November 9th, 2014
歯科用複合材料の生体適合性の最も研究された側面は、蛍光シグナルの定量化と組み合わせたそれらの細胞毒性3D CLSMタイムラプスイメージングは、時間をかけて細胞の運命の敏感な評価を可能にする。この方法を利用することは歯科用複合材料の細胞適合性を評価するための効率的なツールである可能性があります。
この手順の全体的な目標は、3D共焦点レーザー走査型顕微鏡をタイムラプスイメージングに使用して、歯科用複合材料のin vitro生体適合性を定性的および定量的に評価することです。これは、最初に2番目のステップで未硬化の歯科用複合材料の球状サンプルを採取することによって達成されます。ヒト歯肉線維芽細胞は、これらの複合抽出物の存在下または非存在下で培養され、その後、細胞に生死染色で標識されます。
その後、細胞培養のマップ画像が生成され、対象領域のオーバーレイ画像が作成されます。最終的には、試験した複合材料の存在下または非存在下で発生する細胞挙動のリアルタイムの違いを、画像で観察された緑色または赤色の蛍光シグナルの変化に応じて監視できます。この手法が既存の方法と比較した場合の主な利点は、細胞構造に変化を生じさせることなく、生細胞をリアルタイムでモニタリングできることです。
細胞染色後やタイムラプス観察前の固定や乾燥のステップは必要ありません。複合抽出物を調製するには、半径2mmの特注ホルダーを使用して、未硬化の歯科用複合材料の球状サンプルを形成することから始めます。サンプルを1ミリリットルの培地が入った6ウェルプレートの個々のウェルに移し、一部のウェルが培地のみのままで制御細胞培養になるように注意し、サンプルから0.5ミリメートル以内に1070ミリワットセンチメートル二乗の強度のLEDランプを配置します。
サンプルを40秒間硬化させて、歯と手入れされていない歯科用複合材料との一時的な接触をシミュレートし、次に複合試料を摂氏37度と二酸化炭素5%の加湿インキュベーターで24時間インキュベートします。培地は3日ごとに、継代細胞は5日ごとに交換します。次に、培養が同時流暢になったら、細胞を回収し、Gの90倍、摂氏37度で5分間スピンダウンします。
ペレットを培地に再懸濁し、細胞をカウントした後、細胞懸濁液を10リットルあたり10の2.5倍の細胞密度で細胞懸濁液をチャンバースライドシステムで1ミリリットルあたり4番目の細胞に播種し、5%二酸化炭素雰囲気で摂氏37度で一晩。翌朝、チャンバースライドの2つのウェルの培地を試験した複合抽出物1ミリリットルと交換し、スライドをインキュベーターに戻し、共焦点で細胞をイメージングします。タイムラプスイメージング。
まず、共培養およびコントロールした複合細胞を、製造元の指示に従って真核細胞の生死細胞毒性染色液で標識します。染色の 15 分後、細胞培養条件下でチャンバースライドを暗所共焦点統合チャンバーに置き、473 ナノメートルと 559 ナノメートルのレーザーを温めます。次に、新開発のスペクトルを持つ検出器を用いて、473ナノメートルレーザーのイメージング条件を自動設定します。
フレーミング機能とズーム機能を使用して対象エリアを選択し、観測モードを選択します。タイムラプスザックやマルチエリアなど、必要に応じて最大5種類の観察モードを選択し、目的の画像が取得されたら、10倍対物レンズの下で473ナノメートルレーザーで5つのマップ画像を迅速に取得します。559ナノメートルレーザーに切り替えて、先ほど示したように、2番目の蛍光灯で細胞の画像をキャプチャします。
または、X 60ライブスクリーン上の選択したポイントを使用して蛍光画像と光コントラスト画像を重ね合わせ、ライブ画像ストアを観察します。信号解析用のオリンパス画像形式のマップ画像と、最大投影画像はピクセルあたり24ビットです。次に、TIFFファイルはさまざまな解析ツールを使用して、シグナルの強度プロファイルと2つの蛍光チャンネル間の強度比を測定します。
最後に、適切なソフトウェアを使用して、2つのグループ間の蛍光細胞シグナル伝達の違いを分析します。これらのマップ画像では、培地単独または複合抽出物に曝露された生TED染色細胞の生存率に差は見られませんでした。ここで、対照細胞の最大投影画像は、観察されたように、最初の15分以内および5時間後のタイムラプス期間の終了時に細胞の拡大された運命を示しており、インキュベーション期間中の対照細胞内の蛍光に有意な変動はなかった。
ELS超低収縮ばく露細胞は、対照細胞と同様の紡錘体形態を想定していましたが、タイムラプス期間の終わりには緑色蛍光シグナルがわずかに減少し、赤色蛍光がわずかに増加しました。染色された細胞の強度プロファイルは、これらのグラフに示されており、カルシウム内皮ホモダイマー1の蛍光発光強度が、対照細胞と複合ばく露細胞で1時間間隔で最大5時間測定されました。2つのカルチャー間でシグナル伝達に有意差は観察されませんでした。
コントロール細胞と曝露した複合細胞の生存率を表に示します。試験した複合材料の存在下では、生細胞の割合は、接触の1時間後、5時間後に100%から93.9%にわずかに減少することがわかった。複合材料の非細胞毒性にもかかわらず、試験した複合ELS、超低収縮、およびネガティブコントロール細胞培養との間には、細胞生存率の有意差が観察されました。
現在のデータは、共焦点タイムラプスイメージングの使用を、その開発後の歯科用複合材料の接触におけるゲン線維芽細胞の挙動を評価するための正確で感度の高い方法として強調しています。この方法は、毒物学の分野の研究者が歯科材料、医薬品、化学物質、およびその他の医療機器の細胞毒性とリスク評価を調査するための私的な方法です。
この研究では、3D共焦点レーザー走査顕微鏡法を用いたタイムラプスイメージングにより、歯科用複合材料の生体適合性を評価します。この方法により、複合材料の抽出物が存在する状態で細胞の挙動をリアルタイムでモニタリングでき、細胞毒性に関する洞察が得られます。
Confocal time-lapse imaging enables high-resolution, real-time assessment of cytocompatibility for dental composites, supporting early de-risking of material candidates. This approach provides quantitative viability data critical for portfolio triage and predictive confidence in preclinical material selection. Integrating sensitive live/dead cell analysis at the discovery stage reduces late-stage biological risk and informs go/no-go decisions for dental biomaterial development.
This confocal imaging workflow positions cytocompatibility evaluation at the interface of early discovery and preclinical material selection, enabling risk-adjusted advancement of dental composites.