Name: マウス胎児肝臓培養システムは、ターミナル赤血球の初期および後期段階での標的遺伝子の機能を分析する (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-09T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: 学ぶマウス胎児肝臓培養システムを用いた終末赤血球形成の初期・後期段階における遺伝子機能解析法。TER119陰性細胞の精製とウイルス導入により、分化動態と核除去を評価する。

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この研究は、NIH R00HL102154によってサポートされ、P智への血液学者賞のアメリカの社会ました。

このプロトコルに記載される実験は、ノースウェスタン大学施設内動物管理使用委員会によって定められたガイドラインおよび規制に従って行った。 培養液の調製<ol><li>フィブロネクチン溶液を調製する。ヒトフィブロネクチン（1mg）を1バイアルに1mlの水を追加します。撹拌せずに30分間組織培養フード内の溶液のままにしておきます。 20μg/ mlの最終濃度を作るために、PBS 50mlに全液体を移し、静かによく混ぜる。プレートを被覆する前に、フィブロネクチン溶液は新鮮行う（下記参照）。 </li><li>エポ培地（SCF培地）50mlのを準備します。新鮮作ったとき、表1に列挙した成分を組み合わせる。培地を1ヶ月間4℃で保存することができる。 </li><li>エポ含む培地50mlを準備します。新鮮作ったとき、表2に列挙した成分を組み合わせる。培地を1ヶ月間4℃で保存することができる。 </li></オール&gt; 2フィブロネクチンコートプレート<ol><li> 6ウェルプレート（または12ウェルプレートの各ウェルに0.5 ml）を各ウェルに1 mlのフィブロネクチン溶液を添加する。 1時間の組織培養フード内でプレートにしておきます。 </li><li>二回滅菌水でウェルを洗浄し、空気プレートを乾燥させます。 </li><li>プレートをラップし、4℃で低温室で保存してください。 </li></ol>胎児肝臓赤芽球の精製注：E13からE15時限妊娠マウス（C57BL / 6）に使用して胎児の肝臓。 E13.5肝臓はCFU-E前駆体の収量を最大にするために好ましい。時限妊娠マウスを得るためには、6〜8週齢の雄と雌のマウスは1ケージ（1つまたは2つの雌と通常1オス）に入れた。女性の膣のプラグは交尾が成功したかどうかを判断するために次の日の朝にチェックした。妊娠の最初の日は、プラグが検出された後の一日でした。 <ol><li>総胎児肝細胞の調製<ol><li>畝を生け贄に捧げるCO 2吸入と頸椎脱臼によってSE。消毒用70％エタノールで腹部をスプレーします。子宮を除去するために、はさみを解剖して、腹部を開きます。 1×PBS中で子宮を洗ってください。 </li><li>組織培養フード、オートクレーブのツールを使用して無菌条件下で胎児を解剖し、1×PBS中で洗浄します。 </li><li>胎児からの胎児の肝臓を解剖。別の鉗子で身体から離れ胎児肝臓（色はピンク）をゆっくりと引い1ピンセットで胎児のボディを持ってください。関連する線維性組織を除去するための鉗子で胎児の肝臓を清掃してください。 10％ウシ胎児血清を含む新鮮な1×PBS中にすべての胎児の肝臓を置きます。 </li><li>機械的ピペッティングにより胎児の肝臓を混乱させる。 </li><li> 50mlの円錐チューブに40μmのセルストレーナーを通して細胞懸濁液をフィルタリングします。 5分間800×gで細胞をペレット化。 </li><li> FBSの上清を吸引し、10％1mlのPBSで細胞を再懸濁（約8 E13.5胎児肝臓）1mlあたり。 </li></ol></li><li> TER119陰性赤芽球の精製<ol><li>氷上で15分間、ラットのIgG（0.2 mg / ml）を用いて細胞をブロックする。 </li><li>洗浄又は遠心分離せずに、細胞懸濁液（1μg/ ml）をビオチン化抗TER119抗体を加える。氷上で15分間インキュベートする。 </li><li> 5分間800×gで、10％FBS（1:10）と遠心分離機に1×PBS中で洗浄する。 10％FBSを含む1mlのPBSで細胞を再懸濁する。 </li><li>磁性粒子とコンジュゲート75μlのストレプトアビジンを加え、氷上で10分間インキュベートする。 </li><li> PBSで10％FBSを含む2.5ミリリットルにボリュームを追加します。ボトムチューブラウンド5ミリリットルのポリプロピレンに細胞懸濁液を転送します。 </li><li>磁気細胞選別装置内にチューブを挿入し、10分間インキュベートする。 TER119陽性細胞は、チューブの側面に付着する。アタッチされていないTER119負の赤芽球を懸濁液のままになります。 </li><li>ボトムチューブ新ラウンド5ミリリットルのポリプロピレンに細胞懸濁液を注ぐ。 </li><li><html>繰り返し、残留TER119陽性細胞を除去するために3.2.6と3.2.7を繰り返します。 </li><li> 5分間800×gで細胞をペレット化。上清を吸引除去する。 10％FBSを含む1mlのPBSで細胞を再懸濁し、トリパンブルーで生細胞を数える。 </li></ol></li></ol>ウイルスコードするcDNAまたはshRNAで4形質導入<ol><li> 3-5の精製TER119負の胎児肝細胞をプレー×10 5 /ウェルで12ウェルプレートをコーティングしたフィブロネクチン（異なるプレートを用いた場合に細胞数を調整する）である。 </li><li>ウイルス形質導入を容易にするためには10μg/ mlの最終濃度にポリブレンを加える。スピンは、37℃で1〜1.5時間、800×gで、cDNAまたはshRNAをコードするレンチウイルスまたはレトロウイルスで細胞を感染させる。 </li></ol>形質導入TER119陰性マウス胎児肝臓赤芽球の5。文化<ol><li>端末赤血球生成の初期段階での遺伝子の機能をテストするには（ 図1破線）。&quot;&gt; </ol.><ol><li><ol. li="">形質導入された遺伝子および前駆状態の維持の発現を可能にする12時間培養エポ培地で形質導入した細胞（SCF培地）。 </ol.></li><li> 5分間800×gで細胞を遠心。上清を吸引。 12ウェルプレートの各ウェルに培地を含有する1ミリリットルのEpo中で細胞を再懸濁する。 </li><li> 24または48時間培養後、さらなるアッセイのための細胞を採取する。 </li></ol></li><li>端末赤血球生成の後期段階でのテスト遺伝子機能（ 図1の実線）。 <ol><li>文化エポ含む培地中で、すぐに導入された細胞。 </li><li> 24または48時間培養後、さらなるアッセイのための細胞を採取する。 </li></ol></li></ol>フローサイトメトリー分析のために培養された胎児肝細胞の染色6。 <ol><li> 1×PBS中で細胞を洗浄し、再懸濁します。収穫フローサイトメトリー分析のために2×10 5個の培養細胞。 </li><li>培養する暗所で室温で20分間フルオロフォア結合抗体を有する細胞。分化をテストするには、APC結合抗CD71およびPE結合抗TER119を使用しています。摘出をテストするには、他の抗体に加えて、ヘキスト33342染色を使用しています。 </li><li> 1×PBSで細胞を洗浄する。死細胞を染色し、分析から除外するために、1％FBSおよびヨウ化プロピジウム（PI）（1μg/ ml）を含む0.5 mlのPBS中に細胞を再懸濁。 </li><li>流れcytrometric分析を実施する。フローサイトメーターの調整と補償のために最初に単一の色に染色し、染色していない対照細胞を分析します。 </li></ol>

