Name: エレクトロポひよこ胚脊髄における遺伝子発現差のRNA-配列解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 13 s
Description: 学ぶエレクトロポレーション後のひよこ胚脊髄の全トランスクリプトーム解析法。RNA抽出、ライブラリ調製、ハイスループットシーケンスを用いて遺伝子発現レベルを評価し、発生神経科学の研究に有用なプロトコルを提供します。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

CYIYはFAPESP(2012/14421-5)によって支援されており、FMVはFAPESP(2009/53695-0)からのフェローシップによってサポートされています。この研究で使用したRNA-Seqライブラリの準備とシーケンシングを行ったカリフォルニア大学デービス校のDNA Technologies Core、ハイスループットシーケンシングデータ解析ツールのための優れた無料のインターフェースを提供してくれたGalaxyチーム、そして彼女の研究室スペースでの撮影を許可してくれたMarianne Bronner博士に感謝します。

1.エレクトロポ卵内 HH12-13鶏胚の神経管への関心のコンストラクトトランスフェクションの満足できるレベルを有する個体の迅速な同定を可能にするために、好ましくはシストロン性転写物に、蛍光レポーターを使用するか、またはインターカレーウイルス2Aペプチド11で目的のタンパク質に融合した。注：この段階のための典型的なインキュベーション時間は37.8℃で、周りの48時間である。 <ol><li> ×1 1/2針18のGに結合された注射器でアルブミンの3ミリリットルを取り除いた後、卵に小さなウィンドウを開きます。胚の可視化を強化するために、胚1-4の下の滅菌リンゲル液中で1:50に希釈インド少量のインクを噴射する。 </li><li>無菌のリンゲル液で胚をカバーした後、それが満杯になるまで神経管の後端を通しての2.5μg/μlのDNAを含む10mMのTris-HCl、pHが8.2と0.1％の食品色素（F、D＆C）溶液を注入後脳領域まで。 、腹部に沿って4ミリメートル1離れた位置の白金電極（直径0.5mm）をエレクトロポレーションし、それら4の間に100ミリ秒の間隔で5〜50ミリ秒のパルス及び20 Vを送達する。 </li><li>エレクトロポレーション後、彼らはステージHH23に達するまでより48時間操作された胚をインキュベートし、蛍光実体顕微鏡下に横腹領域において、トランスフェクションの高いレベルを提示する個人を識別する。 注：エレクトロポレーション後のインキュベーションの持続時間は、実験の目的に依存します。電気穿孔プラスミドは2時間2の後に有意な発現レベルを生成することができる。関心が早期発症遺伝子である場合にはこのように、電気穿孔後の潜伏期間を短縮することができる。 </li></ol> 2.収穫が正常胚をトランスフェクトし、エレクトロポ脊髄の半分を解剖注：この手順は、それぞれ10胚および利回りのために2〜3時間から続く1胚あたり-2μgの全RNA。神経管の解剖は、微細な動きを必要とし、いくつかの練習セッションは、実験試料に適用する前に必要になることがあります。 <ol><li>のRNase汚染除去溶液で、または4時間12 150℃で焼成することにより、金属解剖ツールを除染し、DEPC処理PBSを準備します。唯一の新しい認定RNaseフリープラスチック製品を使用してください。 NOTE：収穫した後、それは切開中のRNaseの混入を防ぐために、標準治療に従うことが重要である。 </li><li>細かい解剖ハサミと篩い分けコレクションスプーンを使って胚を収穫。 100ミリメートルペトリ皿に冷たいDEPC処理PBSに胚を保つ。 </li><li>細かいピンセットで、（前部肢芽と後肢芽の前方限界の後方限界の間）全体腹部を切り出し、冷たいDEPC処理PBSを含む新しい皿にこのセクションを転送します。 </li><li>異なる3で穿孔する2本の細いガラス針を使用して、神経管と近軸中胚葉の間の胚の各背外側側に指摘している。 </li><li>中央穿孔2枚のガラス針を導入し、ゆっくりと神経管前後軸に沿ってそれらのいずれかを離れて移動。最初の動きが到達していなかった穿孔のためにこれを繰り返します。細かいピンセットで取り外した近軸中胚葉を削除します。 </li><li> 、横向きに胚を回し神経管と脊索の間ピンセットの先端を挿入し、二つの構造を分離する前後軸に沿って反対方向でそれらをスライドさせます。 注：これは、まだ神経管に取り付けられた中胚葉のほとんどを除去する必要があります。 </li><li>必要であれば、軽くピンセットの別のペアで神経管を保持しながら、ピンセットで引っ張ることにより、付着したままで中胚葉組織のいずれかの大きな部分を削除します。終了したら、そっと用いた冷DEPC処理PBSを含む別の皿に神経管を転送RNaseフリーのガラスパスツールピペット手動ピペットポンプに結合され、すべての管を解剖するまで氷上に保つ。 </li><li> 2半分に神経管を分割。このために、内腔にピンセットの閉じたペアの鋭い先端を挿入し、それを介してピンセットを移動することにより、屋根板を開く。この後、ピンセットの先端で床板を切断して半分を分ける。 </li><li>替えの氷冷DEPC処理PBSで満たし1.5mlチューブに蛍光解剖スコープと転送の下で非エレクトロポ半分からエレクトロポレーション。必要であれば、プラスチック壁に取り付けられた任意の組織を解放するために、チューブの沈降を促進するために穏やかにマイクロチューブをフリック。 </li><li> 3秒間100×gでスピンし、1mlのマイクロピペットで非常にゆっくりと、できるだけ多くのPBSを取り除く。どんな胚性物質がピペットチップに吸引されるかどうかを監視するためにマイクロチューブを通して輝く光源を見ながら、これを行う。これが発生した場合には、ゆっくりと放電しcentrifugaを繰り返する。 </li><li>神経管の半分あたりのRNA抽出のための溶解液70μlのを追加し、内容物を混合するチューブをフリック。 5分間激しくボルテックス、室温でインキュベートする。 5分のインキュベーションを繰り返し、さらに2回ボルテックスする。 -80℃で保存してください。 </li><li>次のステップのための十分な収量を確保するために、サンプルごとに少なくとも8神経管の半分を収集します。いくつかのエレクトロポレーション/切開セッションは神経管の十分な数を蓄積する必要がある場合に小さいサンプルをプールする。各条件について、重複や三連のために十分なサンプルを格納。 </li></ol> 3. R​​NAを精製し、イルミナシーケンシング用のライブラリを準備<ol><li> -80℃の貯蔵からのサンプルを取り出し、15〜30分間氷上に置きます。完了するまで室温で解凍を再開します。 </li><li>渦ウェルと5分間室温で残す。 1分間15000×gで再びボルテックスと遠心機は、不溶性物質をペレット化する。 </li><li>上清を新しいチューブに移し、総RNA単離キット取扱説明書に従ってRNA抽出に進む。濃度を高めるために推奨される最小ボリュームで溶出する。 注：クリーンアップ後のDNase処理はRNA-配列のデータセット中のゲノムDNA配列の潜在的な汚染を回避するために推奨される。 </li><li>内容物を混合し、品質管理分析のための5μlを除去するためにチューブをフリック。