Name: 複数のゼブラフィッシュへの医薬品の新規方法（ゼブラフィッシュ）と撤退の定量 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-12T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: 学ぶゼブラフィッシュへのエタノール同時投与法で、離脱行動と不安レベルの定量的評価を行う手法です。行動追跡ソフトウェアを用いて正確な薬物曝露と神経薬理学研究への応用が可能です。

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すべての手順および行動試験は、実験動物の管理と使用のための動物ケアのガイドラインについては、カナダ人評議会に準拠しているプロトコル番号06-11-12、下マキュワン大学の動物実験倫理委員会によって承認された。 1.投与タンク、ソリューション、および投与スケジュールを準備<ol><li>動物は視覚刺激に時間やバイアスのいずれ交絡を避けるために、同じ環境で、一日の同じ時間の間に投与されるような投与スケジュールを準備します。 </li><li>グループサイズの数に対して必要な限り多くの同一、1.5 L、明確なポリプロピレン産卵タンクを入手します。魚の2つのグループを可能にし、タンクあたり8魚の使用グループは手順で後述日あたりテストされる（ ステップ3を参照）。 1保持タンクやグループごとに1つの投与タンク（グループの2倍合計数）を使用します。 <ol><li>すべての保持タンクに400μmの産卵インサートを置きます。 F病気生息水でタンクまたは温度魚と一致している（ゼブラフィッシュのため、25〜28℃）、正しい温度で逆浸透水は、通常に収容されている。 注：一部の薬剤および緩衝生息水の化学成分間の望ましくない化学的相互作用が存在し得る。この状況では、逆浸透薬物投与のための最小または全く水槽塩で緩衝水、ならびに対照群のために使用する。 </li><li>タンクは、投薬時に外部視覚刺激にコンディショニングの魚を避けるために、中立的な環境であることを確認します。 </li></ol></li><li>薬液を準備します。産卵タンクで生息地の水と適切な量の薬剤を混ぜる。水1497ミリリットルでハイグレードのエタノール（95％非変性エタノール）の3ミリリットルを組み合わせることにより、0.2％エタノール溶液を調製します。水1479ミリリットルとエタノール21ミリリットルを組み合わせることにより、1.4％エタノール溶液を調製します。 </li></ol> 2.ネッティング魚、そしてEthanol管理手順<ol><li>慎重にネット生息タンクから魚や産卵挿入物を含む適切な保持タンクに移す。理想的には、産卵中の家の魚は完全にネッティングを排除するために挿入します。 </li><li>それぞれの保持タンク内のすべての魚と、優しく保持タンクの外に挿入し、適切な薬液タンク（ 図1A）にそれを置いて産卵を持ち上げる。 <ol><li>必要に応じて、投与時間を記録します。ここで説明する手順のためのエタノール溶液に30分を使用してください。 </li><li>可能な場合、アシスタントは、正確な投薬時間を確保すると同時に薬液を全ての実験群の転送を支援している。代替的に、一度に1つのグループを転送し、個々のグループの投薬回数（ 図1A）を追跡する。 </li></ol></li><li>必要な投与期間の終わりに、慎重に産卵インサートを持ち上げることにより、エタノール溶液から魚を外す薬液のうち、背面保持タンクに優しく置く。 </li><li>優しくネット保持タンク内の魚や次回のスケジュール、投与時まで戻って自分の生息地にそれらを配置するか、産卵を配置ネッティングを排除するために戻って保持タンクに挿入します。 </li><li>動物の住宅設備機器、住宅貯蔵タンクとして使用されているものと同じタンクと産卵インサートにおける動物のパラメータの範囲内で以前に、可能な場合に述べたように。これは投与手順の間に完全にネッティングがなくなります。 </li></ol> 3.行動試験<ol><li>長い55センチメートルと白の防水床（ 図1B）との深い9.5センチメートル9.5センチ幅の明/暗アリーナを取得します。黒で覆われた白と半分に覆われたアリーナの半分で、マジックテープを使用して、アリーナの内壁に白と黒の防水無反射紙を貼る。 25-28℃の温度で、生息地の水で5cmの深さにアリーナを埋める。通販テスト全体でこの温度をAINの。 </li><li>アリーナ内に位置されるためには、白三面囲いを構築することにより、外部視覚刺激をMinimalize。テストエリアが水面上に反射を起こさない頭上の照明を拡散持って、まだ十分に運動追跡ソフトウェア、またはポストのために明るいあることを確認してくださいビデオ画像から-hoc手動定量。 </li><li>エンクロージャにアリーナを置き、行動追跡ソフトウェアの記録と運動解析パラメータを設定します。研究課題に応じて、5〜15分までの試用期間を設定します。 注：ここでは、5分を使用していました。 </li><li>魚の群が生息タンク内の研究領域にテスト​​される輸送し、アリーナエンクロージャの外に配置します。 10分間の魚を順応さ。 </li><li>明/暗アリーナの中央に該当するグループと場所から静かにネット魚は、AVOするアリーナの長軸に平行に配置されたとき、魚を解放することを確認され光や暗いゾーンに魚をバイアスするID。 </li><li>動物が解放された直後に記録動作を開始します。魚を追跡または魚のジャンプや凍結のための任意のソフトウェアの問題を監視します。被験者の半数に起因アリーナの端が筐体の開口端に向かって配向されているから生じる偏見にどんな交絡を防ぐためにテストされた後に、アリーナを180°回転させます。 </li><li>裁判の後、終了優しくネットと保持タンクや生息地のタンクにアリーナから魚を削除しています。 </li></ol> 4.分析<ol><li>ダークゾーンに対する光の中で費やされた時間を調べます。グループごとに、それぞれの魚、光と闇のゾーンで過ごした相対的な時間を得て、1 標本t -test使用して分析する（またはウィルコクソンをノンパラメトリックデータのための順位検定を締結し、総試行時間の（半分）150秒との違い）グループは大幅に他の上の1つの領域を好むかどうかを判断する。 </li><li>環境設定を比較するには、prefeを計算暗いゾーンで過ごした時間からの光帯に過ごし、群間の差を比較する時間を減算することによりrenceインデックス。 のt-試験は、2つのグループを比較するために使用され得る。 TukeyのHSDポストホックテスト、必要な場合（ノンパラメトリックデータ用またはクラスカル·ワリス検定Dunnの多重比較ポストホック付きテスト）を利用した一元配置分散分析で複数のグループを比較してください。 </li><li>速度、ゾーン遷移の数、蛇行、およびグループ間で不動の比較。 TukeyのHSDポストホック検定を用いた一元配置分散分析を使用して、必要に応じて（Dunnの多重比較、ノンパラメトリックデータのための事後検定又はクラスカル·ワリス検定）。 </li></ol>

