2014年9月3日
この記事では、不連続スクロース勾配超遠心分離によってシナプス形質膜に関連するタンパク質の濃縮を詳しく説明します。シナプス後肥厚タンパク質のその後の調製も記載されている。タンパク質調製物は、ウェスタンブロットまたは2D DIGE分析に適している。
この手順の全体的な目標は、不連続なスクロース勾配を使用して脳組織の細胞内分画を実証し、シナプス膜とシナプス後の密度からタンパク質を濃縮することです。これは、まずパワードホモジナイザーで脳組織を均質化することによって達成されます。次に、粗膜タンパク質抽出物を調製するための一連の遠心分離ステップです。
次に、メンブレン抽出物を不連続なショ糖勾配上に重ねて、超遠心分離を行います。最後のステップは、グラジエントからタンパク質を収集することです。最終的に、ウェスタンブロット解析により、シナプスタンパク質レベルの変化を示すことができます。
これは、40年以上にわたって神経科学者によって使用されてきた確立された技術です。私たちの研究室では、さまざまな神経伝達物質系を乱したときにシナプスのタンパク質組成がどのように変化するかを理解するためにこれを使用しています。この手法が他の方法(呼び出しごとの勾配や連続的なショ糖勾配など)と比較した場合の主な利点は、不連続なショ糖勾配を手作業で簡単に構築できることです。
このプロトコルは、モーター駆動のガラステフロンホモジナイザーを利用し、常にサンプル間の乳棒を交換し、すすぎ、乾燥させます。ホモジナイザーはまず、解剖した組織を 4 ミリリットルの 0.32 モル HEPA 緩衝ショ糖溶液を含む 13 ミリリットルのチューブにロードします。次に、ティッシュを清潔なガラスのホモジナイザーに移します。
モーターを900RPMに設定し、4グラム未満の組織を使用して30秒以上12回のストロークでサンプルを均質化することで、サンプルをチューブに戻し、タンパク質分析のために100マイクロリットルのアリコートをマイナス80°Cで保存します。次に、ホモジネートを900Gで10分間紡糸して核物質を分離します。摂氏4度で、上清を新しい15ミリリットルのチューブに移します。
上清には粗膜画分が含まれています。今、粗いシナプトソーム遠心分離機、4°Cで15分間10, 000 Gで上清を濃縮するために、上清を除去します。ペレットには、粗シナプトソーム画分Resusが含まれています。
それを1ミリリットルの0.32モルスクロース溶液に懸濁します。その後、懸濁液に溶液の別の3ミリリットルで、15分間粗画分を遠心分離機に 10, 000 Gで摂氏4度で、上清を除去します。次に、ペレットをすばやくシラミにし、ペレットをミリリットルの純水に再懸濁します。
次に、さらに3ミリリットルの水を急速に加えます。これをホモジナイザーに移します。手で3ストロークを適用し、13ミリリットルのチューブに戻します。
1モルHEAを16マイクロリットル添加してサンプルを4ミリモルHEAに素早く戻し、反転して混合します。次に、サンプルを摂氏4度のローテーターに30分間置きます。サンプルの溶解を確実に行うには、Lysed P two primeフラクションをペレット化して分画を終了します。
摂氏4度で20分間25, 000Gでスピンダウンし、上清を取り除き、ペレットをミリリットルのショ糖溶液に再懸濁します。これには、濃縮されたシナップエピソーム膜が含まれています。まず、バッファーを事前に測定して、不連続なショ糖勾配を作成します。
次のように3本のチューブをロードし、1本には正確に3.5ミリリットルの1.2モルヒープ緩衝ショ糖溶液を入れます。もう1つはちょうど3ミリリットルの1.0モル溶液で、3番目は3ミリリットルの0.8モル溶液です。次に、ガラス製のペスターピペットを使用して、1.2モルのスクロース溶液を12ミリリットルのポリマー超遠心チューブに移します。
新しいピペットで、1.0モル溶液を1.2モル溶液に慎重に重ねます。1.2モル溶液を乱したり、ピペットで気泡を導入したりしないでください。同じ手法を使用して、0.8モル溶液を上に重ねます。
注意してください。ベンチボルテックスやマイクロ遠心分離機からの小さな振動は、グラジエントの完全性を乱すのに十分です。勾配を慎重かつ効率的に構築することが重要です。
時間がかかりすぎたり、勾配が振動にさらされたりすると、後のステップでシナプス膜を回復できなくなります。次に、別の牧師ピペットを使用して、準備された勾配の上に濃縮されたシナップエピソーム膜画分を重ねます。超遠心分離機の勾配をスイングバケットローターで正確にバランスします。
次に、摂氏 4 度で 150 、 000 G で 2 時間スピンダウンします。遠心分離後にバケツからグラジエントを取り外すときは、ショ糖溶液の明確なバンドがあるはずですので、十分に注意してください。各界面にタンパク質画分とペレットがある場合、画分は拡散してはいけません。
18ゲージの針と1ミリリットルの注射器を使用して、1.2モルの界面の最下部に穴を開け、シナプス原形質膜を含むタンパク質の白いバンドを引き出します。このレイヤーのボリュームを記録します。層を厚さ3.5ミリリットルの超遠心チューブに移します。
正確に2.5容量の4ミリモルHEAを追加します。次に、固定角度ローターで0.32モルHEAs緩衝ショ糖溶液を充填したバランサーチューブを調製し、サンプルを200,000Gで4°Cで30分間超遠心分離します。その後、Sennaを廃棄し、シナプス原形質膜ペレットを再懸濁します。
300マイクロリットルの50ミリモルHEAs2ミリモルEDTA溶液。シナプス後密度分画またはPSD分画は、同じ技術をさらに使用することにより収集できるようになりました。手順は、テキストプロトコルで明確に概説されています。
ウェスタンブロットは、全タンパク質、シナプス原形質膜、および最初のシナプス後密度タンパク質画分を用いて行いました。PSD画分は1回の洗剤処理のみを受け、組織はマウス線条体からのものでした。ドーパミントランスポーターのようなシナプス前タンパク質は、SPM画分で濃縮されますが、PSD濃縮のためのその後の界面活性剤ステップで排除されます。
この手順を試行する際は、すべてのサンプルを氷上に保管し、この手順に従ってプロテアーゼ阻害剤とホスファターゼ阻害剤を含めることを忘れないでください。ウェスタン血液分析や二次元ゲル電気泳動などの他の方法も実施できます。その後、薬物治療がシナプスの受容体レベルにどのように影響するかなどの質問に答えることができます。
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本記事では、不連続ショ糖密度勾配超遠心法によるシナプス形質膜関連タンパク質の濃縮について詳述します。この手順では、脳組織の細胞分画法を用いて、シナプス膜およびポストシナプス密度のタンパク質を濃縮する方法を示します。
シナプス蛋白質の定量化により、分子レベルの変化と機能的な表現型を関連付けることで、中枢神経系(CNS)ターゲットのバリデーションにおけるメカニズム的なリスク軽減が可能になります。この細胞内分画法は、疾患に関連するシナプスコンパートメントを単離することにより、初期探索段階における予測の信頼性を高めます。また、前臨床モデルにおいて、ターゲットへの結合(ターゲットエンゲージメント)およびパスウェイの調節を評価するための、疾患に関連した系を提供します。
本手法は、定量的なシナプスタンパク質データを提供することにより、ターゲット仮説の検証からリード化合物の同定、そして前臨床検証に至る創薬の連続的なプロセスへと統合されます。