ライブラリの準備まで-80℃で残ったサンプルを保存する。これらの試料は、RNAの分解を避けるために一回だけ解凍されるべきである。 </li><li> RNA 6000ナノキットを使用して、バイオアナライザー機器で精製RNAを実行する。 RIN値は続行するには、少なくとも7以上でなければならない。 </li><li>イルミナ互換性RNA-のSeqライブラリ調製キットを使用してライブラリを生成し、単一の読み取りは100bpを生成するように設定HiSeq器具の1レーンに4図書館まで多重化する。可能な場合は、潜在的な技術的なアーティファクトを最小化するために、同じランですべてのサンプルが含まれています。 注：これは、最大5000万Rが得られるはずですほとんどの遺伝子13のカバレッジを得るために十分以上のものですサンプルあたりEADS、。 </li></ol> 4.ギャラクシー公開サーバ10においてRNA-配列データセットを比較してください。 NOTE：Serverストレージスペースが限られており、多数の試料を比較する実験では、フィルタリングステップで生成された中間ファイルの削除を要求することができる。 <ol><li> （ギャラクシー公開サーバにユーザーアカウントを作成し<a href="https://usegalaxy.org/">https://usegalaxy.org</a> ）とFTPはFASTQ形式でイルミナデータセットをアップロードします。 </li><li> NGS下FastqGroomer 14ツールでアップロードされたファイルを準備します。QCと操作メニュー 。品質スコアが既にのPhred + 33（サンガー）でエンコードされている場合、単純に各データセットの属性の下fastqsangerにファイルの種類を変更することで、このステップをスキップします。 </li><li> NGSの下FastQCツールを使用して各データセットの一般的な品質を分析：QCと操作私をNU。 注：これらの読み取りの端部をトリミングするために使用されるパラメータの推定値を提供するように特別な注意が、塩基配列の質ごとおよび塩基配列の含有量の結果のグラフィックスに与えられるべきである。 </li><li> QCと操作メニュー：トリムがNGSの下にツールFASTQ品質トリマー 14を用いて低品質データで終わる3 &#39;を破棄するように読み取ります。唯一の3 &#39;が20以下の品質スコアのために終了処理するためのツールを設定します。 </li><li> クリップツール（使用して読み取ってから、アダプター配列を除去<a href="http://hannonlab.cshl.edu/fastx_toolkit/">http://hannonlab.cshl.edu/fastx_toolkit/を</a> QCと操作メニュー：NGSの下）。左未満45 bpの、入力に使用されるアダプタのシーケンスで読み込んで破棄し、両方のクリッピングおよび非クリッピング配列を含むよう出力を選択するためのツールを設定してください。さらに、ほとんどの低品質の塩基は既に最後の工程で除去されたため、未知の塩基とのシーケンスを破棄しないように選ぶ。 </lI&gt; <li>ツールトリム配列 （使用して<a href="http://hannonlab.cshl.edu/fastx_toolkit/">http://hannonlab.cshl.edu/fastx_toolkit/</a> NGS下）：FastQCによって検出された5 &#39;配列バイアス（通常は10）を除去するために読み込んでのQCと操作メニューを、最初の拠点をトリミング。 注：この時点で、それは再びFastQCを実行し、データセットの品質が向上したかどうかを判断するために以前の分析と比較することをお勧めします。 </li><li>ダウンロードして、イルミナiGenomesからUCSCゲノムブラウザの最新のニワトリゲノムアセンブリをアンパック（ <a href="http://support.illumina.com/sequencing/sequencing_software/igenome.ilmn">http://support.illumina.com/sequencing/sequencing_software/igenome.ilmn</a> ）および全ゲノムFASTA形式ファイルと遺伝子注釈GTF形式のファイルをアップロードする銀河の歴史にGETデータ]メニューの下にツールのアップロードファイルを使用して。 </li><li>マップはTopHat2 15歳未満のアライナーを使用したニワトリゲノムに各サンプルについて読み取っNGS：RNA分析メニュー 。履歴からゲノムを使用することを選択し（ ステップ4.7でアップロードFASTAファイルを選択します）。 </li><li> RNA分析メニュー：NGSの下カフス 16を使用して、各サンプルの予測トランスクリプトームを構築します。 （歴史、 ステップ4.7からFASTAファイルから） バイアス補正を実行し、 正しいマルチリードを使用して、ガイドとして参照アノテーションを使用するかを選択します（ ステップ4.7でアップロードGTFファイルを選択します）とオプションをオンにしてください。 </li><li> RNA分析メニュー：NGSの下Cuffmerge 16を使用して、すべてのサンプルの予測トランスクリプトームをマージします。 （歴史、ステップ4.7からFASTAファイルから）とシーケンスデータ（ ステップ4.7からGTFファイル）参照アノテーションを使用するかを選択します。 </li><li> RNA分析メニュー：NGSの下Cuffdiff 16を用いて、各サンプルについてTopHat2によって生成されたBAMファイルを比較。分野では転写物は私を選択Cuffmergeによって生成されたトランスクリプトームをrgedと（歴史、 ステップ4.7からFASTAファイルから） バイアス補正を実行し、 正しいマルチリードを使用して、オプションをオンにします。 </li><li>ソート差動式はフィルターの下のツールを使って数値的にソート列13（q値）で昇順のテーブルをテストして、メニューをソートします 。 注：実験条件の間に有意な差発現を示す遺伝子/転写物は最も低いQ値を紹介します。 </li><li>カバレッジグラフで視覚的に結果を確認するには、最初のツールはBEDToolsメニューの下ゲノムカバレッジ 17 のBedGraphを作成し使用してbedGraph形式にBAMファイルを変換する。報道せずに地域の報告を無効にするには、明確な区間としてスプライスされたエントリを治療し、比較されているすべてのデータセットのためのシーケンシングの深さを正規化係数によってカバレッジを拡大することを選択した。 </li><li>使用して大物形式に結果のbedGraphファイルを変換するツールウィッグ/ BedGraph·ツー·大物 （ <a href="http://www.genome.ucsc.edu/">http://www.genome.ucsc.edu/</a> ） 変換フォーマットメニューの下。 UCSCゲノムブラウザ（でカスタムトラックとして大物ファイルをアップロード<a href="http://www.genome.ucsc.edu/">http://www.genome.ucsc.edu/</a> galGal4アセンブリ用）とデータセット内のカバレッジを可視化するために目的の遺伝子を検索します。 </li></ol>