<ol><li>Spence, R., Gerlach, G., Lawrence, C., Smith, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+behaviour+and+ecology+of+the+zebrafish%2C+Danio+rerio%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+Reviews%22%5BJournal%5D)">The behaviour and ecology of the zebrafish, Danio rerio.</a> Biological Reviews. 83 (1), 13-34 (2008).</li>
<li>Langheinrich, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish%3A+A+new+model+on+the+pharmaceutical+catwalk%5BTitle%5D)+AND+%22BioEssays%22%5BJournal%5D)">Zebrafish: A new model on the pharmaceutical catwalk.</a> BioEssays. 25 (9), 904-912 (2003).</li>
<li>Santoriello, C., Zon, L. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hooked%21+Modeling+human+disease+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Investigation%22%5BJournal%5D)">Hooked! Modeling human disease in zebrafish.</a> Journal of Clinical Investigation. 122 (7), 2337-2343 (2012).</li>
<li>Miller, N., Greene, K., Dydinski, A., Gerlai, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+nicotine+and+alcohol+on+zebrafish+%28+Danio+rerio%29+shoaling%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+brain+research%22%5BJournal%5D)">Effects of nicotine and alcohol on zebrafish ( Danio rerio) shoaling.</a> Behavioural brain research. , (2012).</li>
<li>Bencan, Z., Sledge, D., Levin, E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Buspirone%2C+chlordiazepoxide+and+diazepam+effects+in+a+zebrafish+model+of+anxiety%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacology+Biochemistry+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Buspirone, chlordiazepoxide and diazepam effects in a zebrafish model of anxiety.</a> Pharmacology Biochemistry and Behavior. 94 (1), 75-80 (2009).</li>
<li>Holcombe, A., Howorko, A., Powell, R. A., Schalomon, M., Hamilton, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reversed+Scototaxis+during+Withdrawal+after+Daily-Moderate%2C+but+Not+Weekly-Binge+Administration+of+Ethanol+in+Zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Reversed Scototaxis during Withdrawal after Daily-Moderate, but Not Weekly-Binge Administration of Ethanol in Zebrafish.</a> PLoS ONE. 8 (5), (2013).</li>
<li>Mathur, P., Guo, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differences+of+acute+versus+chronic+ethanol+exposure+on+anxiety-like+behavioral+responses+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Differences of acute versus chronic ethanol exposure on anxiety-like behavioral responses in zebrafish.</a> Behavioural Brain Research. 219 (2), 234-239 (2011).</li>
<li>Dlugos, C., Rabin, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ethanol+effects+on+three+strains+of+zebrafish%3A+model+system+for+genetic+investigations%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacology+Biochemistry+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Ethanol effects on three strains of zebrafish: model system for genetic investigations.</a> Pharmacology Biochemistry and Behavior. , (2003).</li>