<ol><li>Hattangadi, S. M., Wong, P., Zhang, L., Flygare, J., Lodish, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+stem+cell+to+red+cell%3A+regulation+of+erythropoiesis+at+multiple+levels+by+multiple+proteins%2C+RNAs%2C+and+chromatin+modifications%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">From stem cell to red cell: regulation of erythropoiesis at multiple levels by multiple proteins, RNAs, and chromatin modifications.</a> Blood. 118 (24), 6258-6268 (2011).</li>
<li>Richmond, T. D., Chohan, M., Barber, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Turning+cells+red%3A+signal+transduction+mediated+by+erythropoietin%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Turning cells red: signal transduction mediated by erythropoietin.</a> Trends in cell biology. 15 (3), 146-155 (2005).</li>
<li>Eshghi, S., Vogelezang, M. G., Hynes, R. O., Griffith, L. G., Lodish, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alpha4beta1+integrin+and+erythropoietin+mediate+temporally+distinct+steps+in+erythropoiesis%3A+integrins+in+red+cell+development%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Alpha4beta1 integrin and erythropoietin mediate temporally distinct steps in erythropoiesis: integrins in red cell development.</a> The Journal of cell biology. 177 (5), 871-880 (2007).</li>
<li>Koury, M. J., Bondurant, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maintenance+by+erythropoietin+of+viability+and+maturation+of+murine+erythroid+precursor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+cellular+physiology%22%5BJournal%5D)">Maintenance by erythropoietin of viability and maturation of murine erythroid precursor cells.</a> Journal of cellular physiology. 137 (1), 65-74 (1988).</li>
<li>Ji, P., Yeh, V., Ramirez, T., Murata-Hori, M., Lodish, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histone+deacetylase+2+is+required+for+chromatin+condensation+and+subsequent+enucleation+of+cultured+mouse+fetal+erythroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Haematologica%22%5BJournal%5D)">Histone deacetylase 2 is required for chromatin condensation and subsequent enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts.</a> Haematologica. 95 (12), 2013-2021 (2010).</li>
<li>Dumitriu, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sox6+cell-autonomously+stimulates+erythroid+cell+survival%2C+proliferation%2C+and+terminal+maturation+and+is+thereby+an+important+enhancer+of+definitive+erythropoiesis+during+mouse+development%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Sox6 cell-autonomously stimulates erythroid cell survival, proliferation, and terminal maturation and is thereby an important enhancer of definitive erythropoiesis during mouse development.</a> Blood. 108 (4), 1198-1207 (2006).</li>
<li>Rector, K., Liu, Y., Van Zant, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+hematopoietic+stem+cell+isolation+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">Comprehensive hematopoietic stem cell isolation methods.</a> Methods in molecular biology. 976, 1-15 (2013).</li>
<li>Rossi, L., Challen, G. A., Sirin, O., Lin, K. K., Goodell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+stem+cell+characterization+and+isolation%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+molecular+biology%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic stem cell characterization and isolation.</a> Methods in molecular biology. 750, 47-59 (2011).</li>
<li>Choi, H. S., Lee, E. M., Kim, H. O., Park, M. I., Baek, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autonomous+control+of+terminal+erythropoiesis+via+physical+interactions+among+erythroid+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+cell+research%22%5BJournal%5D)">Autonomous control of terminal erythropoiesis via physical interactions among erythroid cells.</a> Stem cell research. 10 (3), 442-453 (2013).</li>
<li>Bhatia, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Short-chain+fatty+acid-mediated+effects+on+erythropoiesis+in+primary+definitive+erythroid+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Short-chain fatty acid-mediated effects on erythropoiesis in primary definitive erythroid cells.</a> Blood. 113 (25), 6440-6448 (2009).</li>
<li>Zhang, J., Socolovsky, M., Gross, A. W., Lodish, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+Ras+signaling+in+erythroid+differentiation+of+mouse+fetal+liver+cells%3A+functional+analysis+by+a+flow+cytometry-based+novel+culture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Role of Ras signaling in erythroid differentiation of mouse fetal liver cells: functional analysis by a flow cytometry-based novel culture system.</a> Blood. 102 (12), 3938-3946 (2003).</li>
<li>Socolovsky, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ineffective+erythropoiesis+in+Stat5a%28-%2F-%295b%28-%2F-%29+mice+due+to+decreased+survival+of+early+erythroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Ineffective erythropoiesis in Stat5a(-/-)5b(-/-) mice due to decreased survival of early erythroblasts.</a> Blood. 98 (12), 3261-3273 (2001).</li>
<li>Ji, P., Jayapal, S. R., Lodish, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enucleation+of+cultured+mouse+fetal+erythroblasts+requires+Rac+GTPases+and+mDia2%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Enucleation of cultured mouse fetal erythroblasts requires Rac GTPases and mDia2.</a> Nature cell biology. 10 (3), 314-321 (2008).</li>
<li>Chida, D., Miura, O., Yoshimura, A., Miyajima, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+cytokine+signaling+molecules+in+erythroid+differentiation+of+mouse+fetal+liver+hematopoietic+cells%3A+functional+analysis+of+signaling+molecules+by+retrovirus-mediated+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Role of cytokine signaling molecules in erythroid differentiation of mouse fetal liver hematopoietic cells: functional analysis of signaling molecules by retrovirus-mediated expression.</a> Blood. 93 (5), 1567-1578 (1999).</li>
<li>Patel, V. P., Lodish, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+fibronectin+matrix+is+required+for+differentiation+of+murine+erythroleukemia+cells+into+reticulocytes%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+cell+biology%22%5BJournal%5D)">A fibronectin matrix is required for differentiation of murine erythroleukemia cells into reticulocytes.</a> The Journal of cell biology. 105 (6 Pt 2), 3105-3118 (1987).</li>
<li>Udupa, K. B., Lipschitz, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endotoxin-induced+suppression+of+erythropoiesis%3A+the+role+of+erythropoietin+and+a+heme+synthesis+stimulating+factor%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Endotoxin-induced suppression of erythropoiesis: the role of erythropoietin and a heme synthesis stimulating factor.</a> Blood. 59 (6), 1267-1271 (1982).</li>
<li>Koury, M. J., Sawyer, S. T., Brandt, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+insights+into+erythropoiesis%5BTitle%5D)+AND+%22Current+opinion+in+hematology%22%5BJournal%5D)">New insights into erythropoiesis.</a> Current opinion in hematology. 9 (2), 93-100 (2002).</li>
</ol>