<ol><li>Itasaki, N., Bel-Vialar, S., Krumlauf, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Shocking%27+developments+in+chick+embryology%3A+electroporation+and+in+ovo+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Shocking' developments in chick embryology: electroporation and in ovo gene expression.</a> Nat. Cell Biol. 1 (8), 207-20 (1999).</li>
<li>Krull, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+primer+on+using+in+ovo+electroporation+to+analyze+gene+function%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">A primer on using in ovo electroporation to analyze gene function.</a> Dev. Dyn. 229 (3), 433-439 (2004).</li>
<li>Blank, M. C., Chizhikov, V., Millen, K. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+ovo+electroporations+of+HH+stage+10+chicken+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">In ovo electroporations of HH stage 10 chicken embryos.</a> J. Vis. Exp. (9), 10-3791 (2007).</li>
<li>Sauka-Spengler, T., Barembaum, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gain-+and+loss-of-function+approaches+in+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Gain- and loss-of-function approaches in the chick embryo.</a> Methods Cell Biol. 87, 237-256 (2008).</li>
<li>Ghadge, G. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Truncated+wild-type+SOD1+and+FALS-linked+mutant+SOD1+cause+neural+cell+death+in+the+chick+embryo+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol.+Dis%22%5BJournal%5D)">Truncated wild-type SOD1 and FALS-linked mutant SOD1 cause neural cell death in the chick embryo spinal cord.</a> Neurobiol. Dis. 21 (1), 205-20 (2006).</li>
<li>Megason, S. G., McMahon, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+mitogen+gradient+of+dorsal+midline+Wnts+organizes+growth+in+the+CNS%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">A mitogen gradient of dorsal midline Wnts organizes growth in the CNS.</a> Development. 129 (9), 2087-2098 Forthcoming.</li>
<li>Swartz, M., Eberhart, J., Mastick, G. S., Krull, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sparking+new+frontiers%3A+using+in+vivo+electroporation+for+genetic+manipulations%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Sparking new frontiers: using in vivo electroporation for genetic manipulations.</a> Dev. Biol. 233 (1), 13-21 (2001).</li>
<li>Cloonan, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cell+transcriptome+profiling+via+massive-scale+mRNA+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Stem cell transcriptome profiling via massive-scale mRNA sequencing.</a> Nat. Methods. 5 (7), 613-619 (2008).</li>
<li>Mortazavi, A., Williams, B. A., McCue, K., Schaeffer, L., Wold, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+and+quantifying+mammalian+transcriptomes+by+RNA-Seq%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Mapping and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-Seq.</a> Nat. Methods. 5 (7), 621-628 (2008).</li>
<li>Goecks, J., Nekrutenko, A., Taylor, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Galaxy+Team.+Galaxy%3A+a+comprehensive+approach+for+supporting+accessible%2C+reproducible%2C+and+transparent+computational+research+in+the+life+sciences%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Galaxy Team. Galaxy: a comprehensive approach for supporting accessible, reproducible, and transparent computational research in the life sciences.</a> Genome Biol. 11 (8), 86(2010).</li>
<li>Trichas, G., Begbie, J., Srinivas, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+the+viral+2A+peptide+for+bicistronic+expression+in+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Biol%22%5BJournal%5D)">Use of the viral 2A peptide for bicistronic expression in transgenic mice.</a> BMC Biol. 6, 40(2008).</li>
<li>Maniatis, T., Fritsch, E. F., Sambrook, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aManiatis%2C+T+%22Molecular+cloning.+A+laboratory+manual%22">Molecular cloning. A laboratory manual</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring Harbor, NY. (1982).</li>
<li>Wang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+coverage+and+depth+of+transcriptome+by+RNA-Seq+in+chickens%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the coverage and depth of transcriptome by RNA-Seq in chickens.</a> BMC Bioinformatics. 12, 10-1186 (2011).</li>
<li>Blankenberg, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Manipulation+of+FASTQ+data+with+Galaxy%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Manipulation of FASTQ data with Galaxy.</a> Bioinformatics. 26 (14), 1783-1785 (2010).</li>
<li>Kim, D., Pertea, G., Trapnell, C., Pimentel, H., Kelley, R., Salzberg, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TopHat2%3A+accurate+alignment+of+transcriptomes+in+the+presence+of+insertions%2C+deletions+and+gene+fusions%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">TopHat2: accurate alignment of transcriptomes in the presence of insertions, deletions and gene fusions.</a> Genome Biol. 14 (4), 36(2013).</li>
<li>Trapnell, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcript+assembly+and+quantification+by+RNA-Seq+reveals+unannotated+transcripts+and+isoform+switching+during+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Transcript assembly and quantification by RNA-Seq reveals unannotated transcripts and isoform switching during cell differentiation.</a> Nat Biotechnol. 28 (5), 511-515 (2010).</li>
<li>Quinlan, A. R., Hall, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((BEDTools%3A+a+flexible+suite+of+utilities+for+comparing+genomic+features%5BTitle%5D)+AND+%22Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">BEDTools: a flexible suite of utilities for comparing genomic features.</a> Bioinformatics. 26 (6), 841-842 (2010).</li>
<li>Vieceli, F. M., Simões-Costa, M., Turri, J. A., Kanno, T., Bronner, M., Yan, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+transcription+factor+chicken+Scratch2+is+expressed+in+a+subset+of+early+postmitotic+neural+progenitors%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Expr.+Patterns%22%5BJournal%5D)">The transcription factor chicken Scratch2 is expressed in a subset of early postmitotic neural progenitors.</a> Gene Expr. Patterns. 13 (5-6), 189-196 (2013).</li>
<li>Chesnutt, C., Niswander, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasmid-based+short-hairpin+RNA+interference+in+the+chicken+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Genesis%22%5BJournal%5D)">Plasmid-based short-hairpin RNA interference in the chicken embryo.</a> Genesis. 39 (2), 73-78 (2004).</li>
<li>Katahira, T., Nakamura, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+silencing+in+chick+embryos+with+a+vector-based+small+interfering+RNA+system%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Growth.+Differ%22%5BJournal%5D)">Gene silencing in chick embryos with a vector-based small interfering RNA system.</a> Dev. Growth. Differ. 45 (4), 361-367 (2003).</li>
<li>Rao, M., Baraban, J. H., Rajaii, F., Sockanathan, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+comparative+study+of+RNAi+methodologies+by+in+ovo+electroporation+in+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">In vivo comparative study of RNAi methodologies by in ovo electroporation in the chick embryo.</a> Dev. Dyn. 231 (3), 592-600 (2004).</li>
<li>Lu, Y., Lin, C., Wang, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PiggyBac+transgenic+strategies+in+the+developing+chicken+spinal+cord%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">PiggyBac transgenic strategies in the developing chicken spinal cord.</a> Nucleic Acids Res. 37 (21), 141(2009).</li>
<li>Simões-Costa, M., Tan-Cabugao, J., Antoshechkin, I., Sauka-Spengler, T., Bronner, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptome+analysis+reveals+novel+players+in+the+cranial+neural+crest+gene+regulatory+network%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Res%22%5BJournal%5D)">Transcriptome analysis reveals novel players in the cranial neural crest gene regulatory network.</a> Genome Res. 24 (2), 281-290 (2014).</li>
<li>Trapnell, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+gene+and+transcript+expression+analysis+of+RNA-seq+experiments+with+TopHat+and+Cufflinks%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Differential gene and transcript expression analysis of RNA-seq experiments with TopHat and Cufflinks.</a> Nat. Protoc. 7 (3), 562-578 (2012).</li>
</ol>