<li>Maximino, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Scototaxis+as+anxiety-like+behavior+in+fish%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Scototaxis as anxiety-like behavior in fish.</a> Nature Protocols. 5 (2), 209-216 (2010).</li>
<li>Gerlai, R., Lee, V., Blaser, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+acute+and+chronic+ethanol+exposure+on+the+behavior+of+adult+zebrafish+%28Danio+rerio%29%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacology+Biochemistry+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Effects of acute and chronic ethanol exposure on the behavior of adult zebrafish (Danio rerio).</a> Pharmacology Biochemistry and Behavior. 85 (4), 752-761 (2006).</li>
<li>Egan, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Understanding+behavioral+and+physiological+phenotypes+of+stress+and+anxiety+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+brain+research%22%5BJournal%5D)">Understanding behavioral and physiological phenotypes of stress and anxiety in zebrafish.</a> Behavioural brain research. 205 (1), 38-44 (2009).</li>
<li>Gebauer, D. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+anxiolytics+in+zebrafish%3A+Similarities+and+differences+between+benzodiazepines%2C+buspirone+and+ethanol%5BTitle%5D)+AND+%22Pharmacology+Biochemistry+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Effects of anxiolytics in zebrafish: Similarities and differences between benzodiazepines, buspirone and ethanol.</a> Pharmacology Biochemistry and Behavior. 99 (3), 480-486 (2011).</li>
<li>Serra, M. C., Mattioli, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Natural+preference+of+zebrafish+%28Danio+rerio%29+for+a+dark+environment%5BTitle%5D)+AND+%22Braz+J+Med+Biol+Res%22%5BJournal%5D)">Natural preference of zebrafish (Danio rerio) for a dark environment.</a> Braz J Med Biol Res. 32 (12), 1551-1553 (1999).</li>
<li>Maximino, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+and+neurochemical+changes+in+the+zebrafish+leopard+strain%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Brain+Behav%22%5BJournal%5D)">Behavioral and neurochemical changes in the zebrafish leopard strain.</a> Genes Brain Behav. 12 (5), 576-582 (2013).</li>
<li>Levin, E. D., Bencan, Z., Cerutti, D. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anxiolytic+effects+of+nicotine+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Physiology+%26+Behavior%22%5BJournal%5D)">Anxiolytic effects of nicotine in zebrafish.</a> Physiology & Behavior. 90 (1), 54-58 (2007).</li>
<li>Gerlai, R., Chatterjee, D., Pereira, T., Sawashima, T., Krishnannair, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+and+chronic+alcohol+dose%3A+population+differences+in+behavior+and+neurochemistry+of+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Genes%2C+Brain+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Acute and chronic alcohol dose: population differences in behavior and neurochemistry of zebrafish.</a> Genes, Brain and Behavior. 8 (6), 586-599 (2009).</li>