著者は、彼らが競合する金融利害がないことを宣言します。

ここでは、時系列的に、マウス胎児肝臓端末赤血球生成を分析する独自のシステムを提示する。異なる培養条件の適用を通じて、首尾よく初期および後期段階での端末赤血球生成を解剖した。これは、複数の機能を有する遺伝子のメカニズムを決定するために特に重要である。例えば、RacのGTPアーゼは、端末赤血球生成の各段階において重要な役割を果たしている。端末赤血球生成に影響を与える細胞の分化および増殖の初期段階でのRac GTPアーゼの阻害。一方、細胞分化、増殖、または生存13に影響を与えることなく、端末赤血球生成ブロック摘出の後期段階でのRac GTPアーゼの活性を阻害する。 このプロトコルのいくつかの重要なステップは、心に留めておくべきである。まず、E13.5マウス胎児肝臓TER119陰性細胞の精製のために好ましい。古い胚が使用されるが、proportiすることができます総胎児肝細胞の前駆細胞のうちに低くなります。第二に、機構は明らかではないが、それは、除核のために重要であるので、Epoを媒体に低エンドトキシンBSAを使用することが重要である。フィブロネ...

赤血球生成は、赤血球を成熟多能造血幹細胞の分化の過程である。この段階的なプロセスは、コミットされた赤血球バースト形成単位（BFU-ES）、急速に分裂赤血球コロニー形成単位（CFU-ES）、及び形態学的に認識可能な赤芽球1,2の形成を含む。 CFU-Eの前駆細胞からの端末赤血球生成は、シーケンシャルエリスロポエチン依存性および非依存性のステージ2,3を伴う。端末赤血球形成の初期段階では、エリスロポエチン（EPO）は、細胞表面上の受容体に結合し、細胞アポトーシスを防止し、迅速な細胞分裂および遺伝子発現1,4を促進する下流のシグナル伝達経路のシリーズを誘導する。端末赤血球生成の後期段階では、赤芽球は、高度に凝縮した核5の端子分裂停止、クロマチンおよび核の凝縮、および押出を受ける。 端末の理解赤血球生成が大幅にin vitroおよびin vivoで 6-9マウスモデルにおけるいくつかの使用の成功によるところが大きい、これ過去数十年で改善されています。これらのモデルの中でも、マウス胎児肝芽球のインビトロ培養中の細胞の精製、速い増殖および分化の容易さを含む多くの利点を提供し、人間の赤血球生成10,11に近い模倣。このシステムでは、マウス胎児肝臓からの赤血球前駆細胞の多数が容易にTER119の単一ステップ精製（成熟赤血球系細胞のマーカー）は、負の赤芽球を単離することができる。赤芽球の二日間の培養の間、これらの細胞の分化は、トランスフェリン受容体（CD71）の表面発現およびTER119抗原12に基づいて、フローサイトメトリー分析によってモニターすることができる。また、末端分化赤芽球の除核は、DNAメーカー（ヘキスト33342）によって検出することができる13。さらに、精製された前駆細胞は、遺伝的に赤血球生成11,13,14上の遺伝子発現の機能の機構研究を容易にする、目的の遺伝子のcDNAまたは小ヘアピンRNA（shRNAは）の外因性発現によって改変することができる。 それは、端末赤血球形成の異なる段階での遺伝子機能を特徴付けることは困難であるので、一方で、高速細胞増殖速度は、両刃の剣であることができる。ほとんどの場合、それは、cDNAまたはshRNAが発現した時点で以降の端末赤血球形成の初期段階における特定の遺伝子の機能は、細胞が既に初期段階に合格したかどうかを決定することは困難である。この問題を解決するために、私たちは、端末赤血球生成の初期および後期段階を詳細に分析するために独自のシステムを開発しました。端末赤血球形成の初期段階では、遺伝的に改変されTER119負赤芽球は、Epoを含まない培地中で培養したが、幹細胞因子（SCF）、IL-6およびFLT3を含むリガンドは、それらの前駆状態を維持し、数13に形質導入されたcDNAまたはshRNAを可能にする。細胞は、細胞の増殖および分化を誘導するために12時間後にEpoを含む培地に変更した。細胞が分化し始めたときにこのように、形質導入されたcDNAまたはshRNAは、既に発現した。端末赤血球生成の後期段階では、TER119負の赤芽球は、すぐ​​に導入後エポ含む培地で培養した。従って、一つの端末赤血球形成の後期段階において、目的の遺伝子の機能を分析することができる。要約すると、本システムの広範な適用は、端末赤血球形成の異なる段階での遺伝子機能を分析に役立つだろう。