著者らは開示するものは何もない。

ここでは、鶏脊髄のエレクトロポレーション後の効果を分析するためのガイドラインを提供する。 DNAベクターのエレクトロポレーションは、より頻繁に目的の遺伝子を過剰発現するために使用されるが、一方はまた、遺伝子機能のノックダウン条件19-21を生成するために、siRNAのためのドミナントネガティブ、quimericタンパク質または前駆体をコードする構築物を使用することができる。実際、gain-及び機能喪失型分析の両方から得られるトランスクリプトームプロファイルの比較は、より特異的な効果を発見する可能性を有する、示差的に、各条件での反対の方法で発現する遺伝子を指摘することができる。 いずれかの方法は、RNA抽出を下流適用される場合、RNA-配列ライブラリーの合成は、出発物質の最小初期量を必要とする。このプロトコルで、8胚は約10μgの全RNAのをもたらすのに十分であるべきである。十分な作業濃度を損なうことなく、個人の小さい番号から始まることはおそらくあり小さい体積の最終希釈を可能にRNA抽出システムの使用で可能。 <p class="jove_content...

OVOエレクトロポレーションで部分的にDNAが1-5を構築して、in vivoでの胚の構造をトランスフェクトするための迅速かつ安価な方法を表しているので、ライブ生物に関する遺伝学的研究は、頻繁にモデルとしてニワトリ胚を使用しています。このようpCIG 6または7のPMEとして目的の遺伝子と一緒に蛍光レポーターを含むもの転写物をコードするシストロン性発現ベクターは、下流の分析のための胚を処理する前に、立体顕微鏡下で所望の領域でのトランスフェクションの質の迅速な検証を可能にする。 DNA配列決定における最近の進歩により、これは、RNA配列8,9を用いて、RNAサンプルからデジタル全トランスクリプトーム発現プロファイルを得ることが可能である。したがって、代わりにそのようなin situハイブリダイゼーション 、免疫組織化学および定量PCR、cDNAライブラリーの調製のためのように並列に少数の遺伝子産物の解析を可能にする時間のかかる方法のハイスループットシークエンシングは、全トランスクリプトームの情報を提供することができる。一つ一つの遺伝子の発現レベルに対する影響の実験的観察は、次に使用される構築物によって改変経路に対する強力な洞察を提供してもよい。使用される生物ゲノムアセンブリが​​利用可能である場合、これは、このように、ニワトリ胚を再度適切なモデルであり、特に容易である。 ユーザが信頼できるゲノム配列決定センターへのアクセス権がある場合、主な問題は、高品質のRNAサンプルを得ることである。この研究は、RNA-配列に適したトランスフェクトされた神経管、ならびに得られたデータセットのインシリコ分析における下流の工程からのRNAサンプルを得るための方法を示す。 48時間のインキュベーションに続いてHH12-13でエレクトロポレーション後、トランスフェトランク脊髄の半分は、リボヌクレアーゼを含まない条件下で解剖直後に溶解し、さらにRNA精製およびライブラリpreparatまで超低凍結による分解から保護されていたイオン。 ギャラクシー公開サーバ10は、ハイスループット配列決定データを分析するための空きリソースへのアクセスを提供する。登録ユーザーのために提供スペースの量は、このようにローカルな計算インフラの必要性を排除し、小規模な実験のために十分である。 RNA-配列データ解析、フィルタリング、整列および遺伝子発現の定量/比較を含む。 RNA-配列データ解析のための一般的なガイドラインがあるが、フィルタリングパラメータは、配列決定の品質に大きく依存し、生データの品質管理分析の後に決定されるべきである。 このプロトコルは、入手して、in vivoでトランスフェクトしたニワトリ胚性脊髄からRNA-配列プロファイルを比較する手順について説明します。代表的な結果として、空のベクターでトランスフェクトした二つの独立した対照試料から得られたデータセットの比較は、方法は、再現性があり、示差的EXPRESの同定を可能にするはずであることを示した実験試料におけるSEDの転写産物。従って、この方法の適用は大きく一つの実験後の発見の数を増加させ、したがって、その後の調査のために、大量のデータセットを提供する可能性を有する。

<table><tbody><tr><td>インドのインク</td><td>任意のサプライヤー18G</td><td></td><td></td></tr><tr><td>x 1 1/2針</td><td>BD</td><td>305196</td><td></td></tr><tr><td>3ミリリットルの注射器</td><td>BD</td><td>309657</td><td></td></tr><tr><td>トリス</td><td>MPバイオメディカル</td><td>819620</td><td></td></tr><tr><td>FD&C Blue 1</td><td>Spectra Colors Corporation</td><td>5.FC.0010P0</td> DNA注射リンガー液の<td>視覚化に使用される食品染料</td></tr><tr><td>(1 L)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 7.2 g NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-9888</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 0.37 g KCl</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>P-4504</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 0.225 g CaCl2&#8226;2H2O</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック</td><td>10043-52-4</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 0.217 g Na2HPO4.7H2O</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-9390</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 0.02 g KH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-5379</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- ddH2Oを800mlにし、pHを7.4</td><td></td><td></td><td></td>°Cに調整</tr><tr><td>します。&nbsp;&nbsp;&nbsp;- ddH2Oから1L</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- フィルターとオートクレーブ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>PBS(リン酸緩衝液)(1 L)</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- NaCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S-9888</td><td></td> g 8 g</tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 0.2 g KCl</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>P-4504</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 1.15 g Na2HPO4&#8226;7H2O</td><td>シグマ・アルドリッチ</td><td>S-9390</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 0.2 g KH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P-5379</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- ddH2Oを800mlにし、pHを7.2</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>に調整します。&nbsp;&nbsp;&nbsp;- ddH2Oから1Lおよびフィルター</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 1 ml DEPC(ジエチルピロカーボネート)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D-5758</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- 激しく振って、室温</td><td></td><td></td><td></td>で一晩放置します</tr><tr><td>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;- オートクレーブ</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ふるい分けスプーン</td><td>任意のサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>滅菌済み 60 x 15 mm ポリスチレン ペトリ皿</td><td>コーニングライフサイエンス</td><td>351007</td><td></td></tr><tr><td>RNaseZap RNase 除染ソリューション</td><td>ライフテクノロジー</td>ズ <td>AM9780</td><td></td></tr><tr><td>ファインポイント手術用ハサミ</td><td>任意のサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ストレートファインポイントピンセット</td><td>任意サプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1.1 x 75 mmガラス毛細管から作られたプルガラス針</td><td>キンブルチェイス</td><td>40A502</td><td></td></tr><tr><td>9インチガラスパスツールピペット</td><td>任意のサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>手動ピペットポンプ</td><td>任意のサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>クリア1.5ml微量遠心分離機ポリプロピレンチューブ</td><td>コーニングライフサイエンス</td><td>MCT-150-C</td><td></td></tr><tr><td>マイクロ遠心分離機</td><td>任意のサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RNAlater RNA安定化ソリューション</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ AM7020</td><td></td></tr><tr><td>RNA水性全RNA分離キット</td><td>ライフテクノロジー</td><td>ズ AM1912</td><td></td></tr><tr><td>分子生物学グレード エタノール</td><td>任意のサプライヤー</td><td></td><td></td></tr><tr><td>RNA 6000 ナノキット</td><td>アジレントテクノロジー</td><td>ズ 5067-1511</td><td></td></tr><tr><td>2100 電気泳動バイオアナライザー Instrument</td><td>Agilent Technologies</td><td>G2939AA</td><td></td></tr><tr><td>Truseq RNA Sample Preparation Kit v2</td><td>Illumina</td><td>RS-122-2001/RS-122-2002</td><td></td></tr></tbody></table>

