Name: 初代細胞培養研究のためのひよこ網膜における効率的な遺伝子導入：元オボエレクトロポレーションアプローチ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-11-02T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 59 s
Description: 学ぶ ひよこ網膜初代培養細胞への高効率遺伝子導入法。エレクトロポレーションにより22〜25%の転染効率を達成し、光受容体生物学研究における遺伝子発現操作と機能解析を可能にする革新的アプローチです。

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私たちは、データ分析を支援してくださったDavid O'Brienに感謝したいと思います。また、Canto-Soler研究室のすべてのメンバーには、彼らの重要な議論に対して感謝したいと思います。この研究は、NIHの助成金EY004859およびEY022631(MVCS)、Core Grant EY1765、およびResearch to Prevent Blindness, Inc.からの無制限の部門助成金によって支援されました。

この作業で説明するすべての手順は、ジョンズ・ホプキンス大学の動物実験委員会によって推奨されるガイドラインに従って行いました。 事前に1：楽器の調製、試薬と料理<ol><li>卵の調製：卵のインキュベーターで5日間37.5℃、相対湿度60％で受精白色レグホン鶏の卵をインキュベートします。 注：標準化と胚発生を同期させるための役に立つかもしれ容量ロッキングが、ロッキングインキュベーターは、このプロトコルの結果のために厳密には必要ではないです。 </li><li>プラスミド準備： <ol><li>必要に応じてデザインプラスミドは（RNAi技術1,34を使用することによって例えば）遺伝子の過剰発現またはダウンレギュレーションのために構築します。可能な限り、構築物中のレポーター遺伝子を（例えば、EGFP、RFPまたはのLacZなど）が含まれます。 注：例えば、CMVのようないくつかの一般的に使用されるプロモーターは、時間後に沈黙になることができます。 CAGのpromotER（CMVエンハンサーとチキンβ-アクチンプロモーター）関心35-37の遺伝子の効率的な長期的な表現を提供する、非常に良い代替手段です。 </li><li>無菌PBS中1.5μgの/μlの濃度でのプラスミド溶液を準備します。オプション：事前にプラスミド溶液を調製し、それが凍結された使用可能な状態になるまで保管してください。 注：より高いプラスミド濃度が低いプラスミド濃度はトランスフェクション効率1を下げて使用するのに対し、効率の大幅な増加をもたらさありません。 </li></ol></li><li>電極： <ol><li>アノードの使用のために厚い金（特定の材料/機器の表を参照）電極をひっくり返し。 70％エタノールで拭いてください。 注：金の断熱材が露出して約0.5mmを残して、電極を傾け、電流の漏れを最小限にすることをお勧めします。材料を絶縁するための情報は、特定の材料の表に記載されています。 </li><li> 2.5ミリメートル四方bのうち、カソードを作ります牛フィラメント、（通常はマイクロピペットプラーで使用）幅4.5ミリメートル。鉗子を用いて、正方形のボックスを取り消し、長いストリップにフィラメントをまっすぐ。その後、解剖顕微鏡やガイドとして定規を使って下に、ベースで3 mmの長さの正方形「U」形状にフィラメントを曲げ、反対側のフィラメントの残りの長さ（ 図1で、片側に2ミリメートル高、C - D）。ピンセットを使用して、滅菌するために96％エタノール及び火炎に電極を浸します。そして、電極の長い腕に小さなワニ口クリップで電気リード線を接続します。 </li></ol></li><li>エレクトロポレーションチャンバーのセットアップ： <ol><li>テープを使用して100ミリメートルペトリ皿に、ダウン滅菌1.5ミリリットルマイクロチューブの蓋を切断し、それを貼り付け、平らな側がエレクトロポレーションチャンバーを準備する（ 図1E）。 注：仕事と同じような大きさの井戸の形で他の容器と、しかし、マイクロチューブの蓋は簡単にアクセスし、オートクレーブ可能です。よくひよこの目とカソード電極を収容するのに十分な大きさが、プラスミド溶液の廃棄物になるよう大きくないでなければなりません。 </li></ol></li></ol> 2. 例OVOエレクトロポレーション手順<ol><li>楽器の調製<ol><li>マイクロ解剖ツール滅菌浸漬することにより、（RPEを除去するための卵の殻を開いて胚をすくうための大きな湾曲モロニー鉗子の2ペア、微先端湾曲デュモンピンセットの2ペアを、ボンの1組は、レンズと硝子体を除去するための鉗子を歯） 96％のエタノールと炎でのヒント。 70％エタノールに浸したワイプを使用してクリーンな解剖スコープ。 37℃の水浴中で滅菌したカルシウム・マグネシウムフリーハンクス液（CMF-HBSS）のボトルを温めます。暖かいCMF-HBSSでフル3/4に100ミリメートルの滅菌ペトリ皿を埋めます。 </li><li>別のきれいな解剖顕微鏡下でエレクトロポレーションチャンバーを配置し、プラスミド溶液の120μlの記入。 、エレクトロポレーション装置に電極を接続すること必ずカスタムメイドの電極は、負極に接続されていると金が正極に電極をひっくり返しました。 </li></ol></li><li>胚コレクション： <ol><li> 70％エタノールで湿らせたワイプで殻を拭いて卵をきれいにしてください。文化に汚染を運ぶ避けるために、プロトコルの残りの部分で滅菌手順を維持します。大きな湾曲モロニー鉗子を使用して、慎重にゆっくりと（空気室以上）卵の丸い先端をタップして、把持とシェル部分を引き出して卵の殻に穴を開けます。 </li><li>鉗子の別のペアを有する膜を除去し、（胚を傷つけないように注意して）卵からそれをすくうことによって胚を収集します。 CMF-HBSSで皿にそれを置きます。 注：2.4.4で指定されたエレクトロポレーションのために網膜カップの所望の数を取得するために必要な数の胚を収集</li><li>重要なステップ：ハンバーガーとハミルトン38に従って胚をステージ。 注：最適な効率の胚を取得するにはステージ27（ 図2A）でなければなりません。 </li><li>モロニー鉗子を使用して、断頭により胚を安楽死させます。 </li></ol></li><li>網膜カップの入手先： <ol><li>細かいデュモンピンセットを使用して、慎重に目を摘出して、新しいCMF-HBSS皿に移します。 </li><li>視神経乳頭の近くに、各眼の後方部分から開始し、2つの細かいデュモンピンセットを使用して、神経網膜とRPEの間にピンセットの各対の一方の先端を導入し、慎重にRPEが神経を損傷しないように慎重にされて出て解剖します網膜（ 図2B）。 注：RPEを助ける溶液中のCa 2+およびMg 2+の欠如は、より簡単に神経網膜から切り離します。 </li></ol></li><li>エレクトロポレーション： <ol><li> 15ボルト、50ミリ秒の持続時間、および950ミリ秒間隔の5平方パルスを提供するためにエレクトロポのパラメータを設定します。場所 &#39;U&#39;は、エレクトロポレーションチャンバー内の負極を形（微量蓋フィルプラスミド含有溶液の120μL）とのED。 </li><li>湾曲デュモンピンセットを使用して（押していない、すくうにより）エレクトロポレーションチャンバーに1網膜のカップを転送し、電極の底面と上向きレンズ（に向けて網膜の後方部分で、「U」形状の電極内に配置図2D）。 </li><li>それは次のレンズに、目の前の部分に触れると、エレクトロポレーターのフットペダルは、電気パルスを提供するように使用して陽極を配置します。 </li><li> CMF-HBSSで新しいペトリ皿にエレクトロポレーションした網膜カップを移し、残りの網膜カップのそれぞれにエレクトロポレーション手順を繰り返します。 注：6網膜杯までは、トランスフェクション効率の著しい低下なしに同一のプラスミド溶液をエレクトロポレーションすることができます。 </li><li>ボン歯鉗子でそれらを握り、ゆっくりとトンを介して引っ張ることにより、各エレクトロポ網膜カップのレンズと硝子体を削除します湾曲デュモンピンセットの裏で所定の位置に目を保持しながら、彼は口を瞳孔。 </li><li>標準的な手順を以下のエレクトロポ網膜細胞の解離と文化に進んでください。 注：ひよこ網膜細胞の解離と文化に関する詳細なプロトコルの場合ベルガラとカント・ソレル、2012、追加のファイル4〜21を参照して、このプロトコルでは、細胞は、ポリオルニチンでコーティングした6ウェルプレートまたは35に低密度で播種します。 -mm皿（6×10 5細胞 / 35 mmの直径ウェルまたはディッシュ）。使用した培地は、ペニシリン/グルタミン、10％ウシ胎児血清（FCS）および100μg/ mlのリノール酸-BSA 199培地です。培養物を5％CO 2の加湿37℃インキュベーター中で維持されています。この手順を使用して、5 - 6×10 6個の細胞は、典型的には、各ステージ27エレクトロ目ごとに得ることができます。 注：理想的には、せいぜい3時間は、胚の収集および細胞播種の間を通過する必要があり、良好な細胞生存を確保するためにストレスを最小限に抑えます。この時点で、細胞は、良好な形態学的および分子分化を達成していると生存率はまだ高いので観察し、さらなる分析のための典型的なタイミングは、文化の中で4日後です。 </li></ol></li></ol>

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<li>Hamburger, V., Hamilton, H. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+series+of+normal+stages+in+the+development+of+the+chick+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">A series of normal stages in the development of the chick embryo.</a> Dev Dyn. 195 (4), 231-272 (1992).</li>
</ol>

著者らは、競合する金銭的利益やその他の利益相反がないことを宣言します。

このプロトコルの成功のための最も重要なステップは、胚の適切な段階を選択することです。以前の出版物では、胚の段階の範囲は、一般に、インキュベーションまたは胚日の日（ED）によって定義され、これらの培養のために与えられています。したがって、通常、EDに6胚をED 5を使用して同等の結果をもたらすと仮定されます。しかし、我々は、上記のように、ステージ27（ED 5）に、トランスフェクション効率は、全細胞集団の約22％になることを見出しました。まだ効率は28胚（ED 5.5）のステージを使用している場合、ステージ29（ED 6）1で12％と16％に低下します。その他の重要なステップは、プロセス全体を通じて、無菌状態を維持することを含み;解剖とエレクトロポレーションの間に、網膜の損傷を避けるために必要な手先の器用さを獲得。および細胞のプレーティング時に胚採取の時間から長いギャップを回避します。 良いトランスフェクションefficienを確保するためのもう一つの重要な考慮事項CIESプラスミド含有溶液の濃度である：推奨1.5μgの/μlのは、我々は効率の低下をもたらさなか...

ニワトリ胚の網膜からの解離細胞培養物は、広く生存2-9、10-12分化、神経突起伸長13、などを含む光受容体細胞生物学のさまざまな側面を研究するために使用されています。このシステムの利点は、ルーベン・アドラーと共同研究者によって1980年代に開発され、彼と他のグループ14-20によって完成は、動物モデル21としてひよこの固有の特性に存在します。でも、胚の段階でニワトリ目の大きなサイズは、培養のための材料を大量に提供します。培養物は、胚日（ED）5使用して実行されたときにまた、 - 6網膜を、55 -この動物における光受容体の約86％であるので、それらの前駆細胞の80％が光受容体14,15,18,22,23として区別し、コーン24は 、これらの培養物は、この細胞型に焦点を当てた研究のために特に適しています。 我々は最近、develoを持っていますPEDは、したがって、遺伝missexpression研究1を容易にすることによって、このシステムの有用性を広げ、これらの培養物中の細胞の高効率プラスミドトランスフェクションを可能にする簡単な方法を特徴とします。この技術の開発は、細胞自律的に遺伝子機能の研究を可能にするために、トランスフェクションの許容レベルを提供する方法の科学文献中の空隙から茎。主な神経細胞培養は25,26をトランスフェクトするために悪名高い困難なので、これは一部にはあります。この目的のために以前に利用可能な最も一般的に使用される技術の一部は、3-5％の順に効率をもたらすようなリポフェクション、またはリン酸カルシウム媒介トランスフェクションなどの化学的トランスフェクション法を含めて、かなりの毒性27-32を発揮することができます 。酵素レポーター系とプラスミドの使用は、信号を増幅することによって悪いトランスフェクション効率の問題を回避することができるにもかかわらず、彼らはしないでください細胞特異的な効果を識別し、その結果、全体の代表ではないかもしれない小さな細胞集団に基づいています。ひよこのもう一つの広く使用されている方法は、RCASウイルス感染は、増殖細胞にのみ適用し、このプライマリ網膜培養系33に適していないです。 現在のプロトコルではニワトリ胚の目はステージ27（ED 5）、網膜色素上皮（RPE）が除去され、網膜のカップは、プラスミドを含む溶液で満たされたエレクトロポレーションチャンバ内に配置さで摘出し、使用してエレクトロポレーションされているカスタムメイド標準的な技術21を使用して網膜の解離と培養した電極、。この手順を最適化した後、我々は、生存および分化の特性を損なうことなく、一貫して、培養中の細胞の総数の22％単独感光集団内の25％のオーダーでのトランスフェクション効率を達成することができました文化1。ここでは、この技術の成功と再現性を確保するために、この手順のすべての重要なステップを概説し、詳細なプロトコルを提供します。

<table><tbody><tr><td>ECM 830 エレクトロスクエアポレーター</td><td>BTX/ ハーバード装置</td><td>45-0052</td><td></td></tr><tr><td>ジェネトロード、L字型、5 mm ゴールドチップ</td><td>BTX/ ハーバード デバイス</td><td>45-0115 モデル 512</td><td>アノードとして使用されるゴールドチップ電極</td></tr><tr><td>ポリイミドチューブ</td><td>ベンションメディカル</td><td>カスタムメイド</td><td>内径:0.5 mm/肉厚:0.15 - 0.2 mm. 金チップ電極</td></tr><tr><td>の絶縁に使用2.5 mm正方形のボックスフィラメント、4.5 mm幅</td>の<td>Sutter Instrument Company</td><td>FB245B</td><td>陰極電極HBSSを作るために使用され</td></tr><tr><td>、カルシウム、マグネシウム、フェノールレッドはありません</td><td>Gibco - Life Technologies</td><td>14175-095</td><td></td></tr><tr><td>Moloney Forceps</td><td>Roboz</td><td>RS-8254</td><td>鋸歯状;わずかなカーブ;4.5インチ長さ</td></tr><tr><td>デュモンピンセット 5/45</td><td>Roboz</td><td>RS-5058</td><td>パターン #5、45 度角度、.10 x .06mm チップサイズ、長さ 109mm</td></tr><tr><td>ボンマイクロ鉗子、1x2 歯</td><td>Roboz</td><td>RS-5172</td><td>タイイングプラットフォーム、1x2 歯、0.12 mm 歯、3.75 インチ長さ、0.3 mm チップ幅</td></tr></tbody></table>

初代細胞培養研究のためのひよこ網膜における効率的な遺伝子導入：元オボエレクトロポレーションアプローチ

Efficient Gene Transfer in Chick Retinas for Primary Cell Culture Studies: An Ex-ovo Electroporation Approach

ニワトリ胚の網膜由来錐体光受容体に富む文化が網膜神経細胞、特に光受容体の生物学を研究し、世界中の研究者のための不可欠なツールとなっています。それらは容易に薬剤開発のためのハイスループット技術に適合させることができるように、このシステムのアプリケーションは、基本的な研究を越え。しかし、これらの培養物における網膜の光受容体の遺伝子操作は、システムの有用性に重要な制限を装った、非常に困難であることが判明しています。我々は最近開発され、現在利用可能な他のプロトコル1に比べて5倍これらの培養物における網膜細胞のトランスフェクションの速度を増加させるプラスミドのエレクトロポレーション技術OVOの元を検証しています。この方法では、ニワトリ胚の眼は、段階27で摘出され、RPEを除去し、そして網膜のカップは、プラスミド含有溶液中に配置されており、容易に構築お客を用いてエレクトロポレーション電極を作りました。網膜は、次に解離し、標準的な手順を用いて培養されます。この技術は、一般的に感光体集団の25％において導入遺伝子の発現を達成する、プラスミドドリブンRNAi技術の使用を介して、例えば、過剰発現の研究​​に、ならびに遺伝子発現のダウンレギュレーションにも適用することができます。現在の出版物のビデオフォーマットは、一次網膜培養における遺伝子機能の研究を可能にする、分野の研究者にこの技術が簡単にアクセスできるようになります。また、成功した結果と再現性のために、この手順の重要なステップの詳細な説明が含まれています。

ここでは、その後の解離細胞培養のための除核ひよこ網膜カップへのプラスミドのトランスフェクションのための単純なプロトコルを提示します。トランスフェクションは、カスタムの電極（ - 2、図1）を作成することが容易に使用してエレクトロポレーションにより達成されます。このプロトコルで説明するパラメータ（平均22％で）20％の間と27の範囲のトランスフェクション効率を得られるように最適化された（ 図3D）。上記の理由のために、これらの結果は、培養の4日後に定量化される、ということに注意してください。この文脈において、トランスフェクション効率は、全細胞集団内で導入遺伝子を発現する細胞の割合を指します。唯一の感光体集団が考慮されている場合は、トランスフェクション効率は、25％の平均（ 図3D）に増加します。培養物のこれらのタイプは、主に光受容体を研究するために使用されているので、これは重要な特徴です。 electroporatされた細胞培養この技術を用いて編その非エレクトロポDIC照明下でその...

ニワトリ胚網膜細胞培養物は、感光体の生物学の研究のための貴重なツールを構成しています。私たちは文化の前に網膜のプラスミドエレクトロポOVOの元に基づいて、効率的な遺伝子導入技術を開発しました。この技術はかなりこのシステムの実現可能な遺伝子操作を行う、現在利用可能なプロトコルを介してトランスフェクション効率を向上させます。

The cone photoreceptor-enriched cultures derived from embryonic chick retinas have become an indispensable tool for researchers around the world studying ...

この手順の全体的な目標は、初代網膜培養における機能遺伝学的研究を可能にするために、網膜細胞の高効率、プラスミド、トランスフェクションを達成することです。これは、最初にハンバーガーとハミルトンシステムのステージ27で鶏の胚を収集することによって達成されます。最適な効率を達成するためには、適切なステージングが重要です。2番目のステップは、胚の目を解剖し、神経網膜を露出させている網膜色素上皮を取り除くことです。次に、レチナールカップをプラスミド溶液で満たされたチャンバーに入れます。次に、簡単に構築できるカスタムメイドの電極を使用して、最適化された条件下でエレクトロポレーションを行います。最後のステップは、硝子体と水晶体を取り外し、神経網膜を単一細胞に解離して低密度の一次培養を行うことです。最終的には、トランスフェクションされた細胞は、レポーター遺伝子の発現または免疫組織化学によって可視化することができ、効果的な遺伝子操作は、下流の遺伝子の発現および/または表現型の細胞変化を評価することによって評価することができる。この技術がリポフェクションや化学トランスフェクションなどの既存の方法よりも優れている主な利点は、網膜細胞のトランスフェクション速度を5倍に増加させ、全細胞集団の22〜25%の効率をもたらすことです。この方法は、生物学的に意味のある洞察を提供できる効率レベルでの初代網膜培養における遺伝子発現の操作を可能にするため、光受容体生物学の分野における重要な質問に答えるのに役立ちます。この手法は、基礎研究にとどまらず、医薬品開発のためのハイスループット技術にも容易に適応させることができます。受精した白い脚の角の鶏の卵を摂氏37.5度、相対湿度60%の卵インキュベーターで5日間孵化させることから始めます。実験に先立ち、マイクロピペットプルに通常使用されるボックスフィラメントを入手してください。鉗子を使用して四角い箱を元に戻し、フィラメントを長いストリップにまっすぐにします。次に、定規をガイドとして使用して、フィラメントを正方形のu字型に曲げ、基部で3ミリメートルの長さ、一方の側で2ミリメートルの高さでもう一方の側と、フィラメントの残りの長さは鉗子を使用して電極を96%エタノールに浸し、電極を短時間炎化して滅菌します。次に、小さなワニ口クリップ付きの電気リード線を電極の長いアームに取り付けます。次に、70%エタノールを使用して、先端が厚い金の電極を清掃します。次に、滅菌ハサミで滅菌済みの1.5ミリリットルマイクロ遠心チューブの蓋を切り取り、100ミリのペトリ皿に平らにテープで貼り付けて、エレクトロポレーションチャンバーを準備します。次に、器具の先端を96%エタノールに浸し、短時間火をつけてマイクロディスectツールを滅菌します。また、70%エタノールを使用して解剖スコープをきれいに拭きます。無菌のカルシウムとマグネシウムを含まないハンクスバランス塩溶液のボトルを摂氏37度の水浴で温めます。温まったら、それを使用して100ミリメートルの滅菌ペトリ皿を4分の3いっぱいに満たします。次に、エレクトロポレーションチャンバーを清潔な解剖顕微鏡の下に置きます。次に、電極をエレクトロポレーション装置に接続し、カスタムメイドの電極が負極に接続され、先端が金の電極が機械の正極に接続されていることを確認します。70%エタノールで殻の外側を拭いて卵をきれいにします。注意を払い、プロトコルの残りの部分全体で無菌性を維持してください。大きく湾曲したマロニー鉗子を使用して培養物に汚染を持ち込むのを避けるために、卵の丸みを帯びた先端を空気室の真上で軽くたたいて、卵殻に慎重に穴を開けます。別の鉗子ですべてのシェルピースを引き出します。膜を取り除き、卵から慎重にすくい取って胚を収集します。温めたカルシウムとマグネシウムを含まないHanks Balance塩溶液を入れたシャーレに胚を入れます。適切な数の胚が収集されたら、それらがすべて正しい段階にあることを確認してください。ハンバーガーとハミルトンの病期分類システムによると、最適な効率を得るためには、胚はステージ27になければなりません。マロニー鉗子を使用して斬首して胚を安楽死させ、次にデュモンピンセットを使用して慎重に目を核にします。カルシウムとマグネシウムを含まないHBSSを含む新しいシャーレに目を移します。視神経乳頭に近い各眼の後部から始めて、次に神経網膜と網膜色素上皮の間にデュモンピンセットの各ペアの先端を1つずつ導入します。目の後部から正面に向かって、ピンセットを使用して網膜色素上皮を慎重に解剖します。神経網膜を傷つけないように注意してください。エレクトロ パーターを設定して、15 ボルトの 5 つの方形パルスを 50 ミリ秒の持続時間と 950 ミリ秒の間隔で供給します。次に、エレクトロポレーションチャンバーに120マイクロリットルのプラスミド溶液をPBS中に1マイクロリットルあたり1.5マイクログラムの濃度で満たします。次に、U字型の負極をマイクロ遠心分離機の蓋エレクトロポレーションチャンバー内に配置します。湾曲したデュモンピンセットを使用。1つのレチナールカップをエレクトロポレーションチャンバーに移し、U字型電極の内側に置きます。網膜の後部が電極の底にくるように網膜を配置し、レンズが上を向くようにします。次に、アノードをレンズの隣の目の前部に接触するように配置します。次に、エレクトロレイダーのフットペダルを使用して、5つの電気パルスを供給します。終了したら、エレクトロポレーションされたレチナールカップを、カルシウムとマグネシウムを含まないHBSSで満たされた新しいシャーレに移します。追加のレチナールカップごとにエレクトロポレーション手順を繰り返します。.最大6つのレチナールカップを同じプラスミド溶液でエレクトロポレーションでき、トランスフェクション効率を大幅に低下させることはありません。次に、ボンド歯付き鉗子を使用して、レンズと硝子体を各エレクトロポレーションサンプルから穏やかに除去し、湾曲したデュモンピンセットの背面で眼を所定の位置に保持しながら、標準的な技術を使用してエレクトロポレーション網膜細胞の解離と培養に進みます。ここに示されている網膜細胞を、GFP発現、プラスミドでエレクトロポレーションし、解離させ、4日間培養しました。蛍光顕微鏡写真は、薄汚れた染色核と網膜細胞を発現するGFPを示しました。抗ビシン抗体染色を行い、視細胞を同定しました。このプロトコールに記載されているパラメータは、4日後の全集団と比較して平均22%のトランスフェクト効率が得られるように最適化されています。文化では、この測定値は、光受容体集団のみが考慮されると考慮されると、平均25%の効率に増加します。胚採取から電気操作までのこの技術は、適切に行えば、6つの眼で30分以内に行うことができます。この手順を試行する際、高品質の培養を得るためには、胚の収集と解離した細胞プレーティングの間に3時間以上経過してはならないことを覚えておくことが重要です。この手法は、例えばRNAiシステムを用いて、遺伝子の過剰発現または相関に適用することができます。また、この手順に従ってトランスフェクションされた網膜は、器官型の網膜培養に用いることができます。

efficient-gene-transfer-chick-retinas-for-primary-cell-culture

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

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