<table><tbody><tr><td>Iscove's Modified Dulbecco's MediumIMDM (IMDM)</td><td>Gibco</td><td>12440-053</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清 (FBS)</td><td>GEMINI バイオ製品</td><td>700-102P</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン溶液</td><td>Hyclone</td><td>SV30010</td><td>100x</td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>Hyclone</td><td>SH30034.01</td><td>200 mM</td></tr><tr><td>マウス FIT3 リガンド (FLT-3L)</td><td>BD Biosciences&nbsp;</td><td>14-8001-80</td><td></td></tr><tr><td>マウス組換えインターロイキン-6 (IL-6)&nbsp;</td><td>ジェミニバイオプロダクト</td><td>300-327P</td><td></td></tr><tr><td>フィブロネクチン</td><td>BDバイオサイエンス&nbsp;</td><td></td><td></td>354008</tr><tr><td>ウシ血清アルブミン (BSA)</td><td>STEMCELL TECH</td><td>9300</td><td>IMDM</td></tr><tr><td>エリスロポエチン (Epo)</td> <td>PROCRIT</td><td>NOC 59676-303-00</td><td>3,000 U/ml</td></tr><tr><td>ストック ストレプトアビジン粒子 プラス</td><td>BD Pharmingen</td><td>557812</td><td></td></tr><tr><td>EasySep マグネット</td><td>STEMCELL TECH</td><td>18000</td><td></td></tr><tr><td>ポリプロピレン丸底チューブ、5 ml</td><td>ファルコン</td><td></td><td></td>352063</tr></tbody></table>

マウス胎児肝臓培養システムは、ターミナル赤血球の初期および後期段階での標的遺伝子の機能を分析する

Mouse Fetal Liver Culture System to Dissect Target Gene Functions at the Early and Late Stages of Terminal Erythropoiesis

赤血球生成が急速に形成単位赤血球コロニー（CFU-ES）を分周して、その後、コミット赤血球バースト形成単位（BFU-ES）で始まる動的なプロセスを伴う。 CFU-ESの後、細胞を形態学的に認識され、一般的には、端末赤芽球と呼ばれる。端末赤血球生成の研究のための課題の一つは、時系列的に遺伝子の機能を分析するための実験的アプローチの欠如である。このプロトコルでは、端末赤血球形成の初期及び後期段階での遺伝子機能を決定するためのユニークな戦略を記載している。このシステムでは、マウス胎児肝臓TER119（成熟赤血球細胞マーカー）負の赤芽球を精製し、目的の遺伝子のcDNAや小さなヘアピンRNA（shRNAを）の外因性発現で形質導入。細胞は、外因性cDNAまたはshRNAを可能にしながら、12時間それらの前駆段階を維持するためにエリスロポエチン（EPO）以外の成長因子を含む培地で培養し、その後発現させた。外因性遺伝物質がすでに発現させながら、細胞は、細胞分化および増殖を誘導するために12時間後のEpo培地に変更した。このプロトコルは、端末赤血球生成の初期段階で遺伝子機能の解析を容易にします。後期端末赤血球形成を研究するために、細胞を直ちに形質導入​​後のEpo培地中で培養した。このように、細胞は、既に形質導入​​された遺伝物質を発現した端末赤血球形成の後期に分化させた。私たちは、端末赤血球生成のさまざまな段階での詳細な遺伝子機能を理解する助けとなるこの戦略の一般的な適用を推奨します。