エレクトロポひよこ胚脊髄における遺伝子発現差のrna-配列解析

RNA-Seq Analysis of Differential Gene Expression in Electroporated Chick Embryonic Spinal Cord

ニワトリのオボエレクトロポレーションは、神経発達中の遺伝子機能を特定するための迅速で安価な方法です。このような実験的操作後の差次的に発現する転写産物のゲノムワイド解析は、トランスフェクションされたコンストラクトによって引き起こされる下流の影響のほぼ完全な全体像を明らかにする可能性があります。この研究では、エレクトロポレーションと差次的に発現した転写産物の同定との間のすべてのステップを含む、トランスフェクションされた胚性脊髄のサンプルからトランスクリプトームを比較するための簡単な方法について説明しています。第1段階は、エレクトロポレーションのガイドラインと、リボヌクレアーゼフリー環境でのHH23胚からのトランスフェクションされた脊髄半分の解剖、およびトランスクリプトームシーケンシングに適した高品質のRNAサンプルの抽出に関する指示で構成されています。次の段階は、GalaxyパブリックサーバーにおけるRNA-Seqデータセットのフィルタリングと比較に関する一般的なガイドラインを用いたバイオインフォマティクス解析であり、これにより、小規模から中規模の実験のためのローカルな計算構造が不要になります。代表的な結果は、解剖法が高品質のRNAサンプルを生成すること、および2つのコントロールサンプルから得られるトランスクリプトームが本質的に同じであることを示しています。さらに、DNAコンストラクトの実験的過剰発現を対照サンプルとの比較後に視覚的に検証できる1つの例が提供されています。この方法の適用は、脊髄の初期発達に関与する神経因子の機能に関する新たな発見を促進するための強力なツールになる可能性があります。

記載された方法を検証するために、2つの対照サンプルは、空のベクターのPME 7とインサートニワトリSCRT2 18のジンクフィンガードメインをコードSCRT2-ZNFの構築を含む同じベクターでトランスフェクトされた胚から1つのサンプルを用いてエレクトロポレーション胚から生成した。各11-22μgのトータルRNAを得た試料は、8〜12の胚のプールから得た。すべての3つのサンプルは、高品質のRNAがこのプロトコルを用いて得ることができることを実証し、バイオアナライザー機器（ 図1）を用いて行っ品質チェック10の最適RIN値を獲得した。 配列決定の後、記載され、フィルタ処理の読み取りの百分の83から91の配向率を増加させた（データは示さず）。予想されるように、全体的に比較した場合、二つの制御サンプルからのトランスクリプトームの比較は散布図には明確な差を示さなかった（ 図2）およびピアソン相関係数は0であった。99.さらに、SCRT2配列の一部を含んでいる軌跡に沿ってすべての3つ...

このビデオは、in ovoエレクトロポレーションによるトランスフェクション後に、解剖されたニワトリ胚性脊髄サンプルの全トランスクリプトーム解析を実行するための基本的な手順を示しています。

エレクトロポひよこ胚脊髄における遺伝子発現差のRNA-配列解析

In ovo electroporation of the chick neural tube is a fast and inexpensive method for identification of gene function during neural development. Genome ...