<li>Mathur, P., Berberoglu, M. A., Guo, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preference+for+ethanol+in+zebrafish+following+a+single+exposure%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Preference for ethanol in zebrafish following a single exposure.</a> Behavioural Brain Research. 217 (1), 128-133 (2011).</li>
<li>Renninger, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Investigating+the+genetics+of+visual+processing%2C+function+and+behaviour+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Neurogenetics%22%5BJournal%5D)">Investigating the genetics of visual processing, function and behaviour in zebrafish.</a> Neurogenetics. 12, 97-116 (2011).</li>
<li>Crawshaw, L. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tolerance+and+withdrawal+in+goldfish+exposed+to+ethanol%5BTitle%5D)+AND+%22Physiology+%26+Behaviour%22%5BJournal%5D)">Tolerance and withdrawal in goldfish exposed to ethanol.</a> Physiology & Behaviour. 87 (3), 460-468 (2006).</li>
<li>Hamilton, T. J., Holcombe, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tresguerres%2C+M.CO2-induced+ocean+acidification+increases+anxiety+in+rockfish+via+alteration+of+GABAA+receptor+functioning%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+Royal+Society+B%22%5BJournal%5D)">Tresguerres, M.CO2-induced ocean acidification increases anxiety in rockfish via alteration of GABAA receptor functioning.</a> Proceedings of the Royal Society B. , (2014).</li>
<li>Ramsay, J. M., Feist, G. W., Varga, Z. M., Westerfield, M., Kent, M. L., Schreck, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Whole-body+cortisol+response+of+zebrafish+to+acute+net+handling+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Aquaculture%22%5BJournal%5D)">Whole-body cortisol response of zebrafish to acute net handling stress.</a> Aquaculture. 297 (1-4), 157-164 (2009).</li>
<li>Hamilton, T. J., Paz-Yepes, J., Morrison, R. A., Palenik, B., Tresguerres, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exposure+to+bloom-like+concentrations+of+two+marine+Synechococcus+cyanobacteria+%28strains+CC9311+and+CC9902%29+differentially+alters+fish+behaviour%5BTitle%5D)+AND+%22Conservation+Physiology%22%5BJournal%5D)">Exposure to bloom-like concentrations of two marine Synechococcus cyanobacteria (strains CC9311 and CC9902) differentially alters fish behaviour.</a> Conservation Physiology. 2 (1), (2014).</li>
</ol>

著者らは、図1に使用される彼の写真撮影装置の使用のためにジョシュアギャラップを認める。この作品は、（TJHに）自然科学と工学研究評議会（NSERC）カナダディスカバリーグラントによってサポートされていました。

ゼブラフィッシュにおける薬剤投与を伴う以前の研究では、単純に薬物溶液12,16に自宅タンクからそれらを輸送するために魚をネッティングに頼ってきた。ネッティングは常に一貫していないとしばしばかなりの個体差があるゼブラフィッシュの逃避応答に予想よりも時間がかかります。伝統的な転送方法は、有用ではあるが、魚が水の外に費やす合計時間を減少させるだけでなく、動物の間の転送時間の変動量を減少させることによって大幅に改善することができる。実用性の向上に加えて、この方法は、研究者の時間の正確な量は溶液中で同時に魚の大用量群できるようになります。以前の方法は、ど​​ちらかが単一の魚を投与、または同時に魚のグループをネット全体を試みる必要があります。後者は厄介で困難な作業であるのに対し、前者は、低速であり、スループットを低下させる。さらに、運動追跡システム、そのC一度に複数の魚の挙動を評価することは、この方法の精度の恩恵を受けることができます。魚は産卵から直接転送することができたすべての魚のためのアリーナへの同時暴露の近くに保証するであろう浅水アリーナ、挿入。 21日間のゼブラ...

ゼブラフィッシュ（ ゼブラフィッシュ）は 、行動1および医学研究2,3ための有用なモデル生物であるインド発の小さな硬骨魚種である。ゼブラフィッシュは、一般に行動への影響を特徴付けるために、様々な薬理学的物質の試験において使用されている。薬物投与の様々な投与量およびスケジュールは、覚せい剤4、抗不安5およびエタノール6-8のような化合物の投与後のゼブラフィッシュの挙動を調査するために使用されてきた。 私たちの研究室はまた、一般scototaxicアッセイと呼ばれる、よく検証ダーク/ライトアッセイ9、20にゼブラフィッシュ不安や歩行にエタノール投与の異なるスケジュールの影響を調査しました。エタノール投与の新しい方法は、6時間の長い期間（21日間）にわたって反復、毎日の投与のための効率を高めるために開発された</s&gt;まで。以前に使用された方法は実用的であったが、我々は、その関連する時間コストは、ネッティングを低減する方法を開発しようと、魚の大量の目的とする薬物の同時、正確に時限投与を可能にした。エタノールを用いた従来の研究では、ゼブラフィッシュは、1つのタンクからエタノールと水10~12の適切な混合物を含む別に相殺され、転送される。この方法は広く受け入れられているが、ゼブラフィッシュを相殺すること導入し、薬物溶液から魚を除去するために要する時間のばらつきを増大させることができる。そのため、目的の化合物への正確な露出は反復投与を伴う実験の過程にわたって変化し得る。輸送時間の変動に起因する誤差の発生源を減少させる方法がが望ましい。私たちの方法では、我々はそれぞれの魚で同一の投与時間で、その結果、同時にすべての魚を移動することができます。 （ここで説明）エタノール曝露後、ゼブラフィッシュは、任意のnumbeにおいて試験することができる不安を評価するものも含めて行動アッセイ、のrを。新しいメソッドを使用して、魚のグループを投与すると、正確に被験者間や魚のグループ間での投与を複製し、標準化する能力を超え、実用用途があります。一度に複数の魚の追跡を可能にする新しいソフトウェアの出現は、研究者が実験に複製能と精度を確保するために、私たちの方法を利用することがあります。行動神経科学のためのモデル生物としてゼブラフィッシュの普及を考えると、この方法では、将来の薬理学的研究における効率性と実用性が向上します。 現在のパラダイムでは、反復投与スケジュールは、およそ人間の飲用スケジュールを反映していることを採用した。コントロール、毎日の中等度、または毎週-どんちゃん騒ぎ：魚を無作為に3つの群に割り当てた。投与スケジュールは、それが大幅に過去の研究7に露光時間を超えたため選ばれ、期間は21日であった。対照魚はゼロALCOを受けHOL、毎日の中等度の魚は1日1回、0.2％アルコールを受け、毎週-どんちゃん騒ぎの魚は、1週間に1回1.4％アルコールを受け取った。明/暗タスクが離脱の2日後に不安を評価した。これは、一方の側の壁が白色であり、他の側に9暗いする矩形アリーナを使用している管理するための比較的簡単な試験である。アダルトゼブラフィッシュは、ロバスト制御条件の下で6,9,13アリーナのダークサイドを好む。不安の増大は、運用上、暗いゾーンで過ごしたかなり多くの時間として定義され、魚が光ゾーンで過ごした、比較的多くの時間を費やしている時に不安を想定することができます減少する。モーショントラッキングソフトウェアを使用すると、他の有益な変数も平均速度、不動、蛇行を含め、定量することができる、そしてゾーンは14に移行します。 我々の研究室で開発された投与方法は、水溶性化合物は、1つ以上のzebrafiに投与される任意の研究に適用することができるSH。この方法論から利益を得ることができる他の多くの薬理学的薬剤は、現在、ゼブラフィッシュで検証されています。一般的に試験された化合物は、エタノールと同様の方法で溶解させ、ニコチン、クロルジアゼポキシド、ブスピロン、およびスコポラミンが挙げられる。水に化学物質の適切な量を混合することによって。したがって、この手順の一般的な範囲ははるかに広いとエタノールに限定されるものではない。さらに、複数の日のための薬物を投与した後、明/暗タスクを使用することができる多くの行動試験の1つにすぎません。薬物投与後、または引き抜きの間、利用できる他の一般的なアッセイは新しいタンクダイビングテスト15など16の浅水として社会的行動のテストが含まれています。次の手順を繰り返し、目的の薬理学的な化合物を含む溶液に魚や個々の魚のグループを転送する効率的な方法を概説します。さらに、明/暗テストとテスト不安のプロセスアルコール投与の長いスケジュールにさらさ​​れた後に撤退している魚のグループに説明する。

<table><tbody><tr><td>3段棚ベンチトップハウジングシステム</td><td><a href="http://aquatichabitats.com/research-systems/z-hab-system/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Aquatic Habitats</a></td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>1.5 L 産卵タンク（400 &amp;mu;m バッフル付き）</td><td><a href="http://aquatichabitats.com/consumables/tanks-lids-and-baffles/info/nursery-tank-and-baffles/" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Aquatic Habitats</a></td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>純粒穀物エタノール</td><td><a href="http://www.luxco.com/brands/vodka-neutral-spirits-neutral-spirits-everclear" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Luxco, INC</a></td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Ethovision XT 行動追跡ソフトウェア</td><td><a href="http://www.noldus.com/animal-behavior-research/products/ethovision-xt" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Noldus Information Technology</a></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ピペット</td><td><a href="http://eshop.eppendorf.ca/categories/1" target="_blank"><img src="/img/new_window.png"> Eppendorf Canada</a></td><td></td><td></td></tr><tr><td>明暗ボックス（Light/Dark Arena）</td><td>カスタム</td><td></td><td>手順の説明に従って作製すること。幅 9.5 cm、奥行き 9.5 cm、長さ 55 cm。</td></tr></tbody></table>

複数のゼブラフィッシュへの医薬品の新規方法（ゼブラフィッシュ）と撤退の定量

A Novel Method of Drug Administration to Multiple Zebrafish (Danio rerio) and the Quantification of Withdrawal

ゼブラフィッシュの不安性試験は、薬理学的物質の適用と組み合わせて研究されることがよくあります。これらの研究では、魚は日常的に網で網にかけられ、自宅の水族館と投薬タンクの間で輸送されます。そこで、化合物投与の容易性を高めるため、魚類を水槽間で移動させて薬剤を投与する新しい方法を開発しました。産卵用に設計されたインサートを使用して、魚のグループを薬液に移し、グループ内のすべての魚を正確に投与することができました。これにより、投薬の精度と効率が向上し、長期にわたる薬物投与の繰り返しにおいて非常に重要になります。この手順は、異なる21日間のスケジュールでエタノールを投与した後の明暗試験でのゼブラフィッシュの行動を調べる研究で使用するために実装しました。毎日中程度の量のアルコールに曝露された魚では、対照群と比較して、離脱の2日後に場所の好みに有意差がありました。 しかし、毎週の過食症投与に曝露されたグループでは、場所の好みに有意差は観察されませんでした。 
このプロトコルは、水溶性の全てのタイプの化合物で使用するために一般化することができ、薬物投与の長いスケジュール中またはその後の魚の行動が調査されている任意の状況で使用できます。明暗テストは、離脱によって引き起こされる不安の変化を評価する貴重な方法でもあります。

上記のようにゼブラフィッシュと薬理学的研究の精度および制御を維持するためには、一貫して正確にエタノール投与の持続時間が重要である。我々の手順では、投与手順の容易性とスループットを向上させることができる。毎週-過食や毎日の中等度のスケジュールのいずれかに対するエタノールの投与は、対照と比較して、明/暗テストで測定し、変化した不安レベルをもたらした。二日、最後の投薬後試験した場合、（全くアルコールを受けていないが、それでも、投薬タンクに移動された）対照群のゼブラフィッシュは、（アリーナの暗い側の制御の魚の支出が大幅に多くの時間と行動の予想されるパターンを、表示された他の研究6,9,13におけるナイーブゼブラフィッシュに似図2A）。 （ 図2B彼らの最後のエタノール投与後2日間を試験したとき、毎週のどんちゃん騒ぎグループ内の魚は、タスク内の光や暗いいずれかのゾーンには好みを示さなかった図2C）のライト側好ましい。対照群とは対照的である。優先度は、対照と毎日中程度のグループ（ 図2D）との間の有意差を示した。そこ遊泳速度、...

魚を薬物にさらす際のばらつきを減らすための新しい方法が説明されています。 さまざまなパターンのエタノール曝露に曝露された魚は、明暗頭放錠アッセイで離脱中の不安レベルが変化していることがわかりました。

Anxiety testing in zebrafish is often studied in combination with the application of pharmacological substances. In these studies, fish are routinely ...

この手順の全体的な目標は、魚のグループを正確かつ効率的にエタノールで投与し、反復投与が離脱行動に及ぼす影響を評価することです。これは、最初にゼブラフィッシュに投与することで達成されますが、これは、魚のグループ全体を正確な時間にわたって同時に薬物曝露できるようにするために開発された新しい方法を使用して行われます。2番目のステップは、エタノール離脱の特定の影響のテストを可能にするスケジュールで魚を投与し続けることです。次に、引き出し時には、モーショントラッキングソフトウェアを使用して、魚を明るい暗いタスクで個別にテストし、動きを記録します。最後のステップは、エタノールの離脱がゼブラフィッシュの行動に及ぼす影響を調査するために、データを分析することです。最終的に、記載された手順を使用してエタノールを繰り返し投与すると、2日間の離脱後のゼブラフィッシュの行動に一過性ではあるが顕著な影響が生じます。この技術の主な利点は、魚の大群に同時に薬物を投与できることであり、長期間にわたって薬物、薬物、または毒素に繰り返し曝露する研究に最適です。この方法は、離脱関連行動の定量化など、神経薬理学の分野における重要な疑問に答えるのに役立ちます。この方法のアイデアを最初に思いついたのは、エタノールを複数の魚に同時に投与しようとしたときに、網が薬物を投与するための不正確で不正確な方法であることがわかりました。はじめましょう。動物の投与スケジュールは、時間の混乱や視覚刺激への偏りを避けるために、動物が同じ環境で同じ時間帯に投与されるように準備してください。次に、1日あたり2つのグループの魚をテストできるように、グループサイズの数に必要なだけ多くの同一の1.5リットルの透明なポリプロピレン製産卵タンクを入手します。水槽ごとに8匹の魚のグループを使用し、グループごとに1つの保持タンクと1つの投与タンクが必要です。したがって、タンクの数はグループの数の数に2倍になります。次に、すべての保持タンクに400ミクロンのスポーンインサートを配置します。水槽に生息水、水、または逆浸透水を入れて、適切な温度にします。ゼブラフィッシュには摂氏 25 度から 28 度が使われます。コンディショニングを避けるために、タンクが中立的な環境にあることを確認し、投与中に外部の視覚刺激に魚を送ります。次に、ここの投与タンクで適量の薬剤を生息地水と混合して薬液を調製し、タンク内の水に高品位エタノールを混合して0.2%エタノール溶液と1.4%エタノール溶液を調製します。生息地の水槽から魚を慎重に網で留め、産卵インサートを含む適切な保持タンクに移します。理想的には、魚を産卵インサートに収容して、すべての魚をそれぞれの飼育タンクに網を完全に排除します。産卵インサートを保持タンクからそっと持ち上げ、適切な薬液タンクに入れます。可能であれば、正確な投与時間を確保するために、すべてのグループを同時に薬液に移すための支援を受けてください。必要に応じて投与時間を記録します。エタノール溶液中で30分間は、必要な投与期間の終わりにここで説明する手順に使用されます。産卵インサートを薬液から慎重に持ち上げ、保持タンクにそっと戻して、魚をエタノール溶液から取り出します。幅9.5センチ、長さ55センチ、深さ9.5センチの明るい暗いアリーナと白い防水床を手に入れます。白で覆われたアリーナの半分と黒で覆われた半分でベルクロを使用してアリーナの内壁に白と黒の防水無反射紙を固定し、摂氏25〜28度の温度で生息地の水で5センチメートルの深さまでアリーナを満たします。テスト中もこの温度を維持し、アリーナを配置するための白い3面の筐体を構築することにより、外部の視覚刺激を最小限に抑えます。テストエリアに拡散オーバーヘッドがあることを確認します。水面に反射を引き起こさない照明は、動き追跡ソフトウェアやビデオ画像からの事後手動定量化に十分な明るさです。次に、行動追跡ソフトウェアの記録および移動分析パラメータを5〜15分の試用期間で設定し、研究課題に応じて、テスト対象の魚のグループを生息地タンクの研究エリアに輸送し、アリーナの外に配置します。囲い。魚が10分間順応するのを待ちます。適切なグループから魚をそっと網にかけ、アリーナの長軸と平行に配置されたときに各魚を放流する明るい暗いアリーナの中央に置きます。魚を明るいゾーンまたは暗いゾーンに偏らせないように、動物がリリースされた直後に行動の記録を開始します。魚の追跡や、トライアル終了後の魚のジャンプやフリーズに関するソフトウェアの問題に注意し、アリーナから魚をそっと網で囲み、保持タンクまたは生息地タンクに移します。被験者の半数がテストされた後、アリーナを180度回転させて、アリーナのどの端がエンクロージャーの開放端に向けられているかによる偏見による混乱を防ぎます。分析を開始するには、各グループおよび各魚の明るいゾーンと暗いゾーンで費やした時間を調べ、明るいゾーンと暗いゾーンで費やした相対時間を取得し、1つのサンプルT検定を使用して分析し、グループが一方のエリアを他方のエリアよりも大幅に好むかどうかを判断します。選好を比較するには、ダークゾーンで費やした時間からライトゾーンで費やした時間を差し引いて選好指数を計算し、グループ間の違いを比較します。T検定を使用して、ノンパラメトリックデータセットに必要な場合は、2つのキーである正直な有意差の事後検定を使用して、分散の一元配置分析で複数のグループを比較します。Resco Wallace 検定と Dunn の多重比較の事後ホック検定を使用して、速度、ゾーン遷移の数、曲がりくねった移動、およびグループ間の不動性を比較します。一元配置分散分析を使用して、必要に応じて、2つの重要な正直な有意差の事後検定を利用します。毎週のどんちゃん騒ぎまたは毎日の中程度のスケジュールでエタノールを投与すると、対照と比較して、明るい暗いテストで測定された不安レベルが変化しました。.ここに示されているのは、各条件の 5 分間の light dark 試行における 1 つの制御ゼブラフィッシュの移動経路の代表的なトラック プロットです。同じゼブラフィッシュの軌跡プロットは、試行中のゼブラフィッシュの動きを色分けして表現したヒートマップとして表されます。各ピクセルで表される場所に魚が費やした時間に基づいています。最後の投与から2日後にテストしたところ、対照群のゼブラフィッシュは予想通りの行動パターンを示し、対照群のゼブラフィッシュはアリーナのダークサイドで過ごす時間が有意に長くなりました。他の研究のナイーブなゼブラフィッシュと同様に、毎週のビンジグループの魚は、最後のエタノール投与の2日後にテストしたときに、タスクの明るいゾーンと暗いゾーンのいずれにも好みを示さなかった。興味深いことに、毎日の中程度のグループの魚は、アリーナの明るい場所をかなり好みました。対照群とは対照的に、選好指数は対照群と毎日の中等度群との間に有意差を示しました。グループ間で泳ぐ速度や動かなさに有意差はなく、したがって、この影響は魚の運動障害によるものではなかった。この手順を試みるときは、魚に餌を与える前または後に、目的の薬理学的化合物を1日の同じ時間に投与することを覚えておくことが重要です。したがって、エタノールや他の薬理学的化合物を用いて行われるこの手順に続いて、他のゼブラフィッシュの行動テストを行って、依存症や離脱などを評価することができます。このビデオを見れば、行動テストのためにゼブラフィッシュの群を効率的かつ正確に投与する方法を十分に理解できるはずです。この手順に従い、特に産卵インサートを使用することは、魚を投与する際の精度を確保するための優れた方法です。

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