図1は、実験的な戦略の概要を説明します。プロトコルは、端末赤血球生成の初期および後期段階でのシグナル伝達分子の機能を標的とするための2つの独立した条件で構成されています。 TER119陰性胎児肝芽球は、E13.5マウス胎児から精製した。胎児肝臓赤血球系細胞の前および精製後のフローサイトメトリー分析により、精製が（ 図2Aおよび2B）効率的であったことを実証した。端末赤血球生成（ 図1の破線）の初期段階には、ウイルス形質導入後、細胞を12時間Epoを含まない培地（SCF培地）中で培養した。この期間に、細胞は形質導入された細胞で観察された有意なアポトーシス（GFP陽性）（ 図3）と最小限の分化（ 図2C）を示した。細胞は（EPO含有培地に移した後の図4を区別するために開始した直ちに形質導入（ 図1、実線及び図5）後のEpoを含む培地で培養...

私たちは、端末赤血球生成の初期および後期段階を解剖インビトロマウス胎児肝臓赤芽球培養系を提示。このシステムは、異なる発生段階における特定の遺伝子の機能解析を容易にします。

Erythropoiesis involves a dynamic process that begins with committed erythroid burst forming units (BFU-Es) followed by rapidly dividing erythroid colony ...

次の実験の全体的な目標は、in vitroマウス胎児肝臓培養システムを使用して、末端赤血球生成のさまざまな段階で遺伝子機能を解剖することです。これは、まず、胎生13.5妊娠マウスからのTER1 19ネガティブマウス胎児肝臓赤芽球を精製することによって達成され、第2のステップとして、精製された赤芽球に、目的遺伝子のCD NAまたはS-H-R-N-Aをコードするウイルスを形質導入して、遺伝子の機能の獲得または喪失をそれぞれ研究する。最後に、形質導入したTER one 19ネガティブ細胞を2つの異なる条件のいずれかで培養し、末端赤血球生成の初期段階と後期段階での遺伝子の機能を解剖します。最終的に、形質導入細胞の分化と核出の異なる動態は、フローサイトメトリー分析によって評価できます。したがって、この方法はマウスの心房症に関する洞察を提供することができます。また、リンパ、オーシス、筋症などの他のHESIのHEPOシステムにも適用できます。胎児の肝臓赤芽球を浄化するためには、安楽死させたE 13〜E 15の時限妊娠マウスの腹部を70%エタノールで消毒することから始まります。次に、解剖ハサミで腹部を開いて子宮を取り出し、子宮をPBSに入れます。次に、組織培養フードで、滅菌ツールを使用して胎児を解剖し、PBSに入れます。次に、1つの鉗子で一度に1人の胎児の体を保持します。ピンクの胎児の肝臓を別の鉗子で体からそっと引き離します。鉗子を使用して各肝臓から関連する線維性組織を洗浄し、肝臓を10%FBSを含む新鮮なPBSに入れ、組織を数回ピペッティングして肝臓を機械的に破壊し、得られた細胞懸濁液を40マイクロメートルの細胞ストレーナーでろ過します。細胞を800G、摂氏4度で5分間スピンダウンした後、ペレットを1ミリリットルのPBSおよびFBSに再懸濁します。TER one 19陰性赤芽球を精製するには、氷上のラットIgGで細胞をブロックします。15分後、ビオチン化抗TER one 19抗体を細胞懸濁液にさらに15分間加えます。次に、PBSおよびFBS Reeseで細胞を洗浄した後、細胞を1ミリリットルの新鮮なPBSとFBSに懸濁し、磁性粒子と結合した75マイクロリットルのストレプトアビジンで細胞をインキュベートします。10分後、PBSとFBSで総容量を2.5ミリリットルまで上げ、細胞懸濁液を5ミリリットルのポリプロピレン丸底チューブに移します。チューブを磁気細胞選別装置に挿入し、さらに10分間のインキュベーション後、別のインキュベーション後に、取り付けられていないTER119ネガティブ赤芽球を新しい5ミリリットルチューブに注ぎます。残留したTER119陽性細胞を除去するには、TER 19陽性赤芽球をスピンダウンします。FBSを含んでいるPBSの1ミリリットルの細胞を再懸濁し、精製さ

mouse-fetal-liver-culture-system-to-dissect-target-gene-functions-at

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

直接収穫したてのマウスの骨髄、脾臓や胎児の肝臓における分化段階特異的マウス赤血球前駆細胞と前駆体の同定と分子解析のためのフローサイトメトリー法。アッセイは、細胞表面マーカーCD71、TER119、およびセルサイズに依存しています。...