この手順の全体的な目標は、エレクトロポレーションされたニワトリの胚性脊髄からのすべての遺伝子とサンプルの発現レベルを評価することです。これは、最初に卵子で、初期胚の神経管の右側を孔開いて、胚を目的の段階に再インキュベートすることによって達成されます。手順の2番目のステップは、RNAフリーの環境でトランスフェクションに成功した神経管の半分を解剖し、できるだけ早く溶解に進むことです。3番目のステップは、RNAを単離し、サンプルをライブラリ調製とハイスループットシーケンシングにさらすことです。最後のステップは、データセットを処理してシーケンシングアーティファクトを削除することです。品種をゲノムにマッピングし、各遺伝子に発現レベルを割り当てます。最終的には、対照条件と実験条件での発現レベルを比較することで、発現差のある遺伝子を示すことができます。この方法の視覚的なデモンストレーションは、神経管解剖として重要です。胚の操作に精通している必要があるため、手順を学ぶのは困難です。このデモンストレーションでは、胚を神経管でGFP発現コンストラクトを使用して形質転換しました。胚ごとに1〜2マイクログラムの全RNAを収集するために、最大10個の胚に2時間取り組むことを覚悟してください。RNAの遊離条件下で、微細な解剖ハサミとSVEコレクションスプーンを使用して胚を採取し、各胚を冷たくします。DEPC治療済み。PBSは、細いピンセットを使用して四肢の芽の間の胚の側面領域全体を除去することにより進行する神経管分離ステップのすべての溶液を使用しました。このセクションを組織の背側を上にして、新鮮な冷溶液に移します。2本の細いガラス針を使用して、神経管とパリアル中胚葉の間の胚の各背側外側に3つのスポットを穿孔します。次に、2本のガラス針を中央のミシン目に挿入し、AP軸に沿って離します。必要に応じて各穿孔を通じてこれを行い、最終的に視差中胚葉を剥離し、この組織を取り除き、廃棄します。次に、胚を横向きにし、神経管とリンパ節の間に2本のピンセットの先端を導入します。それらをAP軸に沿ってスライドさせて離し、構造を分割します。神経管から大きなメダー組織片を取り除き、余分な中胚葉をピンセットでつまみながらピンセットで優しく固定します。次に、神経管を新鮮な冷たい溶液にそっと移します。手動ポンプ付きのガラスピペットを使用して、必要なすべての神経管を採取し、氷の上に置いてから作業を進めます。次に、各神経管を2つに分割します。鋭利な先端ピンセットをルーメンに挿入し、ルーフプレートを引き裂きます。次に、ピンセットを使用して床板を切り取り、ティッシュを半分に分割します。蛍光解剖顕微鏡を使用して、エレクトロポレーションされた半分と非エレクトロポレーションされた半分を選別します。選別した神経管の半分を新鮮な溶液を入れた1.5ミリリットルのチューブに移します。これらのチューブをフリックして、すべての組織を底まで下ろします。次に、チューブを100GSで数秒間スピンダウンします。次に、明るい照明の下で非常に慎重に、スナットを吸引します。組織が引き出された場合は、ゆっくりと排出し、スピンを繰り返します。神経管の半分から溶液が取り除かれたら、神経管あたり70マイクロリットル、溶解バッファーの半分をチューブに追加します。チューブをフリックして室温で15分間5分ごとにインキュベートし、チューブを激しくボルテックスしてRNAの収集を進め、RNAを精製しますシーケンシングのためには、サンプルごとに少なくとも8つの神経管の半分を用意してください。マイナス80°Cで保存されたライス神経管の他のコレクションは、コレクションにプールできます。まず氷の上で15〜30分解凍し、その後室温で解凍を完了させます。解凍したら、すべてのサンプルを激しくボルテックスし、5分間放置します。次に、サンプルを再度ボルテックスし、15, 000 GSで1分間遠心分離します。不溶性物質を取り除くには、上清を新しいチューブに移し、抽出を続行します。RNA単離キットを使用して、可能な限り高い濃度でRNAを回避してプロセスを完了します。このプロトコルでは、必要なスペースクォータを確保するために、GalaxyのWebサイトアカウントが必要です。まず、品質スコアがすでにShred plus 33でエンコードされていない限り、FASTQファイルをサイトにFTPアップロードします。まず、NGS QC and ManipulationメニューのFASTQグルーマーツールを使用して、アップロードしたデータセットを準備します。それ以外の場合は、[属性] でファイルの種類を [FASTQ 送信者] に変更します。次に、[NGS QC and Manipulation] メニューで、FAST QC ツールを使用してデータセットの一般的な品質を分析します。同じメニューでFASTQ品質トリマーを選択して、低品質の3つのプライムエンドを破棄します。品質スコアが 20 以上であれば、処理する必要があります。次に、同じメニューの下にあるクリップツールに移動します。このツールを設定して、45 塩基対未満の読み取りを破棄します。アダプターのシーケンスを入力します。未知の塩基を持つリードを破棄するオプションを無効にし、クリップされたシーケンスとクリップされていないシーケンスを含める出力を選択します。シーケンスのトリミング ツールに進みます。これを使用して、リードの最初のベースをトリミングし、FAST qc によって検出される 5 つのプライム シーケンス バイアスを削除します。次のステップは、Illumina Iゲノムサイトから最新のニワトリゲノムアセンブリをダウンロードして解凍することです。次に、全ゲノム高速フォーマットファイルと遺伝子のアノテーションGTFフォーマットファイルをギャラクシーヒストリーにアップロードします。次に、N-G-S-R-N-A解析メニューにアクセスし、トップハット2ツールを選択して、各サンプルの読み取りをゲノムにマッピングします。Galaxy Historyからアップロードしたfastaファイルをリファレンスゲノムとして選択します。次に、同じメニューの下にあるカフスボタンツールを選択して、予測されたトランスクリプトームを構築します。サンプルごとに、参照注釈ガイドとして使用する GTF ファイルを選択します。シーケンスデータに対して「Perform bias correction using the FASTA file」を選択し、「use multi read correction」オプションを有効にします。次に、カフマージツールを使用して、すべてのアセンブルトランスクリプトームをマージします。このツールでは、参照アノテーションにGTFファイルを選択し、シーケンスデータにFASTAファイルを選択します。次に、各サンプルの top hat 2 によって生成された BAM ファイルを、RNA 解析メニューの下にある cuff TIFF ツールで比較します。[transcripts]フィールドで、カフマージによって生成されたマージトランスクリプトームを選択し、オプションを有効にします。マルチリードコレクトを使用し、シーケンスデータのFASTAファイルを使用してバイアス補正を行います。次のステップは、差分テーブルを並べ替えることです Q 値列を使用して、フィルターと並べ替えメニューから並べ替えツールを選択します。実験条件間で有意差のある配列は、列13でQ値が最小になります。次に、カバレッジグラフを見てみましょう。まず、オプションのベッドツールメニューにある変換ツールを使用してBAMファイルをベッドグラフファイルに変換し、カバレッジのない領域のレポートを無効にし、スプライシングされたエントリを個別の間隔として扱うことを選択します。また、実験のすべてのカバレッジを正規化する係数でカバレッジをスケーリングします。次に、変換形式のメニューにあるツールを使用して、結果のベッドグラフファイルを大きなかつら形式に変換し、大きなかつらファイルをカスタムトラックとしてUCSEサーバーにアップロードします。USCSのゲノムブラウザページでは、GALの4つのアセンブリと遺伝子の検索を使用して、空のPSベクトルを発現する神経管をRNAのために採取した方法で説明されている方法を使用して、データセットを視覚的にカバーします。これを二重に行い、得られたRNAは非常に高品質で、予想通り最適なRIN値は10でした。重複した空のベクターコントロールのトランスクリプトームの全体的な比較では、明確な差は示されず、ピアソン相関係数はポイント99でした。また、スクラッチ2のジンクフィンガードメインを発現する実験サンプルでは、スクラッチ2遺伝子配列にマッピングされたリード数が明らかに増加しました。したがって、これらの分析法は、予測された濃縮を検出するのに十分な感度を備えていました。このビデオを見た後、胚性神経管を分離し、プロトコルのセクション4のシリコン分析手順に従って、ICデータセットを処理および比較して差次的に発現する遺伝子を見つける方法を十分に理解できるはずです。

rna-seq-analysis-differential-gene-expression-electroporated-chick

Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

このビデオは利用してニワトリ胚脊髄の神経細胞の遺伝的に定義されたグループの軸索経路を可視化する方法を示しています...

活用チック神経管の神経細胞の遺伝的に定義されたグループの軸索経路の解読卵のエレクトロポレーション

我々はマウス胚組織における組織特異的遺伝子発現の開始中または後に組織特異的遺伝子に要因の相互作用を識別するために、クロマチン免疫沈降（ChIP）法を示しています。それは正常な胚発生時に発生するとして、このプロトコルは、組織特異的遺伝子の活性化の研究に広く適用可能であるべきである。...

初期段階のマウス胚を用いて組織特異的遺伝子のためのクロマチン免疫沈降アッセイ

機能や中脳ドーパミン作動性ニューロンの開発中の遺伝子の調節を評価するために、我々は、関与の方法について説明します。...

ドーパミン作動性ニューロンの開発における遺伝子機能を研究するためのニワトリ中脳でのOVOエレクトロポレーションに

神経管における遺伝子発現は、細胞型特異的、トレーサブルな方法でダウンレギュレートすることができる方法が記載されている。我々はどのように実証する...

オープンブックの準備におけるDiIを注入による開発神経管と表現型の評価におけるmiRNAベースのプラスミドのインオボエレクトロで

発達神経生物学の根本的な問題はどのように神経細胞のネットワークが胚の脳の中で確立されています。ここでは、そのようなのCre /...

ニワトリ胚における軸索軌道とシナプスターゲットを追跡する後脳のエレクトロ

我々は2人のまたは3次元の胚様体を生成するために、マウスの胚性幹細胞を使用するためのテクニックを説明します。私たちは、その後、レチノイン酸によって胚様体細胞の神経分化を誘導する方法を説明し、どのように前駆細胞マーカーの免疫蛍光およびイムノブロッティングによりそれらの分化の状態を分析します。...

2および3次元の胚様体中のマウス胚性幹細胞のレチノイン酸誘発神経分化の分析

鳥類および哺乳動物の聴覚脳幹ニューロンは、正常な聴覚機能のための基本的なプロセスである高速神経エンコーディングに特化しています。これらのニューロンは、胚後脳の別個の前駆細胞から生じる。我々は、聴覚発達中の遺伝子機能を研究するために、ニワトリ胚の後脳における遺伝子を発現させるためにエレクトロポレーションを利用する技術を提示する。...

鶏の聴覚脳幹における卵の電気穿孔

ここでは、クロマチン免疫沈降 (チップ) と低豊富な鶏胚サンプルからグローバル エピゲノム プロファイルを生成するチップ seq...

クロマチン免疫沈降 (チップ) プロトコル低豊富な胚サンプル

ここに提示されるプロトコルは、CAS9-gRNA複合体を脊髄中央管に注入し、続いてエレクトロポレーションを行うことによって、軸総便脊髄の時間および空間制限遺伝子ノックアウトを行うプロトコルである。...

CAS9タンパク質-gRNA複合体のエレクトロポレーションによるアクソロトル脊髄神経幹細胞の直接遺伝子ノックアウト

ここでは、脊椎動物 アフリカツメガエル...

発生中の(カエル)胚における細胞系譜ガイド質量分析プロテオミクス

学ぶエレクトロポレーション後のひよこ胚脊髄の全トランスクリプトーム解析法。RNA抽出、ライブラリ調製、ハイスループットシーケンスを用いて遺伝子発現レベルを評価し、発生神経科学の研究に有用なプロトコルを提供します。

エレクトロポひよこ胚脊髄における遺伝子発現差のRNA-配列解析

さらに動画を探す