステップ1.9の間に見られる真菌の菌糸として現れる。 </li><li> 4℃で10分間、4,000×gで遠心分離した線虫。線虫のペレットを捨て、上清を保持している。別の方法として、低効力フェロモンを作るためにこれらの動物を使用するための説明を参照してください。 </li><li> ＃1ワットマン濾紙で上澄みをろ過する。 NOTE：真空フラスコは、このプロセスを促進するであろう。 </li><li>さらに0.45μmの無菌真空濾過ユニットを通して上清をフィルタリングする。注：ろ液を4℃でO / N保たまたは1.14に進むことができます。 </li><li>攪拌棒を備えた2リットルのビーカーにろ液を追加します。加熱撹拌プレート上のドラフト内に置きます。攪拌しながら沸騰させ、約200mlに蒸発する。 500ミリリットルのビーカーにソリューションを転送します。約50ミリリットルがルになるまで沸騰続行フィート注：ソリューションがオーバー沸騰することは可能であるように注意がこのステップの間に注意する必要があります。最後の50ミリリットルの色はダークブラウンです。調理プロセス中の任意の時点で、加熱を停止することができ、ろ液をRTまたは4℃でO / Nを記憶する。 </li><li>クール1,000×gで5分間遠心分離してみましょう。 100ミリリットルのビーカーに上清を注ぎ、ペレットを捨てる。 </li><li>茶色の皮に、上清を煮詰める。暑さから削除し、へらで地殻を破る。地殻をカバーするのに十分な200プルーフのエタノールを追加します。パラフィルムでビーカーをカバーし、それは、室温でO / Nを座らせて。きれいなビーカーにエタノールを捨て、横に置く。地殻をカバーする新たなエタノールを追加します。 O / Nの抽出を3回繰り返します。抽出物をプール。 </li><li>エタノール抽出を乾燥させるために、真空ポンプを使用してください。真空ポンプが使用できない場合はドラフト内で攪拌しながら、50℃にきれいなビーカーと暖かいにエタノール抽出物を追加します。注：エタノールをlの粘着性の残留物を蒸発した後IGHTブラウン色がままにしてください。加熱が使用される場合、注意が長すぎるために加熱して溶液を燃焼しないように注意すべきである。 </li><li>滅菌蒸留水10mlに残渣を溶解。フィルターは1mlアリコートにおいて-20℃で0.22μmのシリンジフィルターとストアこの溶液を滅菌する。 NOTE：1mlの水は、元の液体線虫培養物100ml毎ための残渣を溶解するために使用される。液体培養フラスコの一つは、汚染に起因して破棄された場合、次に残留物を溶解するために使用される水の量を調整する。 </li></ol>フェロモン用量反応の2の決定<ol><li>ペプトンことなく、ノーブル寒天でNGM培地の6倍5ミリリットルを行うことで、dauerフェロモンを準備し、および50μg/ ml硫酸ストレプトマイシンとdauerフェロモンの範囲（表1のレシピを参照してください）4、19を補充した。13x100 mm単位で成分を混合ガラス培養管は、ブンゼンバーナーの上に沸騰してから、3センチメートルペトリ皿に注ぐ。 </li><li>午前の重量を測定icrocentrifugeチューブ。 EのO / N培養の1ミリリットルを追加します。マイクロチューブ内〜17000×gでチューブと遠心分離機に大腸菌 OP50。上清のすべてを削除します。再びチューブを計量し、細菌ペレットの重量を決定する。 4％の最終濃度（表1の処方を参照）M9緩衝液でペレットを再懸濁（w / v）の 。一定分量の各フェロモン板4の中央部への細菌懸濁液10μl。 RTで保管プレートO / N。 </li><li> 10-15妊娠N2野生型の雌雄同体のフェロモン板4の上に大人になって脱皮した後、ある日を選択してください。 4時間 - 3、25℃でプレートを保管してください。 </li><li>大人の雌雄同体のすべてをオフに選んでください。各プレートについての産卵数を記録します。パラフィルムでプレートを密封し、3日間17 25℃に戻ります。 </li><li> dauersのパーセンテージをカウントし（ 図2）。注：両方の方法のためには、dauers（およびより少ない元に留意することが重要である10トン非dauers）が壁を登るとペトリ皿の蓋の上になります。これは、線虫のための料理のすべての表面を調べることが重要である。 </li><li>用量反応曲線にデータをフィットし、 図3に示すように、（dauersを形成するために、動物の90％を誘導するのに十分なフェロモン）フェロモンのEC 90濃度を推定注：私たちは、典型的にはEC 90を推定するためにロジスティック回帰モデルを使用ししかし、異なる統計ソフトウェアパッケージは、同様の推定値を生成する別の方法を有することができる。 </li></ol> Dauer IL2ニューロンの3。ライブイメージング<ol><li>ステップ2.6で決定されたEC 90値を使用して、プロトコル2のようにdauerフェロモンプレートを準備します。 </li><li>統合されたIL2レポーター導入遺伝子を有する株（myIs13 [PのKLP-6 :: GFP]、myIs14 [PのKLP-6 :: GFP]、myIs16 [Pで、プロトコル2の方法を使用してdauersを誘導する<eM&gt; KLP-6 :: tdTomato]またはqIs56 [P ラグ-2 :: GFP]）12、20、21注：Q Is56を使用する場合には、GFPの発現は、中に数時間までIL2Qsに表示されませんdauer脱皮し、初期のリモデリング事象の一部が表示されません。 P ラグ-2 :: GFP導入遺伝子からの蛍光シグナルは、P KLP-6蛍光レポーターよりdauer中にIL2sにおける究極的に明るくなっている間に加えて、P ラグ-2は :: GFP導入遺伝子はまた、頭部の筋肉に弱く発現する細かいIL2の枝をマスクすることができます。 </li><li>産卵の後、大人の雌雄同体を削除するパラフィルムでプレートを密封し、25℃17で34時間インキュベートする。注：dauerの脱皮までの時間の長さは、個体間でわずかに異なります。 dauer脱皮の開始後5時間（39 - - デンドライト樹枝状分岐の中で最も急速な期間は4を開始する44時間後に産卵25℃で）12。 </li><li>イメージング前日は、EC 90濃度のdauerフェロモンとM9緩衝液中の10％（w / v）アガロースの溶液を作る。アリコートをアガロースの約100μlの顕微鏡スライド上に、迅速に、かつ慎重に、平らなアガロース面を作成するために上に別のスライドを置く。アガロースが固化した後、湿度室（ウェットペーパータオルでピペットチップボックス）にサランラップや店舗でスライドを包む。 </li><li> 34時間のインキュベーション期間の後、咽頭のポンピングを停止した線虫のためのフェロモンプレートを調べます。つのスライドの片面のみがそれをアガロース有するように、別個のスライド。 10％のアガロースパッドと0.1ミクロンのポリスチレンビーズ22の1μlの上に1つ以上の線虫を選択してください。注：よく同期人口、プレート上の線虫の大部分はL2dをからdauerに脱皮を締結されます。しかし、私の中で変​​動​​があるかもしれないndividuals。それは、動物はdauer脱皮内であった時間（例えば代表的な結果を参照してください）​​の量を推定するための追加機能（ストーマ閉塞、咽頭リモデリング）を注意することが重要である。 </li><li>線虫の向き（左/右、背側/腹側）を決定します。可能な限り低い蛍光強度100倍、15分毎にIL2QデンドライトのZスタック画像を取り込むか、特定の実験の必要に応じ。線虫はL2dのキューティクルおよび固定化から分離するまで、画像を撮影続行動物はdauerから回復した場合（咽頭のポンピングを開始する）ことは不可能であるか。積極的にイメージングしない場合には、湿度チャンバ内のスライドを置く。注：私たちは、電動ステージと微分干渉コントラスト（DIC）光学系と落射蛍光顕微鏡を使用しています。 </li></ol>

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著者は開示するものは何もありません

dauer特有の神経可塑性およびその他のdauer関連形態学的変化を調べたところ、遺伝子変異（ すなわち、DAF-C変異体）を介して、またはフェロモンに野生型動物の曝露のいずれかによってdauersの制御された、信頼性の高い形成する必要がある。 dauersを誘導する遺伝子変異の使用が便利であるが、それは、結果を混乱させることがある。したがってDAF-cの変異を有する収集されたデータは、その後、dauerフェロモンへの曝露によってdauer段階に入るように誘導野生型動物で確認する必要があります。 粗製dauerフェロモンの生産は比較的単純であり、このプロトコルのバリエーションは18を発表している。汚染の可能性を除いて、ここで紹介する方法は、非常に信頼性が高い。抽出物を製造するためには、Sメディア液体培地19で線虫の大密度を培養する標準的な方法を使用します。イニシア量の柔軟性が多量に存在しLの線虫の接種物を、液体培養物に添加。線虫のより大きな数字で起動すると、手続きを迅速化します。...

発達や行動の可塑性を含む表現型の可塑性は、不利な環境条件に適応するために重要であると進化1の原動力であると考えられる。C.虫が頻繁に開発·神経生物学における研究のために使用されるモデル生物である。理想的な条件下で、C.エレガンスは、成人の生殖段階に入る前に4幼虫の段階を経て開発しています。しかし、低食品の可用性と高い人口密度、Cの条件の下でエレガンスは、発達スイッチを受け、長い寿命とストレス耐性のdauerステージ2に入ることができる。 Dauersはおそらく、このストレス耐性を媒介する非dauersからのいくつかの形態学的および行動の相違を示す。 dauerエントリを規制する環境的合図と遺伝的経路は広範囲に3、4、5、6、7について説明したが、分子機構をdを発生する個別の表現型の変化を制御するuringのdauer形成はあまりよく理解されている。 dauer固有の表現型の検査はdauer動物の生産を必要とします。これは、3つの方法で達成することができる。1）Cの飢えた培養物からピッキング虫 、dauer形成構成的（DAF-c）の変異体の2）を使用し、精製されたフェロモンを通じてdauer形成の3）誘導。これは、Cと標準のNGMプレートからdauersを選ぶことは比較的簡単であるその細菌の食料供給を使い果たした虫個体群。私達の手の中に、標準的なNGMプレートがもともと3日間成長させ、その後3を接種したOP50 大腸菌 50μlを、を播種4 -成体雌雄同体は、一週間以内に食糧供給を排気して数千を生成し、25℃に保っさらに3日以内にdauers（多数の飢餓状態の非dauersに加えて）。しかし、この方法は、dの中に脱皮中に発生するプロセスを調べるため不十分であるアウアー。これは、典型的な飢餓プレート上の動物はdauerに入力している数千のかを判断することは困難である。さらに、飢餓状態のプレートの使用は、同期のための可能性を提供していません。 DAF-cの変異体の使用は、同期とdauersの信頼性の高い生成を可能にする。しかし、特定のDAF-C変異は、単独で、またはさらなる変異と組み合わせて他のdauer固有の表現型に影響を与えないという保証はありません。 dauerフェロモンの存在が最初Cassadaとラッセルによって暗黙以降ゴールデンとリドルによって実証された。フェロモンは、以来、化学的に2、図8、図9、図10に特徴付けられている。精製されたフェロモンは異なる形で両方の行動や発達過程9を規制ascarosidesの複雑なブレンド、11で構成されています。使用した粗dauerフェロモン抽出物dauerを可能にする野生型のバックグラウンドで同期されたdauersの信頼性が制御さ誘導。 </P&gt; 神経系および関連するグリア細胞がdauer幼虫形成が12、13、14時のリモデリングを受けています。これらの変更のいくつかは、そのようなdauer 13、14時のグリア細胞のリモデリングとして、不可逆的であるが、他のリモデリング事象が良好に戻った際に可逆的である環境条件。デンドライト樹枝状分岐、multidendriticニューロンと軸索リモデリング〜12の単一樹状からスイッチ：たとえば、4 IL2Qニューロンの集合が含むdauer形成時の迅速かつ可逆的神経細胞リモデリングを受ける。本明細書の方法は、モデル生物におけるストレス誘発神経可塑性の信頼性のin vivoイメージングを可能にします。生産、粗dauerフェロモンの試験のために提示される方法は、以前にいくつかの情報源4、8、15、16、17、18から説明され、コンパイルされている。

<table><tbody><tr><td>N2 C. elegans ブリストル株</td><td>Caenorhabditis Genetics Center</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PT2660 myIs13[Pklp-6::gfp] III</td><td>シュローダー研究室</td><td></td><td></td>からの要請に応じて</tr><tr><td>PT2762 myIs14[Pklp-6::gfp] V</td><td>シュローダー研究所</td><td></td><td></td>からの要請に応じて</tr><tr><td>JK2868 qIs56[Plag-2::gfp] V</td><td>Caenorhabditis Genetics Center</td><td></td><td></td></tr><tr><td>OP50 E. coli</td><td>Caenorhabditis Genetics Center</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Petri Dishes</td><td>Tritech Research</td><td>60 mm T3308, 35 mm T3501</td><td></td></tr><tr><td>NGM 寒天</td><td>各種</td><td></td><td>3 g NaCl、17 g 寒天、2.5 g ペプトン 975 ml H2O オートクレーブ 55°C に冷却;Cに続いてエタノール中の5 mg / mlコレステロール1 ml、25 mlの1 M KPO4緩衝液(pH 6.0)、1 mLの1 M CaCl2、1 mLの1 M MgSO4</td></tr><tr><td>S培地</td><td>さまざまな</td><td></td><td>S培地は、S基礎溶液(1.46 g NaCl、 0.25g K2HPO4、1.5g KH2PO4、エタノール中の5mg/mlコレステロール0.25mlおよびH2O〜250mlのオートクレーブ滅菌済み。S基礎溶液に2.5 mlのクエン酸カリウムpH 6.0(2 gのクエン酸一水和物、29.4 gのクエン酸カリウム一水和物<サブ>、</サブ>H<サブ>2O〜100 ml、オートクレーブ)、2.5 mlの微量金属溶液(1.86 gのEDTA二ナトリウム、0.69 gのFeSO4&nbsp;&ブル;7 H2O、0.2 g MnCl2&bull;4 H2O, 0.29 g ZnSO4&nbsp;&ブル;7 H2O, 0.025 g CuSO4&nbsp;&ブル;5 H2O、H2O to 1 L. オートクレーブ滅菌して暗所で保存)、0.75 ml の 1 M CaCl2、および 0.75 ml の 1 M MgSO4。</td></tr><tr><td>用量反応アッセイ用のダウアーフェロモンプレート</td><td>Various</td><td></td><td>Mix 0.085 g Noble agar, 0.5 ml of 0.513 M NaCl and 5 & micro;5 mg / mlコレステロールのLを6x 15 mL培養チューブのそれぞれでエタノールに溶解。各チューブに十分な粗フェロモンを添加して、さまざまな濃度を作り出します。H2Oを加えると、容量は4.725mlになります。寒天が溶けるまでブンゼンバーナーで沸騰させ、55°Cに冷まします。l 1 M KPO4バッファー(pH 6.0)、50 &micro;l 0.1 M CaCl2、50 &micro;l 0.1 M MgSO4および50 &micro;各チューブに5 mg / ml硫酸ストレプトマイシンのl。&nbsp;各チューブの内容物を直径35mmのペトリ皿に注ぎます。寒天を室温で一晩固化させます(それ以上の場合は、過度の乾燥を防ぐために密閉容器に保管してください)。</td></tr><tr><td>マイクロスフェアビーズ 0.1ミクロン</td><td>Polysciences Inc.</td><td>00876-15</td><td></td></tr><tr><td>M9 バッファー</td><td>各種</td><td></td><td>混合 3 g KH2PO4、6 g Na2HPO4、5 g NaCl、1 ml 1 M MgSO4、 H2Oから1リットル。オートクレーブ滅菌</td></tr></tbody></table>

cのdauer固有の神経リモデリングのin vivoイメージングエレガンス

In Vivo Imaging of Dauer-specific Neuronal Remodeling in C. elegans

動物でストレス誘発表現型の可塑性を制御するメカニズムは、生体内で勉強することがしばしば複雑で困難である。ストレス誘発性可塑性の典型的な例はCのdauer段階である虫 。 Dauers、細菌食品やdauerフェロモン高濃度、低濃度の条件下で形成された代替案の発達幼虫期である。 Dauersは、広範な発達や行動の可塑性を表示します。例えば、4つの内側陰唇象限（IL2Q）ニューロンのセットはdauer形成中に豊富な可逆的リモデリングを受ける。 dauerエントリを調節するよく知られた環境の経路を利用して、大量の液体線虫培養物からの粗dauerフェロモンの製造のための以前に確立された方法が示されている。この方法では、50,000濃度 - 液体培養の線虫75,000 / mlを非常に強力な粗dauerフェロモンを生成するのに十分である。原油フェロモン効力はDETEです用量反応バイオアッセイによりrmined。最後に、dauer形成中IL2Qs のin vivoタイムラプスイメージングのために使用される方法が記載されている。

暑さと寒さに安定でもある黄色の液体中の粗dauerフェロモン結果（ 図1）の産生。原油フェロモンのアリコートの活性の明らかな損失で無期限に-20℃で保存されている。フェロモンの生産に続き、単用量反応バイオアッセイは、効力を概算するのに十分である。 3回、各実験からの平均を取る - しかし、ほとんどの実験のためにはバイオアッセイ2を繰り返す必要がある。 2フェロモンバイオアッセイからの代表的結果を図3に示す。これらのデータからEC 50およびEC 90を計算することができる。 ドデシル硫酸ナトリウム2に対する抵抗性に加えて、dauersが閉塞されたストーマを含むいくつかの形態学的特徴によって認識することができ、横方向の鼻翼前方皮下組織および咽頭収縮（ 図2及び図4Aのfoにおいて、屈折体R L2幼虫）。 Dauersも含むいくつかの特徴的な行動特性があります。運動...

特定の環境ストレス要因にさらされた後、線虫Caenorhabditis elegansは広範な表現型の可塑性を受け、ストレス耐性のある「ダウアー」幼若期に入ります。 ダウアー中の神経可塑性の制御された誘導とイメージングの方法を紹介します。

CのDauer固有の神経リモデリングのin vivoイメージングエレガンス

The mechanisms controlling stress-induced phenotypic plasticity in animals are frequently complex and difficult to study in vivo. A classic example of ...

この手順の全体的な目標は、海の優雅さにおける感覚ニューロンのダワー特異的なリモデリングを画像化することです。これは、最初に液体培養物から粗いドールフェロモンを抽出することによって達成されます。2番目のステップは、粗フェロモンの効力を測定することです。次に、このフェロモンを用いて、ILの2つのニューロンにGFPを発現する動物にデュア形成を誘導します。最後のステップは、DMT段階で動物を顕微鏡スライドにマウントし、ライブイメージングを実行して樹状突起の樹状化を示すことです。この方法は、環境条件に応じてニューロンがどのように再モデル化されるかなど、神経可塑性の分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この方法はIL 2のリモデリングについての洞察を提供することができるが、咽頭リモデリングのような他のdaer特定のイベントにも適用することができる。この手順を開始するには、100 mLのlbブロスを200 RPMで振とうしながら、1つのコロニーから37°Cで一晩OP eコリを増殖させます。次に、バクテリアがほとんど枯渇するまで、50マイクロリットルの大腸菌を装着したNGM寒天培地を使用して、15〜26センチのペトリ皿でN2Cエレガンスを成長させます。次に、1ミリリットルの大腸菌を接種し、摂氏37度で16時間振とうすることにより、4リットルのLBブロスで大腸菌の培養物を育てます。その後、プレートから線虫を1ミリリットルのSバジル溶液で洗い流します。線虫の4〜5枚のプレートをS培地の1リットルの三角フラスコに移し、大腸菌を650gで10分間遠心分離し、上清を取り除き、各細菌ペレットを10ミリリットルのSバジル溶液に懸濁します。その後、同量の再懸濁細菌を線虫の各フラスコに移します。フラスコを100〜150 RPMの室温で4日間オービタルシェーカーに置き、溶液が透明になり始めるまで、これは食物の枯渇を示します。食物が枯渇したら、1リットルポンドのブロスの4つの培養物で大腸菌を一晩育てます。次に、細菌を650Gで10分間遠心分離します。線虫を含むS培地フラスコに細菌ペレットを加え、食物が再び枯渇するまで、すべてのS培地フラスコをさらに3〜4日間軌道チャンバーに戻します。その後、1ミリリットルの溶液をペトリ皿に移し、解剖顕微鏡で線虫の数を数えます。次に、線虫を4, 000Gで摂氏4度で10分間遠心分離し、線虫ペレットを廃棄し、上清を保持します。次に、上澄みをナンバーワンのワットマン濾紙でろ過します。さらに、ポイント45マイクロメートルの滅菌真空ろ過ユニットを介して上清をろ過します。その後、攪拌棒で濾液を2リットルのビーカーに加えます。ヒュームフード内の加熱攪拌板に載せ、攪拌しながら沸騰させ、約200ミリリットルまで蒸発させます。その後、溶液を500ミリリットルのビーカーに移し、約50ミリリットルが残るまで沸騰を続けます。冷まし、1000 Gで5分間遠心分離し、次にスナットを100ミリリットルのビーカーに注ぎ、ペレットを捨てます。次に、スナットを茶色の皮に煮詰めます。火から下ろし、へらでクラストを砕きます。クラストを覆うのに十分な200プルーフエタノールを追加します。ビーカーをパラフォームで覆い、室温で一晩放置します。次に、エタノールをきれいなビーカーに注ぎ、横に置きます。新鮮なエタノールを加えてクラストを覆い、一晩で抽出を3回繰り返し、続いて抽出物をプールします。その後、真空ポンプを使用してエタノール抽出物を乾燥させます。真空ポンプが利用できない場合は、エタノール抽出物を清潔なビーカーに加え、ドラフト内で攪拌しながら摂氏50度に温めます。次に、残留物を10ミリリットルの滅菌蒸留水に溶解します。この溶液をポイント22マイクロメートルシリンジで滅菌し、ろ過して1ミリリットルでマイナス20°Cで保存します。Aワット。この手順では、マイクロ遠心チューブの重量を量ります。チューブにequaliの一晩の培養物の1ミリリットルを追加し、17、000 Gsで遠心分離機にしてください。チューブの重量を再度測定し、細菌ペレットの重量を決定します。その後、ペレットをM nineバッファーで再懸濁し、最終濃度が1体積あたり4%の重量になるようにします。各フェロモンプレートの中央に10マイクロリットルの細菌懸濁液を分注し、プレートを一晩保管します。.室温で。10〜15個のグラビットを野生型の雌雄同体に移し、成体化の1日後にフェロモンプレートに載せます。プレートを摂氏25度で3〜4時間保管します。次に、すべての成体の雌雄同体を選びます。各プレートに産まれた卵の数を記録します。プレートをパラフォームで密封し、摂氏25度に3日間戻してから、実行者の割合を数えます。次に、EC 90値を使用してdoerフェロモンプレートを調製し、産卵後に統合されたIL 2レポーター導入遺伝子を保有する株でdoersを誘導します。成体の雌雄同体を削除します。プレートをパーフィルで密封し、イメージングの前日に摂氏25度で34時間インキュベートします。EC 90濃度アリコートでドアーフェロモンを含むM nineバッファー中の体積アグロスあたりの重量10%の溶液を作ります。約100マイクロリットルのアグロスを顕微鏡スライドに載せ、その上に別のスライドを素早く、しかし穏やかに置き、アグロスが固まった後、スライドを分離して平らなアグロ表面を作ります。サランラップで包み、湿度チャンバーに保管します。34時間のインキュベーション期間後、咽頭ポンプを停止した線虫についてフェロモンプレートを調べます。スライドの 1 つの表面だけにアロが含まれるように、スライドを分離します。1マイクロリットルの0.1ミクロンポリスチレンビーズ10%agrosパッドに1つ以上の線虫を移し、次いで線虫の向きを決定する。IL 2 Q 樹状突起の Zack 画像を 100 倍倍倍で、蛍光強度を可能な限り低く抑えて 15 分ごと、または特定の実験に必要な場合に撮影します。この図は、さまざまなダワーモールドステージにおけるCエレガンスのDICラテラルライトビュー顕微鏡写真を示しています。これは、典型的な丸みを帯びた末端咽頭球を持つL型の2匹の動物です。ダワーへの脱皮から約3時間後、末端球が収縮し、L 2Dキューティクルが新しく形成されたダワーキューティクルから剥がれ始めます。脱皮の開始から約10時間後、動物は広範囲にわたる半径方向の収縮とL 2Dキューティクルからの剥離を受けました。時折、L 2Dステージのキューティクルで裏打ちされた排泄管が、発育中のダワーに付着しているのが見られます。ここに示されているのは、IL 2レポーターを発現する1匹の動物の側面図のエピ蛍光顕微鏡写真です。これらの挿入図は、ダワー脱皮の開始後のさまざまな時点でのIL 2 Q樹状突起を示しています。IL 2つのQ分岐の急速は、脱皮の開始から約5時間後に発生します。doerフェロモンを浄化しようとするときは、汚染を防ぐために滅菌技術を使用することを忘れないでください。このビデオを見れば、粗ダウアーフェロモンの精製方法と効力評価の方法、またこのフェロモンをin vivoでのダワー特異的リモデリングのイメージングに使用する方法について、十分に理解できるはずです。

in-vivo-imaging-of-dauer-specific-neuronal-remodeling-in-c-elegans

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

イメージング C.エレガンス</em落射蛍光顕微鏡とオープンソースソフトウェアを使用して>胚

シンプルなマイクロ流体デバイスは、麻酔薬を無料で行うために開発されました...

のためのシンプルなマイクロ流体デバイス<em生体内で&gt;</emの&gt;イメージング<em&gt; Cエレガンス</em&gt;<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;とゼブラフィッシュ

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Caenorhabditis elegansのニューロンにおける細胞内カルシウムダイナミクスのイメージング

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Cの生体内神経カルシウムイメージングでエレガンス

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この方法は、光遺伝学と遺伝的にコード化されたカルシウムセンサーを画像ベースラインサイトソリックカルシウムレベルおよびモデル生物C.エレガンスの体壁筋肉における誘発カルシウム過渡の変化に組み合わせる方法を提供する。...

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等方性光シート顕微鏡と自動細胞系譜分析による、細胞内分解能を Caenorhabditis elegans 胚発生

樹状突起棘は神経系の重要な細胞の特徴です。ここでは、 C.

カエノラブディティス・エレガンスにおける樹状突起棘のイメージング

蛍光標識End結合タンパク質を用いて 生体内で 動的微小管をイメージングするプロトコルが提示された。...

インビボカエノハブディティス・エレガンスニューロンにおける微小管動態と向きの評価

このプロトコルは、最大36時間の連続的な食物供給の存在下で C.エレガンス を成長させるために使用される単純なマイクロ流体チップ設計および微細加工方法論を説明しています。成長およびイメージングデバイスは、数日間の開発中の細胞および細胞内プロセスの断続的な長期高解像度イメージングも可能にします。...

カエノラブディティス・エレガンスの長期増殖とイメージングのためのシンプルなマイクロ流体チップ

現在の方法は、容易に入手可能な遺伝的にコードされたカルシウム指標を使用して、カエノラブディティスエレガンスのin...

in vivoでの神経細胞カルシウムハンドリングの細胞内イメージング

学ぶ、C. elegansのダウアー期における感覚ニューロンのリモデリングをin vivoイメージングする方法。フェロモン誘導とGFP標識IL2ニューロンを用いて、樹状突起の樹枝分かれを観察し、環境ストレスに対する神経可塑性のメカニズムを解明する。

CのDauer固有の神経リモデリングのin vivoイメージングエレガンス

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