CD71/TER119フローサイトメトリーアッセイを用いてマウス赤血球前駆細胞の同定と解析

レンチウイルスを介したノックダウン中生体外で</emヒト造血幹細胞の>赤血球

この議定書は、赤芽球摘出プロセスの可視化を提供し、フローサイトメトリーマルチスペクトルイメージングフローによりオルソ赤芽球を除核の集団を同定する新規な方法を説明します。...

マルチスペクトルイメージングフローサイトメトリーによる除核イベントにおけるマウス赤芽球亜集団エンリッチの同定

分化胚性幹細胞(ESC)における時間的遺伝子発現の操作は、誘導性遺伝子システムを使用して達成することができます。しかし、これらの細胞株の作製には費用と時間がかかります。このプロトコルは、ES由来細胞の分化における導入遺伝子の迅速な発現と、その後の下流の造血分化の解析を実現します。...

マウス胚のレトロウイルス感染は、造血分化の解析のための細胞由来の胚様体幹細胞

ここで説明するプロトコルは、転写因子の最小セットの過剰発現によるマウス胚性線維芽細胞における造血プログラムの誘導を詳述しています。この技術は、造血、血液疾患、造血幹細胞移植の将来の研究のためのプラットフォームを提供するために、人間のシステムに変換される可能性があります。...

転写因子との再プログラミングマウス胚線維芽細胞造血プログラムを誘導するために

浸潤しているマクロファージは、循環前駆細胞から成体組織に継続的に動員されるが、常在マクロファージは発達中に組織を播種し、前駆細胞からのさらなる入力なしに維持される。常在マクロファージの前駆細胞は最近同定された。ここでは、常在性マクロファージ前駆細胞の遺伝子運命マッピングのための方法を提示する。...

フローサイトメトリーによるマウス胚における赤血球系前駆細胞およびその子孫の同定

ここで紹介は私達のプロトコルによる生産の赤芽球系前駆細胞 (投資事業組合) 転写因子駆動を用いたマウス アダルト繊維芽細胞からダイレクトリプログラミング系統...

リネージュの赤芽球系前駆細胞に成体マウス線維芽細胞のリプログラミングを直接します。

リボソームアフィニティ精製(TRAP)の翻訳により、細胞型特異的翻訳mRNAの迅速かつ効率的な単離が可能になります。ここでは、肝再集団とTRAPのマウスモデルにおける流体力学的尾静脈注射を組み合わせた方法を示し、再入発性肝細胞の発現プロファイルを調べる。...

マウス肝臓における細胞型特異的遺伝子発現プロファイリング

ここでは、初期バースト形成ユニット赤血球(BFU-e)およびコロニー形成ユニット赤血球(CFU-e)前駆細胞を新鮮なマウス骨髄および脾臓から直接前向きに単離するための新しいフローサイトメトリー法について説明します。単一細胞トランスクリプトームデータに基づいて開発されたこのプロトコルは、組織のすべての赤血球前駆細胞を高純度で分離した最初のプロトコルです。...

フローサイトメトリーによるマウス組織からのバースト形成ユニットおよびコロニー形成ユニット赤血球前駆細胞の同定と単離(英語)

赤血球生成のモデリングは、このプロセスにおけるアクターの生物学的意義を理解し、分化欠陥を緩和する可能性のある新しい治療アプローチを評価する貴重な機会を提供します。ここでは、ex...

ヒト赤血球生成の効率をin vitroおよびex vivoで評価するための包括的なパイプライン

学ぶマウス胎児肝臓培養システムを用いた終末赤血球形成の初期・後期段階における遺伝子機能解析法。TER119陰性細胞の精製とウイルス導入により、分化動態と核除去を評価する。

マウス胎児肝臓培養システムは、ターミナル赤血球の初期および後期段階での標的遺伝子の機能を分